蔣 威,徐 旭,景艷艷,楊 贊,方尚玲*
(湖北工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院 工業(yè)發(fā)酵湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心 發(fā)酵工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430068)
梔子是茜草科(Rubiaceae)梔子屬(Gardenia)植物,具有瀉火除煩、清熱利尿、涼血解毒的作用,外治扭挫傷[1-2]。近年來(lái)對(duì)梔子苷的研究表明,其在消化系統(tǒng)、心血管系統(tǒng)、中樞神經(jīng)系統(tǒng)及抗炎、抗腫瘤、降血糖方面具有廣泛的藥理作用[3-6]。
大孔吸附樹脂是一類不帶離子交換基團(tuán)的多孔性交聯(lián)聚合物吸附劑,具有良好的大孔網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)和較大的比面積,對(duì)化學(xué)物質(zhì)的分離作用主要由其吸附選擇性產(chǎn)生,對(duì)單味中藥提取物中苷類成分、黃酮、生物堿的分離效果良好,有的已經(jīng)實(shí)現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)[7-9]。
目前,梔子中梔子苷的提取和純化方法多為水提醇沉法。本實(shí)驗(yàn)以提取梔子黃之后的廢液為原料,利用大孔吸附樹脂富集,以較簡(jiǎn)便的方法得到較高純度的梔子苷產(chǎn)品,有利于工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)。
梔子:市售;梔子苷廢液:利用梔子果提取梔子黃時(shí)產(chǎn)生的廢液;梔子苷對(duì)照品:中國(guó)生物制品檢定所,批號(hào)20 140122;大孔樹脂X-5、AB-8、HPD-400、D3520、D1300、NKA:鄭州勤實(shí)科技有限公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
UV-2201PC型紫外-可見分光掃描儀:日本島津公司;EV-201旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠。
1.3.1 樹脂靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)
(1)樹脂的預(yù)處理
樹脂預(yù)處理方法見參考文獻(xiàn)[10]。
(2)靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)
靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)見參考文獻(xiàn)[11]。
靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)吸附率及解吸率的計(jì)算公式為:
式中:A1為吸附前梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值,A2為吸附平衡后梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值,A3為解吸后體積分?jǐn)?shù)30%乙醇中梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值。
1.3.2 樹脂動(dòng)態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)
(1)樹脂的預(yù)處理
樹脂預(yù)處理方法同上。
(2)動(dòng)態(tài)吸附流速確定研究
分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0mL/min、2.5mL/min、3.0 mL/min的流速進(jìn)行動(dòng)態(tài)吸附。當(dāng)達(dá)到吸附平衡時(shí),流出液的吸光度值不再變化,記錄上樣液和流出液體積,測(cè)定總流出液和樣液的吸光度值,吸附量計(jì)算公式如下:
式中:V樣為上樣液體積,mL;V流流出液體積為,mL;A流為總流出液的吸光度值;A樣為樣液的吸光度值;V柱為樹脂床體積,mL。
(3)不同濃度梔子廢液對(duì)樹脂吸附率的研究
各取120 mL(3BV)不同濃度梔子苷廢液(稀釋5、10、15、20、25倍)上柱,確定流速動(dòng)態(tài)吸附,分別收集流出液,在238 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值A(chǔ)238nm,確定最佳梔子苷廢液濃度,吸附率計(jì)算公式如下:
式中:A0為梔子苷上樣液238 nm處吸光度值,V0為上樣體積,mL;A1為流出液在238 nm處吸光度值,V1為流出液體積;mL。
(4)泄漏曲線的繪制
上述條件下將梔子廢液上柱吸附,每20 mL流出液收集一份,以每份流出液在238 nm波長(zhǎng)處的吸光度值為縱坐標(biāo),以流出液編號(hào)為橫坐標(biāo),繪制泄漏曲線。
1.3.3 動(dòng)態(tài)洗脫實(shí)驗(yàn)
(1)不同體積分?jǐn)?shù)乙醇對(duì)樹脂的影響
分別用不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇對(duì)吸附飽和的樹脂進(jìn)行洗脫,每20 mL流出液收集一份,分別測(cè)定其在238 nm波長(zhǎng)處的吸光度值A(chǔ)238nm,以流出液的編號(hào)為橫坐標(biāo),以每份流出液在238 nm波長(zhǎng)處的吸光度值為縱坐標(biāo),繪制不同體積分?jǐn)?shù)乙醇洗脫曲線。
(2)不同流速對(duì)樹脂洗脫的影響
以確定乙醇體積分?jǐn)?shù)作為洗脫劑,分別采用不同的流速對(duì)梔子苷洗脫,實(shí)驗(yàn)步驟同上,繪制不同流速洗脫曲線。
(3)動(dòng)態(tài)洗脫曲線的繪制
以確定上樣液濃度,流速,吸附量條件下得到已經(jīng)飽和樹脂,再以上述確定洗脫流速,用2BV去離子水除去水溶性雜質(zhì),用確定乙醇體積分?jǐn)?shù)進(jìn)行洗脫,實(shí)驗(yàn)步驟同上,繪制動(dòng)態(tài)洗脫曲線。收集同一吸收峰吸光度值高的各管洗脫液,分別合并,減壓濃縮、真空干燥,測(cè)定梔子苷的含量。
1.3.4 梔子苷的濃縮與干燥
文言文教學(xué)固然存在或多或少的問題。如何認(rèn)清問題的存在,很好地解決問題是當(dāng)下急需重視的內(nèi)容。只有解決好這些問題,才能更好地指導(dǎo)文言文教學(xué)實(shí)踐。
(1)真空蒸發(fā)濃縮
使用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將精制后的梔子苷減壓濃縮除去大量乙醇和部分水分。
(2)低溫干燥
將濃縮后的梔子苷置于50 ℃干燥箱內(nèi)24 h,得淡黃色粉末梔子苷。
1.3.5 梔子苷含量的測(cè)定
(1)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作
采用紫外分光光度法,精密稱取梔子苷對(duì)照品5.1 mg,溶解于體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇中,定容于25 mL容量瓶中,精密移取0、0.5 mL、1.0 mL、1.5 mL、2.0 mL、2.5 mL于10 mL容量瓶中,分別加體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇稀釋定容至刻度,以體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇為空白,于238 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值A(chǔ)238nm,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性回歸方程[12]。
(2)樣品測(cè)定
以不同樹脂對(duì)梔子苷不同的吸附率和解吸率為標(biāo)準(zhǔn),篩選對(duì)其吸附能力及解吸能力強(qiáng)的樹脂,選擇6種樹脂進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果如表1所示。
表1 不同型號(hào)大孔吸附樹脂對(duì)梔子苷的吸附解吸性能比較Table 1 Absorption and desorption performance of different types of macroporous resin for gardenoside
由表1可知,D1300樹脂吸附率和解吸率均大于其他樹脂,因此,在后續(xù)研究中確定D1300型大孔吸附樹脂對(duì)梔子苷進(jìn)行精制純化。
2.2.1 不同流速對(duì)樹脂吸附量的影響
分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0 mL/min、2.5 mL/min、3.0 mL/min的流速進(jìn)行動(dòng)態(tài)吸附,流速對(duì)樹脂吸附量的影響結(jié)果見圖1。
圖1 流速對(duì)樹脂吸附量的影響Fig.1 Effects of sample velocity on adsorption capacity
由圖1可知,隨著流速的增加,樹脂吸附量逐漸降低,不利于樹脂的吸附。雖然流速為1.0 mL/min時(shí),樹脂的吸附量最大,但是低流速會(huì)延長(zhǎng)吸附時(shí)間,同時(shí)滯留在樹脂中的雜質(zhì)也會(huì)增多;而高流速下樹脂吸附量下降太快,綜合考慮,確定1.5 mL/min為最佳吸附流速。
2.2.2 上樣液濃度對(duì)樹脂吸附率的影響
以1.5mL/min為吸附流速,各取120 mL(3BV)不同濃度梔子苷廢液(在238 nm處吸光度值分別為1.372 9、1.683 0、2.293 0、3.150 3上柱,上樣液濃度對(duì)樹脂吸附量的影響結(jié)果見圖2。
圖2 上樣液濃度對(duì)樹脂吸附率的影響Fig.2 Effects of sample concentration on adsorption rate
由圖2可知,梔子苷濃度越低越利于吸附,但是濃度過低,樹脂吸附雜質(zhì)越多,增加了分離難度。當(dāng)梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683時(shí),樹脂吸附率降低幅度不大,故選擇梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683作為最佳上樣液濃度。
2.2.3 吸附泄漏曲線的制作
以1.5 mL/min為吸附流速,以梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683為樣液濃度上柱吸附,每20 mL流出液收集一份,以每份流出液在238 nm波長(zhǎng)處的吸光度值為縱坐標(biāo),以流出液編號(hào)為橫坐標(biāo),吸附泄漏曲線見圖3。
圖3 梔子苷的吸附泄露曲線Fig.3 Leakage adsorption curve of geniposide
由圖3可知,當(dāng)收集到第12份時(shí),梔子苷開始泄露,所以梔子苷廢液(A238nm=1.683)的飽和吸附容量為12×20 mL,即12 BV(樹脂柱體積為20 mL)。
2.3.1 不同體積分?jǐn)?shù)乙醇對(duì)樹脂洗脫的影響
不同體積分?jǐn)?shù)乙醇對(duì)樹脂洗脫的影響結(jié)果見圖4。
圖4 洗脫劑乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)洗脫率的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on elution rate
由圖4可知,體積分?jǐn)?shù)為40%、50%乙醇洗脫效果最好,體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇其次,體積分?jǐn)?shù)為10%、20%乙醇洗脫效果最差。但是乙醇體積分?jǐn)?shù)過高,會(huì)將梔子廢液中的梔子色素洗脫下來(lái)[13-15],且體積分?jǐn)?shù)為40%,50%乙醇洗脫時(shí)存在拖尾現(xiàn)象,而體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇洗脫曲線窄,不存在拖尾現(xiàn)象,故選擇體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇作為洗脫劑。
2.3.2 不同流速對(duì)樹脂洗脫的影響
以體積分?jǐn)?shù)30%的乙醇作洗脫劑,分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0 mL/min、2.5 mL/min、3.0 mL/min的流速進(jìn)行動(dòng)態(tài)洗脫實(shí)驗(yàn)。流速對(duì)樹脂洗脫的影響結(jié)果見圖5。
由圖5可知,低流速有利于梔子苷的洗脫,但低流速洗脫時(shí)所花時(shí)間也越長(zhǎng),同時(shí)增加了洗脫液中的雜質(zhì);流速過高,洗脫劑與樹脂接觸不完全,洗脫效果差,綜合考慮,選擇2 mL/min為最適洗脫速率。
圖5 洗脫流速對(duì)洗脫率的影響Fig.5 Effect of elution rate on elution rate
2.3.3 動(dòng)態(tài)洗脫曲線的繪制
以1.5 mL/min為吸附流速,以梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683為樣液濃度上柱吸附,得到飽和樹脂;再以2 mL/min洗脫流速,用2BV去離子水除去水溶性雜質(zhì),用體積分?jǐn)?shù)30%乙醇進(jìn)行洗脫,動(dòng)態(tài)洗脫曲線見圖6。
圖6 動(dòng)態(tài)洗脫曲線Fig.6 Dynamic elution curve
由圖6可知,梔子苷洗脫高峰相對(duì)集中,體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇2.5~6.5 BV時(shí),梔子苷含量最高,當(dāng)洗脫液>7.0 BV時(shí),梔子苷含量明顯減少。收集體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇2.5~6.5 BV洗脫液,減壓濃縮,真空干燥,得到精制梔子苷。
2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作
采用紫外分光光度法,于238 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性回歸方程y=9.670 4x+0.038 9,相關(guān)系數(shù)R2=0.990 6,表明線性關(guān)系良好。
2.4.2 樣品測(cè)定
精密稱取5.1 mg干燥的樣品(經(jīng)大孔樹脂吸附、洗脫、濃縮、干燥后的梔子苷粉末),置于25 mL量瓶中,用體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇溶解,并定容到25 mL容量瓶中,精確吸取1 mL于10 mL容量瓶中,加體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇定容至刻度,以體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇作為空白,于238 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度值為0.436 5,計(jì)算得到梔子苷粉末中梔子苷含量為82.23%。
根據(jù)以上研究和分析,確定梔子苷精制樹脂的最佳條件:大孔吸附樹脂選擇D1300,上樣液梔子苷廢液的吸光度值A(chǔ)238nm為1.683 0,吸附流速為1.5 mL/min,吸附飽和量為12BV,洗脫流速為2 mL/min,梯度洗脫,2BV水洗,4BV體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇洗脫。收集體積分?jǐn)?shù)為30%乙醇洗脫液,濃縮干燥后得到純度為82.23%的固態(tài)梔子苷產(chǎn)品。該實(shí)驗(yàn)方法簡(jiǎn)單,材料便宜,產(chǎn)品純度比較高,適合工業(yè)化生產(chǎn)。大孔樹脂吸附純化的工藝參數(shù)較多,如樣液上柱前的凈化方法、樹脂徑高比等有待進(jìn)一步研究。
[1]楊 宇,楊 光,曾完陽(yáng).梔子苷鎮(zhèn)痛作用及其機(jī)制初步研究[J].武警醫(yī)學(xué),2013,24(3):218-223.
[2]郭曙軍,趙志英.梔子苷的藥理作用及其作用機(jī)制研究進(jìn)展[J].包頭醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2013,29(2):111-113.
[3]張立明,何開澤,任治軍,等.梔子中京尼平苷對(duì)Cc14 急性小鼠肝損傷保護(hù)作用的生化機(jī)理研究[J].應(yīng)用與環(huán)境微生物學(xué)報(bào),2005,11(6):669-672.
[4]朱文佩,劉麗華,李克和,等.梔子果實(shí)成熟度對(duì)梔子苷含量積累的影響[J].中國(guó)野生植物資源,2012,31(4):23-24.
[5]謝學(xué)建.中藥梔子研究進(jìn)展[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2000,11(10):93-94.
[6]沈榮光,陳正行.梔子中梔子苷的分離純化[J].食品工業(yè)科技,2006,27(4):123-127.
[7]涂盛輝,邱俊明,邱祖民,等.大孔吸附樹脂精制中藥梔子中梔子苷的研究[J].南昌大學(xué)學(xué)報(bào):工科版,2007,29(4):307-310.
[8]董 磊,劉帥英,陳 波.大孔吸附樹脂對(duì)梔子苷精制純化的研究[J].河南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2006,25(4):27-29.
[9]金日顯,郭春燕,劉淑芝,等.大孔吸附樹脂法富集梔子中梔子苷的工藝研究[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2005,11(3):1-2.
[10]王志超,楊小龍,張 珂,等.梔子苷藥理作用的研究進(jìn)展[J].河南科技大學(xué)學(xué)報(bào),2012,30(2):159-160.
[11]李文琪,趙新民.梔子苷的精制工藝研究[J].安徽醫(yī)藥,2005,9(9):647-648.
[12]劉 鋼,張 平,夏 泉,等.正交試驗(yàn)法優(yōu)選梔子苷的提取工藝研究[J].海峽藥學(xué),2013,25(11):21-23.
[13]景艷艷,李世杰,蔣 威,等.梔子黃色素的精制及梔子藍(lán)色素的轉(zhuǎn)化[J].化學(xué)與生物工程,2012,29(12):68-71.
[14]林 璐,鈕旭升,田立權(quán).梔子中梔子苷提取純化工藝研究[J].中醫(yī)藥學(xué)報(bào),2009,37(6):74-76.
[15]鐘振聲,潘錦秀,陳硯楷.高色價(jià)梔子黃色素的精制[J].精細(xì)化工,2007,24(6):581-583.