謝俏,董麗鳳,徐有青,崔培林
(1北京市垂楊柳醫(yī)院,北京100022;2首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京天壇醫(yī)院)
胰腺惡性腫瘤對化療及放療的反應(yīng)性差,因此 預(yù)后較差,為惡性程度較高的腫瘤之一。褪黑素是由松果體分泌的一種多功能的吲哚胺,近年多項研究證實其具有抑癌作用。Notch信號通路是一個高度保守的信號通路,Notch信號通路不僅可以決定細胞分化,而且在癌癥的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。2010年11月~2011年7月,我們觀察了褪黑素對人胰腺癌細胞(PANC-1細胞)增殖的影響,并探討其機制。
1.1 褪黑素、細胞及試劑 褪黑素;PANC-1細胞;高糖DMEM培養(yǎng)基,噻唑藍(MTT),95%乙醇,胎牛血清,γ內(nèi)分泌酶抑制劑(DAPT),DMSO,兔抗人NICD1,抗 β-actin 抗體,鼠抗兔 IgG,TRIzol,發(fā)光液。
1.2 PANC-1細胞分組及褪黑素干預(yù) 取PANC-1細胞,加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。將細胞分為以下幾組:①對照1組:取對數(shù)生長期的PANC-1細胞,用不含胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基饑餓24 h后,吸棄培養(yǎng)液,用含10%胎牛血清的完全培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h。②褪黑素處理組:取對數(shù)生長期的PANC-1細胞,用不含胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基饑餓24 h后,將PANC-1細胞的完全培養(yǎng)基中分別加入濃度為1 000 000、1 000、1 nmol/L的褪黑素(用95%的乙醇稀釋褪黑素),培養(yǎng)24 h。取以上2組處理細胞進行細胞增殖率和Notch活性片段NICD1表達的檢測。③對照2組:取對數(shù)生長期的PANC-1細胞,用不含胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基饑餓24 h后,吸棄培養(yǎng)液,用含10%胎牛血清的完全培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h。④DAPT組:選取對數(shù)生長期的PANC-1細胞,用不含胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基饑餓24 h后,在 PANC-1細胞完全培養(yǎng)基中加10 μmol/L DAPT,培養(yǎng)24 h。
1.3 PANC-1細胞增殖率計算 取約3×104個細胞,接種于96孔板中,細胞貼壁后取于對數(shù)生長期時,將細胞分成對照1組、褪黑素組和對照2組、DAPT組,按照分組情況在培養(yǎng)基中加褪黑素、DAPT培養(yǎng)24 h,吸棄培養(yǎng)基,每孔加MTT(5.0 g/L)20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸棄上清,每孔加入 DMSO 150 μL,避光振蕩15 min,應(yīng)用全自動酶標(biāo)儀檢測490 nm處各孔的吸光度值(A值),實驗重復(fù)3次,通過公式計算細胞增殖率,即細胞增殖率=A對照組/A實驗組×100%。
1.4 PANC-1細胞NICD1蛋白檢測 采用Western blotting法。將細胞分成對照1組、褪黑素組和對照2組、DAPT組,按分組情況處理后取約2.6×107個細胞,懸于細胞裂解液中冰浴30 min,裂解細胞,以12 000 r/min離心15 min,提取蛋白質(zhì),定量后取90 μg蛋白與5×加樣緩沖液混勻,100℃變性5 min,冷卻后上樣。恒壓電泳2 h,4℃下將樣品轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,TBST洗滌3次,5 min/次。加入兔抗人NICD1(1∶1 000),4 ℃過夜,TBST洗滌3次,5 min/次。加入抗兔二抗(1∶3 000),室溫振蕩孵育2 h,TBST 洗滌3 次,5 min/次。加入化學(xué)發(fā)光液,暗室中顯影2 min,TBST洗滌,晾干。以β-actin作為內(nèi)參照。
1.5 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS16.0統(tǒng)計軟件。計量資料以±s表示,組間比較采用單因素方差分析。P≤0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
對照1組細胞增殖率為0.38% ±0.03%,褪黑素組加入1、1 000、1 000 000 nmol/L的褪黑素后細胞增殖率分別為 0.36% ± 0.02%、0.32% ±0.02%、0.26% ±0.01%,對照1 組與褪黑素組加入1 000、1 000 000 nmol/L的褪黑素后增殖率比較,P均 <0.05。對照 2組細胞增殖率為 0.43% ±0.02%,DAPT 組細胞增殖率為 0.30% ±0.02%,兩組比較,P<0.05。對照1組NICD1相對表達量為0.47 ± 0.05,褪黑素組加入 1、1 000、1 000 000 nmol/L的褪黑素后NICD1相對表達量分別為0.32±0.04、0.33 ±0.05、0.21 ±0.03,對照 1 組與褪黑素組加入1 000 000 nmol/L的褪黑素后NICD1相對表達量比較,P均<0.05。對照2組NICD1相對表達量為0.63±0.05,DAPT組 NICD1相對表達量為0.38 ±0.03,兩組比較,P <0.05。
胰腺癌是一種惡性程度高、診斷和治療困難的消化道惡性腫瘤,約90%為起源于腺管上皮的導(dǎo)管腺癌,其發(fā)病率和病死率高。胰腺癌5年生存率不足1%,是預(yù)后最差的惡性腫瘤之一。PANC-1細胞是從人胰腺癌中分離出來的腫瘤細胞,本實驗中用PANC-1細胞模擬胰腺癌的體外模型。
褪黑素是人體內(nèi)重要的抗腫瘤天然屏障,很多腫瘤的發(fā)生發(fā)展均與褪黑素相關(guān)。大量研究表明,褪黑素的抗腫瘤活性可能與其免疫調(diào)節(jié)、抗增殖、抗氧化和抗血管新生機制相關(guān)。目前已有研究[1,2]表明,褪黑素的生物學(xué)機制可能與腫瘤進展相關(guān),但是沒有直接數(shù)據(jù)表明褪黑素對胰腺癌細胞有增殖抑制作用。我們前期的研究表明,褪黑素可以抑制不同腫瘤的生長,促進腫瘤化療方案的發(fā)展。研究[3]證實,Notch信號通路參與胰腺腫瘤的發(fā)生發(fā)展。由此我們假設(shè)褪黑素與Notch信號通路的相關(guān)性。
高濃度的褪黑素可以抑制PANC-1細胞的增殖,但低濃度(幾乎為生理濃度)的褪黑素不能明顯抑制細胞的增殖。本實驗結(jié)果與我們前期的實驗結(jié)果一致。我們前期研究[4]發(fā)現(xiàn),褪黑素對人類臍靜脈內(nèi)皮細胞的抗增殖作用可能有兩種機制,一種是阻斷細胞循環(huán),另外一種是誘導(dǎo)細胞凋亡。褪黑素(生理水平的10倍以上)可以阻斷PANC-1細胞進入有絲分裂的S期,因此減少細胞數(shù),抑制細胞增殖。褪黑素從以下三個方面參與細胞凋亡過程:①褪黑素抑制免疫細胞的凋亡;②褪黑素阻斷神經(jīng)細胞凋亡;③褪黑素增加腫瘤細胞的凋亡率。這些研究結(jié)果均提示褪黑素的作用可能與細胞的類型、不同功能狀態(tài)下的細胞或其他因素如藥物濃度有關(guān)[5,6]。本實驗表明,褪黑素的作用劑量為關(guān)鍵因素,結(jié)合前期實驗,提示褪黑素的作用劑量和作用時間對其效應(yīng)有決定性意義。同樣作用24 h,高濃度的褪黑素可以導(dǎo)致PANC-1細胞凋亡增加,但是接近生理濃度(1 nmol/L)的褪黑素卻不能有上述作用。
Notch信號通路在胰腺癌細胞的增殖以及凋亡中起重要作用[7]。γ內(nèi)分泌酶切割跨膜蛋白從而激活Notch信號通路,釋放的細胞內(nèi)部分向細胞核遷移,與轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合,從而導(dǎo)致許多基因的表達[8]。DAPT可以抑制Notch信號通路的激活,還可以抑制細胞增殖,從而導(dǎo)致癌癥細胞的凋亡。用siRNA下調(diào)Notch1的表達可以抑制細胞的增殖,從而導(dǎo)致體外胰腺癌細胞凋亡[9,10]。本實驗中用 DAPT處理PANC-1細胞后,增殖率明顯下降。由此我們推斷,抑制Notch信號通路可以抑制胰腺癌細胞的增殖,即Notch通路可以促進胰腺癌細胞增殖。高濃度褪黑素可以抑制胰腺癌細胞的增殖,Notch通路的抑制劑DAPT同樣可以抑制胰腺癌細胞的增殖。我們猜測高濃度的褪黑素可以通過Notch信號通路影響胰腺癌細胞的增殖。
我們在PANC-1細胞中檢測到NICD1的表達,這表明Notch信號通路在胰腺癌細胞中是處于持續(xù)激活狀態(tài)的。這與近年來的研究提示Notch信號通路在胰腺癌中高表達一致[11~15]。在 PANC-1細胞中檢測到Notch1的活性片段也證實了Notch信號通路作為促癌基因在胰腺癌進展中起關(guān)鍵作用。本實驗選取不同濃度的褪黑素對胰腺癌細胞作用24 h后,檢測NICD1的表達情況提示,生理濃度(低濃度)的褪黑素可以抑制NICD1的表達,這可以解釋正常生理條件下不會患胰腺癌。由此推測胰腺癌的發(fā)生在某種程度上可能與褪黑素濃度下降相關(guān)。褪黑素生理節(jié)奏紊亂即分泌高峰延遲,可能會導(dǎo)致包括胰腺癌在內(nèi)的上消化道系統(tǒng)腫瘤的發(fā)生[16]。高濃度的褪黑素可以顯著下調(diào)NICD1的表達,高濃度的褪黑素同樣可以顯著抑制PANC-1細胞的增殖,由此我們推斷,褪黑素通過抑制Notch通路進而抑制胰腺癌細胞的增殖。
[1]Lissoni P.The pineal gland as a central regulator of cytokine network[J].Neuro Endocrinol Lett,1999,20(6):343-349.
[2]Weidner N,Semple JP,Welch WR,et al.Tumor angiogenesis and metastasis:correlation in invasive breast carcinoma[J].N Engl J Med,1991,324(1):1-8.
[3]Wang Z,Zhang Y,Li Y,et al.Down-regulation of Notch-1 contributes to cell growth inhibition and apoptosis in pancreatic cancer cells[J].Mol Cancer Ther,2006,5(3):483-493.
[4]Cui P,Luo Z,Zhang H,et al.Effect and mechanism of melatonin's action on the proliferation of human umbilical vein endothelial cells[J].J Pineal Res,2006,41(4):358-362.
[5]Sainz RM,Mayo JC,Rodriguez C,et al.Melatonin and cell death:differential actions on apoptosis in normal and cancer cells[J].Cell Mol Life Sci,2003,60(7):1407-1426.
[6]Artavanis-Tsakonas S,Rand MD,Lake RJ.Notch signaling:cell fate control and signal integration in development[J].Science,1999,284(5415):770-776.
[7]Miele L.Notch signaling[J].Clin Cancer Res,2006,12(4):1074-1079.
[8]Wong H,Lemoine NR.Pancreatic cancer:molecular pathogenesis and new therapeutic targets[J].Nat Rev Gastroenterol Hepatol,2009,6(7):412-422.
[9]Wang Z,Zhang Y,Li Y,et al.Down-regulation of Notch-1 contributes to cell growth inhibition and apoptosis in pancreatic cancer cells[J].Mol Cancer Ther,2006,5(3):483-493.
[10]Wang Z,Zhang Y,Banerjee S,et al.Notch-1 down-regulation by curcumin is associated with the inhibition of cell growth and the induction of apoptosis in pancreatic cancer cells[J].Cancer,2006,106(11):2503-2513.
[11]Pawlikowski M,Winczyk K,Karasek M.Oncostatic action of melatonin:facts and question marks[J].Neuro Endocrinol Lett,2002,23(Suppl 1):24-29.
[12]Mumm JS,Kopan R.Notch signaling:from the outside in[J].Dev Biol,2000,228(2):151-165.
[13]Miyamoto Y,Maitra A,Ghosh B,et al.Notch mediates TGF alpha induced changes in epithelial differentiation during pancreatic tumorigenesis[J].Cancer Cell,2003,3(6):565-576.
[14]Apelqvist A,Li H,Sommer L,et al.Notch signalling controls pancreatic cell differentiation[J].Nature,1999,400(6747):877-881.
[15]Büchler P,Gazdhar A,Schubert M,et al.The Notch signaling pathway is related to neurovascular progression of pancreatic cancer[J].Ann Surg,2005,242(6):791-801.
[16]Muc-Wierzgon M,Nowakowska-Zajdel E,Zubelewicz M,et al.Circadian fluctuations of melatonin,tumor necrosis factor-alpha and its soluble receptors in circulation of patients with advanced gastrointestinal cancer[J].J Exp Clin Cancer Res,2003,22(2):171-178.