林曉婕, 魏 巍, 何志剛, 林曉姿*
(1.福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究中心,福建 福州350013;2.福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)工程技術(shù)研究所,福建 福州350013)
黃酒也稱為米酒,是我國歷史最悠久的傳統(tǒng)釀造酒,作為傳統(tǒng)的保健養(yǎng)生佳品,其功用和價值早已得到廣泛的認(rèn)可和應(yīng)用[1],國家也將其列入了“十一五”國家科技支撐計劃的重點科研項目中;然而,對黃酒功效和活性物質(zhì)的研究還停留在起步階段,同時生產(chǎn)中發(fā)生的黃酒酸敗問題不僅降低了出酒率,還常常造成生產(chǎn)加工上的困難[2];2004年以來,黃酒的相關(guān)研究顯著增加,大大提高了對黃酒理化檢測和發(fā)酵工藝的研究水平,但對于有機(jī)酸等活性物質(zhì)仍不能滿足多種物質(zhì)的同時檢測需求。因此,有必要建立一種快速、準(zhǔn)確、同時檢測多種有機(jī)酸的方法,從而深入對黃酒活性物質(zhì)的研究,為黃酒的工藝控制和新品種研發(fā)提供支持。
黃酒中的有機(jī)酸包括琥珀酸、乳酸、醋酸、酒石酸、蘋果酸、檸檬酸、草酸等,其中部分來自原料或酵母代謝產(chǎn)生;部分由細(xì)菌污染產(chǎn)生,如丁酸等[2,3]。有機(jī)酸不僅構(gòu)成黃酒的組成成分,同時又是風(fēng)味成分的前體物質(zhì),在貯存過程中部分逐步形成芳香酯,增加濃厚感,降低甜度[4]。目前有機(jī)酸的分析方法主要有滴定法[5]、分光光度法[6]、酶法[7]、熒光法[8]、薄層色譜法[9]、毛細(xì)管電泳法[10]、分子印跡固相萃取法[11]、氣相色譜法[12]、高效液相色譜法[13]等,國內(nèi)外大多利用高效液相色譜法來檢測有機(jī)酸[14]。呂旭聰?shù)龋?5]建立了針對黃酒和葡萄酒中酒石酸、甲酸、蘋果酸、乳酸、乙酸、檸檬酸、琥珀酸的反相高效液相色譜檢測方法。近年發(fā)展起來的離子排斥色譜法(ion-exclusion chromatography,IEC)操作更為簡便,樣品前處理簡單,極適合含水基體,對強(qiáng)親水性和強(qiáng)揮發(fā)性的物質(zhì)不會造成損失,幾乎不受無機(jī)陰離子的干擾,對有機(jī)酸的分析具有特異性且檢出限低[16]。目前,采用IEC 測定黃酒中的有機(jī)酸尚未見報道。本文建立了IEC 測定黃酒中有機(jī)酸的方法,同時對13種有機(jī)酸進(jìn)行了定性定量分析,該方法操作較反相液相色譜法更為簡便,靈敏度、準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性高,為黃酒發(fā)酵品質(zhì)的監(jiān)控、產(chǎn)品質(zhì)量的提升提供了相關(guān)依據(jù)。
e2695型高效液相色譜儀及2998型光電二極管陣列檢測器(美國Waters公司);Milli-Q 超純水系列(美國密理博公司);Christ RVC2-18 臺式離心濃縮儀;梅特勒XP205DR電子天平(精確到0.01 mg)。Sep-pak C18 200 mg 固 相 萃 取 小 柱(美 國Waters公司)。草酸、馬來酸、檸檬酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、琥珀酸、乳酸、富馬酸、乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、蟻酸(美國Sigma公司);乙腈(德國默克公司);硫酸(優(yōu)級純)。取福建6家知名黃酒品牌的市售產(chǎn)品為樣品,分別編號為1?!?#。
色 譜 柱:IC-Pak Ion Exclusion 色 譜 柱(WAT010290,Waters公司)(300 mm×7.8 mm,7μm)及IC-Pak Ion Exclusion Insert 保 護(hù) 柱 芯(WAT020770,Waters公司)。柱溫50 ℃。流動相:H2SO4溶液(A)與乙腈(B)的混合溶液(體積比為98∶2),線性梯度程序:0~40 min,流動相A 的濃度由0.01 mol/L上升到0.02 mol/L;40~50 min,流 動 相A 的 濃 度 為0.01 mol/L;流 速 為0.5 mL/min。進(jìn)樣體積為10μL;檢測波長為210 nm。
參 照 郭 燕 等[17]、Usenik 等[18]的 方 法,樣 品 以10 000 g離心10 min,取上清液,稀釋至適當(dāng)濃度后,用0.45μm 濾膜過濾,備用。
分別精密稱取適量草酸、馬來酸、富馬酸5 mg,檸檬酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、琥珀酸、乳酸50 mg,吸取1 g/L乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸50μL,用超純水溶解并定容至5 mL,混合標(biāo)準(zhǔn)溶液稀釋成不同質(zhì)量濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
2.1.1 流動相的選擇
流動相成分的選擇 參考文獻(xiàn)[19,20]報道,選擇蟻酸、硫酸的水溶液為流動相水相,以酸濃度0.01 mol/L、流速0.5 mL/min、柱溫50℃、水相溶液(A)與乙腈(B)的混合溶液(體積比為98∶2)對有機(jī)酸混合標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品進(jìn)行了分析測定,結(jié)果表明:以蟻酸為流動相水相時,在30 min內(nèi)未見出峰;以硫酸作流動相水相時,檸檬酸與酒石酸、琥珀酸與乳酸均未基線分離,其余9種有機(jī)酸基本得到基線分離。
硫酸濃度的選擇 考察不同硫酸濃度(0.004、0.006、0.008、0.010、0.015、0.020 mol/L)條件下的分離情況。結(jié)果表明,硫酸濃度越低,檸檬酸與酒石酸、琥珀酸與乳酸的分離效果越差,當(dāng)硫酸濃度為0.004 mol/L時,檸檬酸與酒石酸重疊;隨著硫酸濃度的增大,檸檬酸與酒石酸、琥珀酸與乳酸的分離效果越來越好,但馬來酸與檸檬酸、富馬酸與醋酸的分離度降低,因此選擇了1.2 節(jié)的梯度洗脫流動相。在此條件下,13種有機(jī)酸在30 min內(nèi)均得到了很好的分離。
乙腈比例的選擇 分別考察了不同體積比(98∶2、96∶4、94∶6)的H2SO4溶液與乙腈的混合溶液。結(jié)果表明,流動相中不同的乙腈比例對有機(jī)酸分離效果沒有影響,隨著乙腈比例的加大,柱壓升高,因此選擇體積比為98∶2。
2.1.2 流速的選擇
固定1.2 節(jié)其他條件不變,考察了不同流速(0.3、0.5、0.8、1 mL/min)對分離效果的影響。結(jié)果表明,流速越低,分離度越好,分析時間越長;當(dāng)流速為0.3 mL/min時,分析時間為50 min,綜合考慮分離度和分析時間,選擇流速為0.5 mL/min。
2.1.3 柱溫的選擇
分別考察了30、40、45、50、55、60℃這6個柱溫條件,結(jié)果表明,隨著柱溫升高,各種有機(jī)酸分離度增加,但溫度超過55℃時,基線漂移嚴(yán)重,因此選擇50 ℃柱溫,13種有機(jī)酸達(dá)到定量要求。
2.1.4 檢測波長的選擇
13種有機(jī)酸的紫外最大吸收峰均在210 nm 左右,硫酸溶液在210 nm 處幾乎沒有紫外吸收,因此選擇在210 nm 處檢測有機(jī)酸。
在優(yōu)化的色譜條件下,對混合的標(biāo)準(zhǔn)樣品進(jìn)行檢測,草酸、馬來酸、富馬酸、檸檬酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、琥珀酸、乳酸、乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸的質(zhì)量濃度依次為0.005、0.005、0.500、0.500、0.500、0.030、0.500、0.500、0.005、1.000、1.000、1.000、1.000 g/L。從圖1 可以看出,13 種有機(jī)酸能夠較好的分離和檢出。
2.2.1 線性范圍與檢出限
將13種有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品配制成混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行HPLC 分析,對各測得值進(jìn)行相關(guān)系數(shù)分析和線性回歸分析。結(jié)果(見表1)表明,除了草酸和抗壞血酸的相關(guān)系數(shù)分別為0.999 8和0.999 7外,其他11種有機(jī)酸的相關(guān)系數(shù)都為0.999 9,說明各種有機(jī)酸組分的峰面積和有機(jī)酸組分的質(zhì)量濃度的線性相關(guān)性很好,在此條件下可以很好地測定有機(jī)酸的含量。當(dāng)信噪比(S/N)為3時,測得13 種有機(jī)酸的檢出限,草酸、馬來酸、醋酸、丙酸、異丁酸和丁酸的檢出限為0.01 mg/L,富馬酸的檢出限為0.001 mg/L,其余6種有機(jī)酸的檢出限為0.1 mg/L。
表1 13種有機(jī)酸的線性范圍、線性回歸方程、相關(guān)系數(shù)和檢出限Table 1 Linear ranges,regression equations,correlation coefficients,limits of detection of the 13 organic acids
圖1 有機(jī)酸混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的高效液相色譜圖Fig.1 HPLC chromatogram of organic acid standards
2.2.2 精密度考察
將混合標(biāo)準(zhǔn)溶液連續(xù)進(jìn)樣5次,根據(jù)所得峰面積考察精密度,草酸、馬來酸、富馬酸、檸檬酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、琥珀酸、乳酸、乙酸、丙酸、異丁 酸、丁 酸 的RSD 分 別 為0.4%、0.2%、0.8%、0.5%、0.3%、0.5%、0.2%、0.4%、0.1%、0.2%、0.3%、0.2%、0.2%,表明該方法的精密性良好。
2.2.3 重復(fù)性
取同一份混合均勻的黃酒樣品5份,離心后用0.45μm 濾膜過濾待測,連續(xù)進(jìn)樣,測得草酸、馬來酸、檸檬酸、酒石酸、蘋果酸、抗壞血酸、琥珀酸、乳酸、乙酸的平均質(zhì)量濃度分別為0.005 1、0.000 5、0.055 9、0.270 5、0.466 2、0.107 2、3.888 7、4.552 4、0.000 4 g/L,RSD 分 別 為0.2%、1.9%、0.7%、0.4%、2.0%、1.3%、2.1%、0.2%、2.1%,表明該方法的重復(fù)性達(dá)到分析的要求。
2.2.4 回收率
采用加標(biāo)回收法測定回收率。精確量取10 mL按1.3節(jié)方法處理的同一樣品5份,加入混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,用0.45μm 濾膜過濾,平行測定5次,根據(jù)加標(biāo)濃度和測定濃度計算各標(biāo)準(zhǔn)品的回收率及RSD。結(jié)果(見表2)表明,各有機(jī)酸的回收率為93.4%~103.8%,RSD 為0.1%~1.5%。
表2 13種有機(jī)酸的回收率及精密度(RSD)(n=5)Table 2 Recoveries and precisions of the 13 organic acids(n=5)
圖2 黃酒樣品中有機(jī)酸的HPLC 譜圖Fig.2 HPLC chromatogram of organic acids in a rice wine sample
對福建6家知名黃酒品牌的市售產(chǎn)品測定有機(jī)酸的組成和含量。黃酒中的組分很多,除有機(jī)酸外,還含有色素、氨基酸、多酚、糖等干擾組分,經(jīng)固相萃取和高速離心預(yù)處理黃酒樣品的色譜分離度差異不大,出于成本及操作簡便的考慮,選擇采用高速離心的方法處理樣品。圖2為3#樣品的色譜圖,黃酒樣品中的有機(jī)酸含量測定結(jié)果見表3。表3 表明,因各種酒的釀造工藝和原材料的不同,含有的有機(jī)酸的種類和含量也有所不同。6種黃酒樣品中乳酸和琥珀酸的含量相對較高,其中乳酸主要由乳酸菌的同型發(fā)酵產(chǎn)生,琥珀酸主要由乳酸菌的異型發(fā)酵產(chǎn)生,草酸、馬來酸和富馬酸的含量相對較低,均不含丙酸、異丁酸和丁酸。
表3 黃酒樣品中的有機(jī)酸含量(n=5)Table 3 Contents of organic acids in rice wine samples(n=5) g/L
本實驗建立了一種利用離子排斥色譜同時測定13種有機(jī)酸含量的方法,該方法簡便、快速、準(zhǔn)確,不僅適用于福建黃酒樣品中有機(jī)酸的分析,也可用于其他酒中有機(jī)酸的分析。該方法成功地定性定量分析了黃酒中的主要有機(jī)酸,該方法對黃酒發(fā)酵過程中的有機(jī)酸動態(tài)研究及黃酒生產(chǎn)質(zhì)量控制具有實用價值。
[1] Gui Z F.Wine Manufacture.Beijing:Chemical Industry Press(桂祖發(fā).酒類制造.北京:化學(xué)工業(yè)出版社),2001:210
[2] Feng D M,Sun S Q,Ma H X,et al.China Brewing(馮德明,孫詩清,馬紅霞,等.中國釀造),2010(1):125
[3] Feng D M,Zhang Y,Zhao H M,et al.China Brewing(馮德明,張洋,趙惠明,等.中國釀造),2009(3):157
[4] Feng A J,Zhao W H,Bai W D,et al.China Brewing(馮愛軍,趙文紅,白衛(wèi)東,等.中國釀造),2010(8):144
[5] Tu Y Y,Xu H R,Liang H L,et al.Food Science(屠幼英,須海榮,梁惠玲,等.食品科學(xué)),2002,23(10):113
[6] Carneiro J M T,Zagatto E A G,Santos J L M,et al.Anal Chim Acta,2002,474:161
[7] Mato I,Huidobro J F,Sánchez M P,et al.Food Chem,1998,62(4):503
[8] Huang Z X,Dai R Z.Food &Fermentation Industries(黃志先,戴仁澤.食品與發(fā)酵工業(yè)),1985(6):26
[9] Wu Y G,Kuang B H,Long F.Chinese Journal of Chromatography(吳有光,匡渤海,龍飛.色譜),1996,14(4):259
[10] Han H F,Wang Q,Liu X,et al.Chinese Journal of Chromatography(韓海峰,王慶,劉霞,等.色譜),2012,30(5):538
[11] Chen F F,Shi Y P.Chinese Journal of Chromatography(陳方方,師彥平.色譜),2013,31(7):626
[12] Kóvacs A,Mortl M,Kende A.Microchem J,2011,99:125
[13] Chinnici F,Spinabelli U,Riponi C,et al.J Food Compos Anal,2005,18:121
[14] Ma R,Ou Y J,Li X,et al.Chinese Journal of Chromatography(馬瑞,歐陽嘉,李鑫,等.色譜),2012,30(1):62
[15] LüX C,Huang Z Q,Huang R L,et al.Food &Fermentation Industries(呂旭聰,黃志清,黃若蘭,等.食品與發(fā)酵工業(yè)),2010,36(6):132
[16] Yuan X Y,Wu W,Yu H.Life Science Instruments(原小寓,吳偉,于泓.生命科學(xué)儀器),2005(3):29
[17] Guo Y,Liang J,Li M M,et al.Food Chemistry(郭燕,梁俊,李敏敏,等.食品科學(xué)),2012,33(2):227
[18] Usenik V,F(xiàn)abcic J,Stampar F.Food Chem,2008,107:185
[19] Rodríguez-Bernaldo de Quirós A,Lage-Yusty M A,López-Hernández J.Talanta,2009,78:643
[20] Oliveira A P,Pereira J A,Andrade P B,et al.Food Chem,2008,111:393