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硫化氫通過PI3K/AKT-NF-κB通路調(diào)節(jié)重癥急性胰腺炎

2014-03-04 08:49:26饒春燕胡昌倫付蘭英趙曉晏
重慶醫(yī)學(xué) 2014年29期
關(guān)鍵詞:胰腺試劑盒血漿

饒春燕,胡昌倫,付蘭英,趙曉晏△

(1.第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院消化內(nèi)科,重慶400037;2.武警重慶總隊醫(yī)院內(nèi)分泌科,重慶400061;3.重慶市中醫(yī)院脾胃科400021)

重癥急性胰腺炎(severe acute pancreatitis,SAP)是伴隨著胰周或全身性炎癥,并可發(fā)展為多器官功能障礙綜合征(multiorgan dysfunction syndrome,MODS)的胰腺炎癥過程,病死率高達20%~60%[1]。其發(fā)病機制復(fù)雜,胰酶、氧化損傷、炎癥介質(zhì)等均參與其中。目前認為SAP 發(fā)生時各種促炎細胞因子是導(dǎo)致全身炎癥反應(yīng)綜合征(systemic inflammation response syndrome,SIRS)發(fā)生的關(guān)鍵因素,而SIRS 是造成MODS 的重要原因。如何才能有效調(diào)節(jié)細胞因子的產(chǎn)生和相互作用,阻斷SIRS 和MODS 的發(fā)生,對于防止急性胰腺炎(acute pancreatitis,AP)發(fā)展為SAP 具有重要的意義。

硫化氫(hydrogen sulfide,H2S)被認為是繼CO、NO后的第3 種新型氣體分子,H2S 主要以L-半胱氨酸為底物通過激活5′-磷酸吡哆醛依賴性酶:胱硫醚-γ裂解酶(cystathionineγlyase,CSE,EC 4.4.1.1)和胱硫醚-β合成酶(cystathionineβsynthase,CBS,EC 4.2.1.22)而生成[2];同時,還可以以α酮戊二酸為底物通過3-巰基丙酮酸鹽硫轉(zhuǎn)移酶(3-Mercaptopyruvate sulfurtransferase,3MTS)而產(chǎn)生[3]。H2S 在體內(nèi)可能有2種存在形式:1/3以氣體H2S 形式存 在,2/3以Na HS(HS-)形式存在。大多數(shù)CBS 存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,而外周組織中CSE 活性較高。已有大量研究證實H2S 調(diào)節(jié)血管、胃腸道、心肌收縮,神經(jīng)傳遞和胰島素分泌[4-5]等方面起著重要的作用。近年來,學(xué)者們也開始通過多種不同的炎癥模型來研究H2S在炎癥過程中的意義,但結(jié)果不一。

1 材料與方法

1.1 材料 96 只6 周齡SPF 級SD雄性大鼠購自第三軍醫(yī)大學(xué)大坪醫(yī)院野戰(zhàn)外科研究所實驗動物中心,體質(zhì)量202~243 g。左旋精氨酸(中國上海生物有限公司),wortmannin(以下簡寫W)、考馬斯亮藍G-250、溴酚藍(美國Sigma 公司),髓過氧化物酶測試盒(中國南京建成生物有限公司),IL-6 ELISA試劑盒(美國R&D公司),兔抗大鼠p-AKT單克隆抗體、辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG(美國Santa 公司),兔抗大鼠IκBα單克隆抗體、辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG(英國Abcam公司),小鼠抗大鼠GAPDH單克隆抗體、辣根標記的山羊抗小鼠IgG為美國Pr oMab 公司產(chǎn)品,BCA蛋白濃度檢測試劑盒、EMSA檢測試劑盒(美國Pierce 公司),甲基磺酰氟(PMSF)(美國Sigma 公司),核蛋白提取試劑盒(中國南京凱基生物科技有限公司)。

1.2 方法

1.2.1 大鼠模型構(gòu)建及分組 構(gòu)建模型前用普通飼料適應(yīng)性喂養(yǎng)SD大鼠5 d,術(shù)前12 h禁食不禁水。大鼠分為對照組(n=6)、SAP組(n=10)、PAG+SAP組(n=10)、5 mg/kg Na HS+SAP 組(n=10)、10 mg/kg Na HS+SAP組(n=10)、20 mg/kg Na HS+SAP組(n=10)、100 mg/kg Na HS+SAP組(n=10)、W+SAP組(n=10)、5 mg/kg Na HS+W+SAP組(n=10)和100 mg/kg Na HS+W+SAP組(n=10)。參照賴銘裕等[6]的方法建立SAP 模型。SAP 組及干預(yù)組均采用經(jīng)腹腔注射6%左旋精氨酸溶液誘導(dǎo)模型;PAG組建模前1 h 經(jīng)腹腔注射PAG 50 mg/kg;各Na HS 組建模前1h 經(jīng)腹腔分別注射Na HS 5、10、20、100 mg/kg[7];各 組 注 射 左 旋 精 氨 酸 前0.5 h 大鼠腹腔注射1.4 mg/kg[8]。對照組以生理鹽水代替左旋精氨酸。各組大鼠注射后禁食,自由飲水。

1.2.2 標本采集及處理 建模24 h 后,用2%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉大鼠,抽右心血離心后檢測IL-6;鈍性分離胰腺后立即凍存于液氮內(nèi),以備胰腺髓過氧化物酶(myeloperoxidas,MPO)活性、胰腺磷酸化絲/蘇氨酸蛋白激酶(p-AKT)、核因子抑制蛋白-κB(IκBα)表達水平和核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)活性檢測。

1.2.3 ELISA法測定血漿I L-6按照試劑盒說明書檢測血漿IL-6 水平。

1.2.4 胰腺組織M P O活性檢測 將液氮凍存胰腺組織剪成小塊,稱質(zhì)量,加入9倍質(zhì)量的生理鹽水于Dounce 勻漿機勻漿,制成10%胰腺組織勻漿,按照MPO檢測試劑盒說明書步驟檢測MPO活性。

1.2.5 Western blot 法檢測胰腺組織p-AKT、IκBα表達水平 胰腺組織加入RIPA緩沖液和PMSF后組織勻漿,12000 r/min 離心10 min,取上清液,BCA蛋白濃度檢測試劑盒測定總蛋白量。每孔加樣20μg 蛋白,加入等量上樣緩沖液,混勻,煮沸3 min 使蛋白變性,上樣于12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳,電泳完畢后,電轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,并用新鮮配制的含3% 脫脂奶粉的PBS 液封閉過夜,然后加入p-AKT單克隆抗體(1∶300),IκBα單克隆抗體(1∶500)及抗GAPDH抗體(1∶8000),4℃過夜。將膜取出后用PBS 沖洗3 次,加入辣根過氧化物酶標記的二抗孵育,最后用化學(xué)發(fā)光法顯影,凝膠成像儀掃描圖像。

1.2.6 EMSA法檢測胰腺組織NF-κB 活性 按核蛋白 提 取試劑盒說明書提取胰腺核蛋白。采用生物素3′末端標記法將選取核苷酸序列為5′-TCA ACT CCC CTG AAA GGG TCC G-3′,3′-AGT TGA GGG GAC TTT CCC AGG C-5′(湖南遠泰生物有限公司合成)。將8μg 核蛋白與20 fm生物素標記的探針充分結(jié)合,上樣于5%PAGE電泳后,轉(zhuǎn)移至帶正電荷的尼龍膜上,紫外線交聯(lián)15 min,封閉15 min 后與結(jié)合液孵育,用化學(xué)發(fā)光法顯影,凝膠成像儀掃描圖像。

1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS13.0 統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料以±s表示,進行單因素方差分析和LSD-q 檢驗,以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié) 果

2.1 各組大鼠血漿IL-6 水平 SAP 組和PAG+SAP 組血漿IL-6 水平較對照組明顯升高(P<0.05),且PAG+SAP組高于SAP 組(P<0.05);不同劑量NaHS+SAP組血漿IL-6 水平隨著Na HS 濃度升高逐漸降低,其中5 mg/kg Na HS+SAP組與SAP 組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),10 mg/kg Na HS+SAP、20 mg/kg Na HS+SAP、100 mg/kg Na HS+SAP 組均低于SAP 組(P<0.05),但仍高于對照組(P<0.05);給予W后,W+SAP 組較SAP組大鼠血漿I L-6水平明顯降低(P<0.05);5 mg/kg Na HS+W+SAP 組與5 mg/kg Na HS+SAP組相比,血漿IL-6 水平明顯降低(P<0.05),100 mg/kg Na HS+W+SAP 組較100mg/kg NaHS+SAP 組血漿IL-6 水平也有明顯下降(P<0.05),見圖1A、表1。

2.2 各組大鼠胰腺MPO活性 S A P組和P AG+S A P組胰腺MPO活性較對照組明顯升高(P<0.05),且PAG+SAP 組高于SAP 組(P<0.05);不同劑量NaHS 組胰腺MPO活性隨著Na HS 濃度升高逐漸降低,其中5mg/kg NaHS+SAP 組與SAP 組差異 無統(tǒng)計學(xué)意 義(P>0.05),10 mg/kg Na HS+SAP、20 mg/kg Na HS+SAP、100 mg/kg Na HS+SAP 組均低于ANP 組(P<0.05),但仍高于對照組(P<0.05);與SAP 組比較,W+SAP 組大鼠胰腺MPO活性明顯降低(P<0.05);與5 mg/kg Na HS+SAP 組和100 mg/kg Na HS+SAP組比較,給予W后胰腺MPO活性均有明顯降低(P<0.05),見圖1A,表1。

2.3 大鼠胰腺p-AKT蛋白表達 與對照組(55.741±0.786)比較,SAP 組(154.230±1.719)和PAG+SAP組(181.950±2.372)p-AKT表達明顯增強(P<0.05),且后者較前者更高(P<0.05);給予不同劑量Na HS 后,p-AKT表達逐漸減弱強,且各組均低于對照組(P<0.05),高于SAP組(P<0.05);給予W后,W+SAP組(121.543±1.198)、5 mg/kg Na HS+W+SAP 組(94.587±0.921)及100mg/kg NaHS+W+SAP 組(60.149±0.812)分別與SAP組(154.230±1.719)、5 mg/kg Na HS +SAP組(129.710±1.241)和100 mg/kg Na HS +SAP 組(67.149±0.767)比較,p-AKT蛋白表達均有明顯減弱(P<0.05),見圖2A。

圖1 各組大鼠血漿IL-6 水平和MPO活性分析圖

表1 各組大鼠血漿IL-6 水平、胰腺MPO活性(±s)

表1 各組大鼠血漿IL-6 水平、胰腺MPO活性(±s)

組別 IL-6(ng/L) 胰腺MPO(U/L)12.45±0.600.28±0.02 SAP 組 176.76±9.301.78±0.07 PAG+SAP 組 212.66±10.202.10±0.125 mg/kg Na HS+SAP 組 166.16±9.501.70±0.0810 mg/kg Na HS+SAP 組 145.72±8.701.58±0.0920 mg/kg Na HS+SAP 組 103.32±6.901.36±0.08100 mg/kg Na HS+SAP 組 145.72±8.701.58±0.09 W+SAP 組 141.36±6.91.41±0.075 mg/kg Na HS+W+SAP 組 130.88±4.201.32±0.05100 mg/kg Na HS+W+SAP 組對照組75.10±2.801.11±0.03

2.4 各組大鼠胰腺IκBα蛋白表達與對照組(195.350±2.320)比較,SAP組(90.671±1.217)和PAG+SAP組(63.065±0.679)IκBα表達明顯減弱(P<0.05),且后者較前者更低(P<0.05);給予不同劑量Na HS 后,IκBα表達逐漸增強,且各組均低于對照組(P<0.05),高于SAP 組(P<0.05);給予W后,W+SAP組(115.900±1.314)、5 mg/kg Na HS+W+SAP 組(158.710±1.697)及100 mg/kg Na HS+W+SAP組(174.950±1.879)分 別 與SAP組(90.671±1.217)、5 mg/kg Na HS+SAP組(146.000±1.676)和100 mg/kg Na HS+SAP 組(161.460±1.743)相比,IκBα蛋白表達均有明顯減弱(P<0.05),見圖2B。

圖2 各組大鼠胰腺p-AKT、IκBα蛋白表達及灰度比、NF-κB 活性

2.5 各組大鼠胰 腺NF-κB活性 與 對照組相比,SAP組 和PAG+SAP 組NF-κB 活性明顯增強,給予NaHS 后,NF-κB 活性逐漸減弱;給予W后,W+SAP組、5 mg/kg Na HS+W+SAP 組及100 mg/kg Na HS+W+SAP組 分別與SAP組、5 mg/kg Na HS+SAP組 和100 mg/kg NaHS+SAP組 比 較,NF-κB 活性均有不同程度減弱,圖2C。

3 討 論

近來有研究顯示,H2S 通過介導(dǎo)AKT激活從而提高心動指數(shù)和減少心肌梗死面積,同時使用LY294002 抑制AKT則會消除H2S 產(chǎn)生的這種心臟保護作用[9]。Ramasamy 等[10]也認為H2S 在雨蛙肽處理的胰腺腺泡細胞中通過PI3K/AKT通路起著抑制TNF-α、IL-1β等炎癥因子的產(chǎn)生,并且該作用不會引起p38、Jun、MAPK 磷酸化。這與本實驗結(jié)果相符,認為H2S可以通過PI3K/AKT 通路在炎性反應(yīng)中起到抑制作用。

NF-κB 是一種廣泛存在與細胞中易被誘導(dǎo)的核轉(zhuǎn)錄因子,它是參與調(diào)節(jié)細胞生長、免疫應(yīng)答、炎性反應(yīng)和凋亡等信號通路的關(guān)鍵 細 胞 因 子[11]。PI3K/AKT是調(diào)節(jié)NF-κB及 下 游 依賴基因表達的重要介質(zhì),而大量研究證實AP的發(fā)生、發(fā)展有賴于NF-κB 轉(zhuǎn)錄,它在調(diào)節(jié)炎癥介質(zhì)及基因表達中起著重要作用[12-13]。更有研究證實,人單核細胞中,NF-κB 轉(zhuǎn)錄是外源性H2S 導(dǎo)致細胞因子表達的核心部分[14]。本研究發(fā)現(xiàn)H2S在SAP 大鼠模型中的調(diào)節(jié)作用與抑制IκBα降解,并下調(diào)NFκB 及轉(zhuǎn)錄相關(guān)的促炎基因表達有關(guān);并且,給予PI3K抑制劑W后,NF-κB 進一步下降,血漿IL-6 水平及胰腺MPO活性也明顯降低。TNF-α處理的人臍靜脈內(nèi)皮細胞[15]、LPS 處理的星狀細胞[16]等體外細胞培養(yǎng)中,Na HS 可以通過抑制IκBα降解和NF-κB 核轉(zhuǎn)位而產(chǎn)生保護性作用。在靜脈注射Na HS 能夠抑制NO和超氧化物的產(chǎn)生,從而在失血性休克復(fù)蘇再灌注早期時維持平均動脈壓,下調(diào)NF-κB 活性劑iNOS 和ICAM-1水平[17]。

AKT是PI 3K調(diào)節(jié)的主要效應(yīng)因子,它的激活有賴于依賴磷酸肌醇的激酶(PDK-1)使Thr308和Ser473發(fā)生磷酸化[17]。一但AKT被激活,即可產(chǎn)生廣泛的作用調(diào)節(jié)細胞存活、增殖和生長[17]。雖然AKT不是由PI 3K直接激活磷酸化的,但是其下游調(diào)控的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)是嚴格按照PI3K的活性來調(diào)節(jié)的。H2S 能使培養(yǎng)的內(nèi)皮 細胞[18]、結(jié)腸 癌 細 胞[19]、雨 蛙 肽處理的胰腺腺泡細胞[10]及大鼠下肢缺血肌肉[20]中的AKT活化,并且在局部缺血心肌組織中給予少量Na HS即可引起AKT活化,從而減輕心肌損傷[21]。本實驗也認為外源性H2S(Na HS)能夠通過AKT作用于炎癥因子,但不同的是,本實驗中H2S 是通過抑制AKT磷酸化,從而下調(diào)炎癥因子的表達。之前的研究認為激活PI3K/AKT通路能產(chǎn)生抗炎作用,這正與作者的觀點一致[22-23]。在本實驗先給予外源性H2S,0.5 h后再給予W,二者起到了加強的作用,說明H2S可能是通過PI3K下游的某因子來調(diào)節(jié)AKT活性的,但是其具體機制還需要進一步研究證實。

迄今為止,不少學(xué)者通過局部水腫、胰腺炎、敗血癥等多種動物模型和細胞培養(yǎng)研究認為H2S 在體內(nèi)具有促炎作用。外源性H2S(Na HS 或Na2S)能使血漿、組織中炎癥因子和趨化因子表達增加,而給予PAG后能逆轉(zhuǎn)H2S 的促炎作用[24-28]。H2S 的促炎作用可以通過pSFKs-NF-κB[26]及ERK-NF-κB通路[29]調(diào)節(jié)炎性反應(yīng)。在動物模型中,Na HS作用于IFN-γ處理的人單核細胞系U937 后也能通過激活活化NF-κBp 65 上調(diào)炎癥因子[30]。但是在本實驗中,給予Na HS后,能夠降低ANP 時血漿IL-6 水平,胰腺MPO活性。證明H2S 在大鼠精氨酸誘導(dǎo)的ANP模型中產(chǎn)生抗炎作用。研究發(fā)現(xiàn)治療性給予H2S 能通過抑制促炎因子IL-6 產(chǎn)生,增加抗炎因子IL-10水平,改善肺組織蛋白質(zhì)氧化作用,從而減輕急性吸入性肺損傷程度[31]。上述研究充分顯示出H2S 在多種炎癥過程中能發(fā)揮一定的抗炎作用,與本實驗結(jié)果相符。

本實驗中不僅發(fā)現(xiàn)H2S 對SAP 有一定的抗炎作用,而且認為抗炎作用在Na HS 50~100 mg/kg 范圍內(nèi)會隨著H2S 濃度的升高而逐漸增強,但不知道H2S 的作用是否會隨著濃度的升高不斷加強。然而,Sidhapuriwala 等[32]通過雨蛙肽誘導(dǎo)的AP 模型發(fā)現(xiàn),給予10mg/kg NaHS 能降低血淀粉酶水平、胰腺及肺組織MPO活性及血漿中炎癥趨化因子(CCL2、CCL3、CXCL1)和黏附分子(E選擇素、P選擇素、ICAM-1、VCAM-1)表達,而給予5 mg/kg Na HS 不會對胰腺及肺損傷產(chǎn)生明顯的作用,同時,15 mg/kg Na HS 并不會使NaHS 的抗炎作用增強。預(yù)先給予胰腺腺泡細胞5μmol/L Na HS 后再用雨蛙肽處理,研究者發(fā)現(xiàn)IκBα降解減少,NF-κB活性降低,炎癥因子減少;而給予10μmol/L和20μmol/L Na HS 時,該作用并未得到加強,甚至未見Na HS 產(chǎn)生明顯的作用[10]。吸入1 ppmol 或5ppmol H2S 并不會減輕呼吸機肺損傷,但是吸入60 ppmol H2S 時卻能加速呼吸機肺損傷的炎性反應(yīng)[33]。甚至,在缺血再灌注模型中,給予不同劑量、不同濃度的Na HS,其對模型作用會出現(xiàn)劑量依賴性的U型改變[34-35]。之所以會出現(xiàn)這種情況,可能與H2S 直接釋放的多少有關(guān)系。但具體機制如何,仍有待進一步研究。

本研究認為內(nèi)源性H2S 的減少參與了SAP的病理生理過程;給予一定量的外源性H2S(Na HS)可通過抑制AKT磷酸化,進而使IκBα降解減少,NF-κB 轉(zhuǎn)錄活性降低,使血漿IL-6 水平下調(diào),胰腺損傷程度減輕,對ANP 炎性反應(yīng)有一定的抑制作用;并且在一定范圍內(nèi),H2S 抑制SAP 炎癥反應(yīng)的作用隨著其濃度的升高而逐漸增強。雖然目前的研究尚不能對H2S在炎癥過程中的作用定論,但是這已經(jīng)充分顯示出H2S 的重要作用,也為今后治療SAP 提供了一條新的思路。

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