房曉楠、張榮成綜述,張健審校
T細胞免疫調(diào)節(jié)機制在心力衰竭心肌纖維化中的作用
房曉楠、張榮成綜述,張健審校
心肌重構(gòu)在心力衰竭(心衰)的發(fā)生及發(fā)展中起著至關(guān)重要的作用,當心臟急性或慢性損傷時,多種細胞機制參與了心肌的重構(gòu)過程,這其中免疫細胞如T淋巴細胞可以通過細胞信號相關(guān)蛋白,激活心肌成纖維細胞,導(dǎo)致前膠原在細胞外基質(zhì)沉積促使心肌纖維化的形成。了解T細胞亞群與成纖維細胞在免疫炎癥機制介導(dǎo)心肌纖維化中的作用,有助于從免疫炎癥角度進一步了解心肌重構(gòu),為心力衰竭的預(yù)后及治療提供新的思路。
心肌纖維化; T細胞亞群;成纖維細胞
心力衰竭(心衰)是多種心血管疾病進展的最終階段,因其較高的發(fā)病率及死亡率已經(jīng)成為醫(yī)療、社會及經(jīng)濟方面的一個重大問題。而心衰的發(fā)生發(fā)展主要與心室重構(gòu)有關(guān),它包括兩個方面,一方面是心肌細胞自身的肥大,另一方面是心肌成纖維細胞的增生及心肌纖維化。早在20世紀90年代研究發(fā)現(xiàn),心肌梗死后瘢痕形成與心肌纖維化密切相關(guān)[1]。為了對損傷的心肌進行修復(fù),心臟成纖維細胞的活性明顯增強,纖維膠原及交聯(lián)膠原蛋白分子在心肌細胞間質(zhì)生成增多,對死亡的細胞及損傷的組織進行修復(fù),當膠原在細胞外基質(zhì)過度沉積時,心功能會逐漸惡化[2,3],而有效地抑制心肌重構(gòu)可以明顯減少心衰患者的發(fā)病率及死亡率[4,5]。目前已知β受體阻滯劑和腎素—血管緊張素—醛固酮系統(tǒng)阻滯劑可以通過干預(yù)神經(jīng)—體液因素來抑制心肌重構(gòu),而這并不能完全抑制心肌重構(gòu)的進展。近年關(guān)于免疫炎癥細胞引起心肌重構(gòu)的報道越來越多,這其中T淋巴細胞發(fā)揮著極其重要的作用,下面主要對不同T淋巴細胞在心肌纖維化中的作用進行綜述。
當各種外界因素或內(nèi)環(huán)境紊亂導(dǎo)致心肌組織損傷時機體會通過一系列炎癥反應(yīng)來進行損傷修復(fù)。20世紀90年代就有研究發(fā)現(xiàn),柯薩奇病毒B組3型(CVB3)感染的A/J小鼠在心肌急性損傷階段纖維化程度偏低,但隨著炎癥的持續(xù)激活,在整個心肌組織及損傷部位出現(xiàn)彌漫性淋巴細胞浸潤[6]。據(jù)此推斷,當組織損傷發(fā)生時,免疫炎性細胞會釋放大量可溶性介質(zhì)來激活纖維激活物的生成,進一步通過“瀑布式”級聯(lián)反應(yīng)將損傷擴大。同樣Klappacher等[7]在繼發(fā)性心肌病患者心臟活檢標本中檢測到T淋巴細胞浸潤;Holzinger等[8]也發(fā)現(xiàn)擴張型心肌病患者心臟局部浸潤的T淋巴細胞表達活性炎癥因子的能力增高。此外,小鼠心肌梗死模型研究還提示,梗死后的心肌組織不但T淋巴細胞浸潤增加,而且出現(xiàn)心肌成纖維細胞增生及纖維化水平提高,提示T淋巴細胞可以與成纖維細胞協(xié)同參與心肌的纖維化過程[9]。最近還有研究證實,CD4+T淋巴細胞而非CD8+T淋巴細胞或B淋巴細胞參與了壓力負荷引起的心肌纖維化及膠原生成,最終導(dǎo)致心衰的發(fā)生[10]。所以T淋巴細胞不但可以直接作用于成纖維細胞還可以通過釋放細胞因子、趨化因子和生長因子間接激活成纖維細胞[11,12]。
不同的T淋巴細胞亞群通過釋放或調(diào)解不同的細胞因子,在心肌纖維化的形成過程擔當了“雙刃劍”的角色。目前已知參與心肌重塑的T淋巴細胞主要自來于CD4+T淋巴細胞。它不但可以識別抗原提呈細胞表面的Ⅱ類主要組織相容性抗原分子來參與免疫應(yīng)答,還可以提供B淋巴細胞活化的第二信號,促進抗體的合成和分泌而參與免疫應(yīng)答。T輔助細胞1(Th1)和T輔助細胞2(Th2) 亞群是T輔助細胞常見的兩種形式,其中Th1細胞可以通過生成干擾素-γ在細胞內(nèi)發(fā)揮作用,而Th2細胞主要通過白細胞介素-4,5, 13, 33(IL-4,5, 13, 33)在細胞外發(fā)揮生物作用。其他T輔助細胞包括生成IL-17的T細胞,它主要參與了誘導(dǎo)炎癥損傷的作用;和調(diào)節(jié)性T細胞,它可與CD4、CD25、轉(zhuǎn)錄因子等一起參與免疫炎癥反應(yīng)的下調(diào),保護炎癥引起的組織損傷。在生理條件下T淋巴細胞各亞群維持著動態(tài)平衡,但是當心衰發(fā)生時各亞型的平衡失調(diào)導(dǎo)致疾病的進一步發(fā)展。
Th1的生物學特性:在急性炎癥反應(yīng)發(fā)生時,Th1細胞于炎癥早期最先被激活,并參與炎癥反應(yīng)的觸發(fā)過程,它釋放的細胞因子具有纖維化及抗纖維化的雙重作用[13]。Matsui等用血管緊張素Ⅱ干預(yù)大鼠后發(fā)現(xiàn),當血管緊張素Ⅱ與血管緊張素Ⅰ型受體結(jié)合后Th1增多,而當抑制Th1作用后大鼠心肌重塑得到改善。但是還有些實驗發(fā)現(xiàn),如果對柯薩奇病毒B3感染的小鼠給予抗體治療時,脾臟中Th1細胞增多,而心肌局部炎癥減輕,提示Th1淋巴細胞可能還起到一定的抗炎癥作用。
Th2的生物學特性:Th2細胞的激活主要見于炎癥恢復(fù)期、慢性疾病的進展或外界因素導(dǎo)致的抗原抗體反應(yīng),被認為參與免疫炎癥的持續(xù)過程。它不但可以通過調(diào)節(jié)基質(zhì)細胞及成纖維細胞導(dǎo)致基質(zhì)在組織中沉積,還可能與基質(zhì)金屬蛋白酶存在著交互作用。研究顯示Th2細胞的生成與基質(zhì)金屬蛋白酶抑制劑的表達存在負性相關(guān)[14]。Th2細胞釋放的細胞因子主要有IL-4,5,13。其中IL-13可以誘導(dǎo)成纖維細胞膠原的形成,當給予可溶性IL-13受體來降低IL-13濃度后心臟的細胞外基質(zhì)含量明顯下降。IL-4主要參與調(diào)節(jié)成纖維細胞的激活,從而導(dǎo)致心肌纖維化的進一步加重。此外Th2釋放的部分細胞因子如生長刺激表達基因2蛋白(ST2)等也具有抗心肌纖維化的作用,一方面它可以通過IL-33/ST2信號通路充當Th2細胞的趨化因子,促使相關(guān)炎癥因子的釋放,另一方面其本身具有抗心肌肥厚的作用[15]。
Th1/Th2比例在不同疾病中的變化:雖然Th1/Th2淋巴細胞共同參與了心肌重構(gòu)的過程并導(dǎo)致心衰,但是二者在不同病因引起心衰中的地位有所不同。Th2優(yōu)勢應(yīng)答的動物如Balb/c小鼠誘導(dǎo)病毒性或自身免疫性心肌炎的成功率更高,且更易向心肌病進展。Peng等[16]在建立血管緊張素Ⅱ誘導(dǎo)的心衰模型時發(fā)現(xiàn),Th2優(yōu)勢應(yīng)答的Balb/c小鼠較Th1優(yōu)勢應(yīng)答的C57BL/6小鼠的心室擴張、心肌纖維化和心功能惡化更顯著。臨床研究方面,急性心肌缺血患者發(fā)病后24小時外周血生成干擾素-γ的T細胞(Th1淋巴細胞)明顯升高,但生成CD4的淋巴細胞(Th2淋巴細胞)與單純心絞痛患者相比未見明顯升高,提示心肌缺血急性階段的炎癥反應(yīng)主要以Th1淋巴細胞生成的細胞因子為主[17]。與正常人比較,擴張型心肌病的患者血中Th1淋巴細胞及Th2淋巴細胞均升高,其中以Th2淋巴細胞升高為主,提示擴張型心肌病患者主要是Th2淋巴細胞參與了體液免疫反應(yīng)[18]。這兩種T淋巴細胞在心肌重構(gòu)中的詳細生物學機制以及它們在不同病因的心衰中的作用尚不明確,有待進一步研究。
隨著研究的進展,人們發(fā)現(xiàn)還存在著一些由Th1/Th2之外的淋巴細胞分泌的細胞因子如IL-17A, IL-17F和IL-22等,我們稱之為Th17淋巴細胞。在對大鼠進行缺血再灌注研究發(fā)現(xiàn),IL-17A可以通過誘導(dǎo)心肌壞死和中性粒細胞浸潤導(dǎo)致心肌損傷。但是IL-17A的這種作用可能主要體現(xiàn)在心肌重構(gòu)的后期而非急性炎癥反應(yīng)階段[19]。動物研究發(fā)現(xiàn),柯薩奇病毒感染的小鼠可以出現(xiàn)脾臟中Th17細胞計數(shù)和血清中IL-17水平升高,心臟局部IL-17表達增多,參與介導(dǎo)心肌細胞的炎癥損傷。而用抗體中和IL-17后心肌局部病毒復(fù)制減少,炎癥減輕。此外,IL-17還是一種多效能炎癥因子,它能激活并增加炎癥引起的組織損傷,既參與了炎癥的觸發(fā)活動,還與炎癥疾病的進展有關(guān)。同時IL-17還可以與其他炎癥因子如IL-6 和 腫瘤壞死因子-α(TNF-α)協(xié)同作用,參與調(diào)節(jié)基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)的生成[20]。不同的IL-17炎癥因子與受體的親和力不同決定它們在炎癥反應(yīng)的作用大小,IL-17A與受體的親和力是與IL-17F的10倍,這也解釋了為什么大多數(shù)組織細胞均參與了IL-17A介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)。
Th17主要通過調(diào)節(jié)膠原形成或MMP與基質(zhì)金屬蛋白酶抑制物(TIMP)的基因穩(wěn)定性來作用于心肌纖維化的整個過程。先后有實驗發(fā)現(xiàn),IL-17不但能增加心肌成纖維細胞膠原的產(chǎn)生,而且與自身免疫動物模型的細胞外基質(zhì)生成增多有關(guān)[21,22]。Feng等[23]通過注射異丙腎上腺素誘導(dǎo)Wistar-Kyoto大鼠心衰,將大鼠分為3組(單克隆抗IL-17抗體組,IgG組及磷酸緩沖液組),通過蘇木素伊紅和馬蘇染色來觀察心肌纖維化的程度,進一步通過免疫組化來評估MMP-1、 TIMP-1、TIMP-4、自然殺傷細胞配體激活物受體、骨保護素、Ⅰ型和Ⅲ型膠原,最后得出結(jié)論:IL-17可能通過核因子κB受體活化因子配體/骨保護素(RANKL/OPG)和MMP/TIMP信號通路參與心臟的纖維化及心肌的重構(gòu)過程。IL-17具有穩(wěn)定前炎癥因子mRNA,從基因水平延長它們的半衰期。炎癥因子的穩(wěn)定性增加可能與細胞外基質(zhì)的聚集及心肌纖維化有關(guān)。有效阻滯IL-17淋巴細胞的作用可能成為糾正心衰的一個新的治療途徑。
調(diào)節(jié)性T細胞主要參與抗炎癥反應(yīng),在多數(shù)T細胞的炎癥反應(yīng)中起負反饋作用。自然調(diào)節(jié)性T細胞主要起源于胸腺,其他形式的T細胞主要源自外周的局部生成。一些特定的T細胞亞組已經(jīng)證實可以抑制自身抗體、異種抗體、腫瘤抗體、感染因素所引起的免疫反應(yīng)來保持免疫反應(yīng)的自我耐受性[24,25]。根據(jù)所釋放細胞因子的形態(tài)可以將自我適應(yīng)性T細胞分為釋放高水平IL-10的3型調(diào)節(jié)性T細胞及釋放高水平轉(zhuǎn)化生長因子-β的Th3淋巴細胞。轉(zhuǎn)化生長因子-β可以作用于成纖維細胞并上調(diào)MMP-2及膠原的表達,同時下調(diào)MMP-2及間質(zhì)型膠原的表達[26]。因此調(diào)節(jié)性T細胞可能通過調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)化生長因子-β對炎癥反應(yīng)的抑制程度來調(diào)節(jié)成纖維細胞在纖維化中的作用。目前針對調(diào)節(jié)性T細胞在心肌纖維化中作用的研究較少,Heda在對血管緊張素Ⅱ誘導(dǎo)的高血壓大鼠模型中發(fā)現(xiàn)CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞可能通過自身適應(yīng)性調(diào)節(jié)產(chǎn)生抗纖維化作用,急性冠狀動脈綜合征患者該類型細胞減少,可能促使炎癥反應(yīng)增加[27],而他汀類藥物具有上調(diào)該細胞表達的作用[28]。臨床研究顯示,心衰發(fā)生時外周血調(diào)節(jié)性T淋巴細胞減少,凋亡增加,提示免疫炎癥反應(yīng)占主導(dǎo)地位,導(dǎo)致心衰的持續(xù)進展[29,30]。在動物心肌梗死模型中還發(fā)現(xiàn),調(diào)節(jié)性T淋巴細胞可以通過減少α- 平滑肌肌動蛋白的表達改變成纖維細胞的表型,減少MMP-3的表達及膠原生成[31]。調(diào)節(jié)性T細胞的過繼傳輸不但能抑制細胞毒性T淋巴細胞反應(yīng),還可以減輕心肌梗死后心肌細胞的凋亡及梗死后纖維化程度[32]。所以我們有望通過增加調(diào)節(jié)性T細胞的活性,抑制額外激活的免疫反應(yīng)來減少心血管事件的發(fā)生。
因為針對T細胞介導(dǎo)炎癥反應(yīng)的干預(yù)措施的臨床研究還比較少,已知可以調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的藥物主要是集中在他汀類藥物或中藥在心肌梗死后的炎癥干預(yù),它們主要通過調(diào)節(jié)Th1/Th2平衡及輔助性T淋巴細胞的數(shù)目和功能來抑制心肌的炎癥反應(yīng)[33,34],而對心肌病等其他非缺血性心衰患者心肌炎癥反應(yīng)還沒有特效的藥物。
總之,當內(nèi)環(huán)境或外環(huán)境改變導(dǎo)致心肌損傷時,心肌局部或釋放到血液中的T淋巴細胞可以通過多種細胞因子與心肌成纖維細胞產(chǎn)生“交互通話”調(diào)節(jié)其細胞外基質(zhì)的生成,作為組織細胞損傷后的修復(fù)反應(yīng)。但是目前針對T淋巴細胞與心肌重構(gòu)的研究還處于初級階段,主要觀察了T淋巴細胞亞型及其所釋放的細胞因子與心肌重構(gòu)指標的關(guān)系,較少深刻探討何種信號通路參與了其中的過程,這可能成為今后該領(lǐng)域研究的重點。不同T細胞亞群在纖維化中的作用不同,相同的T細胞亞群所釋放的細胞因子也存在相互制約的效應(yīng)。所以更好地了解T淋巴細胞在炎癥反應(yīng)及纖維化中的作用,通過抑制炎癥、發(fā)揮更好的抗炎反應(yīng),達到防止心肌纖維化的作用,這有可能成為我們今后改善心肌重構(gòu)、治療心衰的新方法。
[1] Leslie KO, Schwarz J, Simpson K, et al. Progressive interstitial collagen deposition in Coxsackievirus B3-induced murine myocarditis. Am J Pathol, 1990, 136: 683-693.
[2] Olson ER, Shamhart PE, Naugle JE, et al. Angiotensin II-induced extracellular signal-regulated kinase 1/2 activation is mediated by protein kinase Cdelta and intracellular calcium in adult rat cardiac fibroblasts. Hypertension, 2008, 51: 704-711.
[3] Yu Q, Watson RR, Marchalonis JJ. et al. A role for T lymphocytes in mediating cardiac diastolic function. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2005, 289: H643-651.
[4] Hill JA, Olson EN. Cardiac plasticity. N Engl J Med, 2008, 358: 1370-1380.
[5] Hill JA, Olson EN. Muscle: Fundamental Biology and Mechanisms of Disease. Amsterdam: The Netherlands. 2012. 299.
[6] Leslie KO, Schwarz J, Simpson K, et al. Progressive interstitial collagen deposition in Coxsackievirus B3-induced murine myocarditis. Am J Pathol, 1990, 136: 683-693.
[7] Klappacher G, Mehrabi M, Franzen P, et al. Endomyocardial HLA expression is increased to the same extent in idiopathic and secondary dilated cardiomyopathy. Immunol Lett, 1994, 41: 59-66.
[8] Holzinger C, Sch?llhammer A, Imhof M, et al. Phenotypic patterns of mononuclear cells in dilated cardiomyopathy. Circulation, 1995, 92: 2876-2885.
[9] Yang F, Liu YH, Yang XP, et al. Myocardial infarction and cardiac remodelling in mice. Exp Physiol, 2002, 87: C555.
[10] Laroumanie F, Douin-Echinard V, Pozzo J, et al. CD4+T cells promote the transition from hypertrophy to heart failure during chronic pressure overload. Circulation, 2014, 129: 2111-2124.
[11] Wynn T. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. J Pathol, 2008, 214, 199-210.
[12] Yu Q, Watson RR, Marchalonis JJ, et al. A role for T lymphocytes in mediating cardiac diastolic function. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2005, 289: H643-651.
[13] Marra F, Aleffi S, Galastri S, et al. Mononuclear cells in liver fibrosis. Semin Immunopathol, 2009, 31: 345-358.
[14] Vaillant B, Chiaramonte MG, Cheever AW, et al. Regulation of hepatic fibrosis and extracellular matrix genes by the Th response: new insight into the role of tissue inhibitors of matrix metalloproteinases. J Immunol, 2001, 167: 7017-7026.
[15] Schmitz J, Owyang A, Oldham E, et al. IL-33, an interleukin-1-like cytokine that signals via the IL-1 receptor-related protein ST2 and induces T helper type 2-associated cytokines. Immunity, 2005, 23: 479-490.
[16] Peng H, Yang XP, Carretero OA, et al. AngiotensinII-induced dilated cardiomyopathy in Balb/c but not C57BL/6J mice. Exp Physiol, 2011, 96: 756-764.
[17] Cheng X, Liao YH, Ge H, et al. TH1/TH2 functional imbalance after acute myocardial infarction: coronary arterial inflammation or myocardial inflammation. J Clin Immunol, 2005, 25: 246-253.
[18] Yuan J, Cao AL, Yu M, et al. Th17 cells facilitate the humoral immune response in patients with acute viral myocarditis. J Clin Immunol, 2010, 30: 226-234.
[19] Yan X, Shichita T, Katsumata Y, et al. Deleterious effect of the IL-23/IL-17A axis and γδT cells on left ventricular remodeling after myocardial infarction. J Am Heart Assoc, 2012, 1: e004408.
[20] Liao YH, Xia N, Zhou SF, et al. Interleukin-17A contributes to myocardial ischemia/reperfusion injury by regulating cardiomyocyte apoptosis and neutrophil infiltration. J Am Coll Cardiol, 2012, 59: 420-429.
[21] Cortez DM, Feldman MD, Mummidi S, et al. IL-17 stimulates MMP-1 expression in primaryhuman cardiac fibroblasts via p38 MAPK- and ERK1/2-dependent C/EBP-β, NF-κB, and AP-1 activation. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2007, 293: H3356-3365.
[22] Dubin PJ, McAllister F, Kolls JK. Is cystic fibrosis a TH17 disease? Inflamm Res, 2007, 56: 221-227.
[23] Feng W, Li W, Liu W, et al. IL-17 induces myocardial fibrosis and enhances RANKL/OPG and MMP/TIMP signaling in isoproterenolinduced heart failure. Exp Mol Pathol, 2009, 87: 212-218.
[24] Huber SA. Depletion of gammadelta+ T cells increases CD4+FoxP3 (T regulatory) cell response in coxsackievirus B3-induced myocarditis. Immunol, 2009, 127: 567-576.
[25] Huber SA, Feldman AM, Sartini D. Coxsackievirus B3 induces T regulatory cells, which inhibit cardiomyopathy in tumor necrosis factor-alpha transgenic mice. Circ Res, 2006, 99: 1109-1116.
[26] Edwards D, Murphy G, ReynoldsJ, et al. Transforming growth factor βmodulates the expression of collagenase and metalloproteinase inhibitor. EMBO J, 1987, 6: 1899-1904.
[27] 李大主, 胡英鋒, 楊克平, 等. 急性冠狀動脈綜合征患者調(diào)節(jié)性T細胞變化與炎癥反應(yīng)的關(guān)系. 中國循環(huán)雜志, 2006, 21: 337-339.
[28] 劉洋, 李浪, 蘇強, 等. 強化阿托伐他汀對不穩(wěn)定性心絞痛患者冠狀動脈介入治療術(shù)后CD4+T淋巴細胞微小核糖核酸-21表達的影響. 中國循環(huán)雜志, 2014, 29: 26-30.
[29] Tang TT, Ding YJ, Liao YH, et al. Defective circulating CD4CD25+Foxp3+CD127(low) regulatory T-cells in patients with chronic heart failure. Cell Physiol Biochem, 2010, 25: 451-458.
[30] Tang TT, Zhu ZF, Wang J, et al. Impaired thymic export and apoptosis contribute to regulatory T-cell defects in patients with chronic heart failure. PLoS One, 2011, 6: e24272.
[31] Saxena A, Dobaczewski M, Rai V, et al. Regulatory T cells are recruited in the infarcted mouse myocardium and may modulate fibroblast phenotype and function. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2014, 307: H1233-242.
[32] Tang TT, Yuan J, Zhu ZF, et al. Regulatory T cells ameliorate cardiac remodeling after myocardial infarction. Basic Res Cardiol, 2012, 107: 232.
[33] Cheng X, Liao YH, Zhang J, et al. Effects of Atorvastatin on Th polarization in patients with acute myocardial infarction. Eur J Heart Fail, 2005, 7: 1099-2004.
[34] Xiao H, Song Y, Li Y, Liao YH, et al. Qiliqiangxin regulates the balance between tumor necrosis factor-alpha and interleukin-10 and improves cardiac function in rats with myocardial infarction.Cell Immunol, 2009, 260: 51-55.
2014-06-19)
(編輯:汪碧蓉)
100037 北京市,中國醫(yī)學科學院 北京協(xié)和醫(yī)學院 國家心血管病中心 阜外心血管病醫(yī)院 心內(nèi)科(房曉楠),心力衰竭中心(張榮成、張?。?/p>
房曉楠 住院醫(yī)師 學士 主要從事心血管臨床工作 Email:jane1120@sina.com.cn
張健 Email:fwzhangjian62@126.com.
R54
A
1000-3614( 2015 )05-0508-03
10.3969/ j. issn. 1000-3614. 2015.05.023