盧俊顏,向光大,梅穩(wěn),劉敏,向林,董靖
鳶尾素改善載脂蛋白E基因敲除糖尿病小鼠動脈粥樣硬化
盧俊顏,向光大,梅穩(wěn),劉敏,向林,董靖
目的:探索鳶尾素(Irisin)對動脈粥樣硬化的作用及其可能機制。
方法:建立載脂蛋白E基因敲除(ApoE-/-)小鼠糖尿病模型(n=20)并分為鳶尾素組(n=10)、糖尿病對照組(n=10),同時設立空白對照組(n=10),分別靜脈注射鳶尾素或等量生理鹽水。鳶尾素干預4周后,測定血管內(nèi)皮依賴性舒張功能。干預12周后,檢測血清腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、C-反應蛋白、白細胞介素-6(IL-6)及氧化低密度脂蛋白等炎性因子水平;油紅O及蘇木素伊紅(HE)染色分析主動脈粥樣斑塊表面積及橫斷面積;抗CD68和抗CD90免疫組化染色測定斑塊巨噬細胞及T淋巴細胞浸潤;實時定量聚合酶鏈式反應(RT-PCR)分析主動脈壁IL-6、白細胞介素-10、TNF-α等炎性因子信使核糖核酸 (mRNA) 轉錄水平。
結果:鳶尾素組與糖尿病對照組相比,小鼠內(nèi)皮依賴性舒張功能改善,血中炎性因子水平降低,粥樣斑塊表面積[(22.57 ± 2.17)% vs(35.09 ± 2.38)%,P<0.05]及橫斷面積[(19.36 ± 1.85)% vs(25.53 ± 7.87)%, P<0.05]減小,斑塊巨噬細胞[(30.5±2.79)% vs(41.34±9.13)%]、T淋巴細胞[(28.11±4.24)% vs(35.79±9.11)%]浸潤減少,主動脈壁炎性因子mRNA轉錄水平下降[IL-6:1.76 ± 0.50 vs 3.78 ± 1.15;TNF-α:1.05 ± 0.30 vs 2.11 ± 0.48;細胞內(nèi)黏附分子-1:1.96 ± 0.69 vs 2.71 ± 0.72;血管細胞黏附分子-1: 0.87 ± 0.21 vs 1.45±0.25;單核細胞趨化蛋白-1:1.34 ± 0.34 vs 1.77 ± 0.55],差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
結論:鳶尾素可改善ApoE-/-糖尿病小鼠動脈粥樣硬化,內(nèi)皮保護及抗炎反應是其保護血管的重要機制。鳶尾素具有潛在的防治動脈粥樣硬化的臨床價值。
鳶尾素; 動脈粥樣硬化; 糖尿病
(Chinese Circulation Journal, 2015,30:492.)
流行病學研究表明:約75%糖尿病患者死于血管并發(fā)癥,而冠狀動脈、腦動脈及周圍動脈等大血管并發(fā)癥是致殘、致死的主要原因[1,2]。動脈粥樣硬化是引起糖尿病大血管并發(fā)癥的最重要病理改變,因此改善動脈粥樣硬化對糖尿病大血管病變的防治具有重要意義。既往研究證實:運動可改善動脈粥樣硬化,其機制與減輕胰島素抵抗、降低體重、糾正血管內(nèi)皮功能障礙及減輕動脈炎癥反應有關。但以上機制并不能直接地解釋運動對動脈粥樣硬化的改善作用。學者們曾懷疑骨骼肌可能產(chǎn)生某種“肌肉因子”改善動脈粥樣硬化,卻一直缺乏證據(jù)。鳶尾素(Irisin)的發(fā)現(xiàn)為此提供了可能的線索。鳶尾素是一種主要由骨骼肌合成和分泌的激素,運動可增加其產(chǎn)生[3]。鳶尾素在體內(nèi)可將儲存能量、導致肥胖的白色脂肪組織轉變?yōu)橄哪芰?、減輕體重的棕色脂肪組織[3],即白色脂肪“棕色化”。動物實驗證實:鳶尾素可減輕肥胖C57小鼠的胰島素抵抗及體重[3]。Moreno-Navarrete等[4]的人體研究揭示:正常、超重及肥胖者血漿鳶尾素水平依次降低,與三者胰島素敏感性正好相反。正常人與2型糖尿病患者的對比也呈上述表現(xiàn)。我們前期的研究表明:新診斷的2型糖尿病患者血漿鳶尾素濃度與血管內(nèi)皮功能呈獨立正相關[5]。但目前少見文獻報道鳶尾素與動脈炎癥反應的關系,本研究旨在探索鳶尾素對動脈粥樣硬化的作用及機制。
實驗時間:2013-09至2013-12。無特定病原體(SPF)級4周齡雄性載脂蛋白E基因敲除(ApoE-/-)小鼠(美國Jackson實驗室),高脂飼料(南京青紫蘭科技有限公司),鏈脲佐菌素(美國Sigma公司),鳶尾素(美國Phoenix Pharmaceuticals公司),油紅O(美國Sigma公司),酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)試劑盒[白細胞介素-6(IL-6)和腫瘤壞死因子-α(TNF-α):美國R&D公司;C-反應蛋白(CRP):德國Immundiagnostik公司;氧化低密度脂蛋白(ox-LDL):武漢優(yōu)爾公司;胰島素:美國EMD Millipore公司;鳶尾素:美國Phoenix Pharmaceuticals公司],抗CD68(巨噬細胞表面標記分子)及抗CD90(T淋巴細胞表面標記分子)抗體(美國CST公司)。
建立ApoE-/-糖尿病小鼠模型:SPF級4周齡雄性 ApoE-/-小鼠30 只,適應性飼養(yǎng)一周后,隨機分為兩組,其中糖尿病模型組20只,空白對照組10只,繼續(xù)以高脂飼料飼養(yǎng)。兩組小鼠均禁食12 h后稱體重,糖尿病模型組以50 mg/kg鏈脲佐菌素(1%,檸檬酸鹽緩沖液配制)腹腔注射,每天1次,連續(xù)5天;空白對照組腹腔注射等量檸檬酸鹽緩沖液。建模結束2天后,對兩組小鼠進行經(jīng)腹腔注射葡萄糖耐量試驗(IPGTT),篩選糖尿病小鼠。以空腹血糖 ≥ 7. 0 mmol / L和葡萄糖負荷后 2 h 血糖 ≥ 11. 1 mmol / L 作為糖尿病成模標準,20只ApoE-/-小鼠全部建模成功。
ApoE-/-小鼠分組及給藥:將糖尿病模型組20只ApoE-/-小鼠以體重和血糖匹配后隨機均分至鳶尾素組和糖尿病對照組各10只,鳶尾素組小鼠尾靜脈注射2 μg 鳶尾素(生理鹽水配制),每周2次,持續(xù)12周;糖尿病對照組及空白對照組小鼠尾靜脈注射等量生理鹽水。
ApoE-/-小鼠主動脈內(nèi)皮性舒張功能測定:鳶尾素或生理鹽水干預4周后,每組隨機選取3只小鼠進行內(nèi)皮依賴性舒張功能測定實驗。ApoE-/-小鼠經(jīng)后腔靜脈放血處死后,迅速在體視顯微鏡下移除主動脈血管鞘及周圍結締組織,取長約4 mm血管環(huán)。將血管環(huán)懸于掛鉤,連接到JH-2張力換能器(成都泰盟科技有限公司),以BL-420S生物信號采集系統(tǒng)記錄張力改變。將血管環(huán)置于含Krebs液的HV-4離體恒溫器官灌流系統(tǒng)(成都泰盟科技有限公司)浴槽中,通入95% O2+ 5% CO2混合氣體。予血管環(huán)0.5 g張力負荷, 平衡1 h 。血管環(huán)用10-6mmol/L去甲腎上腺素預刺激,達平衡狀態(tài)后,以不同濃度乙酰膽堿(Ach,10-9至10-4mmol/L)及硝普鈉(SNP, 10-9至10-4mmol/L)刺激血管環(huán)(每次換液前均以Krebs液灌洗2次),記錄濃度-張力反應。
ApoE-/-小鼠代謝及血清炎性因子水平檢測:每周定期測定各組小鼠體重及血糖。鳶尾素干預4周及12周時,進行IPGTT。12周后,腹腔注射60 mg/kg戊巴比妥鈉麻醉小鼠(7只/組),皮膚消毒后開腹,后腔靜脈采血,離心后取血清,ELISA檢測胰島素、糖化血紅蛋白(HbA1c)、TNF-α、CRP、IL-6、ox-LDL及鳶尾素水平。
ApoE-/-小鼠主動脈斑塊表面積及橫斷面積測定:每組隨機取3只小鼠,經(jīng)后腔靜脈采血后,迅速剖開胸腔,眼科剪移除胸腹腔臟器,保留心臟。生理鹽水沖洗主動脈管腔后,4%多聚甲醛固定,PBS液沖洗管腔。體視顯微鏡下剝離主動脈(升主動脈至兩側髂總動脈),顯微剪縱行剖開,剪下后縫合到封口膜上,4%多聚甲醛固定48 h,60% 異丙醇浸泡10 min,油紅O 染液浸染3~4 h,60% 異丙醇分化5~7次,直至動脈壁呈白色。照相后用Image-Pro Plus 6.0測定動脈粥樣硬化斑塊表面積與動脈壁表面積,計算動脈粥樣硬化斑塊表面積與動脈壁表面積的百分比。
ApoE-/-小鼠腹主動脈以4%多聚甲醛固定后,石蠟包埋,每隔20 μm連續(xù)取8張切片,進行蘇木素伊紅(HE)染色。顯微鏡下照相,計算圖片中斑塊橫斷面積與腹主動脈管腔面積百分比(Image-Pro Plus 6.0)。
ApoE-/-小鼠主動脈炎性病變測定:各組ApoE-/-小鼠腹主動脈切片進行抗CD68,抗CD90免疫組織化學染色。顯微鏡下照相,計算圖片中陽性染色面積與斑塊面積百分比(Image-Pro Plus 6.0)。
每組取3只小鼠,生理鹽水沖洗主動脈管腔后迅速剝離血管鞘及周圍結締組織,剪下主動脈,勻漿后提取信使核糖核酸(mRNA),實時定量聚合酶鏈式反應(RT-PCR)測定主動脈壁IL-6、白細胞介素-10(IL-10)、TNF-α、細胞內(nèi)黏附分子-1(ICAM-1)、血管細胞黏附分子-1 (VCAM-1)、單核細胞趨化蛋白-1(MCP-1)等炎性因子轉錄水平。內(nèi)參為β-肌動蛋白(β-actin)。引物IL-6 F: 5’-GTTGCCTTCTTGGGACTGATG-3’,IL-6 R: 5’-GTATAG AC AGGT CTGTTGGGAG-3’;IL-10 F: 5’ CAGTACAG CCGGGAAGAC AA-3’,IL-10 R: 5’-CCTGGGG CATCACTTCTACC-3’;TNF-α F: 5’- CGTCAGCC GATTT GCTATCT-3’,TNF-α R: 5’-CGGA CTCCGCAAAGTCTAAG-3’;ICAM-1 F: 5’-GAGA CGCAGAGGACCTTAACAGT-3’,ICAM-1 R: 5’- GACGCCGCTCAGAAGAACCA-3’;VCAM-1 F: 5’-TGGC TCCAG ACATTT ACC C AGTTT-3’,VCAM-1 R: 5’-GTTCTTTGACA GTCTCCCTTTCTTT-3’;MCP-1 F: 5’-CCAG CA AGATGATCCCAATGAGT-3’,MCP-1 R: 5’-CATTTGGTTCCGATCCAGGTTTT-3’;β-actin F: 5’-CACGATGGAGGGGCCGGACTCATC-3’,β-actin R:5’-TAA AGACC TCTATGCCAACA CAGT-3’。
統(tǒng)計學分析:采用SPSS 19.0進行統(tǒng)計分析。計量資料以均數(shù)±標準差表示。多組間比較采用單因素方差分析(ANOVA), 組間多重比較用最小顯著差異t(LSD-t)檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
鳶尾素對ApoE-/-小鼠代謝及炎性因子水平的影響:鳶尾素干預4周和12周后進行IPGTT,結果顯示ApoE-/-糖尿病小鼠糖耐量改善(圖1A和1C)。但4周和12周時鳶尾素組與糖尿病對照組相比空腹胰島素水平并無明顯差異(圖1B和1D)。如表1所示:與空白對照組相比,干預12周后糖尿病模型組ApoE-/-小鼠體重、胰島素水平顯著降低,而血糖、HbA1c水平顯著升高。ApoE-/-糖尿病小鼠血中TNF-α、CRP 、IL-6及ox-LDL等炎性因子較非ApoE-/-糖尿病小鼠顯著升高。而鳶尾素組小鼠炎性因子水平明顯低于糖尿病對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。
圖1 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠糖耐量的影響(1A和1B,n=10只/組;1C和1D,n=7只/組)
表1 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠代謝及血清炎性因子水平的影響
表1 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠代謝及血清炎性因子水平的影響
注:與糖尿病對照組比*P<0.05
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鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的影響:鳶尾素組與糖尿病對照組比,乙酰膽堿血管舒張率顯著增高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖2A),而硝普鈉血管舒張率差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05,圖2B)。
圖2 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的影響(n=3只/組)
圖3 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈粥樣斑塊面積的影響(3B和3C, n=3只/組)
鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈粥樣斑塊面積的影響:糖尿病模型ApoE-/-小鼠主動脈弓出現(xiàn)大量粥樣硬化斑塊,鳶尾素干預后粥樣斑塊減少(圖3A)。鳶尾素干預顯著減小ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈粥樣斑塊面積,差異均有統(tǒng)計學意義(P< 0.05,圖 3B、3C、3D、3E)。
鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈炎性病變和炎性因子mRNA水平的影響:鳶尾素組與糖尿病對照組比,斑塊炎性浸潤明顯減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖4A、4B)。RT-PCR分析主動脈壁炎性因子mRNA 水平提示(圖4C):鳶尾素組ApoE-/-小鼠與糖尿病對照組相比主動脈壁IL-6、TNF-α、ICAM-1、VCAM-1、MCP-1等炎性因子mRNA水平下調(diào),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);IL-10 mRNA水平上調(diào),差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。
圖4 鳶尾素對ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈炎性病變及炎性因子mRNA水平的影響
本研究以鳶尾素干預ApoE-/-糖尿病小鼠動脈粥樣硬化模型,第一次證明了鳶尾素可降低血中炎性因子水平,改善內(nèi)皮功能障礙,減小動脈粥樣硬化斑塊表面積及橫斷面積,并可減少斑塊中巨噬細胞及T淋巴細胞浸潤,下調(diào)主動脈壁炎性因子轉錄水平,從而證實鳶尾素具有改善動脈粥樣硬化的作用。
胰島素抵抗是糖尿病患者發(fā)生動脈粥樣硬化的獨立危險因素。胰島素抵抗可引起“糖毒性”、“脂毒性”及血管內(nèi)皮功能障礙,加速動脈粥樣硬化進展[6]。研究證實:減輕胰島素抵抗的治療方法可改善動脈粥樣硬化[7]。為研究鳶尾素能否通過減輕胰島素抵抗而改善動脈粥樣硬化,我們在鳶尾素干預4周及12周時進行了IPGTT及空腹胰島素測定,結果顯示:鳶尾素干預4周和12周均可顯著改善ApoE-/-糖尿病小鼠糖耐量,而且鳶尾素干預12周后,ApoE-/-糖尿病小鼠空腹血糖和HbA1c水平均有統(tǒng)計學差異。此結果與鳶尾素減輕肥胖C57小鼠糖耐量作用的研究結果一致[3]。因此,減輕胰島素抵抗可能是鳶尾素改善動脈粥樣硬化的機制之一。但是在鳶尾素干預12周后,ApoE-/-糖尿病小鼠體重、空腹胰島素水平差異均無統(tǒng)計學意義。上述結果提示:減輕胰島素抵抗并非鳶尾素改善動脈粥樣硬化的主要機制;鳶尾素改善糖尿病狀態(tài)下動脈粥樣硬化作用與減輕體重無關。
血管內(nèi)皮功能障礙是引起動脈粥樣硬化的重要發(fā)病機制,同時也是早期的病理生理改變[8,9]。通過測定以內(nèi)皮依賴性舒張功能為代表的內(nèi)皮功能,可預測動脈粥樣硬化的發(fā)生風險及預后。改善內(nèi)皮功能的治療,也多數(shù)能改善動脈粥樣硬化[10]。本研究中,各組間非內(nèi)皮依賴性舒張功能無統(tǒng)計學差異,表明血管舒張反應差異由內(nèi)皮功能引起,糖尿病模型組ApoE-/-小鼠內(nèi)皮依賴性舒張功能下降,而鳶尾素可改善糖尿病小鼠內(nèi)皮依賴性舒張功能。上述結果提示:保護血管內(nèi)皮是鳶尾素改善動脈粥樣硬化的機制之一。
動脈粥樣硬化是一種動脈炎癥性疾病,炎癥反應參與了動脈粥樣硬化整個病理過程[11-13]。血中炎性因子水平升高可引起血管內(nèi)皮功能障礙、凋亡增加,促進動脈粥樣硬化的發(fā)生和發(fā)展。浸潤斑塊的巨噬細胞、T淋巴細胞可破壞動脈壁正常結構,細胞溶解后還導致斑塊不穩(wěn)定、易破裂。而主動脈壁的炎性因子一方面促進巨噬細胞、T淋巴細胞等黏附和遷移至主動脈壁,另一方面也促進內(nèi)皮細胞、平滑肌細胞增殖或凋亡(隨病情進展有所變化)[11,12]。本研究發(fā)現(xiàn):鳶尾素可降低ApoE-/-糖尿病小鼠血中炎性因子水平,減少ApoE-/-糖尿病小鼠動脈粥樣硬化斑塊中巨噬細胞、T淋巴細胞浸潤,同時可降低ApoE-/-糖尿病小鼠主動脈壁IL-6、TNF-α、VCAM-1等炎性因子轉錄水平。IL-10被稱為“細胞因子合成抑制因子”,具有一定抗炎效應。本研究結果表明,鳶尾素能在一定程度增加ApoE-/-糖尿病小鼠IL-10的表達,從另一方面證實鳶尾素具有抗炎作用。上述結果證明:抗炎癥反應是鳶尾素改善動脈粥樣硬化的主要機制。
綜上所述,本研究證實,鳶尾素可改善ApoE-/-糖尿病小鼠的動脈粥樣硬化,其機制是改善胰島素抵抗和內(nèi)皮功能障礙,并減輕動脈炎癥反應。此研究結果很好地闡釋了運動改善動脈粥樣硬化的直接原因,因為鳶尾素是人體生理條件下存在的激素,運動增加其循環(huán)水平,所以鳶尾素對人體作用是安全的,在動脈粥樣硬化的防治方面具有良好的臨床應用前景。鳶尾素對人體動脈粥樣硬化的作用、代謝動力學及最佳濃度與防治效應的關系等仍需進一步探索。
[1] Booth GL, Kapral MK, Fung K, et al. Recent trends in cardiovascular complications among men and women with and without diabetes. Diabetes Care, 2006, 29: 32-37.
[2] Preis SR, Hwang SJ, Coady S, et al. Trends in all-cause and cardiovascular disease mortality among women and men with and without diabetes mellitus in the Framingham Heart Study, 1950 to 2005. Circulation, 2009, 119: 1728-1735.
[3] Bostr?m P, Wu J, Jedrychowski MP, et al. A PGC1-α-dependent myokine that drives brown fat like development of white fat and thermogenesis. Nature, 2012, 481: 463-468.
[4] Moreno-Navarrete JM, Ortega F, Serrano M, et al. Irisin is expressed and produced by human muscle and adipose tissue in association with obesity and insulin resistance. J Clin Endocrinol Metab, 2013, 98: E769-778.
[5] Xiang L, Xiang G, Yue L, et al. Circulating irisin levels are positively associated with endothelium-dependent vasodilation in newly diagnosed type 2 diabetic patients without clinical angiopathy. Atherosclerosis, 2014, 235: 328-333.
[6] Bansilal S, Farkouh ME, Fuster V. Role of insulin resistance and hyperglycemia in the development of atherosclerosis. Am J Cardiol, 2007, 99: 6B-14B.
[7] Semenkovich CF. Insulin resistance and atherosclerosis. J Clin Invest, 2006, 116: 1813-1822.
[8] Verma S, Buchanan MR, Anderson TJ. Endothelial function testing as a biomarker of vascular disease. Circulation, 2003, 108: 2054-2059.
[9] 彭紅艷, 常青. 血管內(nèi)皮細胞骨架及其與心血管疾病的關系. 中國循環(huán)雜志, 2007, 22: 394-396.
[10] Widlansky ME, Gokce N, Keaney JF, et al. The clinical implications of endothelial dysfunction. J Am Coll Cardiol, 2003, 42: 1149-1160.
[11] Williams KJ, Tabas I. Atherosclerosis--an inflammatory disease. N Engl J Med, 1999, 340: 1928.
[12] Libby P. Inflammation in atherosclerosis. Nature, 2002, 420: 868-874.
[13] 孫余華, 裴衛(wèi)東. 炎癥與動脈粥樣硬化基礎和臨床研究的新進展.中國循環(huán)雜志, 2003, 18: 74-77.
Irisin Improving Atherosclerosis Condition in ApoE-/-Diabetes Mellitus Mice
LU Jun-yan, XIANG Guang-da, MEI Wen, LIU Min, XIANG Lin, DONG Jing.
Wuhan Clinical Institute Affiliated to Southern Medical University, Wuhan (430070), Hubei, China
Objective: To explore the effect of irisin on atherosclerosis with possible mechanisms in diabetes mellitus (DM) mice.Methods: A total of 30 ApoE-/-mice were randomly divided into 2 groups: Control group, the mice received citrate buffer solution for modeling control, n=10. DM group, the mice received streptozotocin injection for DM modeling, n=20; the DM group was further divided into 2 subgroups as DM control (DM-C) group, the mice received normal saline injection for 12 weeks and DM + irisin group, the diabetic mice received irisin injection for 12 weeks. n=10 in each subgroup. With 4 weeks of irisin intervention, the endothelium-dependent vasodilatation was detected. With 12 weeks of intervention, the blood levels of tumor necrosis factor-α (TNF-α), high-sensitivity C-reactive protein (hs-CRP), interleukin-6 (IL-6) and oxidized low-density lipoprotein (ox-LDL) were examined by ELISA, the plaque areas in aortic en face and cross sections were measured by Oil red O or HE staining, the macrophages/T lymphocytes infiltration in plaques were detected with immunohistochemistry, and the mRNA expressions of IL-6, IL-10, TNF-α were determined by RT-PCR.Results: Compared with DM-C group, DM + irisin group presented improved endothelium-dependent vasodilatation, decreased levels of blood inflammatory factors, reduced plaque on face area sections (22.57 ± 2.17) % vs (35.09 ± 2.38) % and cross sections (19.36 ± 1.85) % vs (25.53 ± 7.87) %, P < 0.05, less macrophages (30.5 ± 2.79) % vs (41.34 ± 9.13) % T andlymphocytes infiltration (28.11 ± 4.24) % vs (35.79 ± 9.11) % in plaques and lower mRNA expressions of inflammatory factors (IL-6: 1.76 ± 0.50 vs 3.78 ± 1.15; TNF-α: 1.05 ± 0.30 vs 2.11 ± 0.48; ICAM-1: 1.96 ± 0.69 vs 2.71 ± 0.72; VCAM-1: 0.87 ± 0.21 vs 1.45±0.25; MCP-1: 1.34 ± 0.34 vs 1.77 ± 0.55) at aortic wall, P<0.05.Conclusion: Irisin may improve atherosclerosis condition in ApoE-/-DM mice, the endothelial protection and antiinflammatory reaction were the important mechanisms. Irisin has the potential for preventing/treating atherosclerosis.
Irisin; Atherosclerosis; Diabetes mellitus
2014-10-21)
(編輯:漆利萍)
國家自然科學基金(81370896)
430070 湖北省武漢市,南方醫(yī)科大學附屬武漢臨床學院(盧俊顏、向光大、梅穩(wěn));廣州軍區(qū)武漢總醫(yī)院 內(nèi)分泌科(向光大、劉敏、向林、董靖)
盧俊顏 碩士研究生 研究方向:主要從事糖尿病血管并發(fā)癥研究 Email:buyuelingyun@126.com 通訊作者:向光大
Email: Guangda64@hotmail.com
R541
A
1000-3614(2015)05-0492-06
10.3969/j.issn.1000-3614.2015.05.019