康 婕,李小剛
(瀘州醫(yī)學院附屬醫(yī)院,四川 瀘州 646000)
顱內(nèi)出血(intracranial hemorrhage,ICH)是一種血液滲入腦組織,形成血腫,導致病理性水腫和腦組織損傷的急性卒中,ICH約占卒中的15%,現(xiàn)在尚無令人滿意的治療方法。ICH后持續(xù)的功能失常,使患者死亡率高,預(yù)后差。此外,ICH后出現(xiàn)腦梗死后出血轉(zhuǎn)化,進一步加重腦損傷和神經(jīng)系統(tǒng)癥狀。ICH的實驗動物模型主要以注入膠原酶或自體血到腦實質(zhì)為基礎(chǔ),以助于了解ICH復(fù)雜的發(fā)病機理?,F(xiàn)就ICH發(fā)病的細胞及分子機理、研究中存在的問題做一綜述。
ICH后血腫形成,導致腦組織損傷。凝血酶、血紅蛋白A及其降解產(chǎn)物對腦細胞產(chǎn)生生物作用和毒性作用,它們是ICH發(fā)病的重要因素。這些反應(yīng)主要是由血液外滲造成的,然后引發(fā)腦實質(zhì)的次級反應(yīng),比如附加蛋白酶的補充、炎性反應(yīng)和固有的細胞保護系統(tǒng)。
1.1 凝血酶及其受體的作用 凝血酶是一種絲氨酸蛋白酶,在凝血級聯(lián)系統(tǒng)中起關(guān)鍵作用。凝血酶參與大腦內(nèi)多種生理作用和病理過程。ICH后,血液在凝固過程中產(chǎn)生的大量凝血酶具有細胞毒性作用,是出血后一系列病理生理變化而致繼發(fā)性腦損傷的關(guān)鍵物質(zhì)[1]。研究發(fā)現(xiàn),在大鼠紋狀體注射全血誘發(fā)的水腫,能被凝血酶抑制劑水蛭素抑制。其機理包括:(1)抑制凝血酶誘導的水通道蛋白(aquaporin,AQP)中AQP-4和AQP-9的表達;(2)抑制基質(zhì)金屬蛋白酶-9(matrix metalloproteinase-9,MMP-9)表達,減輕血 -腦屏障(blood brain barrier,BBB)破壞,降低血管通透性;(3)抑制神經(jīng)膠質(zhì)細胞浸潤,減輕其引起的腦組織損害[2]。ICH相關(guān)性水腫是BBB破壞和腦實質(zhì)細胞死亡導致的,而它們可能由凝血酶誘發(fā)。
凝血酶受體是一種蛋白酶激活受體(protease activated receptors,PAR),ICH 后 PAR -1在凝血酶介導的神經(jīng)細胞損傷中起主要作用。ICH后,凝血酶會持續(xù)性產(chǎn)生,PAR-1的表達高峰與細胞凋亡和腦水腫的高峰一致,均在ICH 72 h左右,提示PAR-1參與了ICH后腦損傷的全過程[3]。PAR-1活化后激活細胞內(nèi)多個信號傳導通路,如激活RhoA、蛋白激酶C、絲裂原激活蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK),激活核內(nèi)蛋白合成酶的表達,促進細胞凋亡蛋白的表達和釋放,加重腦水腫和繼發(fā)性腦損傷[4-5]。
大腦皮質(zhì)和紋狀體之間損傷機理存在明顯差別。例如,胞外信號調(diào)節(jié)激酶(extracellular signalregulated kinases,ERK)、p38 和 JNK,是 MAPK 家族的3種成員,它們都參與凝血酶誘導的紋狀體損傷,而在凝血酶誘導腦皮質(zhì)損傷過程中,只有ERK參與。此外,來自于切片培養(yǎng)的小膠質(zhì)細胞的損耗,能減輕凝血酶誘導紋狀體組織損傷,卻不能對皮質(zhì)細胞起到這一作用,說明小膠質(zhì)細胞只參與紋狀體組織損傷這個過程[6]。另一方面,血纖維蛋白溶酶原被發(fā)現(xiàn)能與凝血酶共同作用誘導皮質(zhì)損傷,而在凝血酶誘導紋狀體損傷中未發(fā)現(xiàn)這一現(xiàn)象[7]。
凝血酶介導的細胞損傷同樣能被活化的MMP-9介導。同時作用的MMP-9能加劇原始培養(yǎng)中神經(jīng)細胞的凝血酶的細胞毒性,MMP抑制劑能部分性減弱凝血酶的細胞毒性。另外,MMP-9編碼基因缺失和凝血酶抑制劑水蛭素的應(yīng)用,兩者協(xié)同作用,能減弱自體血注入誘導的腦損傷。
1.2 基質(zhì)金屬蛋白酶的作用 MMP在細胞表面調(diào)節(jié)細胞間的信號傳遞。MMP未活化時主要存在于細胞質(zhì)內(nèi),參與蛋白質(zhì)的裂解[8],甚至能進入細胞核,影響基因轉(zhuǎn)錄和DNA修復(fù)[9],參與組織結(jié)構(gòu)的重塑。病理條件下,MMP活化后可降解細胞外基質(zhì),造成組織損傷。ICH后,MMP家族的不同成員聚集并參與這一發(fā)病過程。有研究發(fā)現(xiàn),MMP抑制劑BB-1101能在誘發(fā)ICH 6 h后減輕腦水腫。在ICH后,MMP-9和MMP-3的表達隨之增加[10]。MMP-9的升高與腦水腫范圍有關(guān),而MMP-3與高死亡率相關(guān)[10]。使用缺失MMP-9大鼠的實驗證明MMP-9參與了注射自體血后水腫的形成。此外,與野生型大鼠相比,缺失MMP-9大鼠表現(xiàn)更低水平的神經(jīng)變性,中性粒細胞浸潤和小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞反應(yīng)。膠原酶注入模型中發(fā)現(xiàn),MMP-9主要表達在神經(jīng)元和血管內(nèi)皮細胞,在誘導ICH后最初2 h,給予MMP抑制劑GM6001,能減輕中性粒細胞浸潤、氧化應(yīng)激、腦水腫、神經(jīng)變性和神經(jīng)功能缺損[11]。有證據(jù)表明,MMP-12在大鼠和小鼠膠原酶注入模型中顯著表達,MMP-12缺失小鼠在ICH后表現(xiàn)出更好的功能恢復(fù),在水腫區(qū)域小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞反應(yīng)水平更低[12],MMP-12也許在ICH的發(fā)病機理中起關(guān)鍵作用。
然而,不同研究卻得到相反結(jié)論。例如,一個關(guān)于MMP-9缺失小鼠的研究表明,膠原酶注入突變小鼠的紋狀體導致出血增加,死亡率增高,神經(jīng)功能缺失加重。這些變化也許可以歸咎于ICH后MMP-2和MMP-3反應(yīng)性增加,以及MMP-9缺失小鼠大腦中膠原水平下降[13]。另外,在膠原酶注入前30min,將廣譜性MMP抑制劑BB-94通過全身性用藥,會使出血量和DNA斷裂的細胞數(shù)增加。
1.3 亞鐵血紅素和鐵的作用 血紅蛋白和它的降解產(chǎn)物,也參與ICH的發(fā)病過程。ICH發(fā)生后,大量紅細胞滲入腦實質(zhì),但溶血反應(yīng)不會立即發(fā)生,而是在出血后數(shù)天甚至數(shù)周后發(fā)生。紅細胞溶解釋放產(chǎn)生血紅蛋白,血紅蛋白釋放亞鐵血紅素,然后亞鐵血紅素和血紅蛋白被類似神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞的腦實質(zhì)細胞替代。
亞鐵血紅素能被血紅素氧化酶(HO)降解成膽綠素、鐵和一氧化碳(CO),亞鐵血紅素或它的降解產(chǎn)物促進腦水腫的形成。HO的主要亞型是HO-1和HO-2。在注射膠原酶或自體血誘導ICH后,HO-1被誘導顯著表達在小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞和內(nèi)皮細胞[14]。切除HO-1基因能減輕ICH相關(guān)性損傷程度、中性粒細胞浸潤、小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞活化和氧活性損傷[15]。
鐵由亞鐵血紅素降解產(chǎn)生,通過加速氧化應(yīng)激反應(yīng)在ICH發(fā)病機理中起關(guān)鍵作用。研究顯示,高血清鐵蛋白水平與ICH患者預(yù)后不良有關(guān),說明鐵參與ICH引起的腦組織損傷[16]。非蛋白結(jié)合鐵能通過介導生成大量自由基直接破壞或通過NO、MMP、炎性細胞因子等間接破壞 BBB,從而導致血管源性腦水腫[17]。另外,產(chǎn)生的大量自由基通過破壞細胞膜離子轉(zhuǎn)運體、誘發(fā)興奮性氨基酸過量生成、細胞內(nèi)Ca2+超載、酸中毒等機理導致細胞毒性腦水腫[18]。研究還提示鐵螯合劑-去鐵胺能減輕組織損傷和神經(jīng)功能缺損。然而,去鐵胺的作用功效取決于ICH模型的類型。提出去鐵胺有效作用的報道都以自體血注入模型為基礎(chǔ),去鐵胺并不能改善膠原酶注入誘導型ICH模型大鼠的預(yù)后。
1.4 促炎性細胞因子和其他 ICH發(fā)病機理中包括多種炎性反應(yīng),如小膠質(zhì)細胞活化、中性粒細胞浸潤、氧化應(yīng)激反應(yīng)增多和促炎性細胞因子產(chǎn)物。注射自體血或凝血酶到紋狀體以及膠原酶誘導型ICH時,腫瘤壞死因子α(TNF-α)表達水平均升高。ICH導致急性占位性損傷,激發(fā)免疫系統(tǒng)表達TNF-α增加,促進中性粒細胞向病灶區(qū)聚集,誘導白細胞、受損組織細胞釋放更多的細胞因子,促使白細胞自血管內(nèi)向缺血區(qū)腦組織遷移,加重腦組織損傷。
ICAM-1是白細胞表面白細胞功能相關(guān)抗原-1(lymphocyte function-associated antigen-1,LFA -1)的配體,參與白細胞黏附和活化,在免疫炎性反應(yīng)中發(fā)揮重要介導作用[19]。ICAM-1和LFA-1結(jié)合可發(fā)揮多種生物學作用,參與炎癥反應(yīng)、免疫應(yīng)答和調(diào)節(jié)細胞凋亡,參與中性粒細胞與內(nèi)皮細胞黏附、白細胞穿出血管壁。正常情況下,ICAM-1在血管內(nèi)皮細胞低水平表達,當組織缺血受損或炎癥反應(yīng)時表達增強,產(chǎn)生多種生理和病理反應(yīng)[20]。
IL-6對單核巨噬細胞有趨化作用,引起腦血腫周圍缺血區(qū)單核巨噬細胞的增多。浸入的白細胞激活蛋白酶引起自由基誘發(fā)脂質(zhì)過氧化,導致神經(jīng)元損傷。IL-6通過使興奮性氨基酸釋放增多并作用于中性粒細胞、巨噬細胞和血管內(nèi)皮細胞誘導NO合成酶的表達,使NO合成增多,刺激花生四烯酸的代謝,使自由基釋放增加,破壞血管內(nèi)皮細胞的緊密聯(lián)接,使血管壁通透性增加而導致腦水腫形成[21]。但同時,IL-6能下調(diào)IL-1和TNF-α合成,發(fā)揮抗炎作用,能潛在起著避免炎癥反應(yīng)的過度破壞作用。因此,過高的IL-6對腦組織具有毒性作用還是具有保護作用目前尚存爭議[22-23]。
目前研究的ICH治療藥物,大多具有抗氧化作用、抗炎性、神經(jīng)營養(yǎng)和神經(jīng)保護作用,其中部分已被用于其他神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療。這些藥物雖然在動物模型上被證明有效,但在ICH臨床治療上的有效性和安全性尚不清楚。此外,干細胞及其衍生細胞也被用于ICH后神經(jīng)功能缺損的治療。干細胞通過抗炎能力表現(xiàn)出對神經(jīng)功能恢復(fù)有利的免疫調(diào)節(jié)功能,但神經(jīng)炎癥反應(yīng)發(fā)揮著既可能有益又可能有害的作用。如何促進炎癥在干細胞神經(jīng)發(fā)生中的有益效應(yīng)并減少或抑制其不良效應(yīng),采取適當措施來指導和誘導炎癥向需要的方向發(fā)展,仍然需要得到解決。
ICH發(fā)病的機理尚未完全研究透徹。在ICH模型和患者中,數(shù)百種基因表達水平上調(diào)或者下調(diào),參與炎性反應(yīng)、新陳代謝、神經(jīng)元信號傳遞。研究清楚這些基因的產(chǎn)物在ICH發(fā)病機理中的作用,能為ICH找到治療方案提供幫助。
從實驗研究上看,能改善ICH病理學和神經(jīng)病學預(yù)后的藥物越來越多。但是,這些藥物在ICH患者治療中是否有效仍屬未知。在ICH發(fā)生之后,自體修復(fù)過程會啟動,取代損傷過程,藥物治療是否會對此過程產(chǎn)生影響也不得而知。例如,蛋白激酶Src的抑制作用能改善自體血注射后大鼠的急性期預(yù)后情況,如神經(jīng)功能障礙和行為異常。同時,ICH模型中Src持續(xù)的抑制作用卻會影響神經(jīng)及血管的修復(fù)過程,妨礙BBB形成,這也許會導致遠期預(yù)后不良。
ICH后的神經(jīng)學癥狀的嚴重程度與白質(zhì)損傷范圍緊密相關(guān),從臨床治療的角度上來說,ICH治療中最重要的問題是降低死亡率和減輕神經(jīng)功能缺損,但目前大部分研究主要關(guān)心的是神經(jīng)元的缺失,對白質(zhì)損傷缺乏關(guān)注。目前常用的ICH試驗動物模型為紋狀體自體血注射和膠原酶注射。前者不是自發(fā)性和連續(xù)性出血,這與人類腦出血患者有所區(qū)別。后者會加重膠原引起的炎癥反應(yīng)和神經(jīng)毒性。這兩種方法結(jié)構(gòu)損傷部位和程度、神經(jīng)損害評估方法不同,預(yù)后特點也不同,都無法完全模擬人類ICH的真實情況。所以,如何了解不同模型的優(yōu)勢和劣勢,最大程度上接近人類ICH情況,將動物實驗轉(zhuǎn)化為臨床治療,至關(guān)重要。ICH動物模型研究,需要一些便于推測到臨床表現(xiàn)的精細的實驗結(jié)論。
[1]LEE KR,COLON GP,BETZ AL,et al.Edema from intracerebralhemorrhage:the role ofthrombin[J]. J Neurosurg,1996,84(1):91-96.
[2]SUN Zhe,ZHAO Zhen - huan,ZHAO Shi- guang,et al.Recombinant hirudin treatment modulates aquaporin-4 and aquaporin-9 expression after intracerebral hemorrhage in vivo[J].Mol Biol Rep,2009,36(5):1119 -1127.
[3]姜亞軍,常誠,張琳,等.腦出血后腦組織內(nèi)凝血酶受體1(PAR1)的表達及其病理意義[J].中風與神經(jīng)疾病雜志,2004,21(2):100 -103.
[4] OTANIH, YOSHIOKA K, NISHIKAWAH, etal.Involvement of protein kinase C and RhoA in proteaseactivated receptor 1-mediated F-actin reorganization and cell growth in rat cardiomyocytes[J].J Pharmacol Sci,2011,115(2):135-143.
[5]HAN Jingyan,LIU Guoquan,PROFIROVIC J,et al.Zyxin is involved in thrombin signaling via interaction with PAR-1 receptor[J].FASEB J,2009,23(12):4193 -4206.
[6]FUJIMOTO S,KATSUKI H,KUME T,et al.Thrombin -induced delayed injury involves multiple and distinct signaling pathways in the cerebral cortex and the striatum in organotypic slice cultures[J].Neurobiol Dis,2006,22(1):130 -142.
[7]FUJIMOTO S,KATSUKI H,OHNISHI M,et al.Plasminogen potentiates thrombin cytotoxicity and contributes to pathology of intracerebral hemorrhage in rats[J].J Cereb Blood Flow Metab,2008,28(3):506-515.
[8]CAUWE B, OPDENAKKER G.Intracellularsubstrate cleavage:a novel dimension in the biochemistry,biology and pathology of matrix metalloproteinases[J].Crit Rev Biochem Mol Biol,2010,45(5):351-423.
[9]MANNELLO F,MEDDA V.Nuclear localization of Matrix metalloproteinases[J].Prog Histochem Cytochem,2012,47(1):27-58.
[10]ALVAREZ -SABIN J,DELGADO P,ABILLEIRA S,et al.Temporalprofile ofmatrix metalloproteinases and their inhibitors afterspontaneous intracerebralhemorrhage -Relationship to clinical and radiological outcome[J].Stroke,2004,35(6):1316-1322.
[11]WANG Jian,TSIRKA SE.Neuroprotection by inhibition of matrix metalloproteinases in a mouse model of intracerebral haemorrhage[J].Brain,2005,128(Pt 7):1622 -1633.
[12]WELLS JE,BIERNASKIE J,SZYMANSKA A,et al.Matrix metalloproteinase(MMP)-12 expression has a negative impacton sensorimotor function following intracerebral haemorrhage in mice[J].European Journal of Neuroscience,2005,21(1):187-196.
[13]TANG Jiping,LIU Jun,ZHOU Changman,et al.Mmp - 9 deficiencyenhancescollagenase-inducedintracerebral hemorrhage and brain injury in mutant mice[J].J Cereb Blood Flow Metab,2004,24(10):1133-1145.
[14]KOEPPEN AH,DICKSON AC,SMITH J.Heme oxygenase in experimental intracerebral hemorrhage:the benefit of tinmesoporphyrin[J].J Neuropathol Exp Neurol,2004,63(6):587-597.
[15]WANG Jian,DORé S.Heme oxygenase-1 exacerbates early brain injury after intracerebral haemorrhage[J].Brain,2007,130(pt 6):1643-1652.
[16]PéREZ DE LA OSSA N,SOBRINO T,SILVA Y,et al.Iron- related brain damage in patients with intracerebral hemorrhage[J].Stroke,2010,41(4):810 -813.
[17]CHUN HJ,KIM DW,YI HJ,et al.Effects of statin and deferoxamine administration on neurological outcomes in a rat model of intracerebral hemorrhage[J].Neurological Sciences,2012,33(2):289-296.
[18]QING Wang- gai,DONG Yang - qi,PING Tang - qing,et al.Brain edema after intracerebral hemorrhage in rats:the role of Iron overload and aquaporin 4[J].J Neurosurg,2009,110(3):462-468.
[19]張育華,覃永生,邱小鷹,等.腦出血患者血清可溶性細胞間黏附分子-1濃度的動態(tài)變化及其意義[J].臨床神經(jīng)病學雜志,2004,17(5):364 -365.
[20]許彥鋼,趙振偉,楊軍.高血壓腦出血腦脊液中可溶性ICAM-1,VCAM -1的含量變化[J].陜西醫(yī)學雜志,2006,35(1):92 -94.
[21]MU?OZ - FERNáNDEZ MA,F(xiàn)RESNO M.The role of tumour necrosis factor,interleukin 6,interferon-gamma and inducible nitricoxidesynthasein thedevelopmentand pathology of the nervous system[J].Prog Neurobiol,1998,56(3):307-340.
[22]CANNON JG.Inflammatory cytokines in nonpathological states[J].News Physiol Sci,2000,15(6):298 - 303.
[23]BRODERICK JP,BROTT TG,DULDNER JE,et al.Volume of intracerebral hemorrhage.A powerful and easy-to-use predictor of 30 - day mortality[J].Stroke,1993,24(7):987-993.