趙一龍,郭安臣,王擁軍,王群
16世紀(jì)初,毒理學(xué)家Paracelsus觀察到“劑量產(chǎn)生毒性”的現(xiàn)象。低于有害劑量的細(xì)胞應(yīng)激能產(chǎn)生一種保護(hù)狀態(tài),稱為“預(yù)保護(hù)”[1]。1964年,Janoff提出了“預(yù)處理”這一概念,即低于損傷閾值的刺激可在隨后產(chǎn)生保護(hù)作用。在1986年Schurr等[2]表明體外腦組織缺氧可產(chǎn)生低氧適應(yīng)性。Kitagawa及其同事發(fā)現(xiàn)沙鼠短暫的全腦缺血可以保護(hù)大腦免受隨后長(zhǎng)時(shí)間缺血造成的損傷[3]。
預(yù)適應(yīng)是這樣一種現(xiàn)象:短暫的亞致死損害會(huì)為隨后發(fā)生的致死損傷提供強(qiáng)力的保護(hù)作用,它被認(rèn)為是自然界中的一種常規(guī)形式[1]。本文將針對(duì)幾種常見的大腦預(yù)適應(yīng)保護(hù)現(xiàn)象進(jìn)行綜述。到目前為止出現(xiàn)了兩種內(nèi)生機(jī)制,即預(yù)處理和后處理。預(yù)處理對(duì)大腦的保護(hù)可在刺激后立刻發(fā)生(稱為早期,快速或經(jīng)典的預(yù)處理),也可延遲1~3 d后發(fā)生,以誘導(dǎo)出蛋白合成相關(guān)的保護(hù)(稱為延遲性預(yù)處理)[4]??焖兕A(yù)處理在臨床中可應(yīng)用于存在高風(fēng)險(xiǎn)并發(fā)癥的疾病,如心臟或腦部手術(shù)。由于延遲性預(yù)處理對(duì)大腦的保護(hù)作用似乎比早期預(yù)處理更強(qiáng)大,因此延遲性預(yù)處理在神經(jīng)內(nèi)科領(lǐng)域受到越來越多的關(guān)注。然而,盡管存在有效的方式來進(jìn)行大腦的早期預(yù)處理,但是對(duì)于早期和延遲性預(yù)處理所產(chǎn)生的神經(jīng)保護(hù)作用缺少規(guī)范的比較。后處理則是一種治療性的再灌注方式,通過這種方式器官可以得到間歇性灌注,例如在實(shí)驗(yàn)中(或在臨床中,如血管成形術(shù)或器官移植)夾閉動(dòng)脈的間歇性開啟和關(guān)閉。后處理是減少局灶性缺血和再灌注損傷的一種新的神經(jīng)保護(hù)方法[5]。
預(yù)處理和后處理的效應(yīng)器是一組相似的下游信號(hào)通路,但二者的調(diào)控機(jī)制可能完全不同,原因在于:后處理開始時(shí)誘導(dǎo)快速的神經(jīng)保護(hù)作用,而預(yù)處理誘導(dǎo)的神經(jīng)保護(hù)作用則有一個(gè)明顯的短暫延遲(蛋白質(zhì)合成依賴性);后處理可能不涉及內(nèi)源性神經(jīng)保護(hù)的激活,而是在再灌注時(shí)減少自由基的釋放。下面,我們將分別介紹幾種不同的預(yù)適應(yīng)保護(hù)形式。
許多體內(nèi)和體外研究表明,短暫暴露于亞致死性缺血環(huán)境中的神經(jīng)元可產(chǎn)生耐受性,對(duì)隨后長(zhǎng)期且致命的缺血損傷呈現(xiàn)抵抗。這種現(xiàn)象,稱為缺血預(yù)處理(ischemic preconditioning,IPC)[6]。參與這種現(xiàn)象的分子機(jī)制是學(xué)者們的研究熱點(diǎn),以便為腦缺血開辟新的治療途徑。
幾種不同的預(yù)處理刺激包括非損傷性缺血、皮層擴(kuò)散抑制、短暫癲癇發(fā)作、暴露于吸入性麻醉劑中、低劑量的內(nèi)毒素、高溫或熱休克都可誘導(dǎo)出對(duì)缺血性腦損傷的免疫耐受,從而提供保護(hù)作用,防止與刺激形式完全不同的損傷,這一著名現(xiàn)象稱為“交叉耐受”現(xiàn)象,即一種刺激可促進(jìn)對(duì)另一種形式的交叉耐受,或者可引起腦耐受性的刺激也可以引起其他器官的耐受性[7]。由于誘導(dǎo)劑和耐受機(jī)制可能有類似的特點(diǎn),因此在一個(gè)器官中誘導(dǎo)免疫耐受,可通過神經(jīng)或旁分泌機(jī)制,擴(kuò)散到其他器官,這種現(xiàn)象被稱為“遠(yuǎn)程預(yù)處理”或“遠(yuǎn)距離預(yù)處理”[8]??烧T導(dǎo)保護(hù)作用的特定刺激,在強(qiáng)度,時(shí)間和(或)頻率方面的不同,決定了刺激強(qiáng)度太弱不能引起反應(yīng),或刺激強(qiáng)度足夠可引起預(yù)處理,或刺激強(qiáng)度過大產(chǎn)生損害[9]。
一般情況下,延遲性缺血耐受的誘導(dǎo)需要新蛋白質(zhì)的合成,并且此耐受的持續(xù)時(shí)間從幾天到幾個(gè)星期不等。而大腦缺血耐受的時(shí)間明顯遵從于延遲的模式,可見活性蛋白的合成可能在腦缺血耐受的發(fā)展中是必要的[10]。一旦被誘導(dǎo),缺血耐受會(huì)持續(xù)幾天,并在幾星期后逐漸消失。
對(duì)產(chǎn)生IPC作用的細(xì)胞信號(hào)通路的識(shí)別為我們開創(chuàng)新的治療策略提供了基本的框架,即用藥物模擬預(yù)處理的神經(jīng)保護(hù)作用——稱為藥物預(yù)處理[11]。一些內(nèi)源性藥物包括腺苷[12]、一氧化氮[13-14]、硫化氫[15]等已被證明可模擬IPC的細(xì)胞保護(hù)作用。此外,大電導(dǎo)鈣激活鉀通道(large-conductance Calcium-activated potassium channels,BKCa)的通道開放劑如NS1619[16],適度的酒精[17],紅葡萄酒中的葡萄多酚類化合物白藜蘆醇[18-21]以及某些揮發(fā)性麻醉藥如異氟醚[22-23]等都可以減少梗死面積,且達(dá)到類似于IPC后的程度。相對(duì)于那些更有危害性并且更加復(fù)雜的預(yù)處理方式,藥物預(yù)處理更加容易建立,因此在臨床上將其應(yīng)用于對(duì)抗大腦缺血損傷將很有前景。
缺血后處理被定義為在缺血后建立回流時(shí)進(jìn)行簡(jiǎn)單重復(fù)的再灌注,從而可顯著改善缺血發(fā)作的預(yù)后[24]。閉塞血管的再血管化并及時(shí)再灌注是目前用于治療急性缺血性卒中最有效的方法。然而,在再灌注早期階段會(huì)產(chǎn)生活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)及細(xì)胞內(nèi)游離Ca2+超載,從而導(dǎo)致額外的損傷。為了減輕再灌注后的早期充血反應(yīng)損傷,研究人員提出在缺血后立即進(jìn)行一系列重復(fù)性的短暫中斷再灌注的缺血后處理的保護(hù)方式[25]。
對(duì)損傷性缺血大腦進(jìn)行不同周期的短暫非損傷性缺血,可實(shí)現(xiàn)神經(jīng)保護(hù)作用,并建立了兩種研究模型:首先永久性的遠(yuǎn)端閉塞大腦中動(dòng)脈,然后再閉塞雙側(cè)頸總動(dòng)脈(common carotid artery,CCA)[26];先進(jìn)行短暫性大腦中動(dòng)脈閉塞,然后進(jìn)行短暫性大腦中動(dòng)脈閉塞和再灌注[27]。
這種保護(hù)機(jī)制也在體外(即在海馬器官型切片培養(yǎng)和原代神經(jīng)元的有害的氧糖剝奪模型中)以及非損傷的周期性氧糖剝奪和復(fù)氧模型中得到證實(shí)[28]。因此,一些治療方法(即短期缺血,缺氧,異氟醚,去甲腎上腺素和3-硝基丙酸)可以作為后處理的刺激,有效誘導(dǎo)缺血耐受。
隨著缺血后處理的機(jī)制已被闡明,以及藥理性缺血后處理的潛在優(yōu)勢(shì),它們中的如腺苷和揮發(fā)性麻醉藥(如異氟烷),經(jīng)美國(guó)食品藥品管理局批準(zhǔn)用于改善動(dòng)物預(yù)后方面的研究。這些藥理性缺血后處理可能會(huì)更適合那些身體太虛弱不能承受微創(chuàng)治療的患者,或遠(yuǎn)離專業(yè)治療中心不能得到及時(shí)救治的患者。
在兔心肌中應(yīng)用異氟烷進(jìn)行缺血后處理或機(jī)械性缺血后處理可產(chǎn)生相似的心肌梗死面積的減少[29]。當(dāng)與機(jī)械缺血后處理聯(lián)合應(yīng)用時(shí),可產(chǎn)生累積的效果[30]。麻醉藥誘導(dǎo)的缺血后處理似乎與機(jī)械性缺血后處理存在類似的機(jī)制,并且通過抑制再灌注損傷補(bǔ)救激酶途徑,可以抵消兩者的保護(hù)作用[31]。
除了上述幾種經(jīng)典的預(yù)適應(yīng)外,還有幾種預(yù)適應(yīng)保護(hù)類型:低壓氧預(yù)處理、高壓氧預(yù)處理、低溫預(yù)處理、高溫預(yù)處理、系統(tǒng)性應(yīng)激預(yù)處理。
低壓氧預(yù)處理是將細(xì)胞培養(yǎng)基或動(dòng)物放置在一個(gè)密閉缺氧室中,而密閉缺氧室中為常壓缺氧條件(8%的氧氣),其余氧氣用氮?dú)馓鎿Q[32]。低壓氧預(yù)處理模型在體內(nèi)和體外都能建立,并能有效抑制成人的腦缺血損傷[32]。
高壓氧預(yù)處理是通過將100%的氧氣注入加壓艙中實(shí)現(xiàn),可以防止后續(xù)的短暫腦缺血損傷。有動(dòng)物研究表明,相對(duì)于短暫快速的高壓氧預(yù)處理,長(zhǎng)期的高壓氧預(yù)處理更能有效地建立耐受狀態(tài)[33]。
低溫已被建議應(yīng)用于急診醫(yī)學(xué)。一次短暫的低溫預(yù)處理也能產(chǎn)生類似預(yù)保護(hù)的作用。在大鼠腦切片中,在氧糖剝奪前0~3 h進(jìn)行低溫預(yù)處理(33℃,20 min)能有效防止氧糖剝奪導(dǎo)致的浦肯野細(xì)胞的死亡[34]。
短暫地暴露于高溫中能誘導(dǎo)大腦耐受,減輕缺血性損傷。成年大鼠被放在42℃的水浴裝置中15 min,在18 h或24 h后,對(duì)其進(jìn)行大腦中動(dòng)脈閉塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)結(jié)果發(fā)現(xiàn),相較于那些沒經(jīng)過高溫預(yù)處理的大鼠,經(jīng)過高溫預(yù)處理的大鼠的腦梗死面積明顯減少,并且學(xué)習(xí)和記憶能力明顯提高[35]。
許多預(yù)處理研究是通過急性應(yīng)激來誘導(dǎo)出神經(jīng)保護(hù)作用。除此之外給予亞致死量的慢性持續(xù)性應(yīng)激如身體鍛煉[36]以及節(jié)食[37-38]等,也能提供預(yù)保護(hù)作用。
對(duì)腦預(yù)適應(yīng)保護(hù)激活的內(nèi)源性生存機(jī)制并不依賴于藥代動(dòng)力學(xué)或應(yīng)用方式的不同,而后兩者會(huì)阻礙嚙齒類動(dòng)物的神經(jīng)保護(hù)方法轉(zhuǎn)用到人類中。因此,內(nèi)在的細(xì)胞生存通路的識(shí)別將提供更直接的機(jī)會(huì)來轉(zhuǎn)化神經(jīng)保護(hù)試驗(yàn)。雖然目前的研究主要集中在卒中,但是研究者可能會(huì)發(fā)現(xiàn),構(gòu)成腦預(yù)適應(yīng)保護(hù)的與生俱來的調(diào)節(jié)體系同樣也適用于保護(hù)大腦免受其他急性和慢性神經(jīng)退行性疾病的影響。
1 Stetler RA, Leak RK, Gan Y, et al. Preconditioning provides neuroprotection in models of CNS disease:paradigms and clinical significance[J]. Prog Neurobiol, 2014, 114:58-83.
2 Schurr A, Reid KH, Tseng MT, et al. Adaptation of adult brain tissue to anoxia and hypoxia in vitro[J].Brain Res, 1986, 374:244-248.
3 Kitagawa K, Matsumoto M, Kuwabara K, et al.'Ischemic tolerance' phenomenon found in the brain[J].Brain Res, 1990, 528:21-24.4
4 Dirnagl U, Becker K, Meisel A. Preconditioning and tolerance against cerebral ischaemia:from experimental strategies to clinical use[J]. Lancet Neurol, 2009, 8:398-412.
5 Zhao H. The protective effect of ischemic postconditioning against ischemic injury:from the heart to the brain[J]. J Neuroimmune Pharmacol, 2007,2:313-318.
6 Gidday JM. Cerebral preconditioning and ischaemic tolerance[J]. Nat Rev Neurosci, 2006, 7:437-448.
7 Pignataro G, Scorziello A, Di Renzo G, et al.Post-ischemic brain damage:effect of ischemic preconditioning and postconditioning and identification of potential candidates for stroke therapy[J]. FEBS J,2009, 276:46-57.
8 Gill R. Remote ischemic preconditioning for myocardial protection:update on mechanisms and clinical relevance[EB/OL]. (2015-01-01)[2015-01-10].http://link.springer.com/article/10.1007%2Fs11010-014-2312-z.
9 Dirnagl U, Simon RP, Hallenbeck JM. Ischemic tolerance and endogenous neuroprotection[J]. Trends Neurosci, 2003, 26:248-254.
10 Barone FC, White RF, Spera PA, et al. Ischemic preconditioning and brain tolerance:temporal histological and functional outcomes, protein synthesis requirement, and interleukin-1 receptor antagonist and early gene expression[J]. Stroke, 1998, 29:1937-1931.
11 Obrenovitch TP. Molecular physiology of preconditioning-induced brain tolerance to ischemia[J].Physiol Rev, 2008, 88:211-247.
12 Williams-Karnesky RL, Stenzel-Poore MP.Adenosine and stroke:maximizing the therapeutic potential of adenosine as a prophylactic and acute neuroprotectant[J]. Curr Neuropharmacol, 2009, 7:217-227.
13 Kunz A, Park L, Abe T, et al. Neurovascular protection by ischemic tolerance:role of nitric oxide and reactive oxygen species[J]. J Neurosci, 2007, 27:7083-7093.
14 Yamaguchi T, Kamada K, Dayton C, et al. Role of eNOS-derived NO in the postischemic antiinflammatory effects of antecedent ethanol ingestion in murine small intestine[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2007, 292:H1435-1442.15.
15 Yusof M, Kamada K, Kalogeris T, et al. Hydrogen sulfide triggers late-phase preconditioning in postischemic small intestine by an NO- and p38 MAPK-dependent mechanism[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2009, 296:H868-876.
16 Gáspár T, Katakam P, Snipes JA, et al. Delayed neuronal preconditioning by NS1619 is independent of calcium activated potassium channels[J]. J Neurochem,2008, 105:1115-1128.
17 Collins MA, Neafsey EJ, Mukamal KJ, et al.Alcohol in moderation, cardioprotection, and neuroprotection:epidemiological considerations and mechanistic studies[J]. Alcohol Clin Exp Res, 2009,33:206-219.
18 Raval AP, Lin HW, Dave KR, et al. Resveratrol and ischemic preconditioning in the brain[J]. Curr Med Chem, 2008, 15:1545-1551.
19 Tan L, Yu JT, Guan HS. Resveratrol exerts pharmacological preconditioning by activating PGC-1 alpha[J]. Med Hypotheses, 2008, 71:664-667.
20 Della-Morte D, Dave KR, Defazio RA, et al.Resveratrol pretreatment protects rat brain from cerebral ischemic damage via a sirtuin 1-uncoupling protein 2 pathway[J]. Neuroscience, 2009, 159:993-1002.
21 Saleh MC, Connell BJ, Saleh TM. Resveratrol preconditioning induces cellular stress proteins and is mediated via NMDA and estrogen receptors[J].Neuroscience, 2010, 166:445-454.
22 Xu X, Kim JA, Zuo Z. Isoflurane preconditioning reduces mouse microglial activation and injury induced by lipopolysaccharide and interferon-gamma[J].Neuroscience, 2008, 154:1002-1008.
23 Li L, Zuo Z. Isoflurane preconditioning improves short-term and long-term neurological outcome after focal brain ischemia in adult rats[J]. Neuroscience,2009, 164:497-506.
24 Gulati P, Singh N. Pharmacological evidence for connection of nitric oxide-mediated pathways in neuroprotective mechanism of ischemic postconditioning in mice[J]. J Pharm Bioallied Sci,2014, 6:233-240.
25 Staat P, Rioufol G, Piot C, et al. Postconditioning the human heart[J]. Circulation, 2005, 112:2143-2148.
26 Zhao H, Sapolsky RM, Steinberg GK. Interrupting reperfusion as a stroke therapy:ischemic postconditioning reduces infarct size after focal ischemia in rats[J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2006,26:1114-1121.
27 Pignataro G, Meller R, Inoue K, et al. In vivo and in vitro characterization of a novel neuroprotective strategy for stroke:ischemic postconditioning[J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2008, 28:232-241.
28 Scartabelli T, Gerace E, Landucci E, et al.Neuroprotection by group I mGlu receptors in a rat hippocampal slice model of cerebral ischemia is associated with the PI3K-Akt signaling pathway:a novel postconditioning strategy?[J]. Neuropharmacology,2008, 55:509-516.
29 Wang C, Neff DA, Krolikowski JG, et al. The influence of B-cell lymphoma 2 protein, an antiapoptotic regulator of mitochondrial permeability transition, on isoflurane-induced and ischemic postconditioning in rabbits[J]. Anesth Analg, 2006, 102:1355-1360.
30 Obal D, Dettwiler S, Favoccia C, et al. The influence of mitochondrial KATP-channels in the cardioprotection of preconditioning and postconditioning by sevoflurane in the rat in vivo[J]. Anesth Analg, 2005, 101:1252-1260.
31 Chiari PC, Bienengraeber MW, Pagel PS, et al.Isoflurane protects against myocardial infarction during early reperfusion by activation of phosphatidylinositol-3-kinase signal transduction:evidence for anestheticinduced postconditioning in rabbits[J]. Anesthesiology,2005, 102:102-109.
32 Fan YY, Hu WW, Dai HB, et al. Activation of the central histaminergic system is involved in hypoxiainduced stroke tolerance in adult mice[J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2011, 31:305-314.
33 Soejima Y, Ostrowski RP, Manaenko A, et al. Hyperbaric oxygen preconditioning attenuates hyperglycemia enhanced hemorrhagic transformation after transient MCAO in rats[J]. Med Gas Res, 2012, 2:9.
34 Yuan HB, Huang Y, Zheng S, et al. Hypothermic preconditioning reduces Purkinje cell death possibly by preventing the over-expression of inducible nitric oxide synthase in rat cerebellar slices after an in vitro simulated ischemia[J]. Neuroscience, 2006, 142:381-389.35
35 Su Z, Han D, Sun B, et al. Heat stress preconditioning improves cognitive outcome after diffuse axonal injury in rats[J]. J Neurotrauma, 2009, 26:1695-1706.
36 Zigmond MJ, Cameron JL, Hoffer BJ, et al.Neurorestoration by physical exercise:moving forward[J]. Parkinsonism Relat Disord, 2012, 18:S147-150.
37 Cerqueira FM, Cunha FM, Laurindo FR, et al. Calorie restriction increases cerebral mitochondrial respiratory capacity in a NO*-mediated mechanism:impact on neuronal survival[J]. Free Radic Biol Med, 2012,52:1236-1241.
38 Pepping JK, Freeman LR, Gupta S, et al. NOX2 deficiency attenuates markers of adiposopathy and brain injury induced by high-fat diet[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2013, 304:E392-E404.
【點(diǎn)睛】
大腦預(yù)適應(yīng)保護(hù)是一種新興的腦保護(hù)策略,本文對(duì)幾種常見的大腦預(yù)適應(yīng)保護(hù)現(xiàn)象展開詳細(xì)介紹。