趙從波,章淑艷,羅同陽,李賓
(河北省微生物研究所,河北 保定 071051)
乳糖酶(Lactase)學(xué)名β-D-半乳糖苷半乳糖水解酶(β-D-galactoside galactohydrase),能夠水解β-D-半乳糖苷和α-L-阿拉伯糖苷,而催化乳糖的實(shí)用意義較大,故被研究得最多[1]。牛乳和乳清中含有大量乳糖,它是乳制品中的主要碳水化合物,乳糖酶的存在是乳糖在人體內(nèi)進(jìn)行正常代謝的一個必要條件,如果數(shù)量缺少或活性不夠,就會導(dǎo)致消化障礙[2]。近年來,對米曲霉、黑曲霉、脆壁酵母、乳酸酵母等菌株乳糖酶的研究報(bào)道較多,而對青霉乳糖酶的研究相對較少。本文利用一株青霉菌發(fā)酵生產(chǎn)乳糖酶,為提高乳糖酶的酶活,采用PB設(shè)計(jì)和響應(yīng)面法對其發(fā)酵條件進(jìn)行研究,確定了最佳產(chǎn)酶條件,以期為乳糖酶的生產(chǎn)提供理論基礎(chǔ)。
菌株:青霉 Aspergillus oryzae。
主要試劑:鄰硝基苯酚(ONP),鄰硝基苯酚-β-D-半乳糖苷 (ONPG),pH值為5.5濃度為0.02 mol/L乙酸-乙酸鈉緩沖液。
培養(yǎng)基:斜面培養(yǎng)基(PDA培養(yǎng)基)。基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖20 g,乳糖5 g,蛋白胨6 g,玉米漿3 g,MgSO4·7H2O 0.3 g,K2HPO4·3H2O 0.5 g,KH2PO40.5 g,Tween-80 1.5 mL,水1 000 mL。
1.2.1 單孢子懸液的制備
取30℃條件下培養(yǎng)4 d的斜面菌種,加10 mL的無菌生理鹽水,將孢子振蕩打散,用帶脫脂棉的漏斗進(jìn)行過濾,然后用無菌生理鹽水將孢子懸液稀釋。血球計(jì)數(shù)板測定孢子濃度。
1.2.2 培養(yǎng)方法
將菌種轉(zhuǎn)接斜面活化,待孢子成熟后制備孢子懸液,接種發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,接種量104mL-1。發(fā)酵條件:30℃,200 r/min,裝液量100 L/500 L。
1.2.3 繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線
ONP標(biāo)準(zhǔn)液的制備:稱取139.0 mg的鄰硝基苯酚,用10 mL體積分?jǐn)?shù)為95%的乙醇溶解后,轉(zhuǎn)移至1 000 mL的容量瓶中,用水定容并搖勻。
分別移取鄰硝基苯酚儲備液2,4,6,8,10,12 mL和14 mL到100 mL的容量瓶中,分別加入25 mL的碳酸鈉溶液,再用反應(yīng)緩沖液定容至刻度,搖勻,溶液鄰硝基苯酚的濃度分別是0.02,0.04,0.06,0.08,0.10,0.12 mmol/L和0.14 mmol/L。選擇合適的分光光度計(jì),用1 cm的吸收池,用水作空白,在420 nm處測定每個稀釋液的吸光度[3],結(jié)果如表1所示。
表1 不同濃度鄰硝基苯酚420 nm處吸光度
以420 nm處吸光度為橫坐標(biāo),鄰硝基苯酚的濃度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖1所示。
圖1 乳糖酶酶活標(biāo)準(zhǔn)曲線
1.2.4 粗酶液的制備
發(fā)酵液在4℃條件下,10 000 r/min離心15 min,取上清液測定酶活。
1.2.5 酶活測定
鄰硝基苯酚β-D半乳糖苷(ONPG)溶于濃度為0.02 mol/L乙酸緩沖液(pH值為5.5)配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.25%的底物溶液。取400 μL酶液加入1 600 μL底物溶液中,50℃保溫15 min。加入2 mL濃度為1 mol/L的Na2CO3顯色,測定420 nm光吸收值。計(jì)算水解產(chǎn)物鄰硝基酚(ONP)的含量和酶活性。
酶活力單位定義:一個酶活單位(U)即在55℃和pH值5.5條件下每分鐘將ONPG分解為l μmol黃色的ONP所需的酶量。
1.2.6 培養(yǎng)基優(yōu)化方法
采用Plackett-Burman設(shè)計(jì)法,最陡爬坡實(shí)驗(yàn)和響應(yīng)面法。
PB設(shè)計(jì)法是一種兩水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,它可以用最少的試驗(yàn)次數(shù)使各因素的主效應(yīng)得到盡可能精確的估計(jì),從眾多考察因素中快速篩選出最為重要的幾個因素,以供進(jìn)一步研究[4]。本研究選用實(shí)驗(yàn)次數(shù)N=12的設(shè)計(jì),培養(yǎng)基中的8種成分:葡萄糖、乳糖、蛋白胨、玉 米 漿 、MgSO4·7H2O、 K2HPO4·3H2O、 KH2PO4、Tween-80,分別作為PB設(shè)計(jì)中的8個因素x1x2x3…x8,每個因素取兩個水平,低水平“–”為原始培養(yǎng)條件,高水平 “+”取低水平的1.25倍。響應(yīng)值為乳糖酶酶活(Y)。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)水平及編碼如表2所示;實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)、數(shù)據(jù)分析及模型建立均采用Minitab 16軟件來進(jìn)行,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果如表3所示,各因素效應(yīng)及評價(jià)如表4所示。
表2 PB實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)水平及編碼
表3 PB實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
表4 各因素效應(yīng)值及顯著性分析
由表4可以看出,葡萄糖、乳糖和玉米漿對青霉產(chǎn)乳糖酶的結(jié)果有顯著影響,可信度均大于95%,3個因素均為正效應(yīng),因此,提高3個因素的濃度可以提高乳糖酶的酶活。
由于葡萄糖、乳糖和玉米漿3個因素的濃度對乳糖酶的酶活有顯著影響,且均為正效應(yīng),應(yīng)提高濃度。根據(jù)效應(yīng)的大小確定爬坡步長,逼近最大區(qū)域。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果如表5所示。
表5 最陡爬坡實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
由表5得知,最佳結(jié)果在實(shí)驗(yàn)3和4之間,故以實(shí)驗(yàn)3為實(shí)驗(yàn)中心點(diǎn)做響應(yīng)面設(shè)計(jì)。
利用minitab16軟件,根據(jù)Box-behnken的中心組合設(shè)計(jì)原理進(jìn)行實(shí)驗(yàn),以葡萄糖、乳糖和玉米漿為自變量,以乳糖酶酶活為響應(yīng)值,實(shí)驗(yàn)因素水平如表6所示,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果如表7所示。
表6 中心組合實(shí)驗(yàn)變量及水平
表7 中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
以乳糖酶酶活為響應(yīng)值,根據(jù)表7的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,用minitab16軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行二次回歸分析,得到的回歸方程為:
分析結(jié)果如表8和表9所示。
模型的相關(guān)系數(shù)R2=98.12%,調(diào)整后R2=94.74%,說明此模型與實(shí)驗(yàn)擬合很好,能夠很好地預(yù)測發(fā)酵培養(yǎng)基組分與乳糖酶酶活的關(guān)系。
表8 回歸系數(shù)檢驗(yàn)
表9 方差分析結(jié)果
構(gòu)建乳糖酶酶活與發(fā)酵培養(yǎng)組分葡萄糖、乳糖和玉米漿的三維空間響應(yīng)面圖,結(jié)果如圖2~圖4所示。
圖2 Y與x1,x2的響應(yīng)面
圖3 Y與x1,x3的響應(yīng)面
圖4 Y與x2,x3的響應(yīng)面
由圖2~圖4可以看出,此模型具有最大值,利用minitab16軟件響應(yīng)優(yōu)化器進(jìn)行優(yōu)化,最大處x1=0.2323,x2=-0.2929,x3=0.6162, 以上代碼換算可得:x1=36.2,x2=6.7,x3=4.4,在此條件下,預(yù)測的乳糖酶酶活為123.6 U/mL。
為了確定實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性,對上述優(yōu)化的培養(yǎng)基和初始培養(yǎng)基進(jìn)行了驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn),分別做了3組平行實(shí)驗(yàn)。乳糖酶的酶活達(dá)到了124.3 U/mL,與預(yù)測值非常接近,僅相差0.57%,比初始培養(yǎng)提高了32.3%。
Plackett-Burman設(shè)計(jì)法和響應(yīng)面分析法在微生物發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化中廣泛應(yīng)用,并取得了良好的效果,本研究應(yīng)用這兩種方法對青霉液體發(fā)酵產(chǎn)乳糖酶的發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行了優(yōu)化,最終確定了最佳的發(fā)酵培養(yǎng)基為:葡萄糖36.2 g/L,乳糖6.7 g/L,蛋白胨6 g/L,玉米漿4.4 g/L,MgSO4·7H2O 0.3 g/L,K2HPO4·3H2O 0.5 g/L,KH2PO40.5 g/L,Tween-80 1.5 mL/L。 在此條件下,乳糖酶的酶活比初始培養(yǎng)基提高了32.3%。
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