楊少梅,侯 瑾,黃志寧,李福男
(廈門大學(xué)藥學(xué)院,福建 廈門361102)
紫杉醇(Paclitaxel)又名泰素,最早由 Monroe E Wall和 Mansukh C Wani從太平洋紅豆杉(Taxusbrevifolia)的樹皮中分離得到,并命名為紫杉醇[1].紫杉醇具有獨(dú)特的作用機(jī)制,研究報(bào)道指出其能誘導(dǎo)與促進(jìn)微管蛋白聚合、微管裝配與微管穩(wěn)定,抑制細(xì)胞有絲分裂,從而阻止腫瘤細(xì)胞的生長[2].臨床數(shù)據(jù)表明,紫杉醇對乳腺癌、卵巢癌、肺癌等有良好的療效.對其藥物機(jī)理的研究一直是該藥的研究熱點(diǎn)之一[3].
人血清白蛋白(HSA)是血漿中含量最豐富的重要載體蛋白,具有儲運(yùn)內(nèi)源性代謝產(chǎn)物和外源性藥物小分子(離子)等重要生理功能,參與許多重要的生命過程[4].藥物進(jìn)入血液后,先和 HSA結(jié)合成復(fù)合物(可逆),然后再被運(yùn)輸?shù)綑C(jī)體的各個(gè)部位進(jìn)行釋放.因此研究HSA與藥物的結(jié)合具有多重的理論和現(xiàn)實(shí)意義.
本研究采用等溫滴定量熱法對紫杉醇分子與HSA間的相互作用進(jìn)行了研究,對傳統(tǒng)的光譜學(xué)研究是一種補(bǔ)充,同時(shí)也取得了一些有意義的結(jié)果.測定物質(zhì)相互作用焓變和熵變,可從原子和基團(tuán)的性質(zhì)、取向、位置和距離的變化等更加微觀的層面上理解對其與HSA相互作用的規(guī)律,能夠系統(tǒng)地研究紫杉醇分子在血液中的運(yùn)輸與傳遞等與HSA的相互作用.配體的熱力學(xué)特征與配體-蛋白復(fù)合物的結(jié)構(gòu)生物學(xué)特征相結(jié)合,深入揭示配體-受體的結(jié)合本質(zhì),對開發(fā)安全高效的抗腫瘤藥物作用提供分子機(jī)制的理論支持.
Cary eclipse型熒光分光光度計(jì)(Varian,USA),Cary 50-bio型 紫 外-可 見 分 光 光 度 計(jì) (Varian,Australia),ITC 200型等溫滴定量熱儀(GE,USA),ICM 3.3-04a(Molsoft,USA),Millipore超純水系統(tǒng)(Millipore).紫杉醇(Sigma,USA),HSA (Sigma,USA).
1.2.1 熒光光譜實(shí)驗(yàn)
實(shí)驗(yàn)從3個(gè)溫度(293,303和310K)考察紫杉醇對HSA的熒光猝滅.HSA濃度為5μmol/L(溶于1 mol/L的pH為7.4的磷酸鹽緩沖液(PBS)中).紫杉醇溶于二甲基亞砜(DMSO)中,使用時(shí)用PBS稀釋至終濃度5mmol/L,以含等量的DMSO的PBS作為陰性對照.實(shí)驗(yàn)激發(fā)波長為285nm,狹縫寬度為5nm.
1.2.2 紫外-可見吸收光譜實(shí)驗(yàn)
實(shí)驗(yàn)于303K下進(jìn)行,HSA濃度為1μmol/L(溶于1mol/L的pH 為7.4的PBS中).紫杉醇溶于DMSO中,使用時(shí)用PBS稀釋至終濃度1mmol/L,以含等量的DMSO的PBS作為陰性對照.掃描范圍250~300nm.
1.2.3 等溫滴定量熱實(shí)驗(yàn)
等溫滴定量熱實(shí)驗(yàn)在ITC200型等溫滴定量熱儀上進(jìn)行.設(shè)定起始補(bǔ)償功率(DP)值為5.將50μmol/L HSA(溶于含質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%DMSO的PBS中)溶液注入200μL的量熱池,紫杉醇溶于1mol/L的PBS(5%DMSO,pH 7.4)中,滴定濃度為5mmol/L.反應(yīng)維持溫度在303K,控制攪拌速率為1 000r/min,間隔時(shí)間120s,每次的滴定體積為2μL,分20次完成,基線穩(wěn)定后啟動實(shí)驗(yàn).以等濃度的紫杉醇滴定200μL的1 mol/L的PBS(5%DMSO,pH 7.4)作為扣除紫杉醇的稀釋熱的空白對照.
1.2.4 分子對接實(shí)驗(yàn)
紫杉醇與 HSA的結(jié)合作用在 Molsoft ICM3.3-04a軟件進(jìn)行模擬.選擇蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫中HSA的晶體結(jié)構(gòu)(ID 4IW1)作為對接模型,運(yùn)用ICM3.3-04a進(jìn)行蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)換和構(gòu)象調(diào)整,并由Icmpocketfinder自動產(chǎn)生結(jié)合位點(diǎn).通過Refine程序?qū)Φ鞍踪|(zhì)與紫杉醇對接結(jié)構(gòu)進(jìn)行柔性處理后進(jìn)行對接實(shí)驗(yàn).
2.1.1 熒光猝滅機(jī)制
由于HSA分子中存在色氨酸和酪氨酸2個(gè)生色基團(tuán),因此使其具有內(nèi)源熒光的特性[5].本文以285 nm的激發(fā)光為激發(fā)波長,在290~500nm波長范圍內(nèi)測定HSA溶液的熒光發(fā)射光譜.結(jié)果表明,在高能量激發(fā)光作用下,HSA在340nm波長處出現(xiàn)了熒光(圖1(a)).從圖1(a)可以看出,HSA 濃度保持不變,其內(nèi)源性熒光隨著紫杉醇濃度的增加逐步猝滅,說明紫杉醇改變了HSA的微環(huán)境,提示二者可能發(fā)生相互作用[6].
熒光猝滅過程通常分為動態(tài)猝滅和靜態(tài)猝滅兩類.動態(tài)猝滅是由猝滅劑和熒光物質(zhì)之間發(fā)生相互碰撞而引起,而靜態(tài)猝滅則是猝滅劑和熒光物質(zhì)形成了穩(wěn)定的復(fù)合物而引起的猝滅[7].對于純動態(tài)或者純靜態(tài)猝滅,其作用過程均遵循方程(1)[8]:
式中,F(xiàn)0是HSA溶液的熒光強(qiáng)度,F(xiàn)是加入紫杉醇后HSA溶液的熒光強(qiáng)度,cQ是體系中紫杉醇的總濃度,KSV是Stern-Volmer猝滅常數(shù),且由下式定義:
式中,Kq是由擴(kuò)散過程控制的碰撞動態(tài)猝滅速率常數(shù)[L/(mol·s)],τ0生物大分子內(nèi)源性熒光壽命值為10-8s[9].本文在不同溫度下(293,303,310K),根據(jù)式(1)以F0/F對cQ的關(guān)系作圖(圖1(b)).結(jié)果顯示,Stern-Volmer曲線呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,且隨著溫度升高曲線斜率逐漸降低,表明動態(tài)碰撞不是引起HSA熒光猝滅的主要原因,而是由于藥物和蛋白形成了復(fù)合物,從而引起的靜態(tài)猝滅[10].經(jīng)式(1)擬合計(jì)算得出,猝滅常數(shù) Ksv分別為15.1×103,13.6×103和11.8×103L/mol.由式(2)進(jìn)一步得到碰撞動態(tài)猝滅速率常數(shù)Kq分別為15.1×1011,13.6×1011和11.8×1011L/(mol·s),由于各類猝滅劑對生物大分子最大擴(kuò)散控制的碰撞動態(tài)猝滅常數(shù)為2.0×1010L/(mol·s),進(jìn)一步說明紫杉醇對HSA的熒光猝滅是由于形成復(fù)合物引起的靜態(tài)猝滅[11].
圖1 紫杉醇與HAS熒光測定結(jié)果Fig.1 The fluorescence result of HSA and Paclitaxel
2.1.2 紫杉醇與HSA的結(jié)合常數(shù)KA、結(jié)合位點(diǎn)數(shù)n
設(shè)紫杉醇與HSA形成n個(gè)結(jié)合位點(diǎn)的復(fù)合物,由Lineweaver-Burk公式(3)可獲得 KA和n[12-13]:
圖2 紫杉醇與HSA結(jié)合的Lineweaver-Burk線性圖Fig.2 Lineweaver-Burk plot for the binding of Paclitaxel with HSA
2.2.1 紫杉醇與HSA作用力類型的判斷
猝滅體和生物大分子的相互作用力主要有氫鍵、范德華力、靜電引力和疏水力[14].當(dāng)溫度相差不大時(shí),可以把反應(yīng)焓變看成一個(gè)常數(shù),兩物質(zhì)間相互作用的熱力學(xué)參數(shù)符合下列關(guān)系[15]:
其KA為不同溫度下對應(yīng)的結(jié)合常數(shù),與為焓變與熵變,為吉布斯自由能,是判斷一個(gè)反應(yīng)是否能自發(fā)進(jìn)行的標(biāo)準(zhǔn).R是熱力學(xué)氣體常數(shù),取值為8.314(mol·K)/J,T 是熱力學(xué)溫度.通過式(4)和(5)可以求出熱力學(xué)常數(shù)的變化,結(jié)果見表1.
2.2.2 等溫滴定量熱法檢測HSA與紫杉醇的相互作用
大分子與小分子間的相互作用常伴隨著一個(gè)能量的改變.由于小分子的加入,大分子在溶液中微環(huán)境的改變,原有的各種化學(xué)鍵被破壞,小分子與大分子間重新形成新的化學(xué)鍵,因此會產(chǎn)生一個(gè)吸熱或者放熱的效應(yīng).本文以測定注入紫杉醇后含HSA的樣品池所釋放或吸收的熱量為基礎(chǔ),獲得兩物質(zhì)相互作用的熱力學(xué)參數(shù).如圖3所示,紫杉醇與HSA反應(yīng)屬于放熱反應(yīng),隨著紫杉醇濃度的逐漸增大,二者之間的結(jié)合呈現(xiàn)一個(gè)飽和的趨勢.
對于藥物配體(紫杉醇)與蛋白質(zhì)(HSA)的結(jié)合過程,其基本假設(shè)為一個(gè)蛋白質(zhì)分子可有:1)i類結(jié)合位點(diǎn),它們可結(jié)合相同的配體,同類中的所有位點(diǎn)在熱力學(xué)意義上是相同的;2)i類結(jié)合位點(diǎn)相互獨(dú)立,即蛋白質(zhì)分子的每一類受體位點(diǎn)與藥物配體的結(jié)合率彼此互不依賴.基于上述假設(shè)和Langmuir結(jié)合理論有[17-18]:
式中cL,0和cP,0分別為藥物配體紫杉醇和HSA的初始濃度,cL是結(jié)合過程達(dá)到平衡狀態(tài)時(shí)藥物配體的游離濃度,θi、Ki和Ni分別是第i類結(jié)合位點(diǎn)的結(jié)合率、結(jié)合常數(shù)和結(jié)合位點(diǎn)數(shù).將式(6)代入式(7)可得公式(8):
表1 HSA與紫杉醇相互作用的熱力學(xué)參數(shù)Tab.1 The thermodynamic parameters for the interaction between Paclitaxel and HSA
圖3 紫杉醇與HSA等溫滴定結(jié)果Fig.3 The isothermal titration result of HSA and Paclitaxel
等溫滴定量熱實(shí)驗(yàn)中第j次注射所得到的熱量(Qj)可表示為:
式中,Vcell是反應(yīng)池中被滴定劑的體積,Δθi是從第(j-1)次滴定到第j次滴定第i類結(jié)合位點(diǎn)結(jié)合率的變化是第i類位點(diǎn)的結(jié)合焓,也就是每摩爾的藥物分子與結(jié)合位點(diǎn)結(jié)合過程標(biāo)準(zhǔn)焓的變化.cL,0和cP,0是已知量并且Qj可以通過量熱實(shí)驗(yàn)得到.事實(shí)上,Qj是關(guān)于Ni,Ki和的函數(shù).基于上述理論,假設(shè)HSA與紫杉醇的結(jié)合位點(diǎn)為1,利用ITC200自帶的origin7.0軟件的one bindsite模式以紫杉醇與HSA物質(zhì)的量濃度比為橫坐標(biāo),對應(yīng)反應(yīng)放熱量為縱坐標(biāo)作圖,進(jìn)行非線性最小方差擬合,如圖3(b)所示,可以得到紫杉醇與HSA之間相互作用的熱力學(xué)參數(shù).經(jīng)擬合,確定二者間結(jié)合常數(shù)Ki為8.8×103L/mol,焓變?yōu)?-99.1kJ/mol,熵 變?yōu)?-183.6 J/(mol·K),吉布斯自由能為-43.5kJ/mol,與熒光光譜分析結(jié)果基本一致.
動態(tài)猝滅僅影響熒光體的激發(fā)態(tài),卻不影響熒光體的吸收光譜,而基態(tài)配合物的形成則會引起熒光體的吸收光譜的變化.本實(shí)驗(yàn)分別測定了HSA、HSA與紫杉醇混合溶液(以相應(yīng)的紫杉醇為空白)的紫外吸收光譜 (圖4-a,b,c,d,e,f).實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:HSA 在278nm處有一吸收峰,一般認(rèn)為278nm處的吸收主要來源于芳香族氨基酸色氨酸,酪氨酸以及苯丙氨酸.加入紫杉醇后,HSA在250~300nm波長范圍內(nèi)吸光度增大,說明HSA與紫杉醇確實(shí)有結(jié)合.
圖4 溫度為303K時(shí)紫杉醇對HSA紫外吸收光譜的影響Fig.4 The ultraviolet absorption spectra of HSA which caused by Paclitaxel at 303K
由圖4可以看出,紫杉醇的加入使HSA在278 nm波長處的吸收峰強(qiáng)度升高,峰的位置稍微藍(lán)移,這說明紫杉醇與HSA基態(tài)分子發(fā)生了相互作用,形成了基態(tài)配合物,從而引起了HSA紫外吸收光譜的變化.動態(tài)猝滅只影響熒光分子的激發(fā)態(tài),并不改變熒光物質(zhì)的吸收光譜,因此可以進(jìn)一步說明紫杉醇對HSA的熒光猝滅機(jī)制為靜態(tài)猝滅.
根據(jù)Fǒrster提出的偶極-偶極非輻射能量轉(zhuǎn)移理論,當(dāng)2種化合物分子滿足以下條件將會發(fā)生非輻射能量轉(zhuǎn)移現(xiàn)象[19-20]:1)供體能發(fā)熒光;2)供體的熒光發(fā)射光譜與受體的紫外-可見吸收光譜有足夠重疊;3)供體與受體足夠接近,最大距離不超過7 nm.HSA有很強(qiáng)的熒光,觀察紫杉醇的紫外-可見吸收光譜,發(fā)現(xiàn)其與HSA的熒光光譜有著較大程度的重疊.HSA的熒光光譜和紫杉醇的紫外-可見吸收光譜見圖5.
圖5 HSA熒光發(fā)射光譜(a)與紫杉醇紫外-可見吸收光譜(b)的重疊圖Fig.5 The overlap spectra of the fluorescence emission spectrum of HSA (a)and the absorbance spectrum of Paclitaxel(b)
供體分子與受體分子發(fā)生能量轉(zhuǎn)移時(shí),非輻射能量轉(zhuǎn)移效率E、供體與受體間距離r及臨界能量轉(zhuǎn)移距離R0有如下關(guān)系[21]:
式中,F(xiàn)0為熒光發(fā)射體的初始熒光強(qiáng)度;F為當(dāng)微環(huán)境中受體分子濃度與熒光發(fā)射體濃度相等時(shí)熒光發(fā)射體的熒光強(qiáng)度;k2為偶極空間取向因子,平均值為2/3;N為介質(zhì)折射常數(shù),值為1.366;Φ 為 HSA的熒光量子產(chǎn)率,通常取蛋白質(zhì)中色氨酸的量子產(chǎn)率0.15;J為供體熒光發(fā)射光譜與受體吸收光譜的重疊區(qū)域,其積分公式為:
式中,F(xiàn)(λ)和ε(λ)分別代表在波長λ處 HSA的熒光強(qiáng)度和紫杉醇的摩爾吸光系數(shù).當(dāng)二者濃度均為5 μmol/L時(shí)(圖5),重疊面積J可由式(13)計(jì)算得到,值為1.413(cm3·L)/mol.經(jīng)計(jì)算得出在溫度為303 K時(shí),供體分子(HSA)與受體分子(紫杉醇)的熒光共振能量轉(zhuǎn)移的效率E為4.5%,二者間的作用距離r為3.1nm.
運(yùn)用ICM3.3-04a軟件進(jìn)行HSA蛋白的結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)換和加氫處理,由Icmpocketfinder自動產(chǎn)生一個(gè)半徑約為8nm的結(jié)合口袋,其兩側(cè)主要由α-螺旋和無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)圍成,該口袋即為紫杉醇與其的結(jié)合位點(diǎn)(圖6(a)).
如圖6(b)所示,疏水性氨基酸殘基(如L115,V186,F(xiàn)509以及L529等)組成疏水核心,而E17,K195,R212,D340,R222及K436等則位于親水表面.分子對接結(jié)果表明,紫杉醇通過與K58,K195,R222及K436殘基之間的氫鍵等作用力結(jié)合在HSA的結(jié)合口袋中,氫鍵和范德華力是二者間結(jié)合的主要結(jié)合作用力,該結(jié)果與熒光光譜和等溫滴定量熱法所推斷的結(jié)果相一致.
圖6 HSA與紫杉醇的對接結(jié)果Fig.6 Docking result of Paclitaxel with HSA
本實(shí)驗(yàn)采用光譜法及等溫滴定量熱法研究了模擬生理?xiàng)l件下紫杉醇與HSA的相互作用.結(jié)果表明,靜態(tài)猝滅是導(dǎo)致紫杉醇對HSA熒光猝滅的主要原因.根據(jù)Fǒrster提出的偶極-偶極非輻射能量轉(zhuǎn)移理論得出紫杉醇與HSA二者間的相互作用距離是3.1 nm,該作用距離表明了HSA與紫杉醇之間可發(fā)生非輻射能量轉(zhuǎn)移,其熒光共振能量轉(zhuǎn)移效率為4.5%.由不同溫度的熒光實(shí)驗(yàn)得到二者間反應(yīng)的熱力學(xué)參數(shù)可知,紫杉醇與HSA間的反應(yīng)是熵驅(qū)動下自發(fā)進(jìn)行(<0)的反應(yīng),二者間的作用力以氫鍵和范德華力為主<0,<0).等溫滴定量熱實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證了熒光光譜實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,證明了紫杉醇與HSA相互作用屬于自發(fā)進(jìn)行的放熱反應(yīng).紫杉醇與HSA二者在303K時(shí)的結(jié)合常數(shù)僅為10.7×103L/mol(熒光結(jié)果)和8.8×103L/mol(等溫滴定量熱結(jié)果),遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于配體與受體之間特異性結(jié)合的結(jié)合常數(shù)(107~1014L/mol),說明二者的結(jié)合屬于非特異性結(jié)合.二者間較弱的相互作用有利于紫杉醇在血液中的運(yùn)輸及達(dá)到靶蛋白后的交換結(jié)合.
[1]Ma P,Mumper R J.Paclitaxel nano-delivery systems:a comprehensive review[J].Journal of Nanomedicine &Nanotechnology,2013,4(2):1000164.
[2]Tanimukai H,Kanayama D,Omi T,et al.Paclitaxel induces neurotoxicity through endoplasmic reticulum stress[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2013,437(1):151-155.
[3]Zhang Q,Si S,Schoen S,et al.Suppression of autophagy enhances preferential toxicity of paclitaxel to folliculindeficient renal cancer cells[J].J Exp Clin Cancer Res,2013,32(1):99.
[4]趙曉飛,徐靖源,謝承志,等.兩個(gè)多呲啶銅配合物與人血清蛋白的相互作用[J].天津醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2013,19(4):279-281.
[5]Li J,Li J,Jiao Y,et al.Spectroscopic analysis and molecular modeling on the interaction of jatrorrhizine with human serum albumin(HSA)[J].Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2014,118:48-54.
[6]Zhang X,Li L,Xu Z,et al.Investigation of the interaction of naringin palmitate with bovine serum albumin:spectroscopic analysis and molecular docking[J].PLoS One,2013,8(3):e59106.
[7]Shahabadi N,Khorshidi A,Moghadam N H.Study on the interaction of the epilepsy drug,zonisamide with human serum albumin (HSA)by spectroscopic and molecular docking techniques[J].Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2013,114:627-632.
[8]齊國敏.一種吖啶-4-酰胺類探針的制備及其與牛血清蛋白作用的研究[J].福州大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,41(5):940-946.
[9]唐玉林,高占,徐宏,等.銅離子與SALI3-2蛋白的相互作用[J].高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報(bào),2013,34(1):128-134.
[10]Agudelo D,Bourassa P,Bruneau J,et al.Probing the binding sites of antibiotic drugs doxorubicin and N-(trifluoroacetyl)doxorubicin with human and bovine serum albumins[J].PLoS One,2012,7(8):e43814.
[11]Tabassum S,Al-Asbahy W M,Afzal M,et al.Synthesis,characterization and interaction studies of copper based drug with human serum albumin (HSA):spectroscopic and molecular docking investigations[J].Journal of Photochemistry and Photobiology B:Biology,2012,114:132-139.
[12]Zaidi N,Ajmal M R,Rabbani G,et al.A Comprehensive insight into binding of hippuric acid to human serum albumin:a study to uncover its impaired elimination through hemodialysis[J].PLoS One,2013,8(8):e71422.
[13]陶慧林,黎舒懷,徐銘澤,等.山奈素與牛血清蛋白相互作用:Tachiya模型與Stern-Volmer方程的對比研究[J].分析測試學(xué)報(bào),2013,32(2):186-192.
[14]Sun T,L Liu,Sun Y,et al.Synthesis and characterization of TiO2nanoparticles:applications in research on the interaction of colloidal TiO2with human serum albumin by fluorescence spectroscopy[J].Anal Sci,2012,28(5):491-496.
[15]鄧少東,帥歐,林勵,等.光譜法研究野漆樹苷與人血清蛋白的結(jié)合作用[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2012,28(11):1620-1623.
[16]付彩霞,黃玉玲,高宗華,等.2,4-二硝基苯肼與牛血清蛋白的相互作用[J].光譜實(shí)驗(yàn)室,2013,30(2):943-946.
[17]徐香玉,孫祥軍,劉敏,等.氧化苦參堿與牛血清白蛋白相互作用的熱力學(xué)研究[J].化學(xué)學(xué)報(bào),2009 (18):2155-2158.
[18]王冬冬,孫德志,李林尉,等.5-氟尿嘧啶與牛血清白蛋白的 相 互 作 用 [J].物 理 化 學(xué) 學(xué) 報(bào),2007,23(10):1627-1630.
[19]Chatterjee T,Pal A,Dey S,et al.Interaction of virstatin with human serum albumin:spectroscopic analysis and molecular modeling[J].PLoS One,2012,7(5):e37468.
[20]Feroz S R,Mohamad S B,Bakri Z S D,et al.Probing the interaction of a therapeutic flavonoid,pinostrobin with human serum albumin:multiple spectroscopic and molecular modeling investigations[J].PLoS One,2013,8(10):e76067.
[21]Ranjbar S,Shokoohinia Y,Ghobadi S,et al.Studies of the interaction between isoimperatorin and human serum albumin by multispectroscopic method:identification of possible binding site of the compound using esterase ac-tivity of the protein[J].The Scientific World Journal,2013,2013:1-13.