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GEF7基因過表達擬南芥植株幼苗表型分析

2015-08-06 22:43聶芳
湖北農(nóng)業(yè)科學 2015年10期
關(guān)鍵詞:擬南芥

摘要:利用已構(gòu)建的過表達擬南芥(Arabidopsis)GEF7基因植株,在光照培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),并與野生型植株進行對比分析,對GEF7基因過表達植株的幼苗表型進行了觀察分析。結(jié)果表明,GEF7基因過表達植株幼苗的根長比野生型對照明顯增加;其子葉形態(tài)、數(shù)目和幼苗形態(tài)等方面均有異常表型,表明GEF7基因的功能與根的發(fā)育有關(guān),并參與調(diào)控植物的發(fā)育過程。

關(guān)鍵詞:擬南芥(Arabidopsis);GEF7基因;根;植物生長發(fā)育

中圖分類號:Q945 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2015)10-2511-02

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.10.056

Rac/ROP GEFs(Guanine nucleotide exchange factor)稱為Rac/ROP鳥嘌呤核苷酸交換因子,是小G蛋白Rac/ROP的上游活化因子,能催化小G蛋白由GDP結(jié)合態(tài)轉(zhuǎn)化為GTP結(jié)合態(tài)。Rac/ROP作為一種分子開關(guān)調(diào)節(jié)植物多種生長發(fā)育以及參與多種信號途徑,其中包括調(diào)節(jié)花粉管的生長、根毛的發(fā)育、過氧化氫的產(chǎn)生以及參與生長素、脫落酸等植物激素的信號轉(zhuǎn)導途徑[1]。擬南芥基因組中存在14個Rac/ROP GEFs基因,是近年來鑒定的一個新的基因家族[2]。關(guān)于植物Rac/ROP GEFs生物學功能的研究目前比較少,僅有Rac/ROP GEFs調(diào)控擬南芥、煙草和番茄花粉管的極性生長的報道[3]。聶芳[4]已經(jīng)構(gòu)建了GEF7P-GUS轉(zhuǎn)基因植株,通過GUS組織化學染色法分析GEF7基因的表達模式,發(fā)現(xiàn)GEF7基因主要在幼苗根的分生組織和維管組織、側(cè)根原基和根毛細胞表達,且經(jīng)生長素(NAA)誘導處理后,在上述細胞的表達顯著增強。因此,本研究對GEF7基因表達植株的幼苗根系發(fā)育情況進行分析,同時對轉(zhuǎn)基因植株的表型也進行了觀察分析,旨在為闡明GEF7基因功能的奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 供試植物 GEF7基因過表達擬南芥植物種子來自華南農(nóng)業(yè)大學植物激素信號轉(zhuǎn)導分子機理實驗室。

1.1.2 試劑及儀器 Trypton 和Yeast Extract 購自O(shè)XOID公司,卡那霉素(Kan)購自廣州康龍公司,其余試劑均為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。熒光顯微鏡(BX51,OLYMPUS公司),光照培養(yǎng)箱(XT5408,杭州雪中炭公司),超凈工作臺(SW-CJ-1F,蘇州凈化設(shè)備有限公司)。

1.2 方法

1.2.1 GEF7基因過表達植株幼苗根系發(fā)育分析 利用已構(gòu)建的35S-GEF7 T1代陽性苗繼續(xù)繁殖至T3代,轉(zhuǎn)基因種子和野生型種子消毒后,在超凈臺內(nèi)用無菌水清洗數(shù)次,將種子傾倒于滅菌濾紙上,保持濾紙的濕潤。將種子播種至1/2平板上(添加50 mg/L卡那霉素),將種子排成一條線并保持一定間距(便于后面?zhèn)雀鶖?shù)目觀察),將平皿放入光照培養(yǎng)箱內(nèi),豎立培養(yǎng)3~9 d,在顯微鏡下觀察苗的主根長度,進行拍照,運用ImageJ軟件測量苗的主根長度。

1.2.2 GEF7基因過表達植株幼苗表型分析 篩選得到35S-GEF7 T1代陽性苗后,繼續(xù)篩選繁殖后代,以期得到純合子。期間觀察35S-GEF7植株T1、T2、T3代的幼苗的表型,以野生型(WT)為對照。

2 結(jié)果與分析

2.1 GEF7基因過表達植株幼苗根系發(fā)育分析

以GEF7基因過表達植株的各株系幼苗進行根系發(fā)育分析試驗,發(fā)現(xiàn)GEF7基因過表達植株在幼苗期主根的長度明顯長于野生型對照(圖1A)。對過表達及野生型對照的3、7、9 d幼苗的主根長度在顯微鏡下進行了定量分析,結(jié)果見圖1B。正常的野生型植株分生組織區(qū)域的細胞通常通過垂周分裂來加長細胞組成的縱向行列,可以進一步在顯微鏡下對幼苗主根的分生組織進行觀察,找出導致主根長短差異的原因。推測在過表達植株根分生組織區(qū)域可能分裂方式發(fā)生變化,也可能是分生組織細胞數(shù)目發(fā)生了變化。

2.2 GEF7基因過表達植株子葉和幼苗發(fā)育分析

野生型擬南芥幼苗的子葉通常是兩片,并且大小對稱(圖2A),表型微弱的35S-GEF7幼苗常出現(xiàn)各種異常形狀的子葉,如兩片子葉大小不對稱(圖2D)、子葉鉆石型(圖2F)等;表型嚴重的35S-GEF7幼苗會出現(xiàn)一片子葉(圖2E)、三片子葉(圖2B)甚至子葉融合(圖2C)等現(xiàn)象(這些表型35S-GEF1植株也都有,GEF1和GEF7都是Rac/ROP GEFs基因家族中的成員)。

野生型擬南芥幼苗的兩片子葉對稱打開,兩葉柄之間形成一個較大的角度(圖3苗1、6)。35S-GEF7幼苗的表型有:下胚軸膨大(類似于乙烯的效應(yīng))(圖3中苗2~5);兩葉柄很寬,且夾角很小(圖3苗2);子葉發(fā)育缺陷,如子葉肥厚、不能伸展(圖3苗5),或一片子葉發(fā)育不全(圖3苗3、4);無根或根很短的苗較少(圖3苗7、8)等。

GEF是小G蛋白Rac/Rop的上游活化因子,GEF7基因過表達的幼苗表型與ROP組成型活化態(tài)的表型一致,暗示著GEF7可能在小G蛋白ROP調(diào)控器官的發(fā)育中起作用。

3 結(jié)論與討論

3.1 GEF7與生長素信號途徑

GEF的直接靶蛋白是Rac/Rop GTP酶,它能夠催化Rac/Rop由GDP結(jié)合的非活化態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)镚TP結(jié)合的活化態(tài),活化的小G蛋白可以和下游的各種效應(yīng)分子相互作用,進而執(zhí)行不同的細胞生理功能。Tao等[5]、Himanen等[6]闡明了ROP GTPase參與生長素信號途徑的新機制,位于細胞膜的ROPGTPase其活性受生長素調(diào)節(jié),其被生長素活化后,通過Aux/IAAs選擇性降解,從而介導生長素誘導基因的表達。有研究表明,擬南芥GEF12在調(diào)節(jié)花粉管生長的過程中與上游受體激酶AtPRK2a作用并將信號傳遞給下游的ROP GTPase[7]。當GEF7基因過表達時,幼苗主根顯著增長,表明Rac/Rop GEF7可能參與生長素介導的根發(fā)育的信號途徑,這需要進一步的試驗來證明,如對35S-GEF7轉(zhuǎn)基因植株的根進行激素敏感性試驗等。

3.2 GEF7與植物器官發(fā)育

植物中ROP GTPase作為一種分子開關(guān)調(diào)節(jié)各種各樣生理功能以及參與各種信號途徑,其中包括調(diào)節(jié)花粉管的生長、側(cè)根的發(fā)生,根毛的發(fā)育、過氧化氫的產(chǎn)生、細胞骨架的組裝以及參與生長素、脫落酸等植物激素信號轉(zhuǎn)導途徑[8-10]。GEF7基因過表達的植株子葉和幼苗表型呈現(xiàn)出各種異常形態(tài),其中含有類似乙烯效應(yīng)的表型,推測GEF7可能在小G蛋白ROP調(diào)控器官的發(fā)育中起作用。

參考文獻:

[1] TAO L Z,CHEUNG A Y,WU H M.Plant Rac-like GTPases are activated by auxin and mediate auxin-responsive gene expression[J].Plant Cell,2002,14:2745-2760.

[2] CASIMIRO I,MARCHANT A,BHALERAO R P,et al.Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation[J].Plant Cell,2001,13:843-852.

[3] YANG Z.Small GTPases:Versatile signaling switches in plants[J].Plant Cell,2002,14:375-388.

[4] 聶 芳.擬南芥Rac/Rop GEF7基因功能研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2010,38(16):8314-8316.

[5] TAO L Z,CHEUNG A Y,CANDIDA N, et al. RAC GTPases in tobacco and Arabidopsis mediate auxin-induced formation of proteolytically active nuclear protein bodies that contain aux/iaa proteins[J].Plant Cell,2005,17:2369-2383.

[6] HIMANEN K,BOUCHERON E,VANNESTE S, et al.Auxin-mediated cell cycle activation during early lateral root initiation[J].Plant Cell,2002,14:2339-2351.

[7] BENKOVA E,MICHNIEWICZ M,SAUER M, et al. Local,efflux-dependent auxin gradients as a common module for plant organ formation[J].Cell,2003,115:591-602.

[8] GELDNER N,RICHTER S,VIETEN A, et al. Partial loss-of-function alleles reveal a role for GNOM in auxin transport-related,post-embryonic development of Arabidopsis[J].Development,2004,131:389-400.

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[10] THOMAS C, FRICKE I, SCRIMA A, et al.Structural evidence for a common intermediate in small G protein-GEF reactions[J]. Molecular Cell,2007,25:141-149.

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