何夢秀,陳芳艷,鐘楊生,林健榮 (華南農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,廣東廣州 510642)
谷氨酸脫羧酶(Glutamic acid decarboxylase,GAD)是一種吡哆醛類裂解酶,廣泛分布于動植物、微生物等各種有機體活細胞中。該酶能專一性催化L-谷氨酸(L-Glutamic acid,L-Glu)的α-羧基,發(fā)生脫羧反應(yīng),生成一種四碳非蛋白質(zhì)氨基酸 γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)和 CO2。GABA是哺乳動物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),能與相應(yīng)受體結(jié)合,在人體中發(fā)揮重要的生理功能[1],如降血壓[2-3]、調(diào)節(jié)生長激素的分泌、健肝利腎、促進睡眠、增強記憶力、改善腦機能、對癲癇的預(yù)防和治療作用、鎮(zhèn)痛安神、抗焦慮和抗衰老等[4]。這是由Roberts和Frankel于1950年首次在哺乳動物中發(fā)現(xiàn)。γ-氨基丁酸轉(zhuǎn)氨酶(7-Aminobutyrate transaminase,GABA-T)在GABA分解代謝中起轉(zhuǎn)氨基作用,在生物體內(nèi)通常以磷酸吡哆醛為輔基,使GABA與丙酮酸發(fā)生α位的氨基轉(zhuǎn)移,有利于GABA的分解。GAD和GABA-T是GABA代謝中的關(guān)鍵限速酶,受到人們的廣泛關(guān)注。學(xué)者們對GAD的結(jié)構(gòu)性質(zhì)、分離純化和在細胞中的定位與分布以及在哺乳動物神經(jīng)系統(tǒng)中所起作用進行廣泛、深入的研究。目前,該酶在生物體中的其他作用成為科學(xué)家的研究熱點[5]。筆者對GAD的結(jié)構(gòu)、酶學(xué)性質(zhì)及其與GABA-T在GABA代謝過程中的作用進行綜述。通過激活或抑制GABA代謝過程中的關(guān)鍵酶,使得材料中富集高含量的GABA。這對富含高GABA相關(guān)產(chǎn)品的開發(fā)利用提供參考。
GAD催化Glu在α-位上的脫羧反應(yīng)是合成GABA的主要途徑。該反應(yīng)是不可逆的,其具體過程[6]如下:GlutamateDG
ABA+CO2。在細菌和哺乳動物大腦中,GABA首先在GABA-T的催化下與丙酮酸反應(yīng)生成琥珀酸半醛(SSA)和丙氨酸,然后琥珀酸半醛脫氫酶(Succinate semlalehyde dehydrogenase,SSADH)氧化SSA形成琥珀酸進入三羧酸循環(huán)。這些反應(yīng)共同構(gòu)成α-酮戊二酸氧化生成琥珀酸的代謝途徑,即三羧酸循環(huán)的另一條支路,稱為GABA支路(GABA shunt)。
從圖1可以看出,GABA和SSA是該旁路的2個重要底物,對代謝調(diào)控起著重要作用。GAD、GABA-T和SSADH三種酶在GABA代謝旁路中起十分重要的作用,其中GABA的積累主要受GAD的調(diào)控,因此通過提高GAD酶活性或抑制GABA-T的酶活性均有利于GABA的富集。
目前,科學(xué)家在微生物、植物、昆蟲和哺乳動物中均發(fā)現(xiàn)GAD,例如微生物中的大腸桿菌[8-9](E.coli)、曲霉[10]、乳酸菌[11-12]、酵母、變形桿菌屬(Proteus vulgaris,P.morganii)及梭狀芽孢桿菌屬等都存在GAD[13]。由于微生物中富集GABA不受空間、環(huán)境和資源的限制,并且具有成本低、無化學(xué)殘留和產(chǎn)量高等顯著優(yōu)勢,進而被廣泛地研究,并且被應(yīng)用于材料GABA的積累。
2.1 GAD的結(jié)構(gòu)特征 已有學(xué)者對真核生物和原核生物中的GAD結(jié)構(gòu)進行研究,并且就其結(jié)構(gòu)與理化性質(zhì)的差異進行探討。研究表明,不同來源種屬或亞種之間GAD結(jié)構(gòu)與性質(zhì)的關(guān)系存在一定差異。
大腸桿菌是最早發(fā)現(xiàn)的含有GAD酶的原核微生物。該菌具有較高的GAD酶活力,因此具有較高的富集GABA的能力。大腸桿菌GAD是由6個相同亞基組成的六聚體。每個亞基含1分子磷酸吡哆醛(PLP),輔酶與多肽鏈的賴氨酸殘基共價結(jié)合組成的寡聚酶(一種六聚體[14])。有研究表明,GAD存在2種同工酶[15],分別被命名為GADα和GADβ。這些同工酶具有相似的一級結(jié)構(gòu),因N-末端的100個殘基存在差異,使其在細胞定位和生理功能也有某些差異。Ueno等[16]在短乳桿菌IFO12005中研究發(fā)現(xiàn)純GAD的N-末端氨基酸序列為M-N-K-N-D-Q-E-Q-T,與E.coliN-末端的M-DQ-K-L-L-T-D-F-R沒有密切的相似之處,它們的分子量和Km存在差異,進而在生理功能上也有不同之處。根據(jù)GAD基因一級結(jié)構(gòu)序列[17],GAD單體由C末端結(jié)構(gòu)域、5'-磷酸吡哆醛結(jié)合區(qū)域以及N末端結(jié)構(gòu)域三部分組成(圖2)。
在植物體中GAD的結(jié)構(gòu)與細菌中GAD的結(jié)構(gòu)序列同源性較高,但結(jié)構(gòu)分析顯示,植物體GAD帶有特殊的C-末端區(qū)域(鈣調(diào)蛋白區(qū)域,CaM)。在逆境條件(如熱刺激、缺氧和鹽脅迫等)下,該末端可與CaM結(jié)合,調(diào)節(jié)GAD酶活性,大量積累GABA以促進植物生長[15]。據(jù)報道,具有底物抑制作用的大腸桿菌GAD殘基上有L-絲氨酸-O-硫酸鹽、R-y-4-氨基己-5-炔酸和一氟甲基-谷氨酸3個靶位點[18]。研究表明,靶點L-絲氨酸-O-硫酸鹽的作用機制與天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶相同。這為通過底物抑制酶系統(tǒng)應(yīng)用于藥物開發(fā)作出重要貢獻[19]。
GAD在哺乳動物中存在GAD67與GAD65兩種基因組,相應(yīng)分子量分別為67和65 kDa,分別由Gad1和Gad2編碼。相應(yīng)的抗原性、細胞及亞細胞分布和與磷酸吡哆醛(PLP)相互作用等方面存在差異。
2.2 GAD的酶學(xué)性質(zhì) 據(jù)報道,通常微生物來源的GAD最適pH為3.8~5.0,在酸性介質(zhì)中GAD的酶活力較強,當(dāng)pH呈中性或偏堿性時其酶活力將消失。在原核微生物中,GAD與細胞生長的耐酸機制有關(guān)[15]。大腸桿菌具有酸誘導(dǎo)的氧化代謝系統(tǒng)、谷氨酸依賴型和精氨酸依賴型3種不同耐酸系統(tǒng)[20],其中依賴谷氨酰胺酶YbaS和氨基酸反向轉(zhuǎn)運蛋白GadC,可確保大腸桿菌在極酸性環(huán)境下生存[21]。Sanders等[22]研究發(fā)現(xiàn),GadA、GadB和GadC是大腸桿菌抗酸系統(tǒng)中的重要組成部分。Lc.LactisGAD 在酸性(pH 3.6 ~5.4)條件下具有較高的酶活力,當(dāng)pH為4.7時谷氨酸脫羧反應(yīng)能力最高,當(dāng)pH為6.0以上時其酶活力消失。這與GAD酶的誘導(dǎo)機制緊密相關(guān)[23]。酶與化學(xué)催化劑一樣,其活性與溫度有一定的依賴關(guān)系。不同微生物GAD的最適溫度差異較大。這與其生長溫度范圍相關(guān),大多在30~50℃之間。當(dāng)溫度低于最適溫度時,酶促反應(yīng)速度隨溫度的升高而增加;當(dāng)溫度超過最適溫度時,反應(yīng)速度隨溫度升高而下降[24]。在已報道的微生物GAD中Lc.LactisGAD的熱穩(wěn)定性相對較好。徐建軍等[23]對乳酸菌GAD進行耐熱性研究,發(fā)現(xiàn)在pH 4.7條件下處理5 h后,60℃時該酶仍能保持80%以上的活性,80℃以上則迅速失活。同時,試驗還對微生物GAD酶具有高度的底物專一性進行檢驗,測試Lc.LactisGAD對18種常見氨基酸的脫羧作用,結(jié)果表明只有L-谷氨酸可作為其脫羧底物。來自植物、動物和微生物中的GAD盡管分子結(jié)構(gòu)有較大差異,但同樣具有很強的底物專一性。在一定的底物和PLP濃度下,體系中PLP的含量與反應(yīng)速度呈正比。Km值是GAD與PLP的親和力的反映,也是GAD的一個重要酶學(xué)特性常數(shù)[25]。
3.1 提高GAD酶活性的GABA富集 測定酶活性中心組成和結(jié)構(gòu)是研究酶催化作用的重要課題。目前,常用化學(xué)修飾法、反應(yīng)動力學(xué)法和X-射線衍射法等激活或抑制酶活性。在GAD催化Glu合成GABA的代謝途徑中,底物谷氨酸取代GAD上的賴氨酸殘基,與5'-磷酸吡哆醛輔因子形成一種醌結(jié)構(gòu),再通過質(zhì)子化途徑生成GABA及5'-磷酸吡哆醛的再生。該合成途徑需H+,被認(rèn)為是一種pH調(diào)節(jié)機制。離體以及活體研究證實胞質(zhì)的pH下降可激活GAD酶活性,并且有別于GABA的積累。金屬離子常作為輔助因子參與酶促反應(yīng),在一定的濃度下對酶有激活和抑制作用,特別是重金屬離子易使酶失活[26]。近年來,較多的研究發(fā)現(xiàn)Ca2+和Mg2+對GAD有較強的激活作用[27-28]。有研究表明,在pH 3.8的條件下,0.6 mol/L Ca2+和7.5 mol/L Mg2+對 GAD 酶活力有顯著的提高作用(相對酶活分別為174%和164%),但兩者為拮抗效應(yīng)[29]。楊勝遠等[27]在爬山虎莖中分離到5株內(nèi)生菌,其中的菌株EJC-1具有GAD酶活性,且發(fā)現(xiàn)2.5 mmol/L Mg2+對GAD酶活力有顯著的促進作用,其活力提高13.85%,但Ca2+對GAD酶活力影響并不大。這與王朝[29]研究結(jié)果有所差異。李云等[26]研究發(fā)現(xiàn),Ca2+對GAD有顯著的激活作用,Mg2+和Mn2+在較高濃度時激活作用明顯,Co2+在較低濃度時激活作用較好。然而,F(xiàn)e2+、Fe3+、Ag+、Cu2+和Zn2+對GAD 有抑制作用[27-28],其中Cu2+和Zn2+對其酶活力的抑制作用顯著[30]。據(jù)報道,Na+和Cl-既不是GAD的激活劑又不是抑制劑,而Li+和K+對GAD活性有輕微的抑制作用[31]。由此可知,不同來源的GAD酶活性差異較大。因此,不同金屬離子對GAD酶活力的影響力均不同,但Ca2+和Mg2+均可激活GAD的酶活性,并且增強其酶促反應(yīng),有利于GABA含量的積累。對于GAD酶抑制劑,它可在酶促反應(yīng)中添加絡(luò)合劑,使其與金屬離子形成螯合物,減少金屬離子含量,從而緩解其對GAD酶的抑制作用。
微生物具有代謝快的特征,因此其壽命較短暫。這一缺陷限制了酶促反應(yīng)的廣泛應(yīng)用。在20世紀(jì)60年代發(fā)展起來的酶和活細胞的固定化技術(shù)可以提高酶的穩(wěn)定性,延長半衰期,在較長時間內(nèi)反復(fù)使用,有利于生產(chǎn)上工藝的連續(xù)化和管道化,避免自由酶在應(yīng)用上的缺陷。目前,已有較多采用固定化GAD轉(zhuǎn)化制備GABA的研究報道[32-34]。陳蔚青等[35]以海藻酸鈉與明膠的協(xié)同作用為載體包埋固定化GAD,以谷氨酸為底物,以固定化GAD為催化劑,采取生物轉(zhuǎn)化法連續(xù)制備GABA 60 h,使得GAD酶活性持續(xù)時間延長,其穩(wěn)定性顯著增加,Glu轉(zhuǎn)化率高達98.7%。王筱婧等[36]用海藻酸鈉固定米糠中的GAD,固定化后GAD的最適溫度由40℃左右上調(diào)至45℃左右,但其性質(zhì)未發(fā)生改變,酶活力大大升高,經(jīng)固定化米糠GAD方法制備得到的制備液中GABA含量占可溶性固形物含量的3.06%,與未固定化米糠GAD制備的GABA含量2.84%相比明顯提高,且可溶性蛋白和總糖含量大為下降。固定化細胞是在固定化酶的基礎(chǔ)上發(fā)展起來的技術(shù)。與固定化酶相比,固定化細胞可省去酶的分離手續(xù),進行連續(xù)發(fā)酵,同時細胞生長快,對污染因子的抵抗力增加。韓雪[37]采用海藻酸鈉-氯化鈣包埋法對從酸菜中分離、純化的植物乳桿菌進行固定化。固定化細胞在一定程度上能減小底物的抑制作用,與游離細胞中GAD的最適pH 4.7相比固定化細胞在pH為4~5時均有較高活性,擴大了GAD酶發(fā)生作用的pH范圍,經(jīng)連續(xù)7次轉(zhuǎn)化后固定化細胞中GAD的活力仍為初始酶活力的68.3%,且菌液中GABA的積累量可達7.065 g/L。
3.2 抑制GABA-T酶活性的GABA富集 與GAD不同,GABA-T被廣泛分布于各種組織中,并且與PLP的結(jié)合更加緊密。研究表明,被純化GABA-T的最適pH為8.2,且不耐熱,在25℃時90 min開始失活,在30℃時60 min開始失活,但酶失活前反應(yīng)溫度30℃比25℃酶活性高[38],但該酶需要PLP作為輔酶,其對 GABA的Km值為1.1 mmol/L。朱莉等[39]利用酶活法測定蘇云金芽孢桿菌GO3菌株中的GabT和GabD蛋白,發(fā)現(xiàn)這2種蛋白分別呈現(xiàn)出GABA-T和SSADH的活性。γ-氨基丁酸可利用丙酮酸或α-酮戊二酸作為氨基接受體,催化GABA和琥珀酸半醛之間的可逆轉(zhuǎn)變。GABA-T是GABA代謝的關(guān)鍵限速酶,也是中樞神經(jīng)系統(tǒng)藥物的靶點,其活力的改變直接影響GABA水平。當(dāng)GABA-T受到抑制時中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)GABA含量顯著升高,進而有利于多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療。為了增加GABA濃度,可設(shè)計一種通過血腦屏障的GABA-T抑制劑[40],目前,GABA-T抑制劑主要是GABA類似物,也包括少量的特殊結(jié)構(gòu)的化合物?,F(xiàn)已合成大量的抑制劑,包括競爭性抑制劑和基于機制的不可逆抑制劑,如Vigabatrin類似物、取代氨基戊酸類似物和取代氨基丁烯酸類似物等。有研究表明,乙體氯氰菊酯可顯著降低小鼠腦組織中GABA-T的酶活力,促使GABA含量增多,導(dǎo)致Glu/GABA 平衡紊亂[41-42]。黃酮類化合物也能明顯地以劑量依賴的方式抑制GABA-T和SSADH酶活力,屬于非競爭性抑制,并且表現(xiàn)出不同的構(gòu)效關(guān)系[40]。
GAD和GABA-T是維持腦中GABA含量的2個主要代謝酶。兩者的協(xié)同作用對保持神經(jīng)遞質(zhì)GABA濃度有重要意義[43]。梁統(tǒng)等[44]以丙戊酸鈉為原料,對大鼠大腦皮層4個腦區(qū)中GAD、GABA和GABA-T含量的變化進行研究。研究表明,丙戊酸鈉既是GABA-T的抑制劑,又能激活GAD,可顯著提高GABA含量。
GAD在真菌孢子的萌發(fā)過程中起代謝調(diào)節(jié)作用[45]。GAD酶活力的提高有利于催熟香蕉[46],并且可促進GABA的積累以緩解低氧脅迫對植物的傷害[47]。研究表明,在醫(yī)學(xué)上,GAD抗體是反映1型糖尿病胰島B細胞自身抗體的免疫學(xué)指標(biāo),具有重要的臨床意義[48]。在生產(chǎn)應(yīng)用上,通過激活GAD或抑制GABA-T酶活力合成GABA,其生物合成條件溫和、原材料廉價、工藝簡單、生產(chǎn)周期短、安全性高且不受資源、環(huán)境和空間的限制,因此采取生物合成法富集GABA被廣泛應(yīng)用于農(nóng)業(yè)、食品和藥品行業(yè),具有廣闊的市場前景。γ-氨基丁酸茶在日本已被大力開發(fā),其產(chǎn)品受到廣大消費者特別是高血壓患者的親睞,已開發(fā)出葉茶、袋泡茶和灌裝茶飲料等系列產(chǎn)品。隨著廣大消費者對保健品需求的日益增長以及對GABA的藥理功效的了解深入,目前開發(fā)出的富含γ-氨基丁酸的產(chǎn)品必定具有廣闊的市場前景。然而,在動植物中GABA含量很少,且隨著年齡的增長,人體所含的GABA含量有所降低,因此科學(xué)家們需要進一步地研究、探索富集高γ-氨基丁酸的技術(shù)。該實驗室通過物理和微生物學(xué)的方法來富集GABA,為生產(chǎn)高含量γ-氨基丁酸產(chǎn)品提供參考。
[1]YANG R Q,YIN Y Q,GUO Q H,et al.Purification,properties and cDNA cloning of glutamate decarboxylase in germinated faba bean(Vicia faba L.)[J].Food Chem,2013,138(2/3):1945 -1951.
[2] COLE L K.Fish-oil ω3 polyunsaturated fatty acids and cardiovascular function[D].Pro Quest,UMI Dissertations Publishing,2003:167.
[3]HAYAKAWA K,KIMURA M,KASAHA K,et al.Effect of a γ-aminobutyric acid-enriched dairy product on the blood pressure of spontaneously hypertensive and normotensive Wistar-Kyoto rats[J].Brit J Nutr,2004,92(3):411 -417.
[4]王輝,項麗麗,張鋒華.γ-氨基丁酸(GABA)的功能性及在食品中的應(yīng)用[J].食品工業(yè),2013(6):186-189.
[5]TAYLOR J C,RAPPOTR L,LOCKWOOD G B.Octacosanol in human health[J].Nutrition,2003,19(2):192 -195.
[6] UENO H.Enzymatic and structural aspects on glutamate decarboxylase[J].Journal of molecular catalysis B,enzymatic,2000,10(1):67 -79.
[7]BOWN A W,SHELP B J.The metabolism and functions of γ-aminobutyric acid[J].Plant physiol,1997,115(1):1.
[8]CAPITANI G,BIASE D D,AURIZI C,et al.Crystal structure and functional analysis ofEscherichia coliglutamate decarboxylase[J].The EMBO journal,2003,22(16):4027 -4037.
[9]PLOKHOV A Y,GUSYATINER M M,YAMPOLSKAYA T A,et al.Prepa-ration of γ-aminobutyric acid usingE.colicells with high activity of glutamate decarboxylase[J].Appl Biochem Biotech,2000,88(1/2/3):257 -265.
[10]YANG S Y,LU Z X,L F X,et al.A simple method for rapid screening of bacteria with glutamate decarboxylase activities[J].Journal of rapid methods & automation in microbiology,2006,14(3):291 -298.
[11]STRAUSBAUCH P H,F(xiàn)ISCHER E H.Chemical and physical properties ofEscherichia coliglutamate decarboxylase[J].Biochemistry-US,1970,9(2):226-233.
[12]金紅星,田楠,成文玉,等.微生物發(fā)酵合成γ-氨基丁酸的研究進展[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(11):6385 -6386.
[13]楊帆,李江華,徐巖,等.谷氨酸脫羧酶發(fā)酵工藝的優(yōu)化[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報,2008,27(4):107 -111.
[14]STRAUSBAUCH P H,F(xiàn)ISCHER E H.Chemical and physical properties of Escherichia coli glutamate decarboxylase[J].Biochemistry-US,1970,9(2):226-233.
[15]UENO H.Enzymatic and structural aspects on glutamate decarboxylase[J].Journal of molecular catalysis B:Enzymatic,2000,10(1):67 -79.
[16]UENO Y,HAYAKAWA K,TAKAHASHI S,et al.Purification and characterization of glutamate decarboxylase from Lactobacillus brevis IFO 12005[J].Bioscience,biotechnology,and biochemistry,1997,61(7):1168 -1171.
[17]ARAFAT Y,F(xiàn)ENALTI G,WHISSTOCK J C,et al.Structural determinants of GAD antigenicity[J].Mol Immunol,2009,47(2):493 -505.
[18]LIKOS J J,UENO H,F(xiàn)ELDHAUS R W,et al.A novel reaction of the coenzyme of glutamate decarboxylase with L-serine O-sulfate[J].Biochemistry-US,1982,21(18):4377 -4386.
[19]UENO H,LIKOS J J,METZLER D E.Chemistry of the inactivation of cytosolic aspartate aminotransferase by serine O-sulfate[J].Biochemistry-US,1982,21(18):4387 -4393.
[20]LIN J,LEE I S,F(xiàn)REY J,et al.Comparative analysis of extreme acid survival inSalmonella typhimurium,Shigella flexneri,andEscherichia coli[J].J Bacteriol,1995,177(14):4097 -4104.
[21]LU P,MA D,CHEN Y,et al.L-glutamine provides acid resistance forEscherichia colithrough enzymatic release of ammonia[J].Cell Res,2013,23(5):635 -644.
[22]SANDERS J W,LEENHOUTS K,BURGHOORN J,et al.A chloride-inducible acid resistance mechanism in Lactococcus lactis and its regulation[J].Mol Microbiol,1998,27(2):299 -310.
[23]許建軍,江波,許時嬰.Lactococcus lactis谷氨酸脫羧酶的分離純化及部分酶學(xué)性質(zhì)[J].無錫輕工大學(xué)學(xué)報,2004,23(3):79 -84.
[24]吳國琪,凌達仁,王忱,等.固定化谷氨酸脫羧酶的穩(wěn)定性研究[J].江蘇石油化工學(xué)院學(xué)報,1998(4):2-4.
[25]呂瑩果,張暉,徐冬霞,等.米糠谷氨酸脫羧酶的酶學(xué)性質(zhì)研究[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2008,34(5):24 -28.
[26]李云,楊勝遠,陳郁娜,等.產(chǎn)谷氨酸脫羧酶片球菌的鑒定及其酶學(xué)性質(zhì)[J].食品科學(xué),2010,31(9):187 -191.
[27]楊勝遠,陸兆新,孫力軍,等.爬山虎內(nèi)生菌的鑒定及其谷氨酸脫羧酶酶學(xué)特性[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,30(2):122 -127.
[28]田靈芝,徐美娟,饒志明.一株重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建及其高效生產(chǎn)γ-氨基丁酸轉(zhuǎn)化條件的優(yōu)化[J].生物工程學(xué)報,2012,28(1):65 -75.
[29]王期.生物轉(zhuǎn)化法應(yīng)用重組谷氨酸脫羧酶合成γ-氨基丁酸[D].南京:南京師范大學(xué),2011.
[30]陳爭依,劉均忠,劉茜,等.谷氨酸脫羧酶工程菌的發(fā)酵工藝及酶學(xué)性質(zhì)[J].精細化工,2009,26(8):765 -769.
[31]楊勝遠,陸兆新,呂鳳霞,等.中性鹽對谷氨酸脫羧酶活性的影響機制[J].分子催化,2007,21(6):556 -560.
[32]PARK H,AHN J,LEE J,et al.Expression,immobilization and enzymatic properties of glutamate decarboxylase fused to a cellulose-binding domain[J].Int J Mol Sci,2011,13(1):358 -368.
[33]吳國琪,凌達仁,王忱,等.固定化谷氨酸脫羧酶的穩(wěn)定性研究[J].江蘇石油化工學(xué)院學(xué)報,1998(4):2-4.
[34]林少琴,吳若紅.殼聚糖固定谷氨酸脫羧酶的研究[J].藥物生物技術(shù),2005,12(2):101 -105.
[35]陳蔚青,陳虹,王芳權(quán).固定化谷氨酸脫羧酶轉(zhuǎn)化γ-氨基丁酸的研究[J].中國生化藥物雜志,2007,28(4):224 -227.
[36]王筱婧,王立,馬曉博,等.固定化米糠對谷氨酸脫羧酶活性影響的研究[J].食品工業(yè)科技,2009(11):157 -159.
[37]韓雪.微生物細胞催化合成γ-氨基丁酸(GABA)的研究[D].哈爾濱:哈爾濱商業(yè)大學(xué),2013.
[38]胡元元,何善述.γ-氨基丁酸轉(zhuǎn)氨酶的動力學(xué)特征及其測定法的改良[J].同濟醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,1999(1):9 -11.
[39]朱莉,宋福平,張杰,等.蘇云金芽胞桿菌γ-氨基丁酸代謝途徑相關(guān)功能基因的克隆、表達及同源性分析[J].微生物學(xué)通報,2007,34(6):1031 -1036.
[40]陶云海.γ-氨基丁酸(GABA)代謝酶抑制劑的研究[D].武漢:華中科技大學(xué),2006.
[41]邵巖,曹德慶,趙越,等.乙體氯氰菊酯對小鼠腦組織中Glu、GABA水平及GABA-T活力的影響[J].工業(yè)衛(wèi)生與職業(yè)病,2014,40(1):15-17.
[42]曹德慶,邵巖,韓陽,等.乙體氯氰菊酯對小鼠腦組織GABA及GABAT 的影響[J].毒理學(xué)雜志,2011,25(6):435-438.
[43]李玉鳳,關(guān)勇彪,廖明陽.大鼠不同腦區(qū)中γ-氨基丁酸轉(zhuǎn)氨酶活力的測定[J].衛(wèi)生毒理學(xué)雜志,2004(S1):303-304.
[44]梁統(tǒng),周克元,凌光鑫.丙戊酸鈉對大鼠腦組織中γ-氨基丁酸代謝的影響[J].中國藥科大學(xué)學(xué)報,1998(5):60 -62.
[45]SCHMIT J C,BRODY S.Neurospora crassa conidial germination:Role of endogenous amino acid pools[J].J Bacteriol,1975,124(1):232 -242.
[46]王琲,繆冶煉,陳介余,等.香蕉果皮中谷氨酸脫羧酶的活力及分布[J].中國食品學(xué)報,2014(3):211 -217.
[47]王春燕,李敬蕊,夏慶平,等.外源γ-氨基丁酸(GABA)對低氧脅迫下甜瓜幼苗根系GABA代謝及氨基酸含量的影響[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報,2014,25(7):2011 -2018.
[48]張清貴,王衛(wèi)民,翁孝剛.谷氨酸脫羧酶抗體和血尿C肽在糖尿病中的臨床意義[J].中國綜合臨床,2004,20(11):53-55.