段須杰,任彤,羅厚勇,劉睿,徐衛(wèi)濤
近年來(lái),具有靶向明確,副作用小等優(yōu)勢(shì)的抗體藥物受到國(guó)內(nèi)外藥企的廣泛關(guān)注。2012年,抗體藥物全球銷(xiāo)售額已達(dá) 650 億美元左右,并占據(jù)全球十大暢銷(xiāo)藥物的半壁江山[1]。
動(dòng)物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)和抗體質(zhì)量分析已然成為我國(guó)抗體藥物產(chǎn)業(yè)化的主要限制因素[2]。培養(yǎng)基優(yōu)化作為動(dòng)物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)的關(guān)鍵環(huán)節(jié),長(zhǎng)期被國(guó)外生物技術(shù)公司(如Thermo Fisher 公司、Sigma 公司等)、醫(yī)藥巨頭所壟斷。盡管目前國(guó)內(nèi)抗體藥物的表達(dá)水平有顯著提高(1~2 g/L),但仍以使用商業(yè)培養(yǎng)基為主,缺乏自主知識(shí)產(chǎn)權(quán)的產(chǎn)品。由于對(duì)所使用的培養(yǎng)基成分未知,一旦出現(xiàn)抗體質(zhì)量問(wèn)題便無(wú)從優(yōu)化,特別對(duì)于生物仿制藥開(kāi)發(fā)而言,抗體質(zhì)量的一致性顯得尤為重要。與此同時(shí),使用商業(yè)化培養(yǎng)基還需承擔(dān)較高的開(kāi)發(fā)成本,往往是自主開(kāi)發(fā)培養(yǎng)基成本的 5~10 倍。
對(duì)于抗體藥物而言,為了滿(mǎn)足其生物活性,需要對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行正確的折疊和翻譯后修飾,因此用于抗體生產(chǎn)用宿主細(xì)胞以哺乳動(dòng)物細(xì)胞為主。迄今為止,在已批準(zhǔn)的抗體藥物中,所使用的動(dòng)物細(xì)胞主要包括 CHO 細(xì)胞、NS0 細(xì)胞和SP2/0 細(xì)胞,其中 CHO 細(xì)胞作為生產(chǎn)用宿主細(xì)胞達(dá)到50% 左右,NS0 細(xì)胞達(dá)到 20% 以上[3]。
CHO 細(xì)胞是 1957年 Tjio 和 Puck 將原代培養(yǎng)的中國(guó)倉(cāng)鼠卵巢細(xì)胞永生化獲得的,包括 K1、DG44 和DUXB11 三種。其中,DG44 和 DUXB11 細(xì)胞由于不具有二氫葉酸還原酶(dihydrofolate reductase,DHFR)活性,需要添加甘氨酸、次黃嘌呤和胸苷才能正常生長(zhǎng)。因此兩者通常采用 DHFR 篩選系統(tǒng)獲得生產(chǎn)用細(xì)胞株。而 CHOK1 則恰恰相反,常與谷氨酰胺合成酶(glutamine synthetase,GS)篩選系統(tǒng)聯(lián)用。
NS0 細(xì)胞是由 Galfr 和 Milstein 于 1981年獲得的一株不合成分泌免疫球蛋白重鏈或輕鏈的鼠骨髓瘤細(xì)胞。與CHO 細(xì)胞相比,NS0 細(xì)胞更傾向于凋亡,可能是由于營(yíng)養(yǎng)物耗竭或者培養(yǎng)微環(huán)境產(chǎn)生的壓力所造成[4]。此外,NS0 細(xì)胞為膽固醇營(yíng)養(yǎng)缺陷型,因此在培養(yǎng)過(guò)程中需要添加膽固醇以維持細(xì)胞正常生長(zhǎng)。由于 NS0 細(xì)胞內(nèi)源 GS 缺乏活性,因而常與 GS 篩選系統(tǒng)聯(lián)用獲得穩(wěn)定高產(chǎn)的細(xì)胞株。
從表達(dá)抗體質(zhì)量的角度來(lái)看,CHO 細(xì)胞生產(chǎn)的抗體與人類(lèi)自身抗體更為接近,而采用 NS0 或 SP2/0 細(xì)胞所表達(dá)的抗體則會(huì)產(chǎn)生非人源的糖基化修飾,如 α(1,3)-半乳糖結(jié)構(gòu)和 N-羥乙?;窠?jīng)氨酸(N-glycolyl neuraminic acid,NGNA)唾液酸結(jié)構(gòu),在人體內(nèi)會(huì)產(chǎn)生免疫原性,因而近年來(lái)較為少用[3]。值得一提的是,CHO 細(xì)胞的內(nèi)源性反轉(zhuǎn)錄病毒不易傳播人類(lèi),而 NS0 細(xì)胞則可能產(chǎn)生傳染性反轉(zhuǎn)錄病毒[4]。
除此之外,PER.C6 細(xì)胞作為一種新型的宿主細(xì)胞已用于表達(dá)抗體藥物,并能夠獲得與人類(lèi)更為接近的糖基化結(jié)構(gòu)。但到目前為止,采用 PER.C6 細(xì)胞生產(chǎn)的多種候選抗體藥物仍處于臨床研究階段。
由于動(dòng)物細(xì)胞對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)、培養(yǎng)環(huán)境的要求較為苛刻,培養(yǎng)基一般包括 60~80 種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),某些培養(yǎng)基組分甚至超過(guò) 100 種。除此以外,不同種類(lèi)的動(dòng)物細(xì)胞對(duì)于培養(yǎng)基組分的要求也不盡相同,而且組分的改變也會(huì)對(duì)抗體的質(zhì)量產(chǎn)生顯著影響。因此,如何依據(jù)動(dòng)物細(xì)胞種類(lèi),通過(guò)培養(yǎng)基優(yōu)化以滿(mǎn)足抗體產(chǎn)量和質(zhì)量的“雙重要求”成為抗體產(chǎn)業(yè)化過(guò)程中亟待解決的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。
2) 在救助實(shí)踐中,救助船舶無(wú)害通行權(quán)成立和行使的困境、救助船舶進(jìn)入領(lǐng)海搜尋之禁止、救助船舶越過(guò)他國(guó)領(lǐng)海所必須履行的通知義務(wù)并接受沿海國(guó)合法的管理與安排等情形都是這種縱向競(jìng)合的直接體現(xiàn)。
本文將以介紹 CHO 細(xì)胞和 NS0 細(xì)胞培養(yǎng)基為主,逐一闡述動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基成分及其相應(yīng)作用,為開(kāi)發(fā)適合動(dòng)物細(xì)胞的“個(gè)性化培養(yǎng)基”提供理論指導(dǎo)。
水是培養(yǎng)基的重要組分之一,卻往往被研究人員所忽視,培養(yǎng)基用水品質(zhì)的好壞將直接影響到細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)。水中的污染物主要包括無(wú)機(jī)物、有機(jī)物、細(xì)菌產(chǎn)物(內(nèi)毒素)、顆粒等。無(wú)機(jī)物包括重金屬、鐵、鈣、氯等。有機(jī)物主要是植物腐敗的副產(chǎn)物和洗滌劑。因此培養(yǎng)基用水必須經(jīng)過(guò)高度純化獲得。一般而言,培養(yǎng)基采用注射用水或者采用同級(jí)別的超純水進(jìn)行配制。
葡萄糖是培養(yǎng)基中最常使用的碳水化合物,用于提供能源。然而,葡萄糖代謝會(huì)產(chǎn)生對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和抗體合成重要影響的副產(chǎn)物——乳酸。通過(guò)控制葡萄糖濃度或者采用其他能源物質(zhì)(如半乳糖、果糖等)可以降低培養(yǎng)過(guò)程中的乳酸產(chǎn)量,但可能會(huì)對(duì)抗體的糖基化類(lèi)型產(chǎn)生影響,進(jìn)而影響抗體在體內(nèi)的生物活性[5-7]。此外,也有文獻(xiàn)報(bào)道通過(guò)在培養(yǎng)基中添加丙酮酸代替谷氨酰胺作為能源物質(zhì),可以降低乳酸和氨的產(chǎn)量[8]。
構(gòu)成生物體蛋白質(zhì)的氨基酸約 20 種,大體可分為必需氨基酸(essential amino acid,EAA)和非必需氨基酸(nonessential amino acid,NEAA),它們不僅用于合成蛋白質(zhì),同時(shí)還通過(guò)氨基酸代謝途徑提供能源。由于不同種類(lèi)的動(dòng)物細(xì)胞甚至同一類(lèi)別的不同克隆對(duì)于氨基酸的代謝情況都可能完全不同,因此,對(duì)于培養(yǎng)基中氨基酸的優(yōu)化顯得尤為重要,不但要保證各種氨基酸濃度的平衡,同時(shí)要避免因某種氨基酸消耗殆盡,導(dǎo)致細(xì)胞生長(zhǎng)停止或者凋亡[9]。
谷氨酰胺作為重要的能源物質(zhì),同時(shí)還是嘌呤、嘧啶的合成前體,對(duì)于非 GS 表達(dá)系統(tǒng)的細(xì)胞(如 CHO-DHFR 細(xì)胞)生長(zhǎng)十分重要,主要是由于細(xì)胞內(nèi)源 GS 基因表達(dá)水平較低所致。而對(duì)于GS 表達(dá)系統(tǒng)的細(xì)胞(如 GS-CHO 和GS-NS0)而言,谷氨酰胺則無(wú)需添加至培養(yǎng)基。除此以外,還應(yīng)根據(jù)具體的細(xì)胞株特性來(lái)有選擇地添加氨基酸,例如有些 CHO 細(xì)胞屬于脯氨酸缺陷型,因此需將脯氨酸作為EAA 添加至培養(yǎng)基中。
維生素是維持細(xì)胞正常生理狀態(tài)的一種重要的生物活性化合物,在細(xì)胞中多形成酶的輔基或輔酶。維生素分為水溶性和脂溶性?xún)深?lèi)。水溶性維生素主要指 B 族維生素,包括硫胺素(B1)、核黃素(B2)、煙酰胺(B3)、泛酸(鈣)(B5)、吡哆醇(醛)(B6)、生物素(B7)、葉酸(B9)和氰鈷胺素(B12)。脂溶性維生素主要有維生素 A、維生素 D、維生素 E 和維生素 K。與脂溶性維生素相比,水溶性維生素能夠更好維持細(xì)胞生長(zhǎng)并保證較高的活率[10]。此外,維生素 C 或維生素 E 通常作為抗氧化劑添加至培養(yǎng)基中,但對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)或者抗體合成影響較小[11]。
培養(yǎng)基中的無(wú)機(jī)鹽包括 Na+、K+、Ca2+、Mg2+、Cl–、、、等。其中,Na+、K+和 Cl–負(fù)責(zé)調(diào)節(jié)許多營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和大分子的跨膜運(yùn)輸;Mg2+是細(xì)胞間質(zhì)的重要組分,同時(shí)還是酶反應(yīng)的輔因子;Ca2+參與細(xì)胞生理活動(dòng),并調(diào)節(jié)細(xì)胞膜功能;主要起到 pH 緩沖作用。deZengotita 等[12]研究發(fā)現(xiàn)通過(guò)流加 NaH2PO4可以顯著提高 GS-NS0 細(xì)胞密度,可能是由于磷元素是細(xì)胞磷脂、DNA 和 RNA 的重要組成部分。
微量元素主要包含鐵、銅、鋅、硒、錳等。鐵是一種必需元素,因?yàn)殍F涉及眾多參與 DNA 復(fù)制和細(xì)胞代謝的酶,鐵缺陷會(huì)引起細(xì)胞周期停滯在 G0 或者 G1 期,甚至使快速分裂的細(xì)胞發(fā)生凋亡[13]。銅離子作為培養(yǎng)基中重要的氧化劑,對(duì)抗體質(zhì)量(二硫鍵形成、C 末端降解、唾液酸含量等)、細(xì)胞代謝(細(xì)胞密度、乳酸含量等)都會(huì)產(chǎn)生重要影響[14-15]。鋅作為胰島素的替代物,在無(wú)蛋白培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)中得到廣泛應(yīng)用[16]。硒元素則是谷胱甘肽過(guò)氧化物酶的輔因子,能夠保護(hù)細(xì)胞不受活性氧的傷害[17]。錳元素作為一系列糖基轉(zhuǎn)移酶重要輔因子,在抗體糖基化過(guò)程中起到關(guān)鍵作用,改變培養(yǎng)基中 Mn2+濃度可以顯著影響抗體的糖基化特征[18]。
脂類(lèi)是細(xì)胞膜的重要組成部分。由于磷脂、脂肪酸和膽固醇共同影響細(xì)胞膜的流動(dòng)性,氯化膽堿、肌醇、乙醇胺、油酸、亞油酸等物質(zhì)常以脂類(lèi)前體形式添加至培養(yǎng)基中用于合成細(xì)胞膜。與 CHO 細(xì)胞不同,NS0 細(xì)胞通常為膽固醇缺陷型,因此在 NS0 細(xì)胞培養(yǎng)中常將膽固醇以脂類(lèi)混合物的形式添加,但是脂類(lèi)的添加有可能會(huì)改變蛋白的糖基化特征[19-20]。此外,Li 等[4]通過(guò)在培養(yǎng)過(guò)程中添加 5-氮雜胞苷使得 NS0 細(xì)胞成為膽固醇非依賴(lài)性細(xì)胞,抗體產(chǎn)量達(dá)到4.5 g/L。
動(dòng)物細(xì)胞一般可以通過(guò)從頭合成途徑合成核苷酸,因此一般情況下不需要在培養(yǎng)基中添加外源核酸類(lèi)物質(zhì)。但對(duì)于從頭合成途徑受阻的細(xì)胞(DHFR 缺陷型細(xì)胞)就必須添加補(bǔ)救途徑的底物——次黃嘌呤和胸苷。Chen 等[21]研究發(fā)現(xiàn)每 5 mg/L 胸苷中添加 10 mg/L 次黃嘌呤能夠顯著促進(jìn)CHO 細(xì)胞生長(zhǎng)。Carvalhal 等[22]在培養(yǎng)基中添加 1 mmol/L腺嘌呤或鳥(niǎo)嘌呤會(huì)造成 CHO 細(xì)胞生長(zhǎng)嚴(yán)重抑制,而相同濃度的尿嘧啶或胞嘧啶則對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)沒(méi)有影響。此外,核苷類(lèi)物質(zhì)的添加還可能對(duì)抗體的糖基化特征產(chǎn)生影響,因此在培養(yǎng)基優(yōu)化時(shí)需特別注意[23]。
胰島素和胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(insulin-like growth factor-1,IGF-1)常添加至培養(yǎng)基中,兩者均能夠刺激葡萄糖利用,以及 RNA、蛋白質(zhì)和磷脂的合成。Rouiller 等[24]通過(guò)添加糖皮質(zhì)激素(氫化可的松)可以顯著提高 CHO 細(xì)胞活率并提高蛋白產(chǎn)量,而 Jing 等[25]通過(guò)添加地塞米松在提高糖蛋白的唾液酸含量方面取得了成功。
轉(zhuǎn)鐵蛋白是一種常用的糖蛋白,能夠結(jié)合鐵,與鐵向細(xì)胞的傳遞密切相關(guān)。由于轉(zhuǎn)鐵蛋白成本較高,人們逐漸采用鐵螯合劑來(lái)代替轉(zhuǎn)鐵蛋白。Zhang 等[26]發(fā)現(xiàn)檸檬酸鐵和亞硒酸鈉的復(fù)合物能夠有效地代替轉(zhuǎn)鐵蛋白。陳飛[27]認(rèn)為在無(wú)血清培養(yǎng)基中沒(méi)有檸檬酸鐵存在時(shí),即使添加高濃度的轉(zhuǎn)鐵蛋白也不能有效支持 CHO 細(xì)胞生長(zhǎng)和抗體表達(dá),也就是說(shuō)檸檬酸鐵在支持 CHO 細(xì)胞生長(zhǎng)方面具有轉(zhuǎn)鐵蛋白不可替代的作用。
2.9.1 還原劑 還原型谷胱甘肽和巰基乙醇通常作為還原劑添加至培養(yǎng)基中,可以保護(hù)細(xì)胞免受活性氧損傷,對(duì)維持細(xì)胞活率起到一定作用。
2.9.2 保護(hù)劑 Pluronic F68、甲基纖維素和聚乙烯醇常作為保護(hù)劑加入培養(yǎng)基中,可減少細(xì)胞與氣泡間的黏附力,避免由于氣泡破裂對(duì)細(xì)胞造成的損傷[28]。
2.9.3 誘導(dǎo)劑 丁酸鈉作為一種誘導(dǎo)劑,常添加至培養(yǎng)基中用于提高抗體產(chǎn)量[29],但是丁酸鈉的加入可能對(duì)抗體的糖基化形式也會(huì)有影響。Borys 等[30]通過(guò)添加丁酸鈉顯著降低了 NGNA 的含量。
盡管 CHO 細(xì)胞和 NS0 細(xì)胞對(duì)于培養(yǎng)基組分的要求有所不同,但是都需要添加數(shù)十種組分來(lái)維持細(xì)胞的正常生長(zhǎng)和抗體表達(dá)。與此同時(shí),進(jìn)行培養(yǎng)基優(yōu)化時(shí)不僅需要考慮單一組分的影響,還要關(guān)注組分間還可能存在的交互作用,這就使得培養(yǎng)優(yōu)化成為耗時(shí)且復(fù)雜的工作。因此,選擇合適的培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)策略及手段將直接決定培養(yǎng)基的開(kāi)發(fā)時(shí)間和最終效果。對(duì)于動(dòng)物細(xì)胞的培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)策略大體相同,主要分為基礎(chǔ)培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)和流加培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)兩個(gè)階段。
3.1.1 基礎(chǔ)培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)策略 基礎(chǔ)培養(yǎng)基是以支持并促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)為目的,其開(kāi)發(fā)策略可以分兩類(lèi):自下而上(Bottom-Up)和自上而下(Top-Down)[31]。Bottom-Up 策略是指分別考察單一組分不同濃度對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和產(chǎn)物合成的影響。該策略由于需要逐一考察每個(gè)組分的影響,因此需要大量試驗(yàn)且非常耗時(shí)。而 Top-Down 策略則是將培養(yǎng)基首先分成若干“亞類(lèi)”(subgroup),針對(duì)“亞類(lèi)”進(jìn)行篩選和組合,而后針對(duì)“亞類(lèi)”內(nèi)組分進(jìn)行優(yōu)化。Ma 等[32]通過(guò)Top-Down 策略成功開(kāi)發(fā)了適合 CHO 細(xì)胞和 NS0 細(xì)胞的化學(xué)成分明確的培養(yǎng)基。需要指出的是,無(wú)論通過(guò)何種策略開(kāi)發(fā)出的基礎(chǔ)培養(yǎng)基,往往需要與流加培養(yǎng)基聯(lián)合使用,以判斷該基礎(chǔ)培養(yǎng)基的各類(lèi)組分是否滿(mǎn)足流加培養(yǎng)模式。
3.1.2 流加培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)策略 與基礎(chǔ)培養(yǎng)基不同,補(bǔ)料培養(yǎng)基的添加是為了增加細(xì)胞密度,延長(zhǎng)細(xì)胞活率,并提高抗體產(chǎn)量,通常包括葡萄糖、氨基酸、維生素和磷酸鹽,而無(wú)機(jī)鹽和微量元素往往不包含在內(nèi)。因此,設(shè)計(jì)流加培養(yǎng)基一方面要保證營(yíng)養(yǎng)成分不會(huì)耗竭,同時(shí)也不能造成乳酸、氨等代謝副產(chǎn)物過(guò)度累積。Xie 和 Wang[33]根據(jù)雜交瘤細(xì)胞組成,葡萄糖、氨基酸和維生素的消耗速率設(shè)計(jì)流加培養(yǎng)基和流加策略,可以顯著地降低乳酸和氨的含量。
3.2.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì) 試驗(yàn)設(shè)計(jì)(DOE)是一種安排試驗(yàn)和分析試驗(yàn)數(shù)據(jù)的數(shù)理統(tǒng)計(jì)方法,以較少的次數(shù)、較短的周期和較低的成本,獲得理想的試驗(yàn)結(jié)果以及得出科學(xué)結(jié)論。培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)過(guò)程中常用的試驗(yàn)方法主要有一次一因素(OFAT)設(shè)計(jì)、Plackett-Burman 設(shè)計(jì)、混料設(shè)計(jì)、響應(yīng)面設(shè)計(jì)等[34-37]。
OFAT 設(shè)計(jì)指通過(guò)改變單一因素的濃度來(lái)確定其最優(yōu)濃度。但由于動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基成分復(fù)雜,且存在因素間的交互影響,因此該方法只適用于個(gè)別組分的優(yōu)化。Plackett-Burman 設(shè)計(jì)是一種兩水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,可以通過(guò)最少的試驗(yàn)次數(shù)從大量考察因素中迅速篩選出顯著影響因素,但該方法卻忽略了因素間的交互作用[34]。響應(yīng)面設(shè)計(jì)則是通過(guò)對(duì)有限的因子進(jìn)行建模和函數(shù)擬合,考慮因子間的交互關(guān)系,已達(dá)到最優(yōu)響應(yīng)效果的一種方法[35]。混料試驗(yàn)常用于基礎(chǔ)培養(yǎng)基和植物水解物的優(yōu)化,DMEM/F12培養(yǎng)基便是混料試驗(yàn)的最佳例證[37]。上述 DOE 設(shè)計(jì)方法均可借助商業(yè)化軟件完成試驗(yàn)設(shè)計(jì),例如 Design Xpert、Minitab 等。
3.2.2 培養(yǎng)基消耗分析 通過(guò)檢測(cè)不同時(shí)期細(xì)胞培養(yǎng)上清營(yíng)養(yǎng)物(如氨基酸、維生素、微量元素等)及代謝物(如乳酸、氨、CO2等)濃度,計(jì)算其消耗或生成速率,并在此基礎(chǔ)上設(shè)計(jì)流加培養(yǎng)基組分,既要避免營(yíng)養(yǎng)物在培養(yǎng)過(guò)程中消耗殆盡,又要防止?fàn)I養(yǎng)物流加過(guò)剩,造成代謝副產(chǎn)物累積。目前,市售的商業(yè)化儀器已經(jīng)基本滿(mǎn)足上述物質(zhì)的測(cè)定,如生化分析儀(NOVA)、高效液相色譜(HPLC)、電感耦合等離子發(fā)射光譜(ICP)等。
3.2.3 代謝組學(xué) 代謝組學(xué)(Metabolomics)是通過(guò)對(duì)比不同試驗(yàn)組的所有代謝物組分,尋找其他代謝譜差異的研究方法。通過(guò)代謝組學(xué)可以提供培養(yǎng)基優(yōu)化過(guò)程中組分改變對(duì)于細(xì)胞代謝中間產(chǎn)物乃至整個(gè)代謝網(wǎng)絡(luò)的影響,從而為培養(yǎng)基優(yōu)化工作提供更堅(jiān)實(shí)的理論基礎(chǔ)[38-39]。Dietmair 等[39]通過(guò)代謝組學(xué)研究不同培養(yǎng)基對(duì) CHO 細(xì)胞生長(zhǎng)(比生長(zhǎng)速率和最高細(xì)胞密度)的影響,并確定了一系列與細(xì)胞生長(zhǎng)有關(guān)的代謝中間產(chǎn)物。
3.2.4 高通量篩選系統(tǒng) 由于涉及數(shù)十種組分的篩選和優(yōu)化,如采用傳統(tǒng)的孔板或搖瓶方式進(jìn)行培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)工作,一方面耗時(shí)費(fèi)力,另一方面試驗(yàn)培養(yǎng)條件的精確控制較難,進(jìn)而影響對(duì)試驗(yàn)結(jié)果的判斷。而高通量篩選系統(tǒng)(SimCellTM、Micro-24TM、ambrTM等)的出現(xiàn)不僅能夠模擬反應(yīng)器的控制條件,而且能夠?qū)崿F(xiàn)試驗(yàn)條件的高通量篩選,顯著加快培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)進(jìn)程[40]。例如,SimCell 是一種由 Bioprocess 公司開(kāi)發(fā)的用于流加培養(yǎng)的微型生物反應(yīng)器,能夠?qū)崟r(shí)監(jiān)測(cè)細(xì)胞密度、活率、pH 和溶氧,每個(gè)微反應(yīng)體積為 650 μl,可同時(shí)進(jìn)行上千個(gè)試驗(yàn)[41]。
近年來(lái),抗體藥物在國(guó)內(nèi)外發(fā)展勢(shì)頭迅猛。一方面國(guó)家通過(guò)新藥創(chuàng)制科技重大專(zhuān)項(xiàng)為生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)發(fā)展提供強(qiáng)有力的科技支撐,另一方面越來(lái)越多的抗體藥物面臨“專(zhuān)利懸崖”,使得國(guó)內(nèi)大量資金流向生物仿制藥的研發(fā)。
然而,國(guó)內(nèi)大多數(shù)企業(yè)尚不具備抗體藥物開(kāi)發(fā)的關(guān)鍵技術(shù)。特別對(duì)于培養(yǎng)基而言,90% 以上的企業(yè)仍以使用商業(yè)培養(yǎng)基為主,使得開(kāi)發(fā)成本居高不下。一旦出現(xiàn)產(chǎn)品質(zhì)量問(wèn)題,便很難對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化。如何根據(jù)細(xì)胞株特性設(shè)計(jì)“個(gè)性化培養(yǎng)基”以滿(mǎn)足抗體藥物產(chǎn)量和質(zhì)量的“雙重要求”已成為國(guó)內(nèi)從事抗體藥物開(kāi)發(fā)企業(yè)需要亟待解決的問(wèn)題。作者期望通過(guò)對(duì)近年來(lái)動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基開(kāi)發(fā)研究進(jìn)行綜述,對(duì)國(guó)內(nèi)研發(fā)人員從事培養(yǎng)基優(yōu)化起到一定的指導(dǎo)作用,從而提高國(guó)內(nèi)生物制藥企業(yè)的核心競(jìng)爭(zhēng)力,早日實(shí)現(xiàn)中國(guó)抗體產(chǎn)業(yè)的繁榮。
[1] Genetic Engineering & Biotechnology News.TOP 20 Best-Selling Drugs of 2012.(2013-03-05) [2013-06-20].http://www.genengnews.com/insight-and-intelligenceand153/top-20-best-selling-drugs-of-2012/77899775/.
[2] Duan XJ, Liu R, Xu WT, et al.Effect of cell culture conditions on antibody heterogeneity.Chin J Biotech, 2013, 29(12):1880-1886.(in Chinese)段須杰, 劉睿, 徐衛(wèi)濤, 等.細(xì)胞培養(yǎng)工藝條件對(duì)抗體異質(zhì)性影響的研究進(jìn)展.生物工程學(xué)報(bào), 2013, 29(12):1880-1886.
[3] Beck A, Wagner-Rousset E, Bussat MC, et al.Trends in glycosylation,glycoanalysis and glycoengineering of therapeutic antibodyies and Fc-fusion proteins.Curr Pharm Biotech, 2008, 9(6):482-501.
[4] Li J, Gu W, Edmondson DG, et al.Generation of a cholesterol-independent, non-GS NS0 cell line through chemical treatment and application for high titer antibody production.Biotechnol Bioeng, 2012, 109(7):1685-1692.
[5] Tachibana H, Taniguchi K, Ushio Y, et al.Changes of monosaccharide availability of human hybridoma lead to alteration of biological properties of human monoclonal antibody.Cytotechnology, 1994,16(3):151-157.
[6] Nyberg GB, Balcarcel RR, Follstad BD, et al.Metabolic effects on recombinant interferon -gamma glycosylation in continuous culture of Chinese hamster overy cells.Biotechnol Bioeng, 1999, 62(3):336-347.
[7] Chee Furng Wong D, Tin Kam Wong K, Tang Goh L, et al.Impact of dymanic online fed-batch strategies on metabolism, productivity and N-glycosylation quality in CHO cell culture.Biotechnol Bioeng, 2005,89(2):164-177.
[8] Genzel Y, Ritter JB, K?nig S, et al.Substitution of glutamine by pyruvate to reduce ammonia formation and growth inhibition of mammalian cells.Biotechnol Prog, 2005, 21(1):58-69.
[9] Franěk F, Chládková-?rámková K.Apoptosis and nutrition:involvement of amino acid transport system in repression of hybridoma cell death.Cytotechnology, 1995, 18(1-2):113-117.
[10] Ishaque A, Al-Rubeai M.Role of vitamins in determining apoptosis and extent of suppression by bcl-2 during hybridoma cell culture.Apoptosis, 2002, 7(3):231-239.
[11] Padayatty SJ, Katz A, Wang Y, et al.Vitamin C as an antioxidant:evaluation of its role in desease prevention.J Am Coll Nutr, 2003,22(1):18-35.
[12] deZengotita VM, Miller WM, Aunins JG, et al.Phosphate feeding improves high-cell-concentration NS0 myeloma culture performance for monoclonal antibody production.Biotechnol Bioeng, 2000, 69(5):566-576.
[13] Hentze MW, Muckenthaler MU, Andrews NC.Balancing acts:molecular control of mammalian iron metabolism.Cell, 2004, 117(3):285-297.
[14] Luo J, Zhang J, Ren D, et al.Probing of C-terminal lysine variation in a recombinant monoclonal antibody production using Chinese hamster ovary cells with chemically defined media.Biotechnol Bioeng, 2012,109(9):2306-2315.
[15] Chaderjian WB, Chin ET, Harris RJ, et al.Effect of copper sulfate on performance of serum-free CHO cell culture process and the level of free thiol in the recombinant antibody expressed.Biotechnol Prog,2005, 21(2):550-553.
[16] Wong VV, Ho KW, Yap MG.Evaluation of insulin-mimetic trace metals as insulin replacements in mammalian cell cultures.Cytotechnology, 2004, 45(3):107-115.
[17] Saito Y, Yoshida Y, Akazawa T, et al.Cell death caused by selenium deficiency and protective effect of antioxidents.J Biol Chem.2003,278(41):39428-39434.
[18] Pacis E, Yu M, Autsen J, et al.Effects of cell culture conditions on antibody N-linked glycosylation-what affects high mannose 5 glycoform.Biotechnol Bioeng, 2011, 108(10):2348-2358.
[19] Keen MJ, Hale C.The use of serum-free medium for the production of functionally active humanised monoclonal antibody from NS0 mouse myeloma cells engineered using glutamine synthetase as a selectable marker.Cytotechnology, 1995, 18(3):207-217.
[20] Jenkins N, Castro P, Menon S, et al.Effect of lipid supplements on the production and glycosylation of recombinant interferon-gamma expressed in CHO cells.Cytotechnology, 1994, 15(1-3):209-215.
[21] Chen F, Fan L, Wang J, et al.Insight into the roles of hypoxanthine and thymidine [corrected] on cultivating antibody-producing CHO cells: cell growth, antibody production and long-term stability.Appl Microbiol Biotechnol, 2012, 93(1):169-178.
[22] Carvalhal AV, Santos SS, Calado J, et al.Cell growth arrest by nucleotides, nucleosides and bases as tool for improved production of recombinant proteins.Biotechnol Prog, 2003, 19(1):69-83.
[23] Gramer MJ, Eckblad JJ, Donahue R, et al.Modulation of antibody galactosylation through feeding of uridine, manganese chloride, and galactose.Biotechnol Bioeng, 2011, 108(7):1591-1602.
[24] Rouiller Y, Périlleux A, Marsaut M, et al.Effect of hydrocortisone on the production and glycosylation of an Fc-fusion protein in CHO cell cultures.Biotechnol Prog, 2012, 28(3):803-813.
[25] Jing Y, Qian Y, Li ZJ.Sialylation enhancement of CTLA-Ig fusion protein in Chinese hamster ovary cells by dexamethasone.Biotechnol Bioeng, 2010, 107(3):488-496.
[26] Zhang J, Robinson D, Salmon P.A novel function selenium in biological system: selenite as a highly effective iron carrier for Chinese hamster ovary cell growth and monoclonal antibody production.Biotechnol Bioeng, 2006, 95(6):1188-1197.
[27] Chen F.Development of serum-free medium for DHFR-CHO cells and investigation on the roles of some key medium components.Shanghai: East China University of Science and Technology, 2012.(in Chinese)陳飛.DHFR-CHO細(xì)胞無(wú)血清培養(yǎng)基及其關(guān)鍵組分的研究和應(yīng)用.上海: 華東理工大學(xué), 2012.
[28] Michaels JD, Nowak JE, Mallik AK, et al.Interfacial properties of cell culture media with cell-protecting additives.Biotechnol Bioeng, 1995,47(4):420-430.
[29] Jiang Z, Sharfstein ST.Sodium butyrate stimulates monoclonal antibody over-expression in CHO cells by improving gene accessibility.Biotechnol Bioeng, 2008, 100(1):189-194.
[30] Borys MC, Dalal NG, Abu-Absi NR, et al.Effects of culture conditions on N-glycolylneuraminic acid (Neu5Gc) content of a recombinant fusion protein produced in CHO cells.Biotechnol Bioeng,2010, 105(6):1048-1057.
[31] Ozturk S, Hu WS.Cell culture technology for pharmaceutical and cell-based therapies.Boca Raton: CRC Press, 2006:41-80.
[32] Ma N, Ellet J, Okediadi C, et al.A single nutrient feed supports both chemically defined NS0 and CHO fed-batch processed: improved productivity and lactate metabolism.Biotechnol Prog, 2009, 25(5):1353-1363.
[33] Xie L, Wang DI.Fed-batch cultivation of animal cells using different medium design concepts and feeding strategies.Biotechnol Bioeng,1994, 43(11):1175-1189.
[34] Zhang H, Wang H, Liu M, et al.Rational development of a serum-free medium and fed-batch process for a GS-CHO cell line expressing recombinant antibody.Cytotehnology, 2013, 65(3):363-378.
[35] Parampalli A, Eskridge K, Smith L, et al.Development of serum-free media in CHO-DG44 using a central composite statistical design.Cytotehnology, 2007, 54(1):57-68.
[36] Chun C, Heineken K, Szeto D, et al.Application of factorial design to accelerate identification of CHO growth factor requirements.Biotechnol Prog, 2003, 19(1):52-57.
[37] Kim SH, Lee GM.Development of serum-free medium supplemented with hydrolysates for the production of therapertic antibodies in CHO cell cultures using design of experiments.Appl Microbiol Biotechnol,2009, 83(4):639-648.
[38] Chong WP, Yusufi FN, Lee DY, et al.Metabolomics-based identification of apoptosis-inducing metabolites in recombinant fed-batch CHO culture media.J Biotechnol, 2011, 151(2):218-224.
[39] Dietmair S, Hodson MP, Quek LE, et al.Metabolite profiling of CHO cells with different growth characteristics.Biotechnol Bioeng, 2012,109(6):1404-1414.
[40] Kim BJ, Diao J, Shuler ML.Mini-scale bioprocessing systems for highly parallel animal cell culture.Biotechnol Prog, 2012, 28(3):595-607.
[41] Amanullah A, Otero JM, Mikola M, et al.Novel micro-bioreactor high throughput technology for cell culture process development:reproducibility and scalability assessment of fed-batch CHO cultures.Biotechnol Bioeng, 2010, 106(1):57-67.