国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

全外顯子組測(cè)序:兒童疾病診斷新思路

2015-04-21 08:22馬丁艾遙馬丁艾路王慧君周文浩
中國(guó)循證兒科雜志 2015年1期
關(guān)鍵詞:表型變異基因組

馬丁艾遙 馬丁艾路 王慧君 周文浩

?

·綜述·

全外顯子組測(cè)序:兒童疾病診斷新思路

馬丁艾遙1,4馬丁艾路3,4王慧君2周文浩2

縱觀人類遺傳學(xué)的發(fā)展,不斷有新興技術(shù)被運(yùn)用于疾病病因的研究中。從各種流行病學(xué)研究設(shè)計(jì)到如今廣泛采用的以假說(shuō)為導(dǎo)向的候選基因法[1],從以家庭為基礎(chǔ)的遺傳連鎖研究[2~4]到全基因組關(guān)聯(lián)研究(GWAS)[5~8],雖然這些方法均能在不同程度上反映疾病的遺傳易感性,但仍不可避免地存在許多限制[9~13]。而人類基因組圖譜的完成和新一代高通量測(cè)序技術(shù)的出現(xiàn),為疾病病因的研究提供了全新的思路[14]。外顯子組序列僅占全基因組序列的1%,但大多數(shù)與疾病相關(guān)的變異位于外顯子區(qū)[15~17],基因組定向捕獲工具的出現(xiàn)使外顯子組測(cè)序成為可能。近5年在PubMed上發(fā)表的外顯子組研究相關(guān)文章已達(dá)2 000余篇,對(duì)數(shù)百種疾病展開了深入研究,臨床診斷的文章也開始報(bào)道,可見(jiàn)利用全基因組外顯子測(cè)序(WES)尋找人類疾病的致病基因,是近年發(fā)展起來(lái)的研究疾病致病機(jī)制的重要方法之一。

1 WES應(yīng)用于臨床診斷的基本策略

WES是利用序列捕獲技術(shù)將全基因組外顯子區(qū)域DNA捕捉并富集后進(jìn)行高通量測(cè)序的基因組分析方法。大致分為3個(gè)步驟:①將人類基因組中所有已知的編碼蛋白質(zhì)的基因序列進(jìn)行富集,即對(duì)全基因組外顯子進(jìn)行捕獲、擴(kuò)增;富集后,待測(cè)序序列總量大幅降低,但基因信息總量卻下降不多。②應(yīng)用新一代測(cè)序技術(shù)對(duì)富集保留的DNA序列進(jìn)行高覆蓋深度的測(cè)序,高質(zhì)量、高通量地獲取所有基因的編碼蛋白質(zhì)區(qū)域的堿基突變信息。③通過(guò)生物信息學(xué)分析及驗(yàn)證,找到致病基因[18]。WES相對(duì)于基因組重測(cè)序成本較低,對(duì)研究已知基因的單核苷酸多態(tài)性(SNP)、剪接插入缺失(Indel) 等具有較大的優(yōu)勢(shì)。

以單基因疾病研究方案為例,首先需要按照疾病表型對(duì)家系成員進(jìn)行嚴(yán)格篩查,明確其患病情況。再找出該疾病已有的研究背景和相關(guān)致病基因報(bào)道,通過(guò)傳統(tǒng)PCR測(cè)序方法對(duì)已知的疾病基因相關(guān)變異進(jìn)行驗(yàn)證和初篩;確認(rèn)所研究的樣本中未發(fā)現(xiàn)相關(guān)的基因變異,挑選一個(gè)或數(shù)個(gè)相同疾病家系的核心成員進(jìn)行WES。每個(gè)家系中的患病個(gè)體選取3~5個(gè)樣本,正常個(gè)體選取1~2名作為對(duì)照進(jìn)行研究。按照疾病模型(常染色體顯性遺傳、常染色體隱性遺傳等)及樣品的家系信息對(duì)測(cè)序得到的結(jié)果進(jìn)行分析,縮小候選變異的范圍,經(jīng)過(guò)多種注釋、篩選后過(guò)濾對(duì)功能無(wú)影響的變異及公共數(shù)據(jù)庫(kù)中的常見(jiàn)變異,再使用傳統(tǒng)PCR測(cè)序進(jìn)行樣本擴(kuò)大化驗(yàn)證及相關(guān)的功能研究,最終確定疾病相關(guān)變異。

若為散發(fā)樣本,由于樣本間沒(méi)有血緣關(guān)系,遺傳背景相差較大,測(cè)序得到的結(jié)果也較難分析。使用散發(fā)樣本進(jìn)行WES時(shí)需要更大的樣本量(>30例),方能得到更為準(zhǔn)確和有價(jià)值的結(jié)果。對(duì)大量患病個(gè)體的測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行多樣本分析,從而確定候選疾病相關(guān)變異,再用傳統(tǒng)PCR測(cè)序在其他的相同疾病患病個(gè)體和正常人群中做進(jìn)一步驗(yàn)證。

2 WES是疾病診斷的利器

2009 年8 月,Ng等[19]通過(guò)WES從4 例Freeman-Sheldon綜合征(FSS)患者的DNA 中準(zhǔn)確找出了致病基因MYH3,首次證明了WES在確定罕見(jiàn)疾病致病基因上的應(yīng)用價(jià)值。僅1個(gè)月后,Choi等[20]運(yùn)用WES在先天性氯丟失腹瀉患者中發(fā)現(xiàn)了新的致病基因突變位點(diǎn)SLC26A3,其研究更重要的意義在于糾正了先前臨床的錯(cuò)誤診斷,凸顯出WES在發(fā)現(xiàn)新的致病基因和臨床診斷上的準(zhǔn)確性。WES正式進(jìn)入臨床則是在2011年,Worthey等[21]對(duì)1例難治性炎癥性腸病的15月齡男性患兒行WES,在X連鎖凋亡抑制基因中鑒定出一個(gè)錯(cuò)義突變,并提示臍帶血移植治療策略的可能性。這項(xiàng)研究開創(chuàng)了WES臨床診斷的先河,也為個(gè)體化醫(yī)學(xué)的發(fā)展奠定了基礎(chǔ)。

近年來(lái),越來(lái)越多的研究者將目光投向WES的臨床實(shí)踐。尤其在罕見(jiàn)性遺傳病的研究中顯露頭角,罕見(jiàn)病多系單基因病。根據(jù)OMIM數(shù)據(jù)庫(kù)(更新至2014年12月31日),目前世界上報(bào)道的已知和懷疑的孟德爾遺傳病22 724種,其中確認(rèn)為孟德爾遺傳病且致病分子基礎(chǔ)已知的有4 310種,確認(rèn)為孟德爾遺傳病但分子基礎(chǔ)未知的1 678種,不確定是否為孟德爾遺傳病1 849種。單基因病的早期診斷、預(yù)防和治療,依賴于致病基因的發(fā)現(xiàn)、突變譜的鑒定及其功能研究。傳統(tǒng)的單基因病致病基因定位方法有候選基因法、定位克隆、全基因組掃描連鎖分析、物理圖譜、關(guān)聯(lián)分析和全基因組測(cè)序(WGS)等技術(shù)。然而,這些技術(shù)仍然存在難以克服的“瓶頸”,例如疾病遺傳異質(zhì)性和遺傳模式的限制,患病親屬人數(shù)有限或家系資料不完整,患者為散發(fā)性(從頭突變)等。因此,至今依然不能完全確定疾病的易感基因。

近年來(lái),越來(lái)越多的臨床大樣本研究表明,WES開始在單基因疾病診斷中顯現(xiàn)其獨(dú)特的價(jià)值。Yang等[22]對(duì)3 386例患者行WES,830例可明確診斷,診斷率約為25%,進(jìn)一步驗(yàn)證了該研究團(tuán)隊(duì)1年前發(fā)表的250例初步報(bào)告[23]的診斷率。受試對(duì)象大多是兒童,臨床表現(xiàn)以神經(jīng)系統(tǒng)障礙為主,如發(fā)育遲緩和智力障礙。其中92例(4.6%)患者可采取有效臨床干預(yù)措施。Yang等[22]認(rèn)為,由于WES對(duì)外顯子區(qū)覆蓋不完全和對(duì)變異的解釋不足等局限性,25%的分子診斷率可能是低歸因的結(jié)果。Lee等[24]對(duì)814例患者行3人家系WES(雙親與患兒)和先證者測(cè)序,其中520例(64%)是兒童,其診斷率為26%(213/814),而在3人家系測(cè)序組診斷率高達(dá)31%(127/410),明顯高于先證者測(cè)序組22%(74/338)的分子診斷率。3人家系WES診斷率高主要是由于對(duì)從頭突變和雜合子突變的檢測(cè)能力提高所致。

文獻(xiàn)[22,24]為WES臨床分子診斷提供了有力證據(jù)。但其結(jié)果與以12名健康成年人為受試對(duì)象探究WGS應(yīng)用價(jià)值的研究不同[25]。原因可能是:①WGS不僅能檢測(cè)蛋白編碼區(qū)的基因突變,而且還能檢測(cè)到非編碼區(qū)的突變。②文獻(xiàn)[22,24,25]驗(yàn)前概率不同:在人群中一個(gè)健康個(gè)體罹患一種罕見(jiàn)遺傳疾病的可能性非常低,而臨床試驗(yàn)研究本底人群是患者,每例患者所表現(xiàn)的臨床癥狀很可能就符合一種罕見(jiàn)遺傳疾病[26]。總體而言,已報(bào)道的WES有害突變檢出率在25%[27]~50%[28]。Atwal等[29]向北美47個(gè)臨床遺傳學(xué)檢測(cè)中心發(fā)起含8個(gè)問(wèn)題條目的電子問(wèn)卷調(diào)查,得到35份有效WES結(jié)果報(bào)告,歸納出實(shí)際只有22.8%的WES診斷成功率;如果排除可用其他替代方法明確診斷的結(jié)果,診斷成功率僅為17.1%;其中,1例還錯(cuò)誤地將良性突變?cè)\斷為致病性突變。因此,WES實(shí)際診斷成功率并不像某些臨床實(shí)驗(yàn)室和醫(yī)學(xué)文獻(xiàn)中報(bào)道的那樣高,受試人群的病種分布對(duì)其有很大影響。Atwal等[29]估計(jì),目前WES有害突變?cè)\斷率為15%~25%。

2.1 神經(jīng)發(fā)育異常表型者診斷陽(yáng)性率高 WES對(duì)于神經(jīng)系統(tǒng)異常表型的診斷率普遍高于非神經(jīng)系統(tǒng)表型,顯示出其在智力障礙和發(fā)育遲緩等兒童神經(jīng)系統(tǒng)疾病診斷中的不俗表現(xiàn)。以往研究顯示[30, 31],31%(16/51)的非綜合征性智力障礙散發(fā)病例和13%(13/100)的嚴(yán)重智力障礙患者可通過(guò)新一代測(cè)序技術(shù)獲得特異性分子診斷。Yang等[23]得到25%的WES分子診斷率可能是建立在本底人群臨床表型分類不同的基礎(chǔ)上,因?yàn)?50例受試對(duì)象中有200例是以智力障礙為臨床特征之一。WES對(duì)于具有性神經(jīng)表型的患者(如智力障礙和發(fā)育遲緩),分子診斷率高達(dá)33%;對(duì)于具有特殊神經(jīng)表型的患者(如運(yùn)動(dòng)障礙),WES分子診斷率也達(dá)31%。此外,Yang等[22]在更大患者人群中也發(fā)現(xiàn),有特殊的神經(jīng)系統(tǒng)異常表現(xiàn)組的診斷率高達(dá)36.1%,神經(jīng)系統(tǒng)異常組的診斷率是27.2%,神經(jīng)系統(tǒng)及其他系統(tǒng)異常組診斷率是24.6%,而非神經(jīng)系統(tǒng)異常組的診斷率僅為20.1%。在Lee等[24]的表型亞組分析中,發(fā)育遲緩的兒童3人家系WES診斷率甚至高達(dá)41%,相對(duì)于先證者測(cè)序9%的診斷率有顯著提高。但在心肌病、腫瘤傾向和性發(fā)育障礙的表型人群中,3人家系WES診斷率并沒(méi)有升高。原因可能是醫(yī)生更愿意將三人WES診斷留給具有復(fù)雜綜合征的患者,而給非綜合征患者選擇先證者測(cè)序。

WES對(duì)于急性和非急性神經(jīng)發(fā)育障礙均有較高敏感度,并且可以縮短患兒診斷時(shí)間,指導(dǎo)神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療。Soden等[32]對(duì)100個(gè)家庭的119例患有神經(jīng)發(fā)育障礙[智力障礙、全面發(fā)育遲緩和孤獨(dú)癥譜系障礙(ASD)]的兒童及其父母進(jìn)行WES或WGS,非急性發(fā)作表型神經(jīng)發(fā)育障礙患兒WES診斷率40%(34/85),急性發(fā)作表型神經(jīng)發(fā)育障礙患兒WGS診斷率 73%(11/15)。Sarah等[32]推測(cè)采用WES可使診斷提前77個(gè)月,而采用WGS則能再提前10個(gè)月。測(cè)序分析完成后,近一半家庭的臨床診療決策發(fā)生變化,而有些患者甚至需要改變治療方式。總體花費(fèi)也低于以往的個(gè)體單個(gè)基因測(cè)序??梢灶A(yù)見(jiàn),以基因組為基礎(chǔ)的診斷將直接影響患有神經(jīng)發(fā)育障礙兒童的醫(yī)療服務(wù)模式。

值得注意的是,鑒于目前對(duì)通過(guò)顯性抑制或激活機(jī)制起作用的致病突變的檢測(cè)能力有限,文獻(xiàn)[33]顯示在無(wú)關(guān)的3人家系測(cè)序組之間觀察到4個(gè)新基因(COL4A3BP,PPP2R1A,PPP2R5D和PCGF2)具有相同的從頭突變。如下2種假說(shuō)可以解釋這一現(xiàn)象:①文獻(xiàn)[33]只是在成千上萬(wàn)的不同功能獲得性突變中偶然得到了結(jié)果,僅觸及事實(shí)的表面; ②由于這些特殊變異賦予了種系積極的選擇優(yōu)勢(shì),因此存在富集現(xiàn)象[37]。評(píng)估這些假設(shè)將需要更多數(shù)據(jù)的分析。

由此可見(jiàn),神經(jīng)發(fā)育障礙表型的患者尤其適合進(jìn)行WES臨床分子診斷,WES是發(fā)現(xiàn)及證實(shí)許多神經(jīng)發(fā)育疾病致病基因的一種高效方法。WES或WGS將有助于準(zhǔn)確描述新發(fā)疾病,顯示已知疾病不典型或未完全表現(xiàn)出來(lái)的表型,并幫助識(shí)別共患病。

2.2 能夠發(fā)現(xiàn)單基因病的復(fù)雜表現(xiàn) 文獻(xiàn)[23]發(fā)現(xiàn),有4例患者存在一種突變基因?qū)?yīng)≥2種疾病狀態(tài)的現(xiàn)象。純合子突變引起常染色體隱性遺傳的分子機(jī)制也多有涉及:59例突變基因分別遺傳自父系和母系,5例源自單親二體,4例則是由雜合子點(diǎn)突變和大范圍拷貝數(shù)變異(CNVs)的缺失引起。值得注意的是,常染色體隱性遺傳模式在獲得診斷的患者中所占比例較大(34.3%),這與文獻(xiàn)[30]報(bào)道不符,100例智力障礙患者WES分子診斷16例,僅有1例是常染色隱性遺傳(6.3%)。文獻(xiàn)[22]遺傳模式分析表明,23例患者(4.6%)是由2個(gè)基因缺陷引起的混合表型。文獻(xiàn)[33]在17例患兒中鑒定出2個(gè)不同基因,均與致病突變有關(guān),從而導(dǎo)致復(fù)合臨床表型。由此可見(jiàn),WES能夠發(fā)現(xiàn)單基因病的復(fù)雜表現(xiàn),隨著其在臨床上的廣泛應(yīng)用,具有疊加癥狀和混雜表型的患者的診斷將不再困難。

2.3 對(duì)嵌合體的診斷優(yōu)勢(shì)明顯 如果測(cè)序深度高且尋找變異的工具足夠敏感,單核苷酸鏈的單獨(dú)序列分析能夠準(zhǔn)確檢測(cè)嵌合體[39~41]。嵌合體即患者體內(nèi)僅有一小部分細(xì)胞攜帶突變基因,常是嚴(yán)重早發(fā)性疾病的潛在原因,如Cornelia de Lange綜合征(CDLS)[42]。CDLS是一種以特殊面容、智力障礙和發(fā)育遲緩為特點(diǎn)的多系統(tǒng)疾病。大多數(shù)典型CDLS患者在NIPBL有功能喪失性新生雜合突變且嵌合體比例較高。而聯(lián)合SMC1A、SMC3、HDAC8和RAD21的突變則引起不典型CDLS。Ansari等[43]分別對(duì)163、90和19例患者行已知基因編碼區(qū)的突變、基因重排和NIPBL上深度內(nèi)含子變異檢測(cè),另外對(duì)5例行WES,發(fā)現(xiàn)致病突變被確定在:NIPBL46(嵌合體3,28.2%);SMC1A5(嵌合體1,3.1%);SMC35(嵌合體1,3.1%);HDAC86(嵌合體0,3.6%);RAD211(嵌合體0,0.6%)。在ANKRD11上鑒定出3個(gè)從頭突變且與KBG綜合征表型重疊。為估計(jì)未發(fā)現(xiàn)的嵌合體例數(shù),文獻(xiàn)[43]使用遞歸分區(qū)來(lái)識(shí)別NIPBL陽(yáng)性亞組的不同特點(diǎn)。依據(jù)這些特點(diǎn)對(duì)突變陰性組過(guò)濾,至少有18%被劃為“NIPBL樣”變異。

Fitzgerald等[33]對(duì)1 009例患兒和1 013例對(duì)照做外顯子組為重點(diǎn)的陣列比較基因組雜交(外顯子組-aCGH),1 006例行全基因組基因分型,識(shí)別缺失、重復(fù)、單親二體和嵌合體。從WES和外顯子組-aCGH的數(shù)據(jù)發(fā)現(xiàn),每例患兒平均有19 811個(gè)編碼或拼接的單核苷酸變異(SNVs)、491個(gè)編碼或indels和148個(gè)CNVs。從基因分型陣列的數(shù)據(jù)[44]分析,文獻(xiàn)[33]確定了5例患兒是嵌合的大型染色體重排。文獻(xiàn)[22]2 000例患者的遺傳模式分析表明,280例是常染色體顯性遺傳(53.1%),在顯性突變中,有208個(gè)(87%)是從頭突變,其中有5個(gè)已證明是嵌合體。由此可見(jiàn),WES可以檢測(cè)到低水平的嵌合體,并能更好地估計(jì)突變細(xì)胞的比例[45~48]。

Petersen等[49]為了明確體細(xì)胞突變是否在Crohn病(CD)的發(fā)病中起重要作用,對(duì)兩組同卵雙胞胎的腸和血液樣本進(jìn)行WES和WGS,目的是在患病雙胞胎中鑒定出候選的新CD易感基因位點(diǎn)。研究表明,體細(xì)胞嵌合體似乎并沒(méi)有在CD同卵雙胞胎患者的不一致性中發(fā)揮重要作用。但這是首次對(duì)CD雙胞胎行WGS,因此為今后的研究提供了一個(gè)有價(jià)值的參考數(shù)據(jù)集和嵌合體檢測(cè)的框架。

2.4 可以發(fā)現(xiàn)新的致病基因 WES是一個(gè)及時(shí)更新疾病基因的合適平臺(tái)。3 386例大樣本研究中近30%的診斷基于過(guò)去3年內(nèi)所確定的致病基因。在504例樣本中發(fā)現(xiàn)了708個(gè)候選致病突變,58%的變異未報(bào)道過(guò),且除WES外,尚無(wú)其他可用的基因檢測(cè)技術(shù)來(lái)發(fā)現(xiàn)這些未知基因突變[22]。值得注意的是,大部分未診斷病例很可能是由于新致病基因未被發(fā)現(xiàn)所致,對(duì)疾病相關(guān)文獻(xiàn)和數(shù)據(jù)庫(kù)的定期監(jiān)測(cè)將有助于提高診斷率[50]。de Ligt等[30]研究發(fā)現(xiàn)了24個(gè)有關(guān)智力障礙的從頭突變候選基因,其中3個(gè)基因的致病作用已被證實(shí); 每1個(gè)病例中,攜帶有同一基因突變的患者間觀察到顯著的表型重疊現(xiàn)象,所發(fā)現(xiàn)的DYNC1H1、GATAD2B和CTNNB1是引起智力障礙的新基因,WES可以作為診斷原因不明的嚴(yán)重智力障礙患者的有效方法; 針對(duì)他們所研究的病例,WES診斷率達(dá)到16%。隨著方法技術(shù)的改進(jìn)以及更多智力障礙相關(guān)基因的鑒定,WES診斷率可能還會(huì)提高。此外,針對(duì)覆蓋率低的外顯子區(qū),新的靶向捕獲試劑正在研發(fā)中,以彌補(bǔ)目前對(duì)已知疾病基因測(cè)序的不足。

WES對(duì)新致病基因的發(fā)現(xiàn),為罕見(jiàn)復(fù)雜疾病和難診斷疾病的臨床處理提供了解決之道。由于多變的外顯率、非特異性臨床表型或病理學(xué)特征,阻礙了Ⅳ型膠原相關(guān)腎病的診斷。Lin等[58]對(duì)3個(gè)伴有原因不明的遺傳性腎病家庭行WES,分別鑒定出2個(gè)新的和已知的COL4A3/COL4A4/COL4A5致病突變[59~61]。WES為非典型腎病的診斷困境提供了解決之道,同時(shí)也使恰當(dāng)?shù)募膊∽稍兒椭委熃ㄗh成為可能。FOXP3突變被認(rèn)為是IPEX樣綜合征(immune,dysregulation, polyendocrinopathy, enteropathy, X-linked syndrome)的主要病因,但大型隊(duì)列研究表明,有>50%的患者未檢測(cè)到FOXP3突變[62],這為臨床提高IPEX樣綜合征的診斷準(zhǔn)確性帶來(lái)了難題。Charbonnier等[63]試圖確定特發(fā)性IPEX樣綜合征患者除FOXP3突變以外的遺傳異常,對(duì)3個(gè)家系進(jìn)行了WES,并行有針對(duì)性的靶基因測(cè)序和表型功能分析,結(jié)果顯示:LRBA基因缺陷是IPEX樣綜合征和Treg細(xì)胞缺乏癥的新的致病原因[64~66]。此外,在Yang等[23]的研究中,4例經(jīng)WES診斷為Noonan綜合征,其中3例臨床表現(xiàn)不典型;1例表現(xiàn)典型,但基因panel序列分析未發(fā)現(xiàn)致病基因,經(jīng)WES后發(fā)現(xiàn)基因CBL上存在有害突變,而此基因未被囊括入panel的新基因。WES不僅可鑒別出新的有害突變,擴(kuò)充致病基因備選庫(kù),而且還能診斷出更多臨床表現(xiàn)不典型的常見(jiàn)遺傳病,完善疾病表型譜。

基于WES技術(shù)的研究設(shè)計(jì)為鑒定遺傳性缺失(missing heritability)提供了新的研究策略[67~69], WES的數(shù)據(jù)分析可能是一種具有高成本效益的方式,在探索罕見(jiàn)復(fù)雜疾病的功能變異和病因?qū)W研究中發(fā)揮重要作用[70]。

值得注意的是,WES發(fā)現(xiàn)的新致病突變有助于進(jìn)一步劃分疾病分子亞型,指導(dǎo)臨床靶向治療。前列腺癌中常見(jiàn)的基因變異包括NKX3.1和PTEN的缺失,雄激素受體基因(AR)的重復(fù),ETS家族轉(zhuǎn)錄因子基因和雄激素敏感的啟動(dòng)子序列融合等。以往觀點(diǎn)認(rèn)為頻發(fā)體細(xì)胞堿基對(duì)替換較小影響前列腺的腫瘤發(fā)生過(guò)程[71, 72],但這種觀點(diǎn)尚未經(jīng)大型隊(duì)列研究證實(shí)。Barbieri等[73]對(duì)112對(duì)前列腺腫瘤/正常組織進(jìn)行WES,在多個(gè)基因中鑒定出新的頻發(fā)突變,包括MED12和FOXA1。SPOP是突變最頻繁的基因[74, 75],有6%~15%的腫瘤組織基因突變涉及SPOP底物結(jié)合部位的保守殘端[76]。SPOP突變的前列腺癌缺乏ETS重排,并表現(xiàn)出一種獨(dú)特的基因組改變模式。WES測(cè)序結(jié)果的SPOP突變可能定義一種新的前列腺癌分子亞型。今后,這一不斷擴(kuò)充的遺傳構(gòu)架會(huì)使腫瘤的致癌機(jī)制更加明確,有助于疾病建模和患者分層治療。對(duì)前列腺癌的基因組、表觀基因組和轉(zhuǎn)錄組的系統(tǒng)性綜合分析,能夠進(jìn)一步闡明疾病生物學(xué)背后的遺傳變化,并針對(duì)異質(zhì)性惡性腫瘤的遺傳傾向予靶向治療。

由此可見(jiàn),WES對(duì)新致病基因的發(fā)現(xiàn)可能提供病因?qū)W研究的新思路。許多研究為不同人類疾病之間的相關(guān)性提供了證據(jù),包括孟德爾遺傳病和復(fù)雜疾病[77~79]、復(fù)雜疾病之間的相關(guān)性[80]。因此,是否可以提出這樣的假設(shè):引起類似臨床表型的基因,是能夠解釋疾病易感性的、有參考價(jià)值的候選基因。此外,對(duì)涉及這些已知基因的特定細(xì)胞通路或網(wǎng)絡(luò)進(jìn)行綜合分析[81, 82],判斷其在患者體內(nèi)中是否發(fā)生結(jié)構(gòu)和功能突變,可以為選擇候選基因中的優(yōu)先考慮基因提供線索。這種方法已在ASD[83]的研究中得到證實(shí),相信在基于WES的研究中也會(huì)發(fā)揮作用。另外,組合多種預(yù)測(cè)工具并產(chǎn)生一致性評(píng)估得分的方法,已證實(shí)有更突出的結(jié)果[84, 85]。然而,這些不同的工具或評(píng)估得分常常來(lái)源或應(yīng)用于評(píng)價(jià)特定的數(shù)據(jù)集,建立一個(gè)全面評(píng)估敏感度和特異度的無(wú)偏倚“金標(biāo)準(zhǔn)”數(shù)據(jù)集是必要的[57]。

如果WES研究設(shè)計(jì)能以適當(dāng)?shù)姆绞奖粦?yīng)用,將會(huì)發(fā)現(xiàn)更多復(fù)雜疾病的新易感基因罕見(jiàn)突變。高質(zhì)量和高可信度的大型參考數(shù)據(jù)集將會(huì)提高WES研究設(shè)計(jì)的可行性。包括外顯子組芯片在內(nèi)的其他技術(shù)的發(fā)展,也在努力為罕見(jiàn)突變的功能注釋提供更好的參考數(shù)據(jù)庫(kù)。隨著進(jìn)一步的大規(guī)模合作,基于病例對(duì)照設(shè)計(jì)的WES研究可能會(huì)更加具有可行性。此外,檢測(cè)新易感基因罕見(jiàn)突變也需要統(tǒng)計(jì)學(xué)和生物信息學(xué)工具的進(jìn)步。在闡明復(fù)雜性狀中罕見(jiàn)編碼突變的病因?qū)W作用后,將有必要使用WGS技術(shù)對(duì)非編碼突變的作用做進(jìn)一步探討。合適的統(tǒng)計(jì)學(xué)和生物信息學(xué)分析工具正在積極研發(fā)中[86, 87],這對(duì)于復(fù)雜疾病遺傳基礎(chǔ)的認(rèn)識(shí)至關(guān)重要。而其他探索突變基因功能性和改進(jìn)功能分析策略的研究,也會(huì)使對(duì)易感性突變的生物學(xué)意義有更深刻的了解[88]。其他數(shù)據(jù)類型,包括表觀遺傳變異、mRNA表達(dá)水平和體細(xì)胞遺傳變異等,對(duì)考慮優(yōu)先候選基因是有幫助的,可以為種系遺傳變異的疾病轉(zhuǎn)化發(fā)生過(guò)程提供進(jìn)一步的深層次理解,為易感基因相關(guān)生物學(xué)意義提供合理性解釋[57]。

3 WES在兒科復(fù)雜疾病中的研究應(yīng)用

復(fù)雜疾病是在眾多因素共同作用下發(fā)生的,如多個(gè)基因、一個(gè)基因的多個(gè)突變、環(huán)境作用及未知的隨機(jī)因素。自2005 年以來(lái),對(duì)于復(fù)雜疾病的研究,主要采用基于基因芯片的GWAS,通過(guò)比較病例與對(duì)照間SNP 的頻率差異來(lái)尋找風(fēng)險(xiǎn)變異因素。然而,目前的GWAS 只涉及復(fù)雜疾病和性狀易感基因的很少一部分,解釋的遺傳度極大地低于預(yù)期值,并且極少數(shù)SNPs被明確具有與疾病機(jī)制相關(guān)聯(lián)的功能性作用?;贏SD或精神分裂癥的測(cè)序研究,證明了對(duì)人基因組功能區(qū)域進(jìn)行深度重測(cè)序是尋找復(fù)雜疾病的潛在罕見(jiàn)致病突變的關(guān)鍵方法[89]?,F(xiàn)從兒科疾病的角度出發(fā),主要介紹WES在ASD和先天性心臟病(CHD)中的臨床研究現(xiàn)況。

3.1 ASD ASD是一種高度遺傳的神經(jīng)發(fā)育紊亂,臨床表現(xiàn)以受損的社會(huì)互動(dòng)和交流缺陷,受限制的重復(fù)行為為特征[90]。對(duì)有ASD患者的家族進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),兒童ASD同胞患病率為2%~8%,是一般人群發(fā)病率的50~200倍。雙生子研究則顯示,同卵雙生的同病一致率為60%,異卵雙生的同病一致率為0。這些證據(jù)證明遺傳因素是兒童ASD發(fā)病的重要原因。目前的研究對(duì)于候選基因的數(shù)目和界定仍不清楚,對(duì)存在1例以上ASD患者的家族進(jìn)行的全基因組分析,估計(jì)該病至少是10個(gè)以上致病基因相互作用的結(jié)果。

隨著基因組學(xué)研究和測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,基因組學(xué)已經(jīng)成為ASD近幾年主流的研究方向,每年均有新的ASD相關(guān)候選基因被報(bào)道。但由于ASD相關(guān)突變非常多樣,很難建立清晰的遺傳模式。大規(guī)模平行DNA測(cè)序發(fā)現(xiàn)了許多與ASD相關(guān)的罕見(jiàn)SNVs和微小indels變異。已證實(shí)WES對(duì)于檢測(cè)ASD中的從頭變異(DNVs)具有獨(dú)特價(jià)值[85,91~93]。WES相關(guān)研究已經(jīng)闡明了罕見(jiàn)遺傳性變異(IVs)的作用,如罕見(jiàn)基因缺失(遺傳性功能喪失的純合子,男性復(fù)合雜合子或X染色體變異)[94]、隱性純合子[95]、雙等位基因變異[96]和多家系變異共遺傳[97]。Chahrour等[95]對(duì)163個(gè)中東地區(qū)的ASD家庭進(jìn)行WES,發(fā)現(xiàn)在基因AMT、PEX7、SYNE1、VPS13B、PAH和POMGNT1上都存在雙等位基因突變,此后他們又分析了612個(gè)美國(guó)ASD家庭的WES數(shù)據(jù),得到了相同的發(fā)現(xiàn)[96]。這些基因大多與一些代謝或遺傳學(xué)綜合征有關(guān),相關(guān)隱性突變影響比較輕微,使蛋白部分喪失功能。Lim等[94]對(duì)933例ASD患者的基因組和869例對(duì)照進(jìn)行了WES,以檢測(cè)使基因功能完全喪失的隱性突變。文獻(xiàn)[94,95]研究相互補(bǔ)充,共同說(shuō)明了隱性突變對(duì)ASD的重要性。最近,WGS也已鑒定出與非編碼DNA相關(guān)的罕見(jiàn)遺傳變異和影響基因剪接的變異[98,99]。由此可見(jiàn),成百上千的罕見(jiàn)遺傳變異可以影響與ASD相關(guān)的多種生物學(xué)功能[100],而以WES為代表的新一代測(cè)序技術(shù)或許可以成為解開ASD遺傳迷霧的突破口。

WES不僅在識(shí)別ASD相關(guān)致病突變方面作用突顯,而且以此為基礎(chǔ)推動(dòng)了ASD發(fā)生機(jī)制的研究。Willsey等[101]指出了9個(gè)高可信度ASD風(fēng)險(xiǎn)基因的功能作用,然后發(fā)現(xiàn)所有基因都在胎兒發(fā)育的特定時(shí)間集中在大腦一個(gè)特定場(chǎng)所的一個(gè)單細(xì)胞類型。De Rubies等[102]和Iossifov等[103]共同合作的2項(xiàng)研究通過(guò)WES發(fā)現(xiàn)了100多個(gè)ASD相關(guān)基因突變,大多數(shù)都是從頭突變,其中60個(gè)基因突變有超過(guò)90%的概率引發(fā)ASD風(fēng)險(xiǎn)。上述研究表明,這些基因中的罕見(jiàn)突變可影響中樞神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。An等[104]利用“AXAS”基因網(wǎng)絡(luò)模型分析從澳大利亞ASD隊(duì)列中得到的WES數(shù)據(jù),該模型描述了在ASD、X-連鎖智力障礙、注意缺陷多動(dòng)障礙和精神分裂癥中所占比例過(guò)高的異質(zhì)性DNA變異的功能模式。一種優(yōu)化的DNA變異篩選流程被用來(lái)確定功能缺失的DNA變異。該研究還發(fā)現(xiàn),來(lái)自于父母表型更廣泛的可遺傳變異和從頭變異與ASD有顯著聯(lián)系。分析表明,假定罕見(jiàn)致病變異集中位于關(guān)鍵神經(jīng)生物學(xué)過(guò)程中的集群和比例大,并且在涉及神經(jīng)元發(fā)育、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和突觸發(fā)育等功能環(huán)節(jié)占比過(guò)高。這些研究結(jié)果同時(shí)證實(shí),增加ASD風(fēng)險(xiǎn)的不是突變基因的規(guī)模,而是突變基因的位置。這些基因突變或許會(huì)導(dǎo)致ASD的風(fēng)險(xiǎn)增加5~20倍。Chang等[105]對(duì)數(shù)百名患者和近1 000個(gè)基因進(jìn)行大型分析發(fā)現(xiàn),ASD癥狀的多樣性可以追溯到患者基因突變的差異,包括特定基因突變和突變的嚴(yán)重程度,提示可以根據(jù)基因型與表型的關(guān)系利用患者的遺傳圖譜,開發(fā)精確的診斷和預(yù)后工具,甚至引導(dǎo)個(gè)性化治療。

3.2 CHD 是人類最常見(jiàn)的出生缺陷,在所有活產(chǎn)兒中發(fā)病率約為1%[106, 107]。大多數(shù)CHD是遺傳因素與環(huán)境相互作用的結(jié)果[108]。約30%的心臟畸形是綜合征性的疾病,如唐氏綜合征、22q11.2缺失綜合征和Holt-Oram綜合征[109, 110];然而大多數(shù)CHD并不遵循孟德爾遺傳[111]。

過(guò)去10年常采用經(jīng)典連鎖分析或候選基因法探究CHD等家族性疾病的遺傳背景,而這些研究數(shù)據(jù)大多建立在模式生物(如基因敲除小鼠)的基礎(chǔ)上[112, 113];染色體畸變(包括CNVs)則通過(guò)細(xì)胞遺傳學(xué)分析(如熒光原位雜交FISH等)鑒定[114, 115];比較基因組雜交(aCGH)為篩選亞顯微水平染色體不平衡提供了更高的分辨率。利用aCGH的首次在CHD的研究表明,約17%的CHD患者具有潛在致病的罕見(jiàn)染色體畸變[116, 117]。全基因組SNP陣列已被用來(lái)確定散發(fā)CHD病例中的拷貝數(shù)變化[118~120]。為了找到與復(fù)雜疾病相關(guān)的SNPs,GWAS已在數(shù)百到數(shù)千人的大型隊(duì)列研究中展開[121]。相關(guān)技術(shù)方法也在其他研究中得到證實(shí)[122, 123]??傊鲜黾夹g(shù)方法為探索CHD的遺傳學(xué)基礎(chǔ)展現(xiàn)了很好的前景。但仍然有很大比例的心臟畸形不能確定遺傳病因。

二代測(cè)序技術(shù)則是目前進(jìn)一步闡明CHD遺傳背景的有效新方法。例如,Dorn等[124]針對(duì)CHD提出了一個(gè)高通量測(cè)序設(shè)計(jì)和分析路線圖,也適用于其他復(fù)雜疾病。WES、高分辨率熔煉分析和直接DNA測(cè)序的聯(lián)合應(yīng)用確定了一個(gè)家族異質(zhì)性CHD可能的致病突變基因[125]。應(yīng)用WES可以識(shí)別出患有先天性心臟病的內(nèi)臟異位患者SHROOM3上存在錯(cuò)義突變[126]。NGS使大型隊(duì)列中的成千上萬(wàn)個(gè)基因甚至整個(gè)基因組實(shí)現(xiàn)了同時(shí)分析。與微陣列不同,NGS不依賴于DNA雜交預(yù)選探針,這有利于在單堿基分辨率上鑒定新變異,這也預(yù)示著新疾病基因網(wǎng)絡(luò)的發(fā)現(xiàn)。不過(guò),由于大量數(shù)據(jù)的產(chǎn)生,要鑒定真正的疾病相關(guān)基因是非常復(fù)雜的。大規(guī)模人口研究表明,可以在任何健康個(gè)體中觀察到大量潛在的致病變異[127~129]。NGS的運(yùn)用還發(fā)現(xiàn),一些致病突變?cè)诮】祩€(gè)體和個(gè)別情況下可以被耐受,盡管發(fā)生頻率極低。因此,新測(cè)序方法應(yīng)用到類似CHD的復(fù)雜疾病分析時(shí)仍然具有挑戰(zhàn)性。

WES與其他技術(shù)的聯(lián)合應(yīng)用可彌補(bǔ)其在檢測(cè)罕見(jiàn)CNVs上的不足,提高對(duì)CHD等復(fù)雜疾病的應(yīng)用價(jià)值。Glessner等[125]對(duì)538例CHD患者和1 301名健康對(duì)照采用全基因組SNP微陣列和WES,研究新發(fā)CNVs在散發(fā)CHD發(fā)病中的致病作用;這2種互補(bǔ)的高分辨率技術(shù)從51 例CHD患者中鑒定出63個(gè)新發(fā)CNV,證明CHD患者罕見(jiàn)新發(fā)CNV出現(xiàn)頻率顯著增高:SNP陣列[P=7×10(-5);比值比4.6]或WES[P=6×10(-4);比值比3.5];而除去16%曾被報(bào)告為致病性新發(fā)CNV位點(diǎn)后,CNV出現(xiàn)頻率仍保持較高水平(P=0.02后,比值比為2.7);在15q11.2上的CYFIP1、NIPA1和NIPA2上還檢測(cè)到頻發(fā)新發(fā)CNV,在DUSP1、JUN、JUP、MED15、MED9、PTPRE、SREBF1、TOP2A和ZEB2上檢測(cè)到單個(gè)新發(fā)CNV,均與已知的CHD蛋白NKX2- 5和GATA4存在相互作用;還發(fā)現(xiàn)ETS1的11q24.2-25缺失引發(fā)Jacobsen綜合征,CTBP2是10q端粒缺失的致病基因。

房間隔缺損是CHD最常見(jiàn)的缺陷之一。過(guò)去研究表明,轉(zhuǎn)錄因子T-box 20突變(TBX20)是先天性房間隔缺損的病因之一。Liu等[126]采用WES聯(lián)合CHD相關(guān)基因過(guò)濾檢測(cè)1家3代的房間隔缺損患者,發(fā)現(xiàn)1種新型TBX20突變,c.526G> A(p.D176N)。生物信息學(xué)程序(SIFT,Polyphen2和MutationTaster)預(yù)測(cè)這種突變是有害的。此突變以前并沒(méi)有包括在SNP數(shù)據(jù)庫(kù)(dbSNP)或國(guó)家心臟、肺和血液研究所(NHLBI)WES計(jì)劃(ESP)的數(shù)據(jù)中。Liu等發(fā)現(xiàn)擴(kuò)大了TBX20突變譜,證明了TBX20在心臟發(fā)育中起著重要作用,也為小家系CHD的遺傳研究提供了一個(gè)性價(jià)比較高的新分析策略。Greenway等[130]對(duì)1個(gè)常染色體顯性遺傳隔離繼發(fā)孔型房間隔缺損高發(fā)的家系進(jìn)行WES,此前候選基因測(cè)序和連鎖分析均無(wú)結(jié)果。2例患者鑒定出44個(gè)罕見(jiàn)共同變異,包括在α-心肌肌動(dòng)蛋白(ACTC1)中的非同義突變(c.532A> T,p.M178L,NM_005159.4);而1 834名對(duì)照、千人基因組和ESP的均無(wú)此突變,p.M178L也是唯一1個(gè)從家系中分離得到的罕見(jiàn)基因突變。Greenway等[130]的研究為ACTC1突變?cè)诜块g隔缺損中的致病作用提供了進(jìn)一步的證據(jù)支持,而大規(guī)模平行WES也使檢測(cè)CHD新罕見(jiàn)變異成為可能,不再受到候選基因法的局限。當(dāng)突變預(yù)測(cè)算法無(wú)效時(shí),家族性疾病的研究可有助于從良性變異中區(qū)分罕見(jiàn)的致病突變,重視家族史研究也使對(duì)CHD的遺傳見(jiàn)解更加深入。

研究證明,SCN5A突變是遺傳性心律失常的潛在病因,但其與復(fù)雜重疊表型,特別是與CHD的聯(lián)系則很少報(bào)道。Tan等[131]聯(lián)合運(yùn)用WES和生物信息學(xué)的策略,在1個(gè)多代家系中鑒定出常染色體顯性心臟傳導(dǎo)疾病(CCD)的致病基因,發(fā)現(xiàn)SCN5A上存在一種新的無(wú)義突變(Y1495X),推測(cè)該突變產(chǎn)生截短的SCN5A蛋白從而導(dǎo)致鈉電流損失,明確了SCN5A相關(guān)性心律失常的機(jī)制。由此可見(jiàn),WES是一種對(duì)罕見(jiàn)臨床表型做遺傳分析的非常有效的方法,為臨床表現(xiàn)陰性的家屬提供了準(zhǔn)確的基因檢測(cè)信息。

利用高通量測(cè)序的大型CHD隊(duì)列研究有望更好地了解疾病潛在的復(fù)雜遺傳學(xué)基礎(chǔ)。兒童心臟基因組協(xié)會(huì)建立的CHD遺傳網(wǎng)絡(luò),納入3 700例各種類型的CHD,旨在探討CHD患者遺傳因素、臨床特點(diǎn)和結(jié)局之間的關(guān)系。正在進(jìn)行的研究包括對(duì)心臟組織樣品分別運(yùn)用WGS和RNA測(cè)序以實(shí)現(xiàn)CNV的識(shí)別,候選基因的重排及體細(xì)胞突變和等位基因錯(cuò)誤表達(dá)的檢索[131]。Zaidi等[132]對(duì)362例患者及其父母WES從頭突變?cè)贑HD患者組蛋白修飾基因中呈明顯富集現(xiàn)象,說(shuō)明表觀遺傳調(diào)控在心臟發(fā)育中具有重要作用。威康信托基金會(huì)桑格研究所發(fā)起的解密發(fā)育障礙(DDD)研究(http://www.ddduk.org/),從12 000例未確診的發(fā)育障礙兒童及其父母處收集臨床數(shù)據(jù)和DNA樣本,其中也包括CHD患者,使用高分辨率aCGH、SNP基因分型和WES來(lái)辨別不同疾病潛在的遺傳原因。UK10K項(xiàng)目(http://www.uk10k.org/)對(duì)125例CHD患者在其罕見(jiàn)疾病樣本組內(nèi)進(jìn)行WES。后2項(xiàng)研究仍在進(jìn)行中,尚未公布CHD的相關(guān)研究結(jié)果。

WES能更好地理解各種綜合征和非綜合征性CHD的遺傳基礎(chǔ)[133],但是這些研究能闡明機(jī)制的病例比例仍然很小。例如,罕見(jiàn)CNVs能解釋5%~20%篩選過(guò)的CHD,WES僅能解讀10%散發(fā)重癥CHD病例的從頭突變[132,134]。

Blue等[135]研究利用16個(gè)有明確CHD病史的家系所組成的隊(duì)列篩選出57個(gè)候選基因的靶向panel,將測(cè)序結(jié)果分別與15個(gè)健康對(duì)照、1000WGS計(jì)劃和全外顯子組測(cè)序計(jì)劃中的數(shù)據(jù)進(jìn)行比較,31%(5/16)的家系鑒定出致病變異,又在這些致病突變的基礎(chǔ)上根據(jù)3個(gè)家系確定了一個(gè)可能的綜合征病因;此外,還在25%的家系中發(fā)現(xiàn)了意義不明的變異。有人認(rèn)為,此研究獲得基因診斷的疾病,可能僅需臨床檢查就能明確,例如TFABP2突變(Char綜合征),TBX5突變(Holt-Oram綜合征)和ELN突變(主動(dòng)脈瓣上狹窄)。然而現(xiàn)實(shí)中,許多患者的臨床表型不明顯,呈現(xiàn)出外顯率下降、多變表型增多的趨勢(shì),阻礙了快速便捷的表型識(shí)別[136]。而Blue等[135]的研究證明了使用分子診斷能更容易地解決這一臨床現(xiàn)實(shí),當(dāng)然還要考慮到NGS產(chǎn)生了前所未有的海量難題,而表型分型仍然是一個(gè)更費(fèi)時(shí)的過(guò)程。

從其他對(duì)復(fù)雜疾病的研究中可以推斷,僅靠WES將不能完全確定單一表型特征的CHD的遺傳基礎(chǔ),至少與目前WES普遍能檢測(cè)出致病變異的分析范例不符。例如,Martin等[137]應(yīng)用WES到二葉主動(dòng)脈瓣(BAV)及其他心血管畸形高發(fā)的17人家系中,評(píng)估了3種常用于WES和家系連鎖分析的變異選擇策略,仍未能確定BAV的遺傳變異基礎(chǔ),說(shuō)明假定致病變異改變編碼意義的WGS,可能不足以揭示BAV和其他復(fù)雜性狀。非編碼變異和寡基因遺傳可能是這些現(xiàn)象的原因,目前面臨的主要挑戰(zhàn)將是如何鑒別良性變異和致病突變,并研制出真正個(gè)性化的基因檢測(cè)工具。

從技術(shù)角度來(lái)看,WES已經(jīng)取代靶向基因panel,為編碼變異提供了一個(gè)無(wú)偏倚、全基因組范圍篩查的平臺(tái)。然而,其明顯優(yōu)勢(shì)依賴于耗費(fèi)巨大的數(shù)據(jù)分析。另外,WES在覆蓋深度方面遜于靶向基因panel,因?yàn)镹GS需要多個(gè)測(cè)序讀數(shù)重疊以提高可信度。因此,WES目前只建議作為當(dāng)靶向基因panel等未能取得成果時(shí)的后續(xù)篩查。隨著這些技術(shù)的日益成熟,類似Blue等[122]研究的意義在于,在不同臨床場(chǎng)景下,為不同類型CHD的基因診斷奠定基礎(chǔ)。更多的研究者開始轉(zhuǎn)變立場(chǎng),提出應(yīng)加強(qiáng)兒科心臟病專家的職業(yè)培訓(xùn)和繼續(xù)醫(yī)學(xué)教育,以適應(yīng)新技術(shù)要求的知識(shí)基礎(chǔ)和操作能力。核心課程也必須迅速改變,以配合在基因組學(xué)領(lǐng)域的進(jìn)展步伐。

4 WES在兒童腫瘤中的研究應(yīng)用

4.1 揭示腫瘤發(fā)生機(jī)制 越來(lái)越多的研究者已認(rèn)識(shí)到WES在兒童實(shí)體腫瘤發(fā)生機(jī)制研究中的潛在價(jià)值。神經(jīng)母細(xì)胞瘤是兒童最常見(jiàn)的實(shí)體腫瘤。為揭示神經(jīng)母細(xì)胞瘤的遺傳基礎(chǔ),Sausen等[138]采用大規(guī)模并行測(cè)序的設(shè)計(jì),分別進(jìn)行了WGS(6例)、WES(16例)、全基因組重排分析(32例)和特定基因位點(diǎn)的靶向分析(40例),鑒定出染色質(zhì)重塑基因ARID1A和ARID1B突變(8/71,11%),且這些變異均與早期治療失敗和存活率降低有關(guān)。根據(jù)腫瘤特異性的結(jié)構(gòu)變異,Sausen等[138]設(shè)計(jì)了鑒定血清中重排DNA片段的新方法,為微小殘留病灶的檢測(cè)和監(jiān)控提供了個(gè)性化的生物學(xué)標(biāo)志物。結(jié)果強(qiáng)調(diào)了染色質(zhì)重塑失調(diào)在兒童腫瘤發(fā)生過(guò)程中的重要影響,并為神經(jīng)母細(xì)胞瘤的治療方案提供了新思路。

腎母細(xì)胞瘤是最常見(jiàn)的兒童腎癌。Rakheja等[139]對(duì)44例腎母細(xì)胞瘤患兒進(jìn)行WES,發(fā)現(xiàn)體細(xì)胞microRNA(miRNA)加工酶DROSHA和DICER1存在錯(cuò)義突變,并在MYCN、SMARCA4和ARID1A三個(gè)基因中發(fā)現(xiàn)新突變。DICER1 RNase IIIB突變優(yōu)先干擾pre-miRNA發(fā)夾結(jié)構(gòu)5′-端的miRNA的加工過(guò)程,同時(shí)DROSHARNase IIIB突變從整體上通過(guò)顯性失活機(jī)制抑制miRNA的生物合成。而DROSHA和DICER1突變又共同干擾抑癌基因(TSG)miRNA的表達(dá),包括let-7家族、MYCN、LIN28等重要調(diào)節(jié)因子和其他腎母細(xì)胞瘤的原癌基因。由此可見(jiàn),體細(xì)胞miRNA生物合成元件的突變促使miRNA表達(dá)重編程,導(dǎo)致腫瘤發(fā)生。WES加快了這些新遺傳突變的發(fā)現(xiàn)速度,為腎母細(xì)胞瘤新亞型的劃分提供了病因?qū)W方面的遺傳依據(jù),同時(shí)也為機(jī)制研究和臨床治療提供了新視角。

膠質(zhì)瘤是兒童最常見(jiàn)的腦腫瘤。為了確定高級(jí)別膠質(zhì)瘤(HGGs)其他的致病突變,F(xiàn)ontebasso等[140]對(duì)543例HGGs患者行WES,在15%的兒童HGGs中,H3K36 三甲基轉(zhuǎn)移酶(trimethyltransferase)SETD2存在突變,且該突變?cè)谌蚪M范圍均顯著(FDR=0.029)。其他的隊(duì)列研究證實(shí),在低級(jí)別膠質(zhì)瘤中未檢測(cè)到SETD2突變。SETD2是人類唯一的H3K36 三甲基轉(zhuǎn)移酶,而SETD2突變腫瘤顯示出H3K36me3水平顯著降低(P<0.001),表明該突變是功能損害性的。此外,喪失功能的SETD2突變多發(fā)生在年齡較大的兒童和青年人,且特定出現(xiàn)在大腦皮質(zhì)的HGGs中,與H3.3 G34R/V和IDH突變的情況類似。Fontebasso等[140]研究提示,SETD2突變破壞了組蛋白H3K36位的編碼從而導(dǎo)致膠質(zhì)瘤的發(fā)生,WES又從表觀遺傳學(xué)的角度為腫瘤發(fā)生機(jī)制提供了新思路。

4.2 作為分型依據(jù) 腫瘤的分型與其惡性程度有關(guān),不同分型的腫瘤其治療方式又截然不同,預(yù)后也相差甚遠(yuǎn)。

以往基于活檢結(jié)果將髓母細(xì)胞瘤患者分為標(biāo)準(zhǔn)風(fēng)險(xiǎn)和高風(fēng)險(xiǎn)兩類。Pugh等[141]根據(jù)基因表達(dá)譜和罕見(jiàn)CNVs將髓母細(xì)胞瘤分為4種分子亞型,每種亞型具有不同的生存率。他們同時(shí)對(duì)突變基因進(jìn)行功能分析,結(jié)果表明是由于少數(shù)常見(jiàn)基因調(diào)控機(jī)制受到干擾而引起髓母細(xì)胞瘤的發(fā)生,這些干擾的形式在各個(gè)腫瘤中有所不同,從而進(jìn)一步揭示了腫瘤異質(zhì)性的原因。由此可見(jiàn),不僅需要在基因組水平上對(duì)兒童腫瘤進(jìn)行分層分型,更需要明確哪些基因突變會(huì)驅(qū)動(dòng)哪種分子亞型,其機(jī)制又如何,從而實(shí)現(xiàn)基于分子分型的預(yù)后及靶向治療,提高診斷率和療效。

4.3 提示腫瘤預(yù)后 以兒童常見(jiàn)的室管膜瘤為例,目前的標(biāo)準(zhǔn)治療包括手術(shù)和放射,但化療效果不佳。Mack等[142]對(duì)47例后腦室管膜瘤患兒行WGS和WES,發(fā)現(xiàn)基因組突變率極低以及無(wú)顯著頻發(fā)體細(xì)胞SNVs。雖然缺乏頻發(fā)的SNVs和集中的罕見(jiàn)CNVs,但預(yù)后不良的后腦室管膜瘤表現(xiàn)出CpG島甲基化表型。CpG甲基化介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄沉默區(qū)僅僅集中在PRC2復(fù)合體的靶基因上,而已知PRC2通過(guò)H3K27的三甲基化(H3K27me3)抑制分化基因的表達(dá)。CpG島甲基化陽(yáng)性表型的后腦室管膜瘤對(duì)靶向DNA或H3K27甲基化的體外和體內(nèi)臨床藥物有敏感性。表觀遺傳修飾位點(diǎn)也許可以作為臨床化療的首要候選靶點(diǎn)。同時(shí),這項(xiàng)研究也提示,某些惡性腫瘤可能呈現(xiàn)遺傳學(xué)改變不顯著,而表觀遺傳學(xué)變化明顯的特點(diǎn),而腫瘤預(yù)后可能正是與表觀遺傳學(xué)的變化息息相關(guān)。

4.4 提供治療靶點(diǎn) 越來(lái)越多的研究和臨床試驗(yàn)證實(shí),WES對(duì)新致病突變的發(fā)現(xiàn)可以為基于全基因組分析技術(shù)的治療干預(yù)措施提供潛在的新靶點(diǎn)。

盡管目前轉(zhuǎn)移性或復(fù)發(fā)性兒童橫紋肌肉瘤的生存率有所提高,但患者預(yù)后情況仍然不容樂(lè)觀。橫紋肌肉瘤有2種基因表型:PAX3或PAX7融合基因型、缺乏融合基因型。Shern等[143]對(duì)147例患者進(jìn)行了WGS、WES和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序發(fā)現(xiàn),橫紋肌肉瘤的體細(xì)胞突變率總體比較低,尤其是在含有PAX3/7融合基因的腫瘤中。盡管突變率相對(duì)較低,但除了先前報(bào)道過(guò)的NRAS、KRAS、HRAS、FGFR4、PIK3CA和CTNNB1頻發(fā)突變外,還發(fā)現(xiàn)了新的FBXW7和BCOR頻發(fā)突變。此外,93%的病例檢測(cè)到受體酪氨酸激酶/RAS/PIK3CA軸突變,提示基因組學(xué)定向療法可能改善橫紋肌肉瘤患者的預(yù)后。

顱咽管瘤患者的臨床后遺癥主要來(lái)源于腫瘤浸潤(rùn)或治療干預(yù)使視交叉、垂體柄和下丘腦區(qū)域損傷,目前仍缺乏有效的診斷和治療措施。Brastianos等[144]WES研究發(fā)現(xiàn),CTNNB1突變幾乎存在于所有的成釉質(zhì)細(xì)胞型顱咽管瘤中(11/12,92%),而BRAF頻發(fā)突變存在于所有的乳頭狀顱咽管瘤(3/3,100%)。靶向基因分型結(jié)果與WES測(cè)序結(jié)果相吻合。CTNNB1和BRAF突變的鑒定為顱咽管瘤的分子治療提供了重要的靶向位點(diǎn)。

嬰兒肌纖維瘤病(IM)是兒童軟組織最常見(jiàn)的良性纖維瘤。Martignetti等[145]對(duì)9個(gè)不同家庭的32個(gè)全血樣本進(jìn)行WES發(fā)現(xiàn),PDGFRB[146]和NOTCH3是導(dǎo)致IM的2個(gè)關(guān)鍵突變基因?,F(xiàn)已有藥物(如伊馬替尼和舒尼替尼)可抑制PDGFRB和NOTCH3的表達(dá)。對(duì)PDGFRB和NOTCH3通路之間聯(lián)系的進(jìn)一步研究可能會(huì)發(fā)現(xiàn)導(dǎo)致IM的其他突變,同時(shí)對(duì)理解腫瘤生長(zhǎng)消退機(jī)制和尋找靶向治療位點(diǎn)具有重要意義。

兒童HGGs是一種破壞性極強(qiáng)的惡性腫瘤,診斷后2年存活率<20%,由于其發(fā)生機(jī)制仍不清楚,故缺乏有效的治療措施。Wu等[147]分析了127例HGGs患兒,包括彌漫性橋腦內(nèi)膠質(zhì)瘤(DIPGs)和非腦干HGGs(NBS-HGGs)。通過(guò)WGS、WES和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,發(fā)現(xiàn)只有DIPGs(32%)的ACVR1基因檢測(cè)到頻發(fā)體細(xì)胞突變。此外,在47%的DIPGs和NBS-HGGs中,因結(jié)構(gòu)變異而產(chǎn)生的融合基因也被檢測(cè)到,40%的嬰兒NBS-HGGs病例中神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子受體基因NTRK1、NTRK2和NTRK3頻發(fā)融合。值得注意的是,在68%、73%和59%的兒童HGGs中(包括DIPGs和NBS-HGGs),分別發(fā)現(xiàn)受體酪氨酸激酶-RAS-PI3K信號(hào)通路、組蛋白修飾或染色質(zhì)重塑過(guò)程、以及細(xì)胞周期調(diào)控通路上都存在靶向突變。某些特定或共同的細(xì)胞信號(hào)通路內(nèi)基因位點(diǎn)的突變與兒童HGG有關(guān),提示基于這些位點(diǎn)的靶向治療具有研究的價(jià)值。

骨肉瘤是兒童最常見(jiàn)的原發(fā)性骨腫瘤,但30年間其治療或生存率均無(wú)實(shí)質(zhì)性進(jìn)展。Perry等[148]對(duì)59例患兒進(jìn)行WES、WGS和RNA測(cè)序,只有TP53基因在所有樣品中有顯著突變頻率。鑒于腫瘤異質(zhì)性、基因組不穩(wěn)定性及大樣本獲取難度,該研究利用通路分析、shRNA篩選等方法發(fā)現(xiàn),骨肉瘤細(xì)胞系對(duì)PI3K/mTOR通路的抑制劑敏感。僅僅找到基因突變位點(diǎn)是遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠的,還需要了解突變基因引起細(xì)胞內(nèi)錯(cuò)誤信號(hào)傳達(dá)的機(jī)制,并利用藥物測(cè)試和建立模式動(dòng)物研究模型[149],才能夠?yàn)閮和[瘤的靶向治療提供更充分的遺傳研究基礎(chǔ)。

5 WES的應(yīng)用局限性

Lee等[24]對(duì)WES在實(shí)際臨床研究中的局限性作了總結(jié)。①鑒于3人家系WES診斷的高額費(fèi)用和在無(wú)癥狀父母中檢出陽(yáng)性的可能性,臨床醫(yī)生可能不會(huì)選擇此種方法。②非隨機(jī)化分組使未觀察到的混雜因素可能影響診斷率。③WES并不能發(fā)現(xiàn)所有具有潛在因果關(guān)系的基因突變型,可能出現(xiàn)嚴(yán)重遺漏,如病理性重復(fù)擴(kuò)增(見(jiàn)于脊髓小腦共濟(jì)失調(diào))和大多數(shù)罕見(jiàn)CNVs。④WES也不能取樣所有的蛋白編碼堿基,平均序列覆蓋率有限。⑤3人家系WES診斷對(duì)表型數(shù)據(jù)和變異型兩者之間聯(lián)系的解釋分析能力上還有待進(jìn)一步提高。

自美國(guó)醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)會(huì)(ACMG)公布偶然發(fā)現(xiàn)的相關(guān)指南后,如何報(bào)告WES中預(yù)期外發(fā)現(xiàn)的問(wèn)題便引起人們的極大關(guān)注[27, 150~153]。ACMG建議,當(dāng)基于臨床目的對(duì)兒童或成人開展WGS或WES時(shí),應(yīng)當(dāng)評(píng)估與24種遺傳疾病相關(guān)的56個(gè)基因[154]。然而WES往往不能產(chǎn)生高質(zhì)量的結(jié)果而錯(cuò)過(guò)特定基因中的變異。為此,研究人員調(diào)查了56個(gè)ACMG基因中突變的假陰性率[153]。對(duì)44個(gè)外顯子組數(shù)據(jù)集進(jìn)行了回顧性分析,這些數(shù)據(jù)來(lái)自4個(gè)不同的外顯子組捕獲試劑盒和2個(gè)測(cè)序平臺(tái)。研究人員還研究了WES檢測(cè)56個(gè)ACMG基因中相關(guān)突變的能力。總體而言,這4種外顯子組方法的覆蓋度都不足。在每種外顯子組方法中,至少有1個(gè)基因錯(cuò)過(guò)了40%以上的致病基因變異;最差的有4個(gè)基因錯(cuò)過(guò)了>90%的變異。現(xiàn)有的測(cè)序試劑盒有較高的假陰性率。必須強(qiáng)調(diào)的是,當(dāng)臨床外顯子組分析沒(méi)有報(bào)告致病的基因變異,可能是因?yàn)樽儺愃诘膮^(qū)域沒(méi)有被分析,而不是患者的DNA中沒(méi)有致病變異。因此,如果外顯子組無(wú)法獲得預(yù)期的表現(xiàn),則應(yīng)當(dāng)進(jìn)一步使用疾病特異的靶向基因panel。產(chǎn)生足夠大量的序列數(shù)據(jù),以實(shí)現(xiàn)最佳的覆蓋度。

綜上所述,由于WES是將全基因組外顯子區(qū)域DNA富集后進(jìn)行高通量測(cè)序的基因組分析方法,其對(duì)基因組信息的解讀可能出現(xiàn)以下重要遺漏:①在染色體末端重復(fù)區(qū)域內(nèi)的外顯子不能被檢測(cè)到;②無(wú)法發(fā)現(xiàn)線粒體基因中的突變;③忽略染色體結(jié)構(gòu)變異,如易位或倒位;④無(wú)法有效診斷三堿基突變疾病,如Huntington's病和脆性X綜合征;⑤無(wú)法發(fā)現(xiàn)其他罕見(jiàn)CNVs;⑥內(nèi)含子中的致病突變會(huì)被WES忽略;⑦無(wú)法發(fā)現(xiàn)單親二倍體;⑧無(wú)法發(fā)現(xiàn)調(diào)控序列的DNA變異;⑨無(wú)法檢測(cè)基因之間是否有相互作用;⑩無(wú)法解讀表觀遺傳學(xué)改變。

6 WES的相關(guān)倫理問(wèn)題

目前在遺傳學(xué)者中已達(dá)成這樣一種共識(shí):WGS和WES的廣泛應(yīng)用不僅是大勢(shì)所趨,而且將大有益處[155]。但是,由于其較以前的基因檢測(cè)相比定位精確度有所下降,對(duì)于在測(cè)序過(guò)程中可能出現(xiàn)的重要臨床發(fā)現(xiàn)應(yīng)如何處理,引發(fā)了道德辯論。測(cè)序的結(jié)果可能被指定為有科學(xué)意義,也可能恰恰相反。科學(xué)意義的結(jié)果是指那些有統(tǒng)計(jì)證據(jù)證明的基因型(遺傳變異)與一個(gè)特定表型(例如,疾病的癥狀或危險(xiǎn)因素)之間有相互關(guān)系的變異。如果沒(méi)有足夠的證據(jù)來(lái)支持這種關(guān)系,那么這種變異叫做“不確定意義變異”(VUS)。VUS并不一定意味著基因型-表型之間的關(guān)系不存在,而是表示當(dāng)前沒(méi)有該人群足夠的統(tǒng)計(jì)學(xué)證據(jù)來(lái)證實(shí)這個(gè)結(jié)果。WGS產(chǎn)生大量的數(shù)據(jù),許多觀察到的變異都只有不確定的意義,需要進(jìn)一步的臨床研究來(lái)確定其意義,這也使反饋研究參與者更多個(gè)人信息的行為成為收集更多數(shù)據(jù)的必要(例如,從其他家庭成員采集更多的生物樣本和表型數(shù)據(jù))。Hallowell等[156]認(rèn)為,拋開這些發(fā)現(xiàn)是有意為之或是偶然出現(xiàn),如何處理WES和WGS研究的倫理問(wèn)題也受到臨床或科學(xué)研究背景的影響。Hallowell等[156]還呼吁,增加樣品采集目的的透明度,更加明確科學(xué)研究與臨床背景轉(zhuǎn)換的議程,落實(shí)患者和研究參與者對(duì)于偶發(fā)問(wèn)題及其影響的知情權(quán),并曉之以必要的應(yīng)對(duì)措施。

2014年1月,Illumina公司宣布可在不超過(guò)1 d的時(shí)間內(nèi),以1 000美元的夢(mèng)幻價(jià)格完成對(duì)1個(gè)人的WGS,測(cè)序價(jià)格的急劇下降無(wú)疑極大提高了新一代測(cè)序的可行性。雖然從技術(shù)上來(lái)說(shuō)測(cè)序一個(gè)基因組和獲得原始數(shù)據(jù)的成本急劇下降,WGS的總體成本,包括數(shù)據(jù)的安全儲(chǔ)存、解讀和處理,目前還不清楚。文獻(xiàn)[155]對(duì)WGS的成本計(jì)算進(jìn)行了回顧分析,發(fā)現(xiàn)如果考慮到分析數(shù)據(jù)和結(jié)果處理時(shí)需要的專家團(tuán)隊(duì),就必須認(rèn)真考慮“1 000美元的基因組”和“100 000美元的分析”。此外,為讓臨床醫(yī)生正確解讀WGS結(jié)果而必需的一般背景知識(shí)培訓(xùn)目前還很缺乏[1]。遺傳咨詢面臨的困境在于,向患者解釋技術(shù)的本質(zhì)和結(jié)果需要大量的時(shí)間,而且實(shí)際上如何傳達(dá)信息以讓他們更好地理解也是難題所在。目前大多數(shù)已構(gòu)建的引導(dǎo)生物醫(yī)學(xué)研究和診斷實(shí)踐的倫理框架并非專為NGS的應(yīng)用而設(shè)計(jì)[157, 158],因此這些框架可能需要重新闡釋和修正。

6.1 知情同意 知情同意實(shí)施過(guò)程中常存在以下問(wèn)題:①需告知的信息量超載或信息內(nèi)容過(guò)于復(fù)雜;②患者及家屬對(duì)信息的理解和記憶能力有限;③醫(yī)患雙方間存在信息理解偏差和虛假希望。這些都有可能使WGS實(shí)施時(shí)知情同意過(guò)程變得更加復(fù)雜[157, 159, 160]。以下問(wèn)題尤其需要關(guān)注:知情同意過(guò)程中哪些信息需要收錄、知情同意應(yīng)如何實(shí)現(xiàn)以及是否可以保留在遺傳學(xué)研究中習(xí)慣使用的觀念等[161]。主要關(guān)注理由之一是最終分析結(jié)果的高度不確定性。首先,這種不確定性一方面會(huì)造成期望結(jié)果的益處和風(fēng)險(xiǎn)因素的不平衡,例如得到不希望得到的信息、丟失隱私權(quán)和虛假期望;另一方面,對(duì)突變意義的錯(cuò)誤理解也間接影響治療方案[162]。因此,應(yīng)客觀表述WES和WGS在臨床應(yīng)用上的益處[163]。第二,結(jié)果的多樣性也引出了如下問(wèn)題:需要決定哪些結(jié)果將反饋給研究對(duì)象和患者,以及不同的利益相關(guān)者在決定反饋給研究對(duì)象的結(jié)果時(shí)有多大的自主權(quán)。第三,結(jié)果信息可能與家屬相關(guān)或有暗示作用,而家屬并沒(méi)有參與知情同意過(guò)程。第四,考慮到數(shù)據(jù)的未來(lái)利用度和分享度,必須再三斟酌知情同意的適用范圍。最后,必須強(qiáng)調(diào)知情同意在研究過(guò)程和臨床場(chǎng)景中的差別,避免治療性誤解的發(fā)生。為了在臨床中進(jìn)行WES和WGS時(shí)實(shí)施恰當(dāng)?shù)闹橥猓瑧?yīng)在測(cè)序前花費(fèi)大量時(shí)間做充分輔導(dǎo)咨詢[164]。具體注意事項(xiàng)可參考Ayuso等[165]總結(jié)的WGS知情同意參考標(biāo)準(zhǔn)。

6.2 數(shù)據(jù)解讀 為決定哪些結(jié)果需要反饋,Berg等[166]提出了臨床WGS中間儲(chǔ)倉(cāng)式系統(tǒng)的構(gòu)想,根據(jù)分類標(biāo)準(zhǔn)決定反饋計(jì)劃。例如,具有臨床可行性的結(jié)果一定要上報(bào),無(wú)臨床意義或不明的結(jié)果不需反饋,臨床上有效但可行性欠佳的結(jié)果根據(jù)研究對(duì)象的意愿反饋等。McGuire等總結(jié)了目前已有的共識(shí):與臨床確實(shí)相關(guān)且具有直接可行性的結(jié)果應(yīng)該反饋給受試對(duì)象[167],而不必公開意義不明的研究結(jié)果[168]。而對(duì)于預(yù)期沒(méi)有估計(jì)到的意外結(jié)果,或稱“脫靶結(jié)果”[154],是否應(yīng)反饋給受試對(duì)象至今還沒(méi)有能被廣泛認(rèn)可的解決方案[154,169~173]。

6.3 數(shù)據(jù)知情和處理意見(jiàn) NGS的應(yīng)用產(chǎn)生了大量的原始序列數(shù)據(jù)和遺傳變異結(jié)果:WGS有望揭示300萬(wàn)至400萬(wàn)的基因變異,WES也有望顯示大約2萬(wàn)的突變型[164]。Pinxten等[174]分別從數(shù)據(jù)存儲(chǔ)、分析和分享3個(gè)方面討論數(shù)據(jù)處理的倫理和實(shí)用性問(wèn)題。①是否有及在何種情況下有義務(wù)必須做到記錄保存,②未成年人達(dá)到法定成年年齡時(shí)能否訪問(wèn)曾經(jīng)的測(cè)序數(shù)據(jù),③尋求新的診斷和治療方案的患者是否應(yīng)重新聯(lián)系[175],④電子病歷還不能很好地儲(chǔ)存大量WES和WGS原始數(shù)據(jù)的問(wèn)題[164],⑤存儲(chǔ)的數(shù)據(jù)可能會(huì)產(chǎn)生實(shí)際鑒定和破壞隱私保密的風(fēng)險(xiǎn)等[176]。生物信息學(xué)分析也并非完全是自動(dòng)化處理,許多醫(yī)療保健機(jī)構(gòu)都缺乏必要的資源投資昂貴的設(shè)備,聘請(qǐng)包括生物信息學(xué)等方面的有關(guān)專家。仍然需要包含更多醫(yī)療相關(guān)數(shù)據(jù)的數(shù)據(jù)庫(kù)[177]。由此所帶來(lái)的經(jīng)濟(jì)成本的增加可能已超過(guò)技術(shù)上的花費(fèi)[178]。此外,決定不同遺傳變異對(duì)研究對(duì)象個(gè)人健康的意義[166]和將不同變異恰當(dāng)分類[176, 179]是很困難的。而要使所得數(shù)據(jù)價(jià)值最大化就必須分享數(shù)據(jù),越是更多地分享在表型相似患者身上發(fā)現(xiàn)的變異,就越能實(shí)現(xiàn)對(duì)變異的正確分類。對(duì)研究人員和專家們,應(yīng)提倡并保證數(shù)據(jù)分享的合理實(shí)現(xiàn)[180];對(duì)患者和研究對(duì)象,應(yīng)保證他們對(duì)數(shù)據(jù)分享計(jì)劃的知情,否則缺少透明度會(huì)損害公眾對(duì)WES和WGS的信任[176]。

7 展望

WES的臨床價(jià)值在于,可對(duì)單獨(dú)依據(jù)臨床或?qū)嶒?yàn)室難以確診的不典型疾病、檢查項(xiàng)目昂貴疾病和基因突變型未知的疾病做出診斷[181],從而更全面地了解疾病的病因和發(fā)展史,指導(dǎo)特異性治療[182]。WES的應(yīng)用給兒童疾病診斷帶來(lái)了全新的思路,進(jìn)一步擴(kuò)展了人們對(duì)疾病譜的認(rèn)知度。依據(jù)目前WES在兒童單基因遺傳病和一些復(fù)雜疾病研究中的突出表現(xiàn),不難推測(cè)其在腫瘤學(xué)、慢性疾病、產(chǎn)前診斷、新生兒疾病篩查和健康人群普查中也將發(fā)揮重要作用,因此明確WES的有效應(yīng)用領(lǐng)域和范圍十分必要。

臨床醫(yī)師應(yīng)該明智地判斷在何種情況下需使用WES診斷,向患者及其家屬詳細(xì)解釋W(xué)ES的結(jié)果含義、風(fēng)險(xiǎn)和限制,并避免為追求診斷給患者增加不必要的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)。WES推動(dòng)了對(duì)疾病遺傳致病機(jī)制的深入探究,隨著致病基因的不斷發(fā)現(xiàn)和發(fā)病機(jī)制的逐漸揭示,臨床個(gè)體化用藥和個(gè)性化治療也將真正成為現(xiàn)實(shí),從而顯著改善生命質(zhì)量[183, 184]。

對(duì)兒科學(xué)領(lǐng)域而言,WES在產(chǎn)前診斷中的意義尤為重要。WES能識(shí)別家族中的致病基因攜帶者和疾病易感者,預(yù)測(cè)后代患病風(fēng)險(xiǎn),為早期診斷和排除診斷提供信息基礎(chǔ)[185]?;颊呒覍倏衫眠@些信息作為產(chǎn)前診斷、植入前遺傳學(xué)診斷和是否繼續(xù)生育的參考,避免嚴(yán)重缺陷患兒的出生或及早采取有效的針對(duì)措施。但是,分子診斷的建立能否對(duì)患者及其家庭的醫(yī)療情況產(chǎn)生深遠(yuǎn)影響還存在爭(zhēng)論。目前的數(shù)據(jù)依然很難準(zhǔn)確識(shí)別WES的整體性能[26],由于對(duì)突變體致病性的錯(cuò)誤解釋,以及醫(yī)學(xué)文獻(xiàn)中對(duì)基因與相關(guān)表型的張冠李戴,仍不可避免假陽(yáng)性的產(chǎn)生。同時(shí),基因病因的未知性和不可測(cè)性也增加了假陰性的可能。關(guān)于WES性價(jià)比、精確度、收益率和與臨床基因診斷的有效整合程度還需通過(guò)前瞻性研究進(jìn)一步分析。

如今,WES已成為WGS的經(jīng)濟(jì)替代[14],但其在測(cè)序覆蓋度、檢測(cè)變異類型、操作復(fù)雜度和有效數(shù)據(jù)的覆蓋均一性等許多方面與WGS相比依然存在明顯不足。隨著WGS的成本不斷下降,WES的吸引力將會(huì)消退??梢灶A(yù)測(cè),WGS會(huì)大范圍地替代WES,WES今后可能僅在科研和臨床診斷中還有所運(yùn)用,直至完全退出測(cè)序市場(chǎng)。

隨著第二代高通量測(cè)序技術(shù)的廣泛應(yīng)用,其不足之處也日益凸顯。例如,讀長(zhǎng)較短對(duì)后續(xù)生物信息學(xué)分析帶來(lái)困難[186],擴(kuò)增后和擴(kuò)增前DNA 分子片段的數(shù)目偏差對(duì)基因表達(dá)分析有很大影響[187]等。而日漸興起的第三代單分子測(cè)序技術(shù),因其采用單分子讀取技術(shù),數(shù)據(jù)讀取速度更快且不需要PCR 擴(kuò)增,進(jìn)一步降低了測(cè)序成本,比第二代測(cè)序技術(shù)有著更廣闊的應(yīng)用空間。單分子測(cè)序技術(shù)的出現(xiàn)將促進(jìn)個(gè)體醫(yī)學(xué)研究的飛速發(fā)展。測(cè)序通量的增加可以在短時(shí)間內(nèi)就完成人體染色體將近300 億個(gè)堿基對(duì)的測(cè)序。而費(fèi)用的降低則使WGS接近甚至達(dá)到1 000美元基因組的目標(biāo)。這預(yù)示著建立個(gè)人基因組信息檔案將不再遙遠(yuǎn),個(gè)人的基因組基本信息將作為診斷、治療和預(yù)防的手段。

[1]Kwon JM, Goate AM. The candidate gene approach. Alcohol Res Health, 2000, 24(3): 164-168

[2]Dawn TM, Barrett JH. Genetic linkage studies. Lancet, 2005, 366(9490): 1036-1044

[3]Teare MD. Approaches to genetic linkage analysis. Methods Mol Biol, 2011, 713: 55-67

[4]Dueker ND, Pericak-Vance MA. Analysis of genetic linkage data for mendelian traits. Curr Protoc Hum Genet, 2014, 83: 1-4

[5]Lander ES, Linton LM, Birren B, et al. Initial sequencing and analysis of the human genome. Nature, 2001, 409(6822): 860-921

[6]Cargill M, Altshuler D, Ireland J, et al. Characterization of single-nucleotide polymorphisms in coding regions of human genes. Nat Genet, 1999, 22(3): 231-238

[7]Bush WS, Moore JH. Chapter 11: Genome-wide association studies. PLoS Comput Biol, 2012, 8(12): e1002822

[8]Marian AJ. Molecular genetic studies of complex phenotypes. Transl Res, 2012, 159(2): 64-79

[9]Lunetta KL. Genetic association studies. Circulation, 2008, 118(1): 96-101

[10]Manolio TA, Collins FS, Cox NJ, et al. Finding the missing heritability of complex diseases. Nature, 2009, 461(7265): 747-753

[11]Stranger BE, Stahl EA, Raj T. Progress and promise of genome-wide association studies for human complex trait genetics. Genetics, 2011, 187(2): 367-383

[12]Gabriel SB, Schaffner SF, Nguyen H, et al. The structure of haplotype blocks in the human genome. Science, 2002, 296(5576): 2225-2229

[13]International HapMap Consortium. A haplotype map of the human genome. Nature, 2005, 437(7063): 1299-1320

[14]Biesecker LG, Green RC. Diagnostic clinical genome and exome sequencing. N Engl J Med, 2014, 371(12): 1170

[15]Stenson PD, Mort M, Ball EV, et al. The Human Gene Mutation Database: 2008 update. Genome Med, 2009, 1(1): 13

[16]Choi M, Scholl UI, Ji W, et al. Genetic diagnosis by whole exome capture and massively parallel DNA sequencing. Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106(45): 19096-19101

[17]Hedges DJ, Burges D, Powell E, et al. Exome sequencing of a multigenerational human pedigree. PLoS One,2009, 4(12): e8232

[18]Jiang X, Chen R, Cheng S, et al. Computational advances in cancer informatics (a). Cancer Inform, 2014, 13(Suppl 1): 45

[19]Ng SB, Turner EH, Robertson PD, et al. Targeted capture and massively parallel sequencing of 12 human exomes. Nature, 2009, 461(7261): 272-276

[20]Choi M, Scholl UI, Ji W, et al. Genetic diagnosis by whole exome capture and massively parallel DNA sequencing. Proc Natl Acad Sci U S A,2009, 106(45): 19096-19101

[21]Worthey EA, Mayer AN, Syverson GD, et al. Making a definitive diagnosis: successful clinical application of whole exome sequencing in a child with intractable inflammatory bowel disease. Genet Med, 2011, 13(3): 255-262

[22]Yang Y, Muzny DM, Xia F, et al. Molecular findings among patients referred for clinical whole-exome sequencing. JAMA, 2014, 312(18): 1870

[23]Yang Y, Niu Z, Hardison M, et al. Clinical whole-exome sequencing for the diagnosis of mendelian disorders. New Engl J Med,. 2013, 369(16): 1502

[24]Lee H, Deignan JL, Dorrani N, et al. Clinical Exome Sequencing for Genetic Identification of Rare Mendelian Disorders. JAMA, 2014, 312(18): 1880

[25]Dewey FE, Grove ME, Pan C, et al. Clinical Interpretation and Implications of Whole-Genome Sequencing. JAMA, 2014, 311(10): 1035

[26]Berg JS. Genome-scale sequencing in clinical care: establishing molecular diagnoses and measuring value. JAMA,2014, 312(18): 1865-1867

[27]Eng CM, Yang Y, Plon SE. Genetic diagnosis through whole-exome sequencing. N Engl J Med,2014, 370(11): 1068

[28]Need AC, Shashi V, Hitomi Y, et al. Clinical application of exome sequencing in undiagnosed genetic conditions. J Med Genet, 2012, 49(6): 353-361

[29]Atwal PS, Brennan M, Cox R, et al. Clinical whole-exome sequencing: are we there yet? Genet Med,2014, 16(9): 717-719

[30]de Ligt J, Gilissen C, Del Rosario M, et al. Diagnostic exome sequencing in persons with severe intellectual disability. N Engl J Med, 2012, 367(20): 1921

[31]Rauch A, Wieczorek D, Graf E, et al. Range of genetic mutations associated with severe non-syndromic sporadic intellectual disability: an exome sequencing study. Lancet, 2012, 380(9854): 1674-1682

[32]Soden SE, Saunders CJ, Willig LK, et al. Effectiveness of exome and genome sequencing guided by acuity of illness for diagnosis of neurodevelopmental disorders. Sci Transl Med, 2014, 6(265): 168-265

[33]Fitzgerald TW, Gerety SS, Jones WD, et al. Large-scale discovery of novel genetic causes of developmental disorders. Nature, 2014

[34]Craddock N, Owen MJ. The Kraepelinian dichotomy - going, going... but still not gone. Br J Psychiatry, 2010, 196(2): 92-95

[35]Jacquemont S, Coe BP, Hersch M, et al. A higher mutational burden in females supports a "female protective model" in neurodevelopmental disorders. Am J Hum Genet, 2014, 94(3): 415-425

[36]Levy D, Ronemus M, Yamrom B, et al. Rare de novo and transmitted copy-number variation in autistic spectrum disorders. Neuron, 2011, 70(5): 886-897

[37]Goriely A, Wilkie AO. Paternal age effect mutations and selfish spermatogonial selection: causes and consequences for human disease. Am J Hum Genet, 2012, 90(2): 175-200

[38]Allen AS, Berkovic SF, Cossette P, et al. De novo mutations in epileptic encephalopathies. Nature, 2013, 501(7466): 217-221

[39]Pagnamenta AT, Lise S, Harrison V, et al. Exome sequencing can detect pathogenic mosaic mutations present at low allele frequencies. J Hum Genet,2012, 57(1): 70-72

[40]Tapper WJ, Foulds N, Cross NC, et al. Megalencephaly syndromes: exome pipeline strategies for detecting low-level mosaic mutations. PLoS One, 2014, 9(1): e86940

[41]Lohmann K, Klein C. Next generation sequencing and the future of genetic diagnosis. Neurotherapeutics,2014, 11(4): 699-707

[42]Huisman SA, Redeker EJ, Maas SM, et al. High rate of mosaicism in individuals with Cornelia de Lange syndrome. J Med Genet,2013, 50(5): 339-344

[43]Ansari M, Poke G, Ferry Q, et al. Genetic heterogeneity in Cornelia de Lange syndrome (CdLS) and CdLS-like phenotypes with observed and predicted levels of mosaicism. J Med Genet,2014, 51(10): 659-668

[44]King DA, Fitzgerald TW, Miller R, et al. A novel method for detecting uniparental disomy from trio genotypes identifies a significant excess in children with developmental disorders. Genome Res,2014, 24(4): 673-687

[45]Lindhurst MJ, Sapp JC, Teer JK, et al. A mosaic activating mutation in AKT1 associated with the Proteus syndrome. N Engl J Med, 2011,365(7):611-619

[46]Tapper WJ, Foulds N, Cross NC, et al. Megalencephaly syndromes: exome pipeline strategies for detecting low-level mosaic mutations. PLoS One,2014, 9(1): e86940

[47]Lupski JR. Genetics. Genome mosaicism--one human, multiple genomes. Science, 2013, 341(6144): 358-359

[48]Campbell IM, Yuan B, Robberecht C, et al. Parental somatic mosaicism is underrecognized and influences recurrence risk of genomic disorders. Am J Hum Genet, 2014, 95(2): 173-182

[49]Petersen BS, Spehlmann ME, Raedler A, et al. Whole genome and exome sequencing of monozygotic twins discordant for Crohn′s disease. BMC Genomics, 2014, 15: 564

[50]Bainbridge MN, Hu H, Muzny DM, et al. De novo truncating mutations in ASXL3 are associated with a novel clinical phenotype with similarities to Bohring-Opitz syndrome. Genome Med, 2013, 5(2): 11

[51]Yu S, Chen L, Ye L, et al. Identification of two missense mutations of ERCC6 in three Chinese sisters with cockayne syndrome by whole exome sequencing. PLoS One, 2014, 9(12): e113914

[52]Laugel V. Cockayne syndrome: the expanding clinical and mutational spectrum. Mech Ageing Dev, 2013, 134(5-6): 161-170

[53]Punetha J, Monges S, Franchi ME, et al. Exome sequencing identifies DYNC1H1 variant associated with vertebral abnormality and spinal muscular atrophy with lower extremity predominance. Pediatr Neurol, 2014,pii: S0887-8994

[54]Willemsen MH, Vissers LE, Willemsen MA, et al. Mutations in DYNC1H1 cause severe intellectual disability with neuronal migration defects. J Med Genet, 2012, 49(3): 179-183

[55]Poirier K, Lebrun N, Broix L, et al. Mutations in TUBG1, DYNC1H1, KIF5C and KIF2A cause malformations of cortical development and microcephaly. Nat Genet, 2013, 45(6): 639-647

[56]Fiorillo C, Moro F, Yi J, et al. Novel dynein DYNC1H1 neck and motor domain mutations link distal spinal muscular atrophy and abnormal cortical development. Hum Mutat, 2014, 35(3): 298-302

[57]Baasch A, Hüning I, Gilissen C, et al. Exome sequencing identifies a de novo SCN2A mutation in a patient with intractable seizures, severe intellectual disability, optic atrophy, muscular hypotonia, and brain abnormalities. Epilepsia, 2014, 55(4): e25-e29

[58]Lin F, Bian F, Zou J, et al. Whole exome sequencing reveals novel COL4A3 and COL4A4 mutations and resolves diagnosis in Chinese families with kidney disease. BMC Nephrol,2014: 15, 175

[59]Moriniere V, Dahan K, Hilbert P, et al. Improving mutation screening in familial hematuric nephropathies through next generation sequencing. J Am Soc Nephrol, 2014, 25(12): 2740-2751

[60]Deltas C, Pierides A, Voskarides K. Molecular genetics of familial hematuric diseases. Nephrol Dial Transplant, 2013, 28(12): 2946-2960

[61]Fallerini C, Dosa L, Tita R, et al. Unbiased next generation sequencing analysis confirms the existence of autosomal dominant Alport syndrome in a relevant fraction of cases. Clin Genet, 2014, 86(3): 252-257

[62]Barzaghi F, Passerini L, Gambineri E, et al. Demethylation analysis of the FOXP3 locus shows quantitative defects of regulatory T cells in IPEX-like syndrome. J Autoimmun,2012, 38(1): 49-58

[63]Charbonnier L, Janssen E, Chou J, et al. Regulatory T-cell deficiency and immune dysregulation, polyendocrinopathy, enteropathy, X-linked-like disorder caused by loss-of-function mutations in LRBA. J Allergy Clin Immunol, 2015, 135(1): 217-227

[64]Lopez-Herrera G, Tampella G, Pan-Hammarstrom Q, et al. Deleterious mutations in LRBA are associated with a syndrome of immune deficiency and autoimmunity. Am J Hum Genet, 2012, 90(6): 986-1001

[65]Verbsky JW, Chatila T A. Immune dysregulation, polyendocrinopathy, enteropathy, X-linked (IPEX) and IPEX-related disorders: an evolving web of heritable autoimmune diseases. Curr Opin Pediatr, 2013, 25(6): 708-714

[66]Burns SO, Zenner HL, Plagnol V, et al. LRBA gene deletion in a patient presenting with autoimmunity without hypogammaglobulinemia. J Allergy Clin Immunol, 2012, 130(6): 1428-1432

[67]Kiezun A, Garimella K, Do R, et al. Exome sequencing and the genetic basis of complex traits. Nat Genet, 2012, 44(6): 623-630

[68]Manolio TA, Collins FS, Cox NJ, et al. Finding the missing heritability of complex diseases. Nature, 2009, 461(7265): 747-753

[69]Mccarthy MI, Abecasis GR, Cardon LR, et al. Genome-wide association studies for complex traits: consensus, uncertainty and challenges. Nat Rev Genet, 2008, 9(5): 356-369

[70]Wu L, Schaid DJ, Sicotte H, et al. Case-only exome sequencing and complex disease susceptibility gene discovery: study design considerations. J Med Genet, 2014, 52(1): 10-16

[71]Kumar A, White TA, Mackenzie AP, et al. Exome sequencing identifies a spectrum of mutation frequencies in advanced and lethal prostate cancers. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(41): 17087-17092

[72]Taylor BS, Schultz N, Hieronymus H, et al. Integrative genomic profiling of human prostate cancer. Cancer Cell, 2010, 18(1): 11-22

[73]Barbieri CE, Baca SC, Lawrence MS, et al. Exome sequencing identifies recurrent SPOP, FOXA1 and MED12 mutations in prostate cancer. Nature Genet, 2012, 44(6): 685-689

[74]Kan Z, Jaiswal BS, Stinson J, et al. Diverse somatic mutation patterns and pathway alterations in human cancers. Nature, 2010, 466(7308): 869-873

[75]Berger MF, Lawrence MS, Demichelis F, et al. The genomic complexity of primary human prostate cancer. Nature, 2011, 470(7333): 214-220

[76]Zhuang M, Calabrese MF, Liu J, et al. Structures of SPOP-substrate complexes: insights into molecular architectures of BTB-Cul3 ubiquitin ligases. Mol Cell, 2009, 36(1): 39-50

[77]Blair DR, Lyttle CS, Mortensen JM, et al. A nondegenerate code of deleterious variants in Mendelian loci contributes to complex disease risk. Cell, 2013, 155(1): 70-80

[78]Novarino G, Fenstermaker AG, Zaki MS, et al. Exome sequencing links corticospinal motor neuron disease to common neurodegenerative disorders. Science, 2014, 343(6170): 506-511

[79]Duggan S, Prichard D, Kirca M, et al. Inherited Syndromes Predisposing to Inflammation and GI Cancer. Recent Results Cancer Res, 2011, 185: 35-50

[80]Wu L, Goldstein AM, Yu K, et al. Variants associated with susceptibility to pancreatic cancer and melanoma do not reciprocally affect risk. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2014, 23(6): 1121-1124

[81]Iyer G, Al-Ahmadie H, Schultz N, et al. Prevalence and co-occurrence of actionable genomic alterations in high-grade bladder cancer. J Clin Oncol, 2013, 31(25): 3133-3140

[82]Jia P, Zhao Z. VarWalker: personalized mutation network analysis of putative cancer genes from next-generation sequencing data. PLoS Comput Biol, 2014, 10(2): e1003460

[83]O′Roak BJ, Vives L, Girirajan S, et al. Sporadic autism exomes reveal a highly interconnected protein network of de novo mutations. Nature,2012, 485(7397): 246-250

[84]Li MX, Kwan JS, Bao SY, et al. Predicting mendelian disease-causing non-synonymous single nucleotide variants in exome sequencing studies. PLoS Genet, 2013, 9(1): e1003143

[85]Bendl J, Stourac J, Salanda O, et al. PredictSNP: robust and accurate consensus classifier for prediction of disease-related mutations. PLoS Comput Bio, 2014, 10(1): e1003440

[86]Torkamani A, Scott-Van ZA, Topol EJ, et al. Annotating individual human genomes. Genomics,2011, 98(4): 233-241

[87]Khurana E, Fu Y, Colonna V, et al. Integrative annotation of variants from 1092 humans: application to cancer genomics. Science, 2013, 342(6154): 1235587

[88]Do R, Kathiresan S, Abecasis GR. Exome sequencing and complex disease: practical aspects of rare variant association studies. Hum Mol Genet, 2012, 21(R1): R1-R9

[89]Myers RA, Casals F, Gauthier J, et al. A population genetic approach to mapping neurological disorder genes using deep resequencing. PLoS Genet, 2011, 7(2): e1001318

[90]Cristino AS, Williams SM, Hawi Z, et al. Neurodevelopmental and neuropsychiatric disorders represent an interconnected molecular system. Mol Psychiatry,2014, 19(3): 294-301

[91]Neale BM, Kou Y, Liu L, et al. Patterns and rates of exonic de novo mutations in autism spectrum disorders. Nature, 2012, 485(7397): 242-245

[92]Sanders SJ, Murtha MT, Gupta AR, et al. De novo mutations revealed by whole-exome sequencing are strongly associated with autism. Nature, 2012, 485(7397): 237-241

[93]Iossifov I, Ronemus M, Levy D, et al. De novo gene disruptions in children on the autistic spectrum. Neuron, 2012, 74(2): 285-299

[94]Lim E T, Raychaudhuri S, Sanders SJ, et al. Rare complete knockouts in humans: population distribution and significant role in autism spectrum disorders. Neuron, 2013, 77(2): 235-242

[95]Chahrour MH, Yu TW, Lim ET, et al. Whole-exome sequencing and homozygosity analysis implicate depolarization-regulated neuronal genes in autism. PLoS Genet, 2012, 8(4): e1002635

[96]Yu TW, Chahrour MH, Coulter ME, et al. Using whole-exome sequencing to identify inherited causes of autism. Neuron, 2013, 77(2): 259-273

[97]Toma C, Torrico B, Hervas A, et al. Exome sequencing in multiplex autism families suggests a major role for heterozygous truncating mutations. Mol Psychiatry, 2014, 19(7): 784-790

[98]Jiang YH, Yuen RK, Jin X, et al. Detection of clinically relevant genetic variants in autism spectrum disorder by whole-genome sequencing. Am J Hum Genet, 2013, 93(2): 249-263

[99]Shi L, Zhang X, Golhar R, et al. Whole-genome sequencing in an autism multiplex family. Mol Autism, 2013, 4(1): 8

[100]Betancur C. Etiological heterogeneity in autism spectrum disorders: more than 100 genetic and genomic disorders and still counting. Brain Res, 2011, 1380: 42-77

[101]Willsey AJ, Sanders SJ, Li M, et al. Coexpression networks implicate human midfetal deep cortical projection neurons in the pathogenesis of autism. Cell, 2013, 155(5): 997-1007

[102]De Rubeis S, He X, Goldberg AP, et al. Synaptic, transcriptional and chromatin genes disrupted in autism. Nature,2014, 515(7526): 209-215

[103]Iossifov I, O′Roak BJ, Sanders SJ, et al. The contribution of de novo coding mutations to autism spectrum disorder. Nature,2014, 515(7526): 216-221

[104]An JY, Cristino AS, Zhao Q, et al. Towards a molecular characterization of autism spectrum disorders: an exome sequencing and systems approach. Transl Psychiatry, 2014, 4: e394

[105]Chang J, Gilman SR, Chiang AH, et al. Genotype to phenotype relationships in autism spectrum disorders. Nat Neurosci, 2015, 18(2): 191-198

[106]Hoffman JI, Kaplan S. The incidence of congenital heart disease. J Am Coll Cardiol, 2002, 39(12): 1890-1900

[107]Reller MD, Strickland MJ, Riehle-Colarusso T, et al. Prevalence of congenital heart defects in metropolitan Atlanta, 1998-2005. J Pediatr, 2008, 153(6): 807-813

[108]Nora JJ. Multifactorial inheritance hypothesis for the etiology of congenital heart diseases. The genetic-environmental interaction. Circulation, 1968, 38(3): 604-617

[109]Antonarakis SE, Lyle R, Dermitzakis ET, et al. Chromosome 21 and down syndrome: from genomics to pathophysiology. Nat Rev Genet, 2004, 5(10): 725-738

[110]Momma K. Cardiovascular anomalies associated with chromosome 22q11.2 deletion syndrome. Am J Cardiol, 2010, 105(11): 1617-1624

[111]Basson CT, Bachinsky DR, Lin RC, et al. Mutations in human TBX5 cause limb and cardiac malformation in Holt-Oram syndrome. Nat Genet, 1997, 15(1): 30-35

[112]Schott JJ, Benson DW, Basson CT, et al. Congenital heart disease caused by mutations in the transcription factor NKX2-5. Science,1998, 281(5373): 108-111

[113]Sperling S, Grimm CH, Dunkel I, et al. Identification and functional analysis of CITED2 mutations in patients with congenital heart defects. Hum Mutat, 2005, 26(6): 575-582

[114]Driscoll DA, Salvin J, Sellinger B, et al. Prevalence of 22q11 microdeletions in DiGeorge and velocardiofacial syndromes: implications for genetic counselling and prenatal diagnosis. J Med Genet, 1993, 30(10): 813-817

[115]Yamagishi H, Srivastava D. Unraveling the genetic and developmental mysteries of 22q11 deletion syndrome. Trends Mol Med, 2003, 9(9): 383-389

[116]Thienpont B, Mertens L, de Ravel T, et al. Submicroscopic chromosomal imbalances detected by array-CGH are a frequent cause of congenital heart defects in selected patients. Eur Heart J, 2007, 28(22): 2778-2784

[117]Erdogan F, Larsen LA, Zhang L, et al. High frequency of submicroscopic genomic aberrations detected by tiling path array comparative genome hybridisation in patients with isolated congenital heart disease. J Med Genet, 2008, 45(11): 704-709

[118]Alkan C, Coe BP, Eichler EE. Genome structural variation discovery and genotyping. Nat Rev Genet,2011, 12(5): 363-376

[119]Greenway SC, Pereira AC, Lin JC, et al. De novo copy number variants identify new genes and loci in isolated sporadic tetralogy of Fallot. Nat Genet, 2009, 41(8): 931-935

[120]Soemedi R, Wilson IJ, Bentham J, et al. Contribution of global rare copy-number variants to the risk of sporadic congenital heart disease. Am J Hum Genet, 2012, 91(3): 489-501

[121]Manolio TA. Genomewide association studies and assessment of the risk of disease. N Engl J Med, 2010, 363(2): 166-176

[122]Blue GM, Kirk EP, Sholler GF, et al. Congenital heart disease: current knowledge about causes and inheritance. Med J Aust, 2012, 197(3): 155-159

[123]Fahed AC, Gelb BD, Seidman JG, et al. Genetics of congenital heart disease: the glass half empty. Circ Res, 2013, 112(4): 707-720

[124]Dorn C, Grunert M, Sperling SR. Application of high-throughput sequencing for studying genomic variations in congenital heart disease. Brief Funct Genomics, 2014, 13(1): 51-65

[125]Glessner JT, Bick AG, Ito K, et al. Increased frequency of de novo copy number variants in congenital heart disease by integrative analysis of single nucleotide polymorphism array and exome sequence data. Circ Res, 2014, 115(10): 884-896

[126]Liu JJ, Fan L L, Chen JL, et al. A novel variant in TBX20 (p.D176N) identified by whole-exome sequencing in combination with a congenital heart disease related gene filter is associated with familial atrial septal defect. J Zhejiang Univ Sci B, 2014, 15(9): 830-837

[127]Tennessen JA, Bigham AW, O′Connor TD, et al. Evolution and functional impact of rare coding variation from deep sequencing of human exomes. Science,2012, 337(6090): 64-69

[128]Marth GT, Yu F, Indap AR, et al. The functional spectrum of low-frequency coding variation. Genome Biol,2011, 12(9): R84

[129]Li Y, Vinckenbosch N, Tian G, et al. Resequencing of 200 human exomes identifies an excess of low-frequency non-synonymous coding variants. Nat Genet, 2010, 42(11): 969-972

[130]Greenway SC, Mcleod R, Hume S, et al. Exome sequencing identifies a novel variant in ACTC1 associated with familial atrial septal defect. Can J Cardiol, 2014, 30(2): 181-187

[131]Tan ZP, Xie L, Deng Y, et al. Whole-exome sequencing identifies Y1495X of SCN5A to be associated with familial conduction disease and sudden death. Sci Rep, 2014, 4: 5616

[132]Zaidi S, Choi M, Wakimoto H, et al. De novo mutations in histone-modifying genes in congenital heart disease. Nature, 2013, 498(7453): 220-223

[133]Wessels MW, Willems PJ. Genetic factors in non-syndromic congenital heart malformations. Clin Genet, 2010, 78(2): 103-123

[134]Soemedi R, Wilson IJ, Bentham J, et al. Contribution of global rare copy-number variants to the risk of sporadic congenital heart disease. Am J Hum Genet,2012, 91(3): 489-501

[135]Blue GM, Kirk EP, Giannoulatou E, et al. Targeted next-generation sequencing identifies pathogenic variants in familial congenital heart disease. J Am Coll Cardiol,2014, 64(23): 2498-2506

[136]Andelfinger G. Next-generation sequencing in congenital heart disease: do new brooms sweep clean? J Am Coll Cardiol,2014, 64(23): 2507-2509

[137]Martin LJ, Pilipenko V, Kaufman KM, et al. Whole exome sequencing for familial bicuspid aortic valve identifies putative variants. Circ Cardiovasc Genet,2014, 7(5): 677-683

[138]Sausen M, Leary RJ, Jones S, et al. Integrated genomic analyses identify ARID1A and ARID1B alterations in the childhood cancer neuroblastoma. Nat Genet, 2013, 45(1): 12-17

[139]Rakheja D, Chen KS, Liu Y, et al. Somatic mutations in DROSHA and DICER1 impair microRNA biogenesis through distinct mechanisms in Wilms tumours. Nat Commun, 2014, 2: 4802

[140]Fontebasso AM, Schwartzentruber J, Khuong-Quang DA, et al. Mutations in SETD2 and genes affecting histone H3K36 methylation target hemispheric high-grade gliomas. Acta Neuropathol, 2013, 125(5): 659-669

[141]Pugh TJ, Weeraratne SD, Archer TC, et al. Medulloblastoma exome sequencing uncovers subtype-specific somatic mutations. Nature, 2012, 488(7409): 106-110

[142]Mack SC, Witt H, Piro RM, et al. Epigenomic alterations define lethal CIMP-positive ependymomas of infancy. 2014: 506, 445-450

[143]Shern JF, Chen L, Chmielecki J, et al. Comprehensive genomic analysis of rhabdomyosarcoma reveals a landscape of alterations affecting a common genetic axis in fusion-positive and fusion-negative tumors. Cancer Discov, 2014, 4(2): 216-231

[144]Brastianos PK, Taylor-Weiner A, Manley PE, et al. Exome sequencing identifies BRAF mutations in papillary craniopharyngiomas. Nature Genet,2014, 46(2): 161-165

[145]Martignetti JA, Tian L, Li D, et al. Mutations in PDGFRB cause autosomal-dominant infantile myofibromatosis. Am J Hum Genet, 2013, 92(6): 1001-1007

[146]Cheung YH, Gayden T, Campeau PM, et al. A recurrent PDGFRB mutation causes familial infantile myofibromatosis. Am J Hum Genet,2013, 92(6): 996-1000

[147]Wu G, Diaz AK, Paugh BS, et al. The genomic landscape of diffuse intrinsic pontine glioma and pediatric non-brainstem high-grade glioma. Nat Genet, 2014, 46(5): 444-450

[148]Perry JA, Kiezun A, Tonzi P, et al. Complementary genomic approaches highlight the PI3K/mTOR pathway as a common vulnerability in osteosarcoma. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(51): E5564-E5573

[149]Majczenko K, Davidson AE, Camelo-Piragua S, et al. Dominant mutation of CCDC78 in a unique congenital myopathy with prominent internal nuclei and atypical cores. Am J Hum Genet, 2012, 91(2): 365-371

[150]Green RC, Lupski JR, Biesecker LG. Reporting genomic sequencing results to ordering clinicians: incidental, but not exceptional. JAMA, 2013, 310(4): 365-366

[151]Ross LF, Rothstein MA, Clayton EW. Mandatory extended searches in all genome sequencing: "incidental findings," patient autonomy, and shared decision making. JAMA,2013, 310(4): 367-368

[152]Klitzman R, Appelbaum PS, Chung W. Return of secondary genomic findings vs patient autonomy: implications for medical care. JAMA,2013, 310(4): 369-370

[153]Park JY, Clark P, Londin E, et al. Clinical exome performance for reporting secondary genetic findings. Clin Chem, 2015,61(1):213-220

[154]Green RC, Berg JS, Grody WW, et al. ACMG recommendations for reporting of incidental findings in clinical exome and genome sequencing. Genet Med, 2013, 15(7): 565-574

[155]Lerner-Ellis JP. The clinical implementation of whole genome sequencing: a conversation with seven scientific experts. J Inherit Metab Dis,2012, 35(4): 689-693

[156]Hallowell N, Hall A, Alberg C, et al. Revealing the results of whole-genome sequencing and whole-exome sequencing in research and clinical investigations: some ethical issues. J Med Ethics,2014,pii: medethics-2013-101996

[157]Caulfield T, Mcguire AL, Cho M, et al. Research ethics recommendations for whole-genome research: consensus statement. PLoS Biol, 2008, 6(3): e73

[158]Kaye J, Boddington P, de Vries J, et al. Ethical implications of the use of whole genome methods in medical research. Eur J Hum Genet, 2010, 18(4): 398-403

[159]Levenseller BL, Soucier DJ, Miller VA, et al. Stakeholders′ opinions on the implementation of pediatric whole exome sequencing: implications for informed consent. J Genet Couns, 2014, 23(4): 552-565

[160]Mcguire AL, Caulfield T, Cho MK. Research ethics and the challenge of whole-genome sequencing. Nat Rev Genet, 2008, 9(2): 152-156

[161]Ormond KE. From genetic counseling to "genomic counseling". Mol Genet Genomic Med, 2013, 1(4): 189-193

[162]Hayden EC. Sequencing set to alter clinical landscape. Nature,2012, 482(7385): 288

[163]Brunham LR, Hayden M R. Medicine. Whole-genome sequencing: the new standard of care?. Science, 2012, 336(6085): 1112-1113

[164]Johansen TK, Dickinson BD, Wilson M. The promise and challenges of next-generation genome sequencing for clinical care. JAMA Intern Med, 2014, 174(2): 275-280

[165]Ayuso C, Millan JM, Mancheno M, et al. Informed consent for whole-genome sequencing studies in the clinical setting. Proposed recommendations on essential content and process. Eur J Hum Genet, 2013, 21(10): 1054-1059

[166]Berg JS, Khoury MJ, Evans JP. Deploying whole genome sequencing in clinical practice and public health: meeting the challenge one bin at a time. Genet Med, 2011, 13(6): 499-504

[167]Wolf SM. Return of individual research results and incidental findings: facing the challenges of translational science. Annu Rev Genomics Hum Genet, 2013, 14: 557-577

[168]Mcguire AL, Lupski JR. Personal genome research : what should the participant be told? Trends Genet,2010, 26(5): 199-201

[169]van El CG, Cornel MC, Borry P, et al. Whole-genome sequencing in health care: recommendations of the European Society of Human Genetics. Eur J Hum Genet, 2013, 21(6): 580-584

[170]Miller FA, Giacomini M, Ahern C, et al. When research seems like clinical care: a qualitative study of the communication of individual cancer genetic research results. BMC Med Ethics, 2008, 9: 4

[171]Murphy J, Scott J, Kaufman D, et al. Public expectations for return of results from large-cohort genetic research. Am J Bioeth, 2008, 8(11): 36-43

[172]Shalowitz DI, Miller FG. Communicating the results of clinical research to participants: attitudes, practices, and future directions. PLoS Med, 2008, 5(5): e91

[173]Kaufman D, Murphy J, Scott J, et al. Subjects matter: a survey of public opinions about a large genetic cohort study. Genet Med, 2008, 10(11): 831-839

[174]Pinxten W, Howard HC. Ethical issues raised by whole genome sequencing. Best Practice & Research Clinical Gastroenterology, 2014, 28(2): 269-279

[175]Jacob HJ, Abrams K, Bick DP, et al. Genomics in clinical practice: lessons from the front lines. Sci Transl Med,2013, 5(194): 194-195

[176]Tabor HK, Berkman BE, Hull SC, et al. Genomics really gets personal: how exome and whole genome sequencing challenge the ethical framework of human genetics research. Am J Med Genet A,2011, 155A(12): 2916-2924

[177]Landrum MJ, Lee JM, Riley GR, et al. ClinVar: public archive of relationships among sequence variation and human phenotype. Nucleic Acids Res, 2013, 42(D1): D980-D985

[178]Mardis ER. The $1,000 genome, the $100,000 analysis?. Genome Med, 2010, 2(11): 84

[179]Grove ME, Wolpert MN, Cho MK, et al. Views of genetics health professionals on the return of genomic results. J Genet Couns, 2014, 23(4): 531-538

[180]Mabile L, Dalgleish R, Thorisson GA, et al. Quantifying the use of bioresources for promoting their sharing in scientific research. Gigascience, 2013, 2(1): 7

[181]Johansen TK, Dickinson BD, Wilson M. The promise and challenges of next-generation genome sequencing for clinical care. JAMA Intern Med, 2014, 174(2): 275-280

[182]Desai AN, Jere A. Next-generation sequencing: ready for the clinics? Clin Genet, 2012, 81(6): 503-510

[183]Fan Z, Greenwood R, Felix AC, et al. GCH1 heterozygous mutation identified by whole-exome sequencing as a treatable condition in a patient presenting with progressive spastic paraplegia. J Neurol, 2014, 261(3): 622-624

[184]Worthey EA, Mayer AN, Syverson GD, et al. Making a definitive diagnosis: successful clinical application of whole exome sequencing in a child with intractable inflammatory bowel disease. Genet Med, 2011, 13(3): 255-262

[185]Iglesias A, Anyane-Yeboa K, Wynn J, et al. The usefulness of whole-exome sequencing in routine clinical practice. Genet Med, 2014, 16(12): 922-931

[186]Pop M, Salzberg SL. Bioinformatics challenges of new sequencing technology. Trends Genet,2008, 24(3): 142-149

[187]Acinas SG, Sarma-Rupavtarm R, Klepac-Ceraj V, et al. PCR-induced sequence artifacts and bias: insights from comparison of two 16S rRNA clone libraries constructed from the same sample. Appl Environ Microbiol, 2005, 71(12): 8966-8969

(本文編輯:張崇凡)

復(fù)旦大學(xué)附屬兒科醫(yī)院2015年國(guó)家級(jí)繼續(xù)醫(yī)學(xué)教育項(xiàng)目(二)

10.3969/j.issn.1673-5501.2015.01.002

上海市衛(wèi)生局重要疾病攻關(guān)項(xiàng)目:2013ZYJB0015;上海市科委/醫(yī)學(xué)領(lǐng)域重點(diǎn)項(xiàng)目子課題:14411950402,14DJ1400103;上海市衛(wèi)計(jì)委項(xiàng)目:滬衛(wèi)計(jì)科教〔2013〕018號(hào)

1 復(fù)旦大學(xué)附屬兒科醫(yī)院 上海,201102;2 上海市出生缺陷防治重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,復(fù)旦大學(xué)兒童發(fā)育與疾病轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)研究中心,衛(wèi)生部新生兒疾病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,復(fù)旦大學(xué)附屬兒科醫(yī)院上海,201102;3 復(fù)旦大學(xué)生物醫(yī)學(xué)研究院上海,200032;4 共同第一作者

周文浩,E-mail:zwhchfu@126.com

2014-12-17

2015-01-20)

猜你喜歡
表型變異基因組
“植物界大熊貓”完整基因組圖譜首次發(fā)布
承德所選實(shí)生核桃資源果實(shí)表型性狀評(píng)價(jià)初報(bào)
牛參考基因組中發(fā)現(xiàn)被忽視基因
體型表型與亞臨床動(dòng)脈粥樣硬化有關(guān)
科學(xué)家找到母愛(ài)改變基因組的證據(jù)
慢性阻塞性肺疾病急性加重期臨床表型及特征分析
血清HBV前基因組RNA的研究進(jìn)展
變異危機(jī)
變異
土壤鹽堿對(duì)不同表型猴樟滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響
鹰潭市| 柏乡县| 楚雄市| 陈巴尔虎旗| 湄潭县| 万宁市| 金溪县| 枞阳县| 镇远县| 颍上县| 息烽县| 巴林右旗| 左云县| 安远县| 宣恩县| 赤峰市| 黄骅市| 依安县| 阜宁县| 奉化市| 木兰县| 平江县| 简阳市| 江达县| 冷水江市| 监利县| 玉环县| 苍南县| 定安县| 班玛县| 县级市| 莱阳市| 桦川县| 娱乐| 铜梁县| 枣庄市| 水富县| 辽源市| 玉环县| 汕头市| 绥江县|