卓微偉 張小蒙 李鳳 李艷萍 王毅兵
(鹽城衛(wèi)生職業(yè)技術(shù)學(xué)院 江蘇鹽城 224005)
mRNA差異顯示技術(shù)是Liang和Pardee于1992年首次提出的[1]。它的原理是:因?yàn)檎婧思?xì)胞mRNA 3'端具有poly(A)結(jié)構(gòu),人工合成poly(T)引物即錨定引物與之配對(duì)并進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,然后用相同的錨定引物和隨機(jī)引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,用聚丙烯酰胺凝膠電泳分離PCR產(chǎn)物,對(duì)含有差異的片段進(jìn)行回收,再次擴(kuò)增后克隆測(cè)序,從而獲得cDNA,進(jìn)而比較基因表達(dá)的差異。
所需實(shí)驗(yàn)技術(shù)簡(jiǎn)單,只運(yùn)用了PCR和PAGE兩項(xiàng)基本的分子生物學(xué)技術(shù);需要初始RNA較少,因?yàn)榈拓S度的mRNA經(jīng)過PCR擴(kuò)增以后將會(huì)變得很多;可同時(shí)比較多組不同mRNA樣品之間的基因差異表達(dá)情況;既可以分離在表達(dá)本質(zhì)上存在差異的基因,又可以分離在表達(dá)產(chǎn)量上存在差異的基因。
初始得到的差異片段較小,一般在300bp左右;得到的差異片段假陽(yáng)性比較高,假陽(yáng)性率高達(dá)70%;難以擴(kuò)增低拷貝的mRNA,從而導(dǎo)致基因差異顯示出現(xiàn)誤差;由于3' 端引物的簡(jiǎn)并性,使得某些差異條帶無法被擴(kuò)增出來。得到的差異片段大多是3' 端非編碼序列,可供利用的信息較少;
抑制性差減雜交由Diatchenkot首先提出。它以雜交動(dòng)力學(xué)和抑制性PCR為原理,利用同樣條件下高豐度單鏈DNA分子與同源序列相配對(duì)的速度要大于低豐度單鏈DNA分子的特點(diǎn),在試驗(yàn)組和驅(qū)動(dòng)組的cDNA變性后再?gòu)?fù)性的過程中,使材料中原來存在表達(dá)量上差異的基因在經(jīng)過PCR以后達(dá)到基本一致[2]。同時(shí),由于試驗(yàn)組的cDNA在進(jìn)行雜交之前加有不同的接頭,當(dāng)采用與兩個(gè)不同接頭序列互補(bǔ)的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí),只有目標(biāo)序列得到有效擴(kuò)增,非目標(biāo)序列退火時(shí)易產(chǎn)生類似“鍋柄”的結(jié)構(gòu),無法與引物配對(duì),擴(kuò)增受到抑制。
操作相對(duì)簡(jiǎn)單,過程也并不復(fù)雜,僅需要兩輪雜交且無需分離雜交過程中的復(fù)合體;該技術(shù)具有高度的靈敏性,即使豐度很低的片段也可以被檢測(cè)出來;可同時(shí)分析大量基因的差異表達(dá),具有高通量的特點(diǎn);該技術(shù)在待測(cè)cDNA的兩端加上了接頭引物,在PCR擴(kuò)增中提高了特異性,減少了假陽(yáng)性;
對(duì)于無酶切位點(diǎn)或酶切位點(diǎn)較少的片段無法檢測(cè);無法檢測(cè)非酶切位點(diǎn)區(qū)域內(nèi)的突變、缺失或插入;起始樣品濃度要求過高,不適于來源困難的樣品;在SSH法的每一步驟完成后,均需對(duì)上一步驟進(jìn)行驗(yàn)證,以確保后續(xù)步驟的順利進(jìn)行。
cDNA-AFLP技術(shù)結(jié)合了DDRT-PCR和AFLP兩項(xiàng)技術(shù),其基本原理:以純化的mRNA為模板,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,用識(shí)別序列分別為6bp和4bp的兩種限制性內(nèi)切酶酶切cDNA,酶切片段用適宜的接頭進(jìn)行連接,利用與接頭序列互補(bǔ)的引物進(jìn)行預(yù)擴(kuò)增和選擇性擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物通過聚丙烯酰胺凝膠電泳顯示。
cDNA-AFLP具有較高的重復(fù)性;cDNA-AFLP對(duì)模板的質(zhì)量和反應(yīng)條件要求不高。
cDNA-AFLP依賴于cDNA上一個(gè)6bp的限制性酶切位點(diǎn)的存在。所以選擇的內(nèi)切酶應(yīng)該能最大可能地酶解cDNA樣品。理想的情況是每個(gè)cDNA樣品中都有一個(gè)識(shí)別位點(diǎn)為6bp的內(nèi)切酶的酶切位點(diǎn),而在其一邊或兩邊恰好有一個(gè)4bp的酶切位點(diǎn)。
基因表達(dá)系列分析是一種高通量研究功能基因組的方法。理論上來說一個(gè)9bp的短核苷酸序列能夠分辨262144個(gè)不同的轉(zhuǎn)錄物,所以理論上每一個(gè)9bp標(biāo)簽?zāi)軌虼硪环N轉(zhuǎn)錄物的特征序列。因此考查這些小片段出現(xiàn)的頻率就可以知道每一種mRNA的豐度[3]。
SAGE技術(shù)能夠全面收集基因表達(dá)信息,覆蓋面廣,并且對(duì)這些信息進(jìn)行系統(tǒng)海量的分析。
一些低豐度的mRNA可能包含不進(jìn)來;SAGE技術(shù)依賴于一個(gè)能夠包含足夠信息的9bp的堿基序列在對(duì)標(biāo)簽TAGs進(jìn)行體外連接時(shí)可能會(huì)受到接頭的干擾而引起誤差。
除了上述幾種主要的方法以外,還有一些常用的如代表性差異分析、RNA指紋圖譜技術(shù)、微陣列技術(shù)等新技術(shù)也在尋找分離新的基因中起到重要的作用。
另外,大量實(shí)踐證明,以上所述的分離差異表達(dá)基因的方法各有自己的特點(diǎn),應(yīng)該根據(jù)研究材料的需要選擇最合適的方法,還可以根據(jù)實(shí)際的需要將多種方法進(jìn)行融合,未來隨著各種技術(shù)的融合必將能建立一種能明確識(shí)別差異表達(dá)基因,且適合于檢測(cè)低豐度mRNA的方法。
[1]Liang P, Pardee A B. Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction.Science, 1992, 257(5072): 967-971.
[2]Hubank M, Schatz D G.Identifying differences in mRNA expression by representional difference analysis of cDNA. Nucleic Acids Research,1994,22:5640-5648.
[3]Velculescu V E,Zhang L,Vogelstein B,Kinzler K W. Serial analysis of gene expression. Science,1995,270:484-487.
[4]張小芳,金梅.DDRT-PCR技術(shù)研究進(jìn)展. 安徽農(nóng)學(xué)通報(bào), 2008,14(20):29-30.
[5]高雪.差異表達(dá)基因分離技術(shù)的研究進(jìn)展. 生物技術(shù)通報(bào), 2009,6:71-74.