向 華,南麗麗,李春曉,王克婧,杜 璽
(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué) 草業(yè)學(xué)院/草業(yè)生態(tài)系統(tǒng)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/甘肅省草業(yè)工程實(shí)驗(yàn)室/中-美草地畜牧業(yè)可持續(xù)發(fā)展研究中心,甘肅 蘭州 730070)
鉛是重金屬“五毒”之一,它不僅阻礙植物生長發(fā)育,降低作物產(chǎn)量和質(zhì)量,還可通過食物鏈的富集,被吸收到人體并嚴(yán)重危害人體健康[1]。NO是生物體中氧化還原信號分子和毒性分子,也是一種活性氮(RNS)。在植物體內(nèi)通過一氧化氮合酶(NOS)和硝酸還原酶(NR)催化形成[2]。研究表明,鉛對植物種子萌發(fā)及幼苗生長的影響通過其改變植物生理生化過程實(shí)現(xiàn)。魏學(xué)玲等[3]利用室內(nèi)水培試驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),外源NO促進(jìn)Pb2+脅迫下小麥種子萌發(fā)及幼苗生長,增強(qiáng)小麥對Pb2+脅迫的適應(yīng)性,并能有效地緩解Pb2+脅迫下葉綠素a、葉綠素b和葉綠素總量的降低。張遠(yuǎn)兵等[4]發(fā)現(xiàn),外源NO對Pb2+1 000 mg/L脅迫下高羊茅生長影響具有劑量效應(yīng),適宜濃度能緩解鉛毒害,提高耐鉛性。孫立榮等[5]研究發(fā)現(xiàn),50~100 μmol/L的外源NO供體硝普鈉(SNP)可以促進(jìn)鹽脅迫下黑麥草幼苗的生長,且100 μmol/L SNP促進(jìn)效果最明顯。雍山玉等[6]發(fā)現(xiàn)NO對植物體的作用具有雙重性,低濃度(100和300 μmol/L)SNP浸種處理能顯著緩解NaCl脅迫,抑制辣椒種子的萌發(fā)。
苜蓿為優(yōu)質(zhì)豆科牧草,具有產(chǎn)量高、持久性好、飼用價(jià)值高、用途廣等眾多優(yōu)點(diǎn),在世界各地的畜牧業(yè)中發(fā)揮著重要的作用。苜蓿除了用于飼養(yǎng)牲畜之外,還可以作為護(hù)坡植物,園林上多用作鹽堿地、貧瘠土地的綠化草種和景觀野花用草種,同時(shí)也是很有利用價(jià)值的土壤鉛污染修復(fù)植物。為此,研究外源NO供體SNP結(jié)合Pb2+處理對雜花苜蓿種子萌發(fā)及幼苗生理生化特性的影響,以期通過調(diào)節(jié)NO水平來改善植物生理狀況,為深入研究農(nóng)作物Pb2+毒害的緩解技術(shù)提供理論參考。
1.1.1 供試苜蓿品種為雜花苜蓿阿爾岡金,種子由甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)學(xué)院提供。發(fā)芽試驗(yàn)于2012年5~6月在培養(yǎng)室進(jìn)行。雜花苜蓿種子用蒸餾水反復(fù)沖洗然后吸干,于25 ℃下,設(shè)置6個(gè)處理,分別為CK完全Hoagland營養(yǎng)液;T1 Hoagland營養(yǎng)液+100 μmol/L SNP;T2 Hoagland營養(yǎng)液+250 mg/L氯化鉛;T3 Hoagland營養(yǎng)液+500 mg/L氯化鉛;T4 Hoagland營養(yǎng)液+100 μmol/L SNP+250 mg/L氯化鉛;T5 Hoagland營養(yǎng)液+100 μmol/L SNP+500 mg/L 氯化鉛,先浸種24 h,再于28 ℃催芽24 h后,選發(fā)芽一致的種子,播于放有濕潤濾紙10 cm的培養(yǎng)皿中,每蒸發(fā)皿100粒,置25 ℃,光照強(qiáng)度3 000 lx,每天光照12 h的培養(yǎng)室中培養(yǎng),定時(shí)取樣分析測定,每組重復(fù)7次。
1.1.2 幼苗培養(yǎng) 試驗(yàn)選用清洗干凈的細(xì)沙,用去離子水反復(fù)沖洗后烘干備用。選發(fā)芽一致的種子,播于裝有280 g干燥細(xì)沙的塑料杯內(nèi)。待幼苗長出真葉時(shí),選長勢良好且一致的幼苗轉(zhuǎn)移到含Hoagland營養(yǎng)液的培養(yǎng)缽中繼續(xù)培養(yǎng)至三葉期時(shí),設(shè)置6個(gè)處理,完全隨機(jī)設(shè)計(jì),重復(fù)4次。各處理繼續(xù)培養(yǎng)20 d后,沖洗干凈葉片,用濾紙吸干多余水分,封入密封袋并迅速放入液氮中速凍,貯存于-80 ℃超低溫冰箱,用于各生理指標(biāo)的測定。
1.2.1 發(fā)芽勢、發(fā)芽率、胚芽、胚根的測定 發(fā)芽期間每隔24 h記錄1次,第4 d統(tǒng)計(jì)發(fā)芽勢、第10 d統(tǒng)計(jì)發(fā)芽率,胚根長和胚芽長采用精度0.1 mm游標(biāo)卡尺測量,每處理隨機(jī)抽取20株幼苗,分別測定,求平均數(shù)。
1.2.2 生理指標(biāo)的測定 植株根系活力采用氯化三苯基四氮唑(TTC)法測定,可溶性糖含量采用蒽酮比色法測定,游離脯氨酸含量采用酸性茚三酮法測定,丙二醛含量采用硫代巴比妥酸法測定,可溶性蛋白質(zhì)含量采用考馬斯亮藍(lán)G-250染色法測定,超氧化物歧化酶(SOD)活性采用氮藍(lán)四唑光化還原法測定,過氧化氫酶活性采用高錳酸鉀滴定法測定[7]。
用Excel 2003處理數(shù)據(jù)和繪圖,SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行方差分析。
種子萌發(fā)是作物對外界有所反應(yīng)的開始,也是作物對外界反應(yīng)的敏感期。T1處理100 μmol/L SNP、T2處理250 mg/L氯化鉛(低Pb2+濃度)、T4處理100 μmol/L SNP+250 mg/L 氯化鉛(SNP與低Pb2+濃度組合)均提高了苜蓿種子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率和胚根胚芽長(表1),與對照相比,發(fā)芽勢、發(fā)芽率、胚根長、胚芽長依次提高6.49%,10.17%和22.03%,3.11%,10.17%和2.28%,4.93%,2.35%和22.77%,4.84%,17.44%和20.90%;T3處理500 mg/L氯化鉛(高Pb2+濃度)明顯降低了苜蓿種子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率、胚根長(P<0.05),與CK相比,分別降低了9.04%,6.57%和11.74%;T5處理100 μmol/L SNP+500 mg/L氯化鉛(SNP與高 Pb2+濃度組合)處理明顯緩解了高鉛脅迫對種子發(fā)芽勢、胚根長的抑制作用,分別較T3處理增加了9.32%和11.17%(P<0.05)。
表1 SNP對Pb脅迫下雜花苜蓿種子萌發(fā)的影響Table 1 Effects of nitric oxide on seed germination under Pb stress
注:同列不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),下同
各處理脯氨酸含量均顯著高于對照(P<0.05)(圖1),分別較對照增加了49.19%、55.37%、128.62%、207.66%和57.28%。T4和T3處理可溶性蛋白質(zhì)含量顯著高于對照(P<0.05),分別較對照增加3.84%和2.14%,其他處理與對照差異均不顯著。
由圖2可知,T1,T4和T5處理的可溶性糖含量增幅顯著(P<0.05);T2和T3處理可溶性糖含量降幅顯著(P<0.05),分別下降了26.81%和21.06%。T1和T2處理的根系活力均顯著高于對照(P<0.05),分別較對照增加13.28%和21.30%,其他處理均顯著低于對照(P<0.05)。
2.4 SNP對Pb脅迫下苜蓿MDA含量的影響
由圖3可知,T3,T4和T5處理的MDA含量均顯著大于對照(P<0.05),分別是對照的2.26,1.55和2.13倍;T2顯著小于對照(P<0.05),比對照小23.33%;T1處理與對照差異不明顯。
圖1 SNP對Pb脅迫下雜花苜蓿脯氨酸和可溶性蛋白含量的影響Fig.1 Effects of NO on proline and protein contents under Pb stress
圖2 SNP對Pb脅迫下苜??扇苄蕴呛透祷盍Φ挠绊慒ig.2 Effects of NO on water soluble sugar content and root activity under Pb stress
圖3 SNP對Pb脅迫下雜花苜蓿MDA含量的影響Fig.3 Effects of NO on MDA content under Pb stress
Pb2+是一種對植物生長發(fā)育有毒害的重金屬元素。種子能否正常萌發(fā)是某物種在某一地區(qū)形成自然群落的關(guān)鍵因素[8]。研究種子萌發(fā)對逆境脅迫的反應(yīng),是系統(tǒng)認(rèn)識逆境傷害機(jī)理的較好途徑。NO作為一種信號分子能促進(jìn)種子萌發(fā)、提高種子的發(fā)芽率、促進(jìn)胚芽和胚根生長[9]。在試驗(yàn)中,T1(SNP)、T2(低Pb2+濃度)和T4(SNP與低Pb2+濃度組合)處理下,苜蓿種子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率、胚芽胚根長均高于相應(yīng)對照,說明NO、低鉛濃度、NO與低鉛濃度組合脅迫均對苜蓿種子的萌發(fā)有促進(jìn)作用。
研究表明,Pb2+進(jìn)入植物體內(nèi)后絕大部分累積在根部[10],其原因是Pb2+在根系主要以Pb(PO4)2和PbCO3等沉淀形式存在,在植物汁液中也有離子態(tài)和絡(luò)合態(tài)Pb,由于吸持、鈍化或沉淀作用,植物根系所吸收的Pb向地上部運(yùn)輸較困難,根系活力是反映其生長狀況的重要指標(biāo)。脯氨酸作為重要的滲透調(diào)節(jié)物與植物體內(nèi)活性氧自由基的清除以及膜脂過氧化作用的減弱有密切的關(guān)系[11]。植物在逆境條件下通過積累可溶性糖等有機(jī)物來調(diào)節(jié)細(xì)胞滲透壓,以增加適應(yīng)環(huán)境的能力[12]。可溶性蛋白含量升高有助于提高植物對逆境的抵抗力[13,14]。MDA是膜脂過氧化的產(chǎn)物,其含量的變化可作為檢測逆境條件下膜系統(tǒng)受傷害程度的指標(biāo)[15,16]。試驗(yàn)表明,與對照比較,T2處理下的雜花苜蓿幼苗,其MDA含量顯著下降,表明雜花苜蓿幼苗對鉛具有一定的耐性,低濃度促進(jìn)其生長,這與王艷等[17]在剪股穎、白彥真等[18]在紫花苜蓿上的研究結(jié)果一致;用T1處理雜花苜蓿幼苗,其MDA含量與對照差異不顯著,但小于對照,表明外源NO供體SNP可促進(jìn)雜花苜蓿幼苗的生長,這與前人在水稻[19]、向日葵[20]、白羽扇豆幼苗[21]、辣椒[6]和黑麥草[22]的研究結(jié)果相似,說明NO是一種植物生長調(diào)節(jié)劑,能夠像生長素一樣調(diào)控植物生長;用T3(高Pb2+濃度)和T5(SNP與高Pb2+濃度組合)處理雜花苜縮幼苗,其MDA含量顯著增加,表明高濃度鉛脅迫下苜蓿幼苗膜脂過氧化水平提高,膜系統(tǒng)的穩(wěn)定性下降;用T4處理雜花苜蓿幼苗,MDA含量雖高于對照,但顯著小于T3和T5處理,表明植株體內(nèi)的可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)、脯氨酸等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)已經(jīng)啟動,提高了植株清除自由基防御系統(tǒng)的防御能力,緩解了高鉛脅迫對苜蓿幼苗的氧化損傷作用,使細(xì)胞膜受活性氧的傷害減輕。
綜上所述,低Pb2+濃度(250 mg/L )、SNP(100 μmol/L)、SNP與低Pb2+濃度(100 μmol/L SNP+250 mg/L)組合處理均增加了雜花苜蓿種子發(fā)芽勢、發(fā)芽率、胚芽胚根長,提高了幼苗脯氨酸、可溶性糖及可溶性蛋白質(zhì)的含量,增強(qiáng)了根系活力,降低了MDA含量;高Pb2+濃度(500 mg/L)抑制了雜花苜蓿種子萌發(fā)和幼苗的生長,且100 μmol/L SNP不能緩解高鉛脅迫對植株的影響。
參考文獻(xiàn):
[1] 任艷芳,何俊瑜,張沖,等.鉛脅迫對萵苣種子萌發(fā)和部分生理代謝的影響[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,26(4):740-744.
[2] Wendehenne D,Pugin A,Klessig D F.Nitric oxide:comparative synthesis and signaling in animal and plant cells[J].Trends Plant Science,2001,6(4):177-183.
[3] 魏學(xué)玲,史如霞,賈凌云,等.外源一氧化氮對鉛脅迫下小麥種子萌發(fā)及幼苗生理特性的影響[J].植物研究,2011,31(1):34-39.
[4] 張遠(yuǎn)兵,劉愛榮,張雪平,等.外源一氧化氮對鉛脅迫下高羊茅生長和無機(jī)離子含量的影響[J].廣西植物,2009,29(3):360-365.
[5] 孫立榮,郝福順,呂建洲,等.外源一氧化氮對鹽脅迫下黑麥草幼苗生長及生理特性的影響[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2008,28(11):5714-5722.
[6] 雍山玉,郁繼華,王燕燕,等.外源一氧化氮對鹽脅迫下辣椒種子萌發(fā)和幼苗生理的影響[J].甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2007(4):51-55.
[7] 鄒琦.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2000.
[8] 顏宏,趙偉,秦峰梅.鹽堿脅迫對堿地膚、地膚種子萌發(fā)以及幼苗生長的影響[J].東北師范大學(xué)學(xué)報(bào),2006,38(4):117-123.
[9] 袁芳,楊劍超,陳敏,等.NaCl脅迫下外源NO供體硝普鈉(SNP)對鹽地堿蓬種子萌發(fā)的影響[J].植物生理學(xué)通訊,2010,46(1):24-28.
[10] 劉秀梅,聶俊華,王慶仁.6種植物對Pb的吸收與耐性研究[J].植物生態(tài)學(xué)報(bào),2002,26(5):533-537.
[11] 孫小霞.高羊茅對鉛遞進(jìn)脅迫的生理響應(yīng)[J].河南科技大學(xué)學(xué)報(bào),2006,27(6):75-78.
[12] 劉家堯,衣艷君,張其德.鹽脅迫對不同植物鹽性小麥葉片熒光誘導(dǎo)動力學(xué)的影響[J].植物學(xué)通報(bào),1998,15(20):46-49.
[13] 張明生,謝波,談鋒,等.甘薯可溶性蛋白、葉綠素及ATP含量變化與品種抗旱性關(guān)系的研究[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2003,36(1):13-16.
[14] 趙紅洋,陳莉.鹽分脅迫對5種園林灌木生理生化指標(biāo)的影響[J].草原與草坪,2012,32 (2):7-14.
[15] 馮瑞章,魏琴.外源NO對NaCl脅迫下燕麥幼苗氧化損傷的緩解效應(yīng)[J].草原與草坪,2012,32 (6):7-10,16.
[16] 尚小娟,王靜,多立安.堆肥基質(zhì)馴化的高羊茅對鹽脅迫的生理生態(tài)響應(yīng)[J].草原與草坪,2011,31 (1):28-33.
[17] 王艷,辛士剛,馬蓮菊,等.翦股穎和高羊茅對銅、鉛吸收及耐受性[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2007,18(3):625-630.
[18] 白彥真,謝英荷,陳燦燦,等.鉛對紫花苜蓿生長及氮、磷、鉀、鉛含量影響初探[J].山西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,26(3):261-263.
[19] Hsu YT,Kao KH.Cadmium toxicity is reduced by nitricoxide in rice leaves[J].Plant Growth Regul,2004,42:227-238.
[20] Laspina NV,Groppa M D,Tomaro M L,etal.Nitric oxide protects sunflower leaves against Cd-induced oxidative stress[J].Plant Science,2005,169(2):323-330.
[21] Kopyra M,Gwóz′dz′E A.Nitric oxide stimulates seed germination and counteracts the inhibitory effect of heavy metals and salinity on root growth of Lupinusalbus L.[J].Plant Physiol Biochem,2003,41:1011-1017.
[22] 孫立榮,郝福順,呂建洲,等.外源一氧化氮對鹽脅迫下黑麥草幼苗生長及生理特性的影響[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2008,28(11):5714-5722.