吳莉芳,邢秀蘋,賴紅娥,楊歡歡,秦貴信,楊 婳
(1 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科技學(xué)院,吉林 長春 130118;2 廈門利洋水產(chǎn)科技有限公司,福建 廈門 361012)
大豆抗原蛋白是指大豆及其制品中可引起人和動物產(chǎn)生過敏反應(yīng)的一些大分子蛋白質(zhì)或糖蛋白。主要包括大豆疏水蛋白、大豆殼蛋白、大豆抑制蛋白、大豆空泡蛋白、大豆球蛋白、伴大豆球蛋白、2S白蛋白等[1]。早在1934年,Duke提出大豆蛋白對人具有致敏性,通常表現(xiàn)為顫抖、咽喉水腫、皮疹和急性哮喘等癥狀[2]。隨后,學(xué)者們發(fā)現(xiàn)含有大豆及大豆制品的日糧可導(dǎo)致鼠[3]、犢牛[4]、仔豬[5]等幼齡動物發(fā)生過敏反應(yīng),引起小腸絨毛萎縮、脫落,隱窩細胞增生,進而導(dǎo)致消化吸收障礙、生長受阻和過敏性腹瀉等。另外,研究發(fā)現(xiàn),大豆蛋白能夠破壞虹鱒(Oncorhynchusmykiss)[6-9]等魚類腸道形態(tài)結(jié)構(gòu)和腸細胞結(jié)構(gòu),并且使其發(fā)生病理性變化。這些現(xiàn)象被歸因于大豆蛋白中含有的抗原蛋白。隨著大豆及其制品在人類食品和動物飼料中的廣泛應(yīng)用,由大豆所致的過敏現(xiàn)象引起了營養(yǎng)學(xué)家的密切關(guān)注。大豆球蛋白(Glycinin)是免疫原性較強的大豆抗原蛋白,能夠引起魚類消化道過敏反應(yīng),造成胃、腸道的免疫損傷,進而引起消化吸收障礙,甚至死亡。鯉魚(Cyprinuscarpio)是我國目前主要養(yǎng)殖的淡水經(jīng)濟魚類之一。張錦秀等[10]研究了去皮豆粕對幼建鯉生長性能和腸道的影響。郭林英[11]利用大豆β-伴球蛋白提取物對鯉腸上皮細胞增殖及其功能的影響進行了研究。目前,關(guān)于大豆抗原蛋白Glycinin對鯉魚不同發(fā)育時期腸道組織的影響,尚未見系統(tǒng)報道。為此,本研究分別以鯉稚魚和幼魚為試驗對象,將分離純化的大豆抗原蛋白Glycinin以不同比例添加在其配合飼料中,探討大豆抗原蛋白Glycinin對不同發(fā)育時期鯉魚腸道組織的影響,旨在為合理開發(fā)利用大豆蛋白源及大豆抗原蛋白的去除提供依據(jù)。
本試驗在鯉稚魚和幼魚配合飼料中添加的大豆抗原蛋白Glycinin是在實驗室采用簡化膜中間試驗方法[12]獲得。較好地去除了大豆中其他抗原蛋白的干擾,Glycinin的純度達到85%以上。
試驗飼料以魚粉為動物蛋白源,混合油脂(m(玉米油)∶m(魚油)=1∶1)為脂肪源,糊精、面粉作為飼料糖源,分別配制Ⅰ~Ⅴ5組等氮(鯉稚魚和幼魚飼料粗蛋白含量分別約為400和360 g/kg)等能(總能分別約為16.9和15.2 MJ/kg)試驗飼料,其Glycinin的添加梯度分別為0(對照),30,60,90和120 g/kg。將各原料粉碎過孔徑0.246 mm的篩,按配方準確稱其質(zhì)量,用電動絞肉機制成粒徑1.5和2.5 mm顆粒飼料。曬干后置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩u幹婶~、幼魚試驗飼料組成及營養(yǎng)成分見表1和表2。
表1 鯉稚魚飼料配方及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))
表2 鯉幼魚飼料配方及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))
本次飼養(yǎng)試驗在吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動物室控溫單循環(huán)系統(tǒng)中進行,試驗前預(yù)飼15 d,飽食投喂對照組飼料,預(yù)飼試驗結(jié)束后挑選規(guī)格整齊、鰭鱗完整、體質(zhì)健壯、無畸形,體質(zhì)量(10.12±0.08) g的鯉稚魚450尾、體質(zhì)量(116.89±0.13) g的鯉幼魚300尾,分別隨機放養(yǎng)在15個水族箱中(鯉稚魚每箱30尾,鯉幼魚每箱20尾)。放養(yǎng)前用20 mg/L高錳酸鉀水溶液藥浴10 min,隨機選擇3個水族箱作為一個試驗組。每天投餌2次(上午09:00,下午16:00),投餌方式為人工手撒,日投餌率為魚體質(zhì)量的3%~5%,每天記錄每個水族箱攝食飼料質(zhì)量。在整個試驗過程中,水質(zhì)保持穩(wěn)定,水溫24~26 ℃,溶解氧5.0~8.0 mg/L,氨氮指標小于0.3 mg/L,養(yǎng)殖試驗持續(xù)8周。
飼養(yǎng)試驗結(jié)束前停食24 h后,從每個處理組隨機取魚30尾,測量體長、終末體質(zhì)量、腸長、腸質(zhì)量,另從每缸隨機取魚3尾,活體解剖,觀察腸道形態(tài),去除腸道脂肪,用6.5 g/L生理鹽水沖洗腸道內(nèi)容物,迅速取前腸、中腸、后腸1.0 cm×1.0 cm組織,釘在標記好的小紙片上,快速用體積分數(shù)4%的中性甲醛固定液固定腸段。按常規(guī)組織切片制備程序進行修塊與沖洗、脫水與透明、透蠟、包埋、切片和H-E染色,細胞核被蘇木精染成藍色,細胞質(zhì)被伊紅染成粉紅色,進行腸道微觀形態(tài)結(jié)構(gòu)觀察和皺襞高度測量。使用Olympus攝影顯微鏡進行圖像采集,用Image-pro Plus 5.02軟件對各魚種前腸、中腸、后腸的皺襞高度進行測量。腸道指標計算公式如下:腸體指數(shù)=腸質(zhì)量/體質(zhì)量,腸長指數(shù)=腸長/體長。
試驗數(shù)據(jù)用“平均值±標準差(Mean±SD)”表示。采用SPSS (17.5)軟件對所有指標進行方差分析,若方差分析顯著,進一步進行LSD和Duncan’s多重比較,分析組間差異顯著性。顯著性水平設(shè)定為P<0.05。
大豆抗原蛋白Glycinin對鯉稚魚和幼魚腸道組織的影響見表3和表4。
表3 大豆抗原蛋白Glycinin對鯉稚魚腸道組織的影響
表4 大豆抗原蛋白Glycinin對鯉幼魚腸道組織的影響
由表3可知,在本試驗條件下,大豆抗原蛋白Glycinin的添加量為30,60,90和120 g/kg組(Ⅱ,Ⅲ,Ⅳ,Ⅴ組)鯉稚魚終末體質(zhì)量、中腸和后腸皺襞高度顯著低于對照組(Ⅰ組)(P<0.05),而前腸皺襞高度、腸質(zhì)量、腸長、腸體指數(shù)和腸長指數(shù)在各組之間差異不顯著(P>0.05)。
表4表明,隨著大豆抗原蛋白Glycinin添加量的增加,鯉幼魚前腸、中腸和后腸皺襞高度呈下降趨勢。大豆抗原蛋白Glycinin的添加量為60,90和120 g/kg組(Ⅲ,Ⅳ,Ⅴ組)鯉幼魚終末體質(zhì)量、后腸皺襞高度、腸質(zhì)量顯著低于對照組(P<0.05);而Glycinin的添加量為120 g/kg組的腸長和腸長指數(shù)顯著低于對照組(P<0.05);腸體指數(shù)、前腸和中腸皺襞高度在各組間差異不顯著(P>0.05)。
由圖1可知,對照組鯉稚魚腸道絨毛和紋狀緣排列整齊,黏膜下層較薄并且肌層較厚,皺襞間質(zhì)較窄。30 g/kg Glycinin添加組鯉稚魚腸道形態(tài)與對照組沒有明顯差異;60 g/kg Glycinin添加組鯉稚魚腸絨毛開始出現(xiàn)局部斷裂或破損;90和120 g/kg Glycinin添加組鯉稚魚腸道組織形態(tài)進一步被破壞,中腸和后腸受到Glycinin的影響較嚴重。
圖2表明,對照組鯉幼魚腸道絨毛和紋狀緣排列整齊,黏膜下層較薄并且肌層較厚,皺襞間質(zhì)較窄。30 g/kg Glycinin添加組鯉幼魚腸道組織形態(tài)受到Glycinin的影響不明顯;60 g/kg Glycinin添加組鯉幼魚肌層開始出現(xiàn)變薄的現(xiàn)象;90和120 g/kg Glycinin添加組鯉幼魚腸道形態(tài)受到Glycinin的影響較明顯,絨毛出現(xiàn)斷裂或者缺失。
圖1 大豆抗原蛋白Glycinin對鯉稚魚腸道形態(tài)的影響(100×)
圖2 大豆抗原蛋白Glycinin對鯉幼魚腸道形態(tài)的影響(100×)
魚類的腸道是消化吸收營養(yǎng)物質(zhì)的主要場所,也是魚類最大的黏膜免疫器官和最脆弱的免疫屏障。腸道通常是魚類感染疾病的主要途徑之一。腸道黏膜形態(tài)結(jié)構(gòu)正常是營養(yǎng)物質(zhì)消化吸收和動物正常生長的生理基礎(chǔ), 腸道皺襞高度降低意味著腸道的吸收面積減小,對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收能力降低。在本試驗條件下,大豆抗原蛋白Glycinin的添加量為30,60,90和120 g/kg組鯉稚魚中腸和后腸皺襞高度顯著低于對照組(P<0.05);大豆抗原蛋白Glycinin的添加量為60,90和120 g/kg組的鯉幼魚后腸皺襞高度顯著低于對照組(P<0.05)。關(guān)于大豆抗原蛋白Glycinin對魚類腸道皺襞高度的影響,國內(nèi)外鮮有報道,大多數(shù)研究針對大豆蛋白源。張錦秀等[10]研究報道,當(dāng)飼料中去皮豆粕(DSBM)替代50%魚粉蛋白后,幼建鯉前腸和后腸的皺襞高度下降。Baeverfjord等[13]研究報道,與對照組魚粉相比,豆粕引起大西洋鮭(Salmosalar)后腸單褶皺襞高度下降了44.3%,復(fù)合褶皺襞高度下降了21.7%。Van den Ingh等[14]對長期飼喂含全脂大豆(FFSB)和大豆蛋白濃縮物(SBPC)的大西洋鮭的前腸和后腸形態(tài)進行了研究,發(fā)現(xiàn)FFSB組大西洋鮭后腸上皮的微絨毛縮短,前腸形態(tài)與對照組差異不顯著;而SBPC組大西洋鮭前腸和后腸形態(tài)與對照組相比均無明顯異常。孫澤威等[15]報道了大豆抗原蛋白引起犢牛生長性能和腸道吸收能力下降。本研究中,添加Glycinin后,鯉稚魚和幼魚前、中、后腸皺襞高度總體呈下降趨勢,這主要是由于鯉稚魚消化和免疫器官不發(fā)達,消化系統(tǒng)發(fā)育尚不成熟,消化機能不完善,正常的腸道微生態(tài)系統(tǒng)尚未建立,使大量未消化的營養(yǎng)物質(zhì)流入腸道。因此,大豆抗原蛋白也可大量進入腸道,在獲得免疫耐受力之前,經(jīng)過一段過敏時期,引起腸道的損傷。
魚類腸道是消化吸收的重要器官,具有容納、推進、消化飼料以及吸收營養(yǎng)物質(zhì)和免疫等功能。Rumsey等[6]利用ELISA法檢測飼料中Glycinin和β-Conglycinin含量分別是58.8和34.4 mg/g時,其均可破壞虹鱒前腸和后腸上皮結(jié)構(gòu)及細胞結(jié)構(gòu)。Li 等[16]研究發(fā)現(xiàn),Glycinin和β-Conglycinin 能引起仔豬、犢牛等動物的腸道過敏,造成腸道損傷、絨毛萎縮、腺窩增生、腸道消化吸收能力下降。Urán等[17]在鯉魚飼料中添加20%的豆粕替代動物蛋白,1周后鯉魚腸道的大部分指標發(fā)生變化,3周后炎癥反應(yīng)加劇,在第4~5周時鯉魚腸道開始恢復(fù),核上空泡增加,大部分的指標恢復(fù)正常。Krogdahl等[18]、Refstie等[19]、Ksudhik等[20]分別在大西洋鮭、虹鱒、歐洲真鱸(Dicentearchuslabrax)的飼料中添加一定量的大豆蛋白,發(fā)現(xiàn)大豆蛋白使魚后腸絨毛上皮結(jié)構(gòu)發(fā)生形態(tài)變化,黏膜褶縮短。本研究通過對鯉稚魚和幼魚腸道微觀結(jié)構(gòu)的觀察發(fā)現(xiàn),在本試驗條件下,大豆抗原蛋白Glycinin的添加量為60 g/kg時,鯉稚魚腸絨毛開始出現(xiàn)局部斷裂或破損;當(dāng)Glycinin添加量為90和120 g/kg時,鯉稚魚腸道組織形態(tài)進一步被破壞,中腸和后腸受到Glycinin的影響較嚴重。當(dāng)Glycinin添加量為60 g/kg時,鯉幼魚肌層開始出現(xiàn)變薄的現(xiàn)象;當(dāng)Glycinin添加量為90和120 g/kg時,鯉幼魚腸道絨毛出現(xiàn)斷裂或者缺失。這主要是由于魚類攝食含有大豆抗原蛋白Glycinin的飼料后,大部分Glycinin被降解為肽和氨基酸。然而由于稚魚和幼魚腸道黏膜屏障發(fā)育不成熟,大豆抗原蛋白Glycinin以完整的大分子形式穿過小腸上皮細胞間或上皮細胞內(nèi)的空隙從而完整地進入血液和淋巴。這些具有抗原活性的大分子物質(zhì)刺激機體產(chǎn)生免疫反應(yīng),引起腸道絨毛萎縮,從而使腸道形態(tài)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化。
[參考文獻]
[1] L’Hocine L,Boye J I.Allergenicity of soybean:New developments in identification of allergenic proteins,cross-reactivities and hypoallergenization technologies [J].Critical Reviews in Food Science and Nutrition,2007,47:127-143.
[2] Moneret-Vautrin D A,Morisset M,Flabbee J,et al.Epidemiology of life-threatening and lethal anaphylaxis:A review [J].Allergy,2005,60:443-451.
[3] Mowat A M,Ferguson A.Hypersensitivity in the small intestinal mucosa:Ⅴ.Induction of cell-mediated immunity to a dietary antigen [J].Clinical & Experimental Immunology,1981,43(3):574-582.
[4] Dawson D P,Morrill J L,Reddy P G,et al.Soybean protein concentrate and heated soy flours and as protein sources in milk replacer for preruminant calves [J].Journal of Dairy Science,1988,71(5):1301-1309.
[5] Li D F,Nelssen J L,Reddy P G,et al.Transient hypersensitivity to soybean meal in the early-weaned pig [J].Journal of Animal Science,1990,68(6):1790-1799.
[6] Rumsey G L,Siwicki A K,Anderson D P,et al.Effect of soybean protein on serological response,non-specific defense mechanisms, growth,and protein utilization in rainbow trout [J].Veterinary Immunology and Immunopathology,1994(41):323-329.
[7] Refstie S,Korsφenφ J,Storebakken T,et al.Differing nutrition-al responses to dietary soybean meal in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) and Atlantic salmon (Salmosalar) [J].Aquaculture,2000,190:49-63.
[8] Romarheim O H,Skrede A,Gao Y L,et al.Comparison of wh-ite flakes and toasted soybean meal partly replacing fish meal as protein source in extruded feed for rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) [J].Aquaculture,2006,256:354-364.
[9] Odd Helge H,Anders S,Michael P,et al.Lipid digestibility,bile drainage and development of morphological intestinal changes in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) fed diets containing defatted soybean meal [J].Aquaculture,2008,274:329-338.
[10] 張錦秀,周小秋,劉 揚.去皮豆粕對幼建鯉生長性能和腸道的影響 [J].中國水產(chǎn)科學(xué),2007,14(2):315-320.
Zhang J X,Zhou X Q,Liu Y.Effects of dehulled soybean meal on growth performance and intestine of juvenileCyprinuscarpiovar.jian [J].Journal of Fishery Sciences of China,2007,14(2):315- 320.(in Chinese)
[11] 郭林英.大豆β-伴球蛋白提取物對鯉魚腸上皮細胞增殖及其功能的影響 [D].四川雅安:四川農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.
Guo L Y.Effects of soybean β-conglycinin extract on the proliferation and function of carp intestinal-epithelial cells in primary culture [D].Ya’an,Sichuan:Sichuan Agricultural University,2006.(in Chinese)
[12] Wu S W,Murphy P A,Johnson L A,et al.Simplified process for soybean glycinin and β-conglycinin fractionation [J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2000,48:2702-2708.
[13] Baeverfjord G,Krogdahl.Development and regression of soybean meal induced enteritis in Atlantic salmon,SalmosalarL.distal intestine:A comparison with the intestines of fasted fish [J].Fish Dis,1996(19):375-387.
[14] Van den Ingh T S G,Krogdahl A M A,Olli J J,et al.Effects of soybean-containing diets on the proximal and distal intestine in Atlantic salmon (Salmosalar):A morphological study [J].Aquaculture,1991,94:297-305.
[15] 孫澤威,秦貴信,張慶華.大豆抗原蛋白對犢牛生長性能、日糧養(yǎng)分消化率和腸道吸收能力的影響 [J].中國畜牧雜志,2005,41(11):30-33.
Sun Z W,Qin G X,Zhang Q H.Effect of soybean antigen on growth performance,nutrient digestibility and absorption ability of gut in calf [J].Chinese Journal of Animal Science,2005,41(11):30-33.(in Chinese)
[16] Li D F,Nelssen J L,Reddy P G,et al.Interrelationship between hypersensitivity to soybean proteins and growth performance in early weaned pigs [J].Journal of Animal Science,1991,69:4602-4609.
[17] Urán P A,Goncalves A A,Taverne-Thiele J J,et al.Soybean meal induces intestinal inflammation in common carp (CyprinuscarpioL.) [J].Aquaculture,2008,25:751-760.
[18] Krogdahl A,Bakke-mckellep A M,Baeverfjord G.Effects of graded levels of standard soybean meal on intestinal structure mucosal enzyme activities,and pancreatic response in Atlantic salmon (SalmosalarL.) [J].Aquaculture Nutrition,2003,9:361-371.
[19] Refstie S,Storebakken T,Baeverfjord G,et al.Long-term protein and lipid growth of Atlantic salmon (Satmosalar) fed diets with partial replacement of fish meal by soy protein products at medium or high lipid level [J].Aquaculture,2001,193:91-106.
[20] Ksudhik S J,Coves D,Dutto G.Almost total replacement of fish meal by plant protein sources in the diet of a marine teleost,the European seabass,Dicentearchuslabrax[J].Aquaculture,2004,230:391-404.