余 芳,朱秋紅
(江蘇經(jīng)貿職業(yè)技術學院 工程技術學院,江蘇 南京 211168)
山藥是傳統(tǒng)的藥食同源植物,為薯蕷科植物的塊莖,具有補脾養(yǎng)胃、補肺養(yǎng)腎的功效,首見于《神農本草經(jīng)》,被列為上品,言其“主傷中補虛贏,除寒熱邪氣,補中益氣力,長肌肉,久服耳目聰明,輕身不饑延年”。山藥含有粗纖維、果膠、多糖、淀粉酶、黏液質、糖蛋白、尿囊素、皂苷、山藥素、膽堿、脂肪酸等成分,以及碘、鈣、鐵和磷等人體不可缺少的微量元素。
山藥多糖是目前公認的山藥有效成分,也是山藥化學和藥理研究的重點。大量研究表明,山藥多糖具有增強免疫[1]、抗衰老[2]、抗腫瘤[3]、降低血糖[4]等多種藥理作用。山藥多糖的組成和結構較為復雜,不同研究者提取分離出不同的山藥多糖,其中有均多糖、雜多糖、蛋白復合多糖等;就分子質量而言,覆蓋了7×103到2×106的偌大范圍,其糖基組成也各不相同。這些多糖的獲得與研究者采用的提取純化方法密不可分。
影響水浸提多糖的因素主要有提取時間、提取次數(shù)、溶劑體積、浸提溫度、pH值、醇析濃度和植物顆粒大小等。用水提取山藥多糖,成本低、不破壞生物活性、方便實用且安全性高,但耗時長、提取率不高。趙衛(wèi)星等以光皮長柱型新鮮山藥為原料,利用水提法工藝浸取鮮山藥中的多糖,并用苯酚硫酸法測定其粗多糖的含量[5]。此實驗以浸提溫度、料液比、浸提時間等為自變量,進行單因素實驗,最終確定料液比為1 g∶9 mL、提取溫度為70℃、浸提時間為3 h、提取多糖總含量為0.905%。顧林等以江蘇主栽山藥品種——菜山藥為原料,研究山藥多糖提取工藝,最終確定最佳提取工藝條件為:料液比1∶25、100℃浸提2.5 h,此時山藥多糖的提取率最高[6]。程林等人以山藥粗多糖的得率為指標,采用正交試驗法對提取過程中水用量、提取時間、提取次數(shù)及醇沉濃度4個因素進行優(yōu)選研究,確定最優(yōu)工藝為:8倍量水、提取2次、每次3 h、加無水乙醇至醇濃度達到60%[7]。
除了多糖,山藥還含有單糖、低聚糖、苷類、生物堿等多種成分,多糖溶于水而不溶于高濃度乙醇。官波等用80%的工業(yè)乙醇除去單糖、低聚糖等對多糖含量測定有影響的物質[8]。精確稱取山藥漿5.0 g,置于250 mL圓底燒瓶中,加80%乙醇100 mL加熱回流1 h,過濾,殘渣用80%的乙醇10 mL洗滌2次,收集殘渣并加入適當體積的蒸餾水在適當溫度下加熱回流適當時間,殘渣用10 mL蒸餾水洗滌2次后離心分離,對分離的液體部分再過濾,濾液置于250 mL容量瓶中定容,然后用水提法提取多糖,選定溫度、時間、料液比3個因素,研究其對多糖提取率的影響。得出山藥多糖浸提的最佳工藝條件:料水比為1∶17.5(W∶V),浸提溫度為83℃,浸提時間為3 h。在最佳工藝條件下,山藥多糖的實際1次提取率可達到2.56%。
其原理為利用不同極性的介質對微波能的不同吸收程度,使基體物質中的某些區(qū)域和萃取體系中的某些組分被選擇性加熱,從而使萃取物質從基體或體系中分離出來,進到介電常數(shù)小、微波吸收能力較差的萃取劑中。把微波技術應用于植物細胞破壁,能有效提高提取率。利用微波提取山藥多糖具有高效、快速的優(yōu)點。
許本波等以微波功率、料水比、浸提溫度和醇沉比為正交試驗的影響因素,以山藥多糖得率為指標,進行實驗,得出影響山藥多糖得率的因素主次順序為:浸提溫度 >醇沉比 >微波功率 >料水比[9]。確定山藥多糖提取的工藝條件:微波功率為464 W、料水比為1∶20、浸提溫度為 60℃、醇沉比為4∶1、山藥多糖得率為10.52%。王安良等人通過二次回歸正交旋轉組合設計方法[10],確定了微波提取山藥多糖的最佳工藝條件:微波功率為546 W、微波時間為77 s、水提溫度為64.7℃、水提時間為2~3 h。山藥多糖的提取率為2.60%。
超聲波提取法主要利用超聲波的空化作用、熱效應機械作用加速細胞壁的破碎,促進細胞內多糖的溶出,達到縮短提取時間和提高多糖得率的目的。這種方法與常規(guī)提取法相比,具有無需加熱的優(yōu)點。
李金忠等人以河南懷山藥為原料,利用超聲提取法在超聲處理時間、超聲功率提取溫度、料液比等單因素實驗基礎上,利用正交試驗得出提取山藥多糖的最佳工藝條件:超聲波功率為1000 W、超聲時間為50 min、提取溫度為60℃、料液比為12.5 g/L。山藥多糖得率達到20.27%[11]。
山藥中含有抗性淀粉,能防止普通淀粉的水解。酶解提取法就是利用酶先水解淀粉再提取多糖的方法。
毛磊等以自制的山藥干粉為原材料,采用酶解輔助熱水浸提法[12],用乙醇提取山藥多糖,在考察乙醇體積分數(shù)、提取溫度、固液比與提取時間對提取量影響的基礎上,確定最佳提取工藝:乙醇體積分數(shù)為70%,提取溫度為90℃,固液比為1∶40,提取時間為60 min。山藥多糖的提取量為4.76 mg/g。
張元等利用α淀粉酶和超聲輔助提取山藥多糖,利用正交試驗優(yōu)化α淀粉酶液化的最佳條件,并研究酶超聲提取聯(lián)合的效果,得出α淀粉酶作用的最佳條件為:55℃、pH 5.5、加酶量0.01 g、反應時間1.0 h[13]。酶輔助浸提結束后,對體系進行超聲處理5 min,多糖得率可達6.792%,較單獨酶輔助提取提高9.35%。
曾凡梅等利用超聲波酶法提取山藥多糖,最佳工藝系數(shù)為:超聲波功率為450 W、溫度為50℃、纖維素酶量為 0.04 g、時間為 100 min[14]。
張元等人與曾凡梅等人的實驗都采用了酶與超聲提取法,有效提高了山藥多糖的提取率。值得注意的是,酶作為一種蛋白質,其酶解效果受酶解溫度、pH、底物濃度等多種因素影響,在提取工藝過程中,要綜合考慮這些因素。
多糖中往往混有蛋白質、色素等雜質,純化時必須先去除。
2.1.1 去除蛋白的方法
采用醇沉或其他溶劑沉淀方法獲得的多糖,常混有較多蛋白質,脫去蛋白質的方法主要有三氯乙酸(TCA)沉淀法、Sevage法、季銨鹽沉淀法等。
孟慶華等采用三氯乙酸(TCA)法去除蛋白[15],曾凡梅等則采用Sevage法[14]。Sevage法是去除游離蛋白的有效方法,在山藥粗多糖中加入氯仿-正丁醇混合溶液進行充分振搖,將游離蛋白變性為不溶性物質,經(jīng)離心分離,可達到去除的目的。姬泓巍等比較了Sevage法及三氯乙酸(TCA)法,結果表明Sevage法比較溫和;TCA法反應較為劇烈,影響多糖活性,去除蛋白的效果不及Sevage法[16]。
常用的季銨鹽有十六烷基三甲胺的溴化物(CTAB)及其氫氧化物。王剛等采用乙醇和十六烷基三甲基溴銨鹽(CTAB)沉淀法,對山藥中的多糖進行初步分離,利用此法除去蛋白后再經(jīng)Sep hadexG-100柱層析可以得到純度較高的多糖[17]。徐琴等利用CTAB對山藥多糖分離純化,與單純使用Sevage法和酶-Sevage法相比,用1%CTAB除蛋白,處理次數(shù)明顯減少[18]。本實驗僅處理了2次,即無蛋白反應,大大節(jié)省了時間,而且所需的CTAB量較少,節(jié)約了有機溶劑的用量。
2.1.2 去除色素的方法
去除山藥多糖色素,研究者多采用離子交換法和氧化法。
純化是將多糖混合物分離為單一多糖的過程,柱層析法是多糖分離純化常用的方法。柱層析包括纖維素柱層析、纖維素陰離子交換柱層析、凝膠柱層析、親和層析、高壓液相層析和其他柱層析。研究者常用凝膠柱層析法和纖維素陰離子交換柱層析法,有的也會同時采用兩種方法。
顧林等利用DEAE52、Sephadex G-100分離純化山藥粗多糖提取物,發(fā)現(xiàn)了3種多糖(包括1種中性多糖、2種酸性多糖)[6]。利用 GC-MS分析結果顯示:中性多糖由葡萄糖和甘露糖組成;酸性多糖1由葡萄糖、半乳糖、甘露糖組成;酸性多糖2由阿拉伯糖、木糖、阿卓糖、葡萄糖、甘露糖組成。
徐琴等將山藥多糖粗提物上微晶纖維素柱,先以正丁醇-冰乙酸-水(4∶1∶1)洗脫,然后以0.02 mol/L乙酸鈉進行洗脫,最后用蒸餾水完全洗脫,合并單一峰部位的洗脫液,濃縮后上Sephadex G-100凝膠柱層析,以蒸餾水洗脫,體積流量2 mL/10 min,按每管2 mL分部收集,0.1%蒽酮-硫酸顯色法測吸光度值,合并單一峰部分的多糖液,濃縮,重結晶,得精多糖RP,其單糖組成為葡萄糖、D-甘露糖、D-半乳糖[18]。王剛等采用Sephadex G100層析法得到純度較高的多糖[17]。蔡婀娜等采用 DEAE-Sepharose CL-6B柱層析對提取的山藥粗多糖進行純化后得到2個組分,進一步采用葡聚糖凝膠G-100柱層析和醋酸纖維素薄膜紙電泳檢測組分的純度,顯示其為單一多糖,利用高效液相色譜分析該多糖由果糖和葡萄糖組成,摩爾比為 1 ∶26.36[19]。
山藥具有較高的營養(yǎng)價值、藥用價值及食用價值,含有多糖、淀粉、尿囊素等有效成分,具有降血糖、抗衰老、調節(jié)免疫、抗突變、降血脂等功效,山藥多糖以其獨特的作用成為近年來研究的重點。因此,開展山藥多糖的提取分離純化工藝研究,為山藥多糖的醫(yī)療保健功能開發(fā)提供理論依據(jù),對山藥資源由粗加工向精制、深加工方向發(fā)展具有重要意義。目前,山藥多糖分離純化尚處于小批量實驗階段,規(guī)?;奶崛?、純化、精制及其應用開發(fā)等有待
深入研究和探討。
[1]徐增萊,汪瓊,趙猛,等.淮山藥多糖的免疫調節(jié)作用研究[J].時珍國醫(yī)國藥,2007,18(5):1040-1041.
[2]相湘.山藥的抗衰老作用研究[J].醫(yī)藥論壇雜志,2007,28(24):109-110.
[3]趙國華,李志孝,陳宗道.化學改性對山藥多糖抗腫瘤活性的影響[J].中國食品學報,2004,4(1):39 -42.
[4]何云.山藥多糖降血糖作用的實驗研究[J].華北煤炭醫(yī)學院學報,2008,10(4):448 -449.
[5]趙衛(wèi)星,等.山藥多糖的提取測定研究[J].寶雞文理學院學報:自然科學版,2010,(3):34 -38.
[6]顧林,姜軍.山藥多糖的分離純化及組成研究[J].食品科學,2007,28(9):158 -161.
[7]程林,陳斌,蔡寶昌.正交試驗法優(yōu)選山藥多糖的提取工藝[J].中國藥物與臨床,2005,9(5):650 -651.
[8]官波,鄭文誠.山藥多糖提取工藝的優(yōu)化[J].食品與機械,2010,26(1):98 -101.
[9]許本波,張世俊,江洪波.微波輔助法提取山藥多糖的研究[J].安徽農學通報,2007,13(12):34 -35.
[10]王安良,楊紅.響應曲面法優(yōu)化山藥中多糖的微波提取工藝[J].食品科技,2007,32(12):86 -90.
[11]李金忠,馬海樂,吳沿友.山藥多糖的超聲輔助提取技術研究[J].食品研究與開發(fā),2005,4(26):72 -75.
[12]毛磊,李睿,金慧芳.酶解輔助法優(yōu)選山藥多糖的提取工藝[J].應用化工,2009,38(6):847 -849.
[13]張元,林強,魏靜娜,等.酶法提取山藥中多糖的工藝研究[J].中國中藥雜志,2008,33(4):374 -377.
[14]曾凡梅,張恒,孔明航.超聲波協(xié)同纖維素酶提取山藥多糖的工藝及組分測定研究[J].江西食品工業(yè),2010,(2):32-34.
[15]孟慶華,劉鐘棟,陳肇鉸,等.懷山藥多糖的提?。跩].食品工業(yè)科技,2005,26(2):126 -128.
[16]姬泓巍,郭會芹,張晶,等.山藥多糖提取分離工藝的研究[J].中國海洋大學學報,2010,40(7):89 -92.
[17]王剛,杜士明,肖淼生,等.山藥多糖的提取分離及山藥總多糖的含量測定[J].中國醫(yī)院藥學雜志,2007,27(10):1414-1416.
[18]徐琴,徐增萊,沈振國,等.淮山藥多糖的研究[J].中藥材,2006,26(9):909 -912.
[19]蔡婀娜,王邵晶,羅巔輝.水提山藥多糖的分離純化與DTA的性質分析[J].福建中醫(yī)學院學報,2006,16(3):40-43.