国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞歸巢促小鼠骨折愈合的實(shí)驗(yàn)研究

2015-03-04 07:26:34茍文隆徐小龍李丙巖汪愛媛劉舒云許文靜盧世璧
國(guó)際骨科學(xué)雜志 2015年3期
關(guān)鍵詞:歸巢冰凍造模

王 鑫 茍文隆 徐小龍 李丙巖 王 程 汪愛媛 王 玉 劉舒云 許文靜 盧 強(qiáng) 彭 江 盧世璧

干細(xì)胞具有多向分化潛能及自我更新能力,在組織損傷時(shí)可歸巢至損傷組織處促進(jìn)組織修復(fù),目前在心肌、肺、胰、神經(jīng)及骨等組織有較多報(bào)道[1-5],其歸巢修復(fù)能力已逐漸達(dá)成共識(shí),但損傷后全身干細(xì)胞的動(dòng)員、遷移機(jī)制以及遷移到損傷處后的具體作用機(jī)制仍不清楚。體內(nèi)干細(xì)胞來源有限,骨髓中僅有0.001%~0.01%的單核細(xì)胞是間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)[6]。損傷較嚴(yán)重時(shí),通??刹捎皿w外擴(kuò)增培養(yǎng)后再回輸體內(nèi)的方法應(yīng)對(duì)自體MSC不足。本研究通過尾靜脈向閉合性股骨骨折內(nèi)固定小鼠模型注射紅色熒光蛋白標(biāo)記的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(RFP-BMSC),觀察骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSC)在骨折愈合中的作用,同時(shí)通過注射基質(zhì)細(xì)胞衍生因子(SDF)-1受體CXCR4的特異性阻斷劑橋聯(lián)1,4,8,11-四氮雜環(huán)十四烷(AMD3100),探討 SDF-1/CXCR4通路在這一過程中的意義。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與實(shí)驗(yàn)成品細(xì)胞

6周齡健康成年雄性清潔級(jí)C57/BL小鼠65只,體重17~25 g,由軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。實(shí)驗(yàn)內(nèi)容、方法及小動(dòng)物福利等均已經(jīng)中國(guó)人民解放軍總醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審核批準(zhǔn)。RFP-BMSC由賽業(yè)(廣州)生物科技有限公司提供。

1.2 小鼠閉合性股骨骨折內(nèi)固定模型建立

1.2.1 造模支架設(shè)計(jì)制作

參照文獻(xiàn)[7]設(shè)計(jì)制作造模支架,該支架可根據(jù)小鼠體型調(diào)整支架的載物臺(tái)及置腿臺(tái);增加了力學(xué)傳導(dǎo)系統(tǒng)及彈簧裝置,使砝碼下落形成的沖量能更加穩(wěn)定準(zhǔn)確地傳導(dǎo)至小鼠大腿,并防止重錘反彈導(dǎo)致二次損傷(圖1)。

圖1 小鼠閉合性股骨骨折模型造模支架示意圖 a.正面觀 b.側(cè)面觀 c.支架結(jié)構(gòu)示意圖 d.載物臺(tái)、置腿臺(tái)及重錘

1.2.2 小鼠模型制造

小鼠予1%水合氯醛3 mL/kg腹腔注射麻醉,仰臥位屈膝90°固定,右膝術(shù)區(qū)備皮,常規(guī)消毒鋪巾,于右膝關(guān)節(jié)髕骨水平作一1 cm縱行正中切口,沿髕骨內(nèi)側(cè)緣切開關(guān)節(jié)囊和股四頭肌肌腱,將髕骨翻向外側(cè),充分暴露股骨內(nèi)外髁間溝,于此處將直徑0.45 mm不銹鋼針刺入骨髓至約股骨轉(zhuǎn)子間窩水平以起到髓內(nèi)釘固定的作用。剪斷鋼針針柄,將針尾埋于股骨髁間窩內(nèi),使其不影響膝關(guān)節(jié)活動(dòng),關(guān)閉創(chuàng)口。術(shù)畢將小鼠轉(zhuǎn)移至載物臺(tái),置其右大腿于沖擊臺(tái)上。從17~20 cm高處落下200 g砝碼(根據(jù)小鼠體重適度調(diào)整),使該側(cè)股骨骨折并立即采用美國(guó)Faxitron公司MX-20型放射檢測(cè)系統(tǒng)確定骨折情況。造模成功的小鼠飼養(yǎng)于25℃室溫籠中,自由活動(dòng),常規(guī)食水。

1.3 實(shí)驗(yàn)步驟

65只小鼠造模成功后7 d分為3組,給予不同干預(yù):MSC組(35只)尾靜脈注射0.5 mL生理鹽水,0.5 h后注射內(nèi)含1×106個(gè) RFP-BMSC 溶液0.5 mL;AMD3100 組 (15 只 )尾 靜 脈 注 射1 mmol/L AMD3100 0.5 mL,0.5 h后注射內(nèi)含1×106個(gè)RFP-BMSC溶液0.5 mL;對(duì)照組(CON)組(15只):尾靜脈注射生理鹽水0.5 mL,0.5 h后再次注射生理鹽水0.5 mL。造模成功后14、28、42 d取右側(cè)股骨干,抽出內(nèi)固定針后分別制備冰凍切片標(biāo)本、免疫熒光標(biāo)本凍存于-80℃冰箱,組織切片標(biāo)本則以10%中性甲醛固定。其中各組14、42 d后均分別取5只小鼠制備組織切片標(biāo)本,且42 d后再各取5只小鼠進(jìn)行生物力學(xué)檢測(cè);MSC組術(shù)后14、28、42 d均各取5只制備冰凍切片,采用熒光示蹤法觀察小鼠RFP-BMSC歸巢情況,并在28 d后取5只小鼠采用免疫熒光法觀察BMSC位置和骨橋蛋白(OPN)、骨鈣素(OCN)的表達(dá)。

1.4 實(shí)驗(yàn)方法

1.4.1 冰凍切片熒光示蹤法

將MSC組標(biāo)本用最佳切片溫度(OCT)冰凍包埋劑包埋并切取厚約7μm切片,采用美國(guó)Sigma公司Hochest33258染色試劑盒對(duì)細(xì)胞核進(jìn)行染色,使未經(jīng)紅色熒光蛋白標(biāo)記的細(xì)胞在熒光激發(fā)下發(fā)出藍(lán)光,而RFP-BMSC則發(fā)出紅色熒光,進(jìn)行疊加后可對(duì)干細(xì)胞進(jìn)行示蹤,進(jìn)而可在熒光顯微鏡下觀察RFP-BMSC歸巢情況。

1.4.2 免疫熒光法

骨折后28 d是骨折愈合過程中骨性骨痂生成并進(jìn)行塑形改造的關(guān)鍵期,許多促進(jìn)骨折愈合的骨形成因子表達(dá)均在此時(shí)達(dá)到高峰。本實(shí)驗(yàn)選擇造模成功后28 d通過免疫熒光法檢測(cè)小鼠股骨骨折區(qū)RFP-BMSC骨標(biāo)志蛋白表達(dá)情況。取 MSC組標(biāo)本用OCT冰凍包埋劑包埋并切取厚約7μm切片,晾干30 min,丙酮內(nèi)固定10 min,過蒸餾水后以3% 過氧化氫浸泡5 min去抗原,磷酸鹽緩沖液內(nèi)浸潤(rùn)3次,再依次滴加SDF-1、OPN、OCN 一抗及二抗,采用Hochest33258染色試劑盒染色后在共聚焦顯微鏡下進(jìn)行觀察。其中未經(jīng)紅色熒光蛋白標(biāo)記的細(xì)胞發(fā)出藍(lán)色熒光,RFP-BMSC發(fā)出紅色熒光,而目的因子的一抗與二抗結(jié)合后發(fā)出綠色熒光,進(jìn)行疊加后可觀察歸巢的干細(xì)胞位置及是否表達(dá)OCN、OPN。

1.4.3 組織學(xué)觀察

取各組造模成功后14、42 d標(biāo)本在10%中性甲醛中固定,10% 乙二胺四乙酸(EDTA)脫鈣液中脫鈣,石蠟包埋,連續(xù)切取厚5μm切片,60℃烤片過夜,制備組織切片標(biāo)本;進(jìn)行HE染色和Masson三色染色,常規(guī)脫水后中性樹脂封片,在顯微鏡下進(jìn)行觀察。HE染色可顯示骨折基本形態(tài)及骨痂形成情況,Masson染色中呈綠色的為鈣化骨性骨痂成分。

1.4.4 生物力學(xué)檢測(cè)

取各組造模成功后42 d小鼠5只,去除右側(cè)股骨內(nèi)固定針后使用美國(guó)Bose公司Electro Force5100生物力學(xué)機(jī)進(jìn)行三點(diǎn)彎曲力學(xué)檢測(cè),并以各自健側(cè)股骨干作為正常對(duì)照組。置標(biāo)本于載物臺(tái),使負(fù)荷加載點(diǎn)位于股骨骨折線處,跨距1 cm,加載速度5 mm/min(圖2),直至骨斷裂。實(shí)驗(yàn)過程保持標(biāo)本濕潤(rùn)。計(jì)算機(jī)自動(dòng)繪制載荷-形變曲線,并計(jì)算最大載荷、最大橈度、彈性橈度及剛度。結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)F檢驗(yàn)及組間SNK檢驗(yàn)。

圖2 三點(diǎn)彎曲力學(xué)檢測(cè)示意圖

2 結(jié)果

2.1 RFP-BMSC歸巢定位觀察結(jié)果

MSC組造模成功后14、28、42 d均可見小鼠股骨骨折區(qū)骨痂內(nèi)有RFP-BMSC歸巢,而周圍軟組織及正常骨組織內(nèi)未見大量該類細(xì)胞聚集(圖3)。

2.2 免疫熒光觀察結(jié)果

MSC組造模成功后28 d,小鼠右側(cè)股骨部位可見大量RFP-BMSC表達(dá),并可見OCN和OPN表達(dá)(圖4)。

2.3 病理組織切片觀察結(jié)果

造模成功后14 d CON組與AMD3100組 HE染色可見骨折斷端清晰,周圍呈梭形膨大骨痂,Masson三色染色示骨痂以軟骨成分為主,少量鈣化成為骨性骨痂;MSC組骨折線不明顯,骨痂已多為骨性骨痂。3組42 d后骨折線均消失,編織骨向板層骨轉(zhuǎn)化,CON組與AMD3100組處于骨痂塑形期,皮質(zhì)骨質(zhì)量差,MSC組骨痂已基本塑形完成(下頁(yè)圖5)。

圖3 冰凍切片熒光示蹤顯微觀察示MSC組骨折后14、28、42 d骨折斷端骨痂區(qū)可見RFP-BMSC歸巢 a.骨折后14 d冰凍切片大體觀(×12.5),藍(lán)色框表示圖b觀察區(qū)域 b.骨折后14 d冰凍切片熒光示蹤觀察結(jié)果(×200) c.骨折后28 d冰凍切片大體觀(×12.5),藍(lán)色框表示圖d觀察區(qū)域 d.骨折后28 d冰凍切片熒光示蹤觀察結(jié)果(×200) e.骨折后42 d冰凍切片大體觀(×40),骨痂區(qū)(白實(shí)線框內(nèi))可見RFP-BMSC,而肌肉區(qū)(紅實(shí)線框內(nèi))及正常骨髓區(qū)(紅虛線框內(nèi))均未見 f.骨折后42 d骨痂區(qū)熒光示蹤觀察結(jié)果(×200) g.骨折后42 d肌肉區(qū)熒光示蹤觀察結(jié)果(×200) h.骨折后42 d骨髓區(qū)熒光示蹤觀察結(jié)果(×200)

圖4 MSC組免疫熒光觀察結(jié)果(×100),紅色為RFP-BMSC,綠色為目標(biāo)蛋白,藍(lán)色為細(xì)胞核染色,重合圖即為表達(dá)目標(biāo)蛋白的BMSC a1~a4.OCN表達(dá)情況 b1~b4.OPN表達(dá)情況

2.4 生物力學(xué)檢測(cè)結(jié)果

三點(diǎn)彎曲力學(xué)檢測(cè)顯示,造模成功后42 d MSC組最大載荷、最大橈度、彈性橈度及剛度均顯著高于AMD3100組及CON組,與正常骨接近(表1)。

表1 各組造模成功后42 d生物力學(xué)檢測(cè)結(jié)果

圖5 3組術(shù)后14 d(a1、a2、b1、b2、c1、c2)及42 d(d1、d2、e1、e2、f1、f2)病理組織切片觀察結(jié)果

3 討論

骨折愈合包括兩種機(jī)制,即軟骨內(nèi)成骨和骨膜成骨,長(zhǎng)骨愈合以前者多見。軟骨內(nèi)成骨過程中包括MSC的招募、遷移、增殖、分化這一歸巢過程,及隨后的軟骨生成、鈣化成骨。但MSC是如何動(dòng)員并遷移到骨損傷處的機(jī)制目前仍不清楚。有研究[8-9]認(rèn)為損傷后可能有某種分子上調(diào)并釋放入血,從而刺激全身MSC進(jìn)入外周血并遷移至損傷處。細(xì)胞因子和趨化因子很可能在這一過程中有著重要作用。白細(xì)胞靶向遷移至感染及損傷處的分子機(jī)制是趨化因子及其受體結(jié)合[10],而MSC被發(fā)現(xiàn)可表達(dá)許多趨化因子受體[11-12],推測(cè) MSC歸巢機(jī)制可能與白細(xì)胞遷移相似。體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)[13-14]均已證實(shí)MSC可在趨化因子誘導(dǎo)下發(fā)生遷移,其中以與SDF-1/CXCR4相關(guān)研究最為廣泛。大量研究[15-16]顯示SDF-1/CXCR4通路在 MSC歸巢機(jī)制中具有關(guān)鍵作用,如肝、心、皮膚等損傷時(shí)SDF-1表達(dá)上調(diào)可招募并誘導(dǎo)外周血中表達(dá)相應(yīng)受體CXCR4的MSC向損傷處遷移[17-18]。近年關(guān)于這一通路在骨修復(fù)中的作用報(bào)道[19-20]也逐漸增多。

有研究[21]報(bào)道對(duì)大鼠注射的外源性BMSC 90%在3 d內(nèi)發(fā)生凋亡,且絕大部分停留在其肺部,這可能是由于肺毛細(xì)血管的孔徑小于干細(xì)胞直徑(30μm)所致[22]。但小動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中經(jīng)尾靜脈注射的MSC第1天聚集于肺部,3 d后則到達(dá)骨損傷處[19]。而體外實(shí)驗(yàn)[23-24]中,Transwell小室下室內(nèi)的SDF-1仍能誘導(dǎo)上室內(nèi)直徑30μm的BMSC穿過直徑8μm的濾膜孔到達(dá)下室,肺泡屏障應(yīng)該不是阻止BMSC遷移的主要原因。損傷處的高濃度趨化因子可能是動(dòng)員全身干細(xì)胞向損傷處遷移的驅(qū)動(dòng)力,其中SDF-1起到重要作用,其受體CXCR4的阻斷劑可明顯抑制這一過程[20,23]。本實(shí)驗(yàn)通過制備骨折處標(biāo)本的冰凍切片、Hochest33258染色后經(jīng)熒光顯微鏡下觀察到RFP-BMSC經(jīng)尾靜脈注射后第3天到達(dá)骨折端,聚集于骨膜旁,并持續(xù)表達(dá)至第42天。這與文獻(xiàn)[23]報(bào)道骨損傷后SDF-1主要由骨膜分泌一致。本實(shí)驗(yàn)中,AMD3100這一表達(dá)于細(xì)胞表面的CXCR4阻斷劑能明顯抑制BMSC向骨損傷處遷移,證明SDF-1/CXCR4通路在促BMSC歸巢過程中起到重要作用。

病理學(xué)組織切片染色結(jié)果及生物力學(xué)檢測(cè)結(jié)果證實(shí),BMSC可明顯加速骨折愈合過程,提高了新生骨的質(zhì)量及生物力學(xué)性能。冰凍切片熒光示蹤觀察結(jié)果表明BMSC可歸巢到骨折端并存活、增殖。研究提示,SDF-1/CXCR4通路可從多個(gè)層面調(diào)動(dòng)MSC促進(jìn)骨折愈合:利用粒細(xì)胞集落刺激因子(G-CSF)或巨細(xì)胞集落刺激因子(M-CSF)等動(dòng)員骨髓中表達(dá)CXCR4的干細(xì)胞進(jìn)入循環(huán)血;采集骨髓血體外擴(kuò)增培養(yǎng)并對(duì)干細(xì)胞進(jìn)行缺氧預(yù)處理使其表面CXCR4表達(dá)水平上調(diào);增加骨折局部SDF-1水平,促進(jìn)外周MSC歸巢等。

骨折后14、28、42 d,骨折區(qū)可見RFP-BMSC且定位于骨膜區(qū)域骨痂內(nèi),證明BMSC可通過歸巢、增殖及促進(jìn)骨形成明顯加速骨折愈合,且新生骨具有更好的生物力學(xué)性能,SDF-1/CXCR4通路在歸巢過程中起到重要作用。

[1] Gao F,Kar S,Zhang J,et al.MRI of intravenously injected bone marrow cells homing to the site of injured arteries[J].NMR Biomed,2007,20(7):673-681.

[2] Deng J, Zou ZM, Zhou TL,et al. Bone marrow mesenchymal stem cells can be mobilized into peripheral blood by G-CSF in vivo and integrate into traumatically injured cerebral tissue[J].Neurol Sci,2011,32(4):641-651.

[3] Shi XL,Gu JY, Han B,et al. Magnetically labeled mesenchymal stem cells after autologous transplantation into acutely injured liver[J].World J Gastroenterol,2010,16(29):3674-3679.

[4] Tang J,Wang J,Yang J,et al.Mesenchymal stem cells over-expressing SDF-1 promote angiogenesis and improve heart function in experimental myocardial infarction in rats[J].Eur J Cardiothorac Surg,2009,36(4):644-650.

[5] Zhao Z,Wang Y,Peng J,et al.Repair of nerve defect with acellular nerve graft supplemented by bone marrow stromal cells in mice[J].Microsurgery,2011,31(5):388-394.

[6] D’lppolito G,Schiller PC,Ricordi C,et al.Age-related osteogenic potential of mesenchymal stromal stem cells from human vertebral bone marrow[J].J Bone Miner Res,1999,14(7):1115-1122.

[7] Marturano JE,Cleveland BC,Byrne MA,et al. An improved murine femur fracture device for bone healing studies[J].J Biomech,2008,41(6):1222-1228.

[8] Liu ZJ, Zhuge Y, Velazquez OC. Trafficking and differentiation of mesenchymal stem cells[J].J Cell Biochem,2009,106(6):984-991.

[9] Fox JM,Chamberlain G,Ashton BA,et al.Recent advances into the understanding of mesenchymal stem cell trafficking[J].Br J Haematol,2007,137(6):491-502.

[10] Miyasaka M,Tanaka T.Lymphocyte trafficking across high endothelial venules:dogmas and enigmas[J].Nat Rev Immunol,2004,4(5):360-370.

[11] Honczarenko M,Le Y,Swierkowski M,et al.Human bone marrow stromal cells express a distinct set of biologically functional chemokine receptors[J].Stem Cells,2006,24(4):1030-1041.

[12] Chamberlain G, Wright K, Rot A, et al. Murine mesenchymal stem cells exhibit a restricted repertoire of functional chemokine receptors:comparison with human[J].PLoS One,2008,3(8):e2934.

[13] Burger JA,Kipps TJ.CXCR4:a key receptor in the crosstalk between tumor cells and their microenvironment[J].Blood,2006,107(5):1761-1767.

[14] Lataillade JJ,Clay D,Dupuy C,et al.Chemokine SDF-1 enhances circulating CD34(+)cell proliferation in synergy with cytokines:possible role in progenitor survival[J].Blood,2000,95(3):756-768.

[15] Wynn RF,Hart CA,Corradi-Perini C,et al.A small proportion of mesenchymal stem cells strongly expresses functionally active CXCR4 receptor capable of promoting migration to bone marrow[J].Blood,2004,104(9):2643-2645.

[16] Dar A,Goichberg P,Shinder V,et al.Chemokine receptor CXCR4-dependent internalization and resecretion of functional chemokine SDF-1 by bone marrow endothelial and stromal cells[J].Nat Immunol,2005,6(10):1038-1046.

[17] Abbott JD,Huang Y,Liu D,et al.Stromal cell-derived factor-1alpha plays a critical role in stem cell recruitment to the heart after myocardial infarction but is not sufficient to induce homing in the absence of injury[J].Circulation,2004,110(21):3300-3305.

[18] Ji JF,He BP,Dheen ST,et al.Interactions of chemokines and chemokine receptors mediate the migration of mesenchymal stem cells to the impaired site in the brain after hypoglossal nerve injury[J].Stem Cells,2004,22(3):415-427.

[19] Granero-Molto F,Weis JA,Miga MI,et al.Regenerative effects of transplanted mesenchymal stem cells in fracture healing[J].Stem Cells,2009,27(8):1887-1898.

[20] Wang X,Wang Y,Gou W,et al.Role of mesenchymal stem cells in bone regeneration and fracture repair:a review[J].Int Orthop,2013,37(12):2491-2498.

[21] Hogan C,Wilkins E.Neurological complications in HIV[J].Clin Med,2011,11(6):571-575.

[22] Schrepfer S,Deuse T,Reichenspurner H,et al.Stem cell transplantation:the lung barrier[J].Transplant Proc,2007,39(2):573-576.

[23] Kitaori T,Ito H,Schwarz EM,et al.Stromal cell-derived factor 1/CXCR4 signaling is critical for the recruitment of mesenchymal stem cells to the fracture site during skeletal repair in a mouse model[J].Arthritis Rheum,2009,60(3):813-823.

[24] 曹陽(yáng),呂剛,于洋,等.SDF-1/CXCR4促進(jìn)骨髓基質(zhì)細(xì)胞遷移的作用[J].遼寧醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2009,30(6):484-487.

猜你喜歡
歸巢冰凍造模
小鳥歸巢
腎陽(yáng)虛證動(dòng)物模型建立方法及評(píng)定標(biāo)準(zhǔn)研究進(jìn)展
脾腎陽(yáng)虛型骨質(zhì)疏松癥動(dòng)物模型造模方法及模型評(píng)價(jià)
濕熱證動(dòng)物模型造模方法及評(píng)價(jià)研究
小巷
大理文化(2020年3期)2020-06-11 00:41:51
冰凍的情感
青年歌聲(2019年7期)2019-07-26 08:35:00
冰凍獸
冰凍的夢(mèng)
冰凍的夢(mèng)
歸巢
丹阳市| 九龙坡区| 昌邑市| 牡丹江市| 吉水县| 拜城县| 新竹市| 嘉禾县| 兴宁市| 肇东市| 黄大仙区| 修武县| 甘德县| 泽普县| 喀什市| 西宁市| 柯坪县| 阿尔山市| 中山市| 荃湾区| 霸州市| 临潭县| 清远市| 宝应县| 萨嘎县| 始兴县| 女性| 巴南区| 襄垣县| 望城县| 阿拉尔市| 禹城市| 云林县| 德惠市| 夏津县| 虞城县| 华容县| 海门市| 阿巴嘎旗| 托里县| 临潭县|