馮曉輝,余遠(yuǎn)迪,任玉鵬,岳 華,張 斌
(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川成都610041)
副豬嗜血桿菌(Haemophilus parasuis)是一種不能運(yùn)動(dòng)的、革蘭陰性短小桿菌,能引起以纖維素性多發(fā)性漿膜炎、關(guān)節(jié)炎和腦膜炎為主要特征的Gl?sser′s?。?]。H.parasuis引起的感染給養(yǎng)豬業(yè)帶來(lái)了巨大的損失。革蘭陰性菌的脂多糖(LPS)在其致病性中發(fā)揮重要的作用[2-5]。Bouchet B等[6]發(fā)現(xiàn)H.parasuis LPS部分參與了細(xì)菌對(duì)豬腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞和豬呼吸道上皮細(xì)胞的黏附作用和誘導(dǎo)IL-6和IL-8釋放[6-7]。LPS是革蘭陰性菌細(xì)胞壁的成分,由類脂A(Lipid A)、核心多糖和O多糖側(cè)鏈組成。Lipid A為構(gòu)成內(nèi)毒素活性的糖質(zhì),以共價(jià)鍵鏈接在核心多糖上。而核心多糖是研究LPS功能和結(jié)構(gòu)的重要部分。庚糖基轉(zhuǎn)移酶是核心多糖重要的組成成分。庚糖基轉(zhuǎn)移酶Ⅰ(HepⅠ)、庚糖基轉(zhuǎn)移酶Ⅱ(HepⅡ)和庚糖基轉(zhuǎn)移酶Ⅲ(HepⅢ)依次連接到Lipid A和3-脫氧-D-甘露-辛酮糖酸(Kdo)上。在革蘭陰性菌中,庚糖基的缺失使得LPS的糖鏈嚴(yán)重的縮短,對(duì)血清中補(bǔ)體、抗菌肽和有機(jī)溶劑的敏感性上升,對(duì)宿主的致病性、黏附入侵能力等生物學(xué)特性發(fā)生變化。RfaF基因編碼HepⅡ,該蛋白在細(xì)菌LPS的合成中是必不可少的。研究證實(shí)H.parasuisΔRfaF缺失株降低了對(duì)宿主細(xì)胞黏附入侵作用和抗血清中補(bǔ)體殺菌作用[8]。為了進(jìn)一步研究H.parasuis RfaF的特性,本研究用大腸埃希菌表達(dá)系統(tǒng)對(duì)RfaF基因進(jìn)行克隆和表達(dá),為深入研究RfaF基因的功能和LPS在H.parasuis菌中的作用奠定了基礎(chǔ)。
1.1.1 載體和菌株 H.parasuis SC096株,由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)廖明教授饋贈(zèng);E.coil DH5α和BL21(DE3)工程菌,pET-32a(+)表達(dá)載體,由西南民族大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)教研室保存。
1.1.2 主要試劑 TSA(胰蛋白胨大豆瓊脂),LB固體培養(yǎng)基和LB液體培養(yǎng)基,購(gòu)自青島海博生物技術(shù)有限公司;煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD),購(gòu)自Sigma公司;新生牛血清(NCS),購(gòu)自浙江天杭生物技術(shù)有限公司;氨芐青霉素(AMP)、IPTG、T4連接酶,r Taq酶,BamHⅠ限制性內(nèi)切酶,XhoⅠ限制性內(nèi)切酶,Maker DL 2 000,Maker DL15 000,DNA膠回收試劑盒,DNA片段純化試劑盒,小量質(zhì)粒提取試劑盒和預(yù)染蛋白Marker,購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記羊抗兔IgG(二抗)購(gòu)自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;兔抗4型副豬嗜血桿菌陽(yáng)性血清(一抗)由本實(shí)驗(yàn)室制備并保存。
1.2.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)GenBank中H.parasuisSH0165菌株(№CP001321)的RfaF基因序列設(shè)計(jì)一對(duì)引物。引物如下:P1:5′-CGCGGATCCATGAATATTTTAGTTATTGC -3′, P2: 5′-CCGCTCGAGTTAAAGTGAACTTTTTTTTGA-3′(下劃線部分分別為BamHⅠ和XhoⅠ酶切位點(diǎn))。
1.2.2 RfaF基因的擴(kuò)增 以SC096菌株DNA為模板,用P1/P2引物擴(kuò)增目的片段。反應(yīng)條件為:94℃3min;94℃30s,50℃40s,72℃1min,30個(gè)循環(huán);72℃10min;16℃1h。PCR產(chǎn)物用膠回收純化試劑盒進(jìn)行純化回收。
1.2.3 RfaF基因的克隆和序列測(cè)定 將純化的PCR產(chǎn)物和pET-32a(+)載體用T4連接酶連接,轉(zhuǎn)化至E.coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞中,挑取單菌落進(jìn)行PCR鑒定。陽(yáng)性菌落接種于含AMP(100 μg/mL)的LB液體培養(yǎng)基中過(guò)夜,用小量質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切鑒定。
1.2.4 重組表達(dá)載體的構(gòu)建 測(cè)序正確后,命名該重組質(zhì)粒為pET-32a(+)-RfaF。將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中。挑取單個(gè)菌落并進(jìn)行PCR鑒定。
1.2.5 重組質(zhì)粒的誘導(dǎo)表達(dá)及SDS-PAGE分析 將含有pET-32a(+)-RfaF和pET-32a(+)空載體的E.coilBL21(DE3)工程菌分別轉(zhuǎn)接于含 AmpP(100 μg/mL)的LB培養(yǎng)基中,200r/min振搖培養(yǎng)過(guò)夜,次日按1∶100轉(zhuǎn)接于含Amp(100μg/mL)的LB培養(yǎng)基中,37℃振搖培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期(OD 600nm≈0.6),加入終濃度為1mmol/L的IPTG,分別于誘導(dǎo)后0、2、4、6、12h取菌1mL。菌液經(jīng)12 000r/min離心1min后棄上清,沉淀用100μL pH 7.3的PBS重懸后,煮沸變性5min,10 000r/min離心1min取上清,加入上樣緩沖液進(jìn)行SDS-PAGE分析。
1.2.6 表達(dá)產(chǎn)物的可溶性分析 將優(yōu)化誘導(dǎo)表達(dá)條件后的菌液12 000r/min離心1min后棄上清,沉淀用pH7.3的PBS重懸后用超聲波粉碎儀粉碎30min(工作5s,間隔9s),在4℃以100 00r/min離心15min。分離上清和沉淀,沉淀用pH7.3的PBS重懸,煮沸變性5min,分別取變性后的上清液和重懸后的沉淀,加入上樣緩沖液進(jìn)行SDS-PAGE分析。
1.2.7 表達(dá)蛋白的Western blot分析 將表達(dá)的蛋白進(jìn)行SDS-PAGE分析,然后轉(zhuǎn)印到PVDF膜上,再轉(zhuǎn)移至封閉液中過(guò)夜,4℃過(guò)夜后,室溫下輕搖2h,用TBST洗膜3次,每次5min。再加入1∶200稀釋的兔抗血清4型H.parasuis陽(yáng)性血清(一抗),室溫下輕搖2h。然后用TBST洗膜3次,每次10min。加入1∶3 000稀釋的HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG(二抗),室溫孵育2h,洗滌方法同上。最后在Versa Doc IMAGING SYSTEM下加顯影液照相觀察。
經(jīng)PCR擴(kuò)增的RfaF基因片段經(jīng)10g/L的瓊脂糖凝膠電泳,片段大小約為1 000bp,與預(yù)期結(jié)果相符(圖1)。
圖1 RfaF基因的PCR擴(kuò)增Fig.1 PCR amplification of RfaF gene
將目的片段克隆到表達(dá)載體pET-32a(+)中,用BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切重組質(zhì)粒,得到一條1 000bp左右的片段和一條5 900bp的片段。結(jié)果表明重組質(zhì)粒與預(yù)期結(jié)果相符(圖2)。重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化DH5α后,挑取單菌落經(jīng)PCR擴(kuò)增得到一條1 000bp左右的片段,與預(yù)期結(jié)果一致。
圖2 重組質(zhì)粒雙酶切鑒定Fig.2 Identification of recombinant plasmid by enzyme digestion
將陽(yáng)性重組質(zhì)粒pET-32a(+)-RfaF進(jìn)行序列測(cè)定。測(cè)定結(jié)果表明RfaF基因全長(zhǎng)1 053bp,與血清5型分離株SH0165的同源性為96%(GenBank accession№NC-011852),說(shuō)明目的基因已克隆于表達(dá)載體中。
經(jīng)試驗(yàn)確定1.0mmol/L的IPTG誘導(dǎo)4h時(shí)表達(dá)量最大。表達(dá)產(chǎn)物約為55ku,與預(yù)期蛋白條帶大小相近,而未誘導(dǎo)菌和誘導(dǎo)后的空載體均未出現(xiàn)此蛋白條帶(圖3)。
圖3 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)Fig.3 Expression of recombinant protein induced by IPTG in E.coli BL21(DE3)
對(duì)超聲波裂解細(xì)菌的上清和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE分析,表明重組蛋白以包涵體的形式存在(圖4)。
圖4 重組蛋白的可溶性分析Fig.4 Solubility analysis of the recombinant protein
用兔抗副豬嗜血桿菌4型陽(yáng)性血清(一抗)和HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG(二抗)對(duì)未純化的包涵體蛋白進(jìn)行Western blot分析,結(jié)果表明原核表達(dá)的RfaF重組蛋白能與副豬嗜血桿菌4型陽(yáng)性血清發(fā)生特異性結(jié)合(圖5中箭頭所指的條帶),RfaF重組蛋白具有良好的抗原性。
圖5 RfaF蛋白的抗原性Western blot分析Fig.5 Antigenicity analysis of RfaF protein by Western blot
當(dāng)前國(guó)內(nèi)對(duì)H.parasuis的致病特性還了解的很少。已經(jīng)有報(bào)道表明脂多糖在革蘭陰性菌的致病中發(fā)揮著重要的作用[2-5],H.parasuisLPS可能在致病中發(fā)揮著重要的作用[9]。在革蘭陰性菌中,LPS內(nèi)部核心結(jié)構(gòu)通常包括3-脫氧-D-甘露-辛酮糖酸(Kdo)和 L-乙酰-D-甘露庚糖(L,D-Hep)[10]。影響Kdo的合成和將Kdo轉(zhuǎn)移到類脂A上的缺失株是致死的,Klena J D等[11]研究表明庚糖基轉(zhuǎn)移酶Ⅱ的缺失是能實(shí)現(xiàn)的,并能夠使LPS結(jié)構(gòu)有明顯的縮短。為進(jìn)一步研究庚糖在H.parasuis致病性中發(fā)揮的作用,Xu C等[12]構(gòu)建了RfaF基因缺失菌株和互補(bǔ)株。結(jié)果表明,RfaF基因缺失株的LPS結(jié)構(gòu)明顯的縮短,對(duì)血清的抗性有明顯的下降,對(duì)RfaF基因缺失株的黏附入侵能力的研究表明缺失株對(duì)PUVEC和PK15細(xì)胞的黏附入侵能力顯著降低,其互補(bǔ)株的黏附入侵能力恢復(fù)到了野生型水平。
本研究擴(kuò)增并克隆了H.parasuisRfaF基因序列,結(jié)果表明,構(gòu)建的pET-32a(+)-RfaF/BL21(DE3)系統(tǒng)在IPTG誘導(dǎo)下成功表達(dá)了RfaF蛋白,并對(duì)表達(dá)的重組蛋白進(jìn)行了抗原性分析,表明RfaF重組蛋白具有良好的抗原性。本研究結(jié)果為進(jìn)一步研究RfaF和脂多糖在H.parasuis致病性中的作用奠定了基礎(chǔ)。
[1] Amano H,Shibata M,Kajio N,et al.Pathologic observations of pigs intranasally inoculated with serovar 1,4and 5of Haemophilus parasuis using immunoperoxidase method[J].J Vet Med Sci,1994,56(4):639-644.
[2] Swords W E,Buscher B A,Ver Steeg Ii K,et al.Non-typeable Haemophilus influenzae adhere to and invade human bronchial epithelial cells via an interaction of lipooligosaccharide with the PAF receptor[J].Mol Microbiol,2000,37(1):13-27.
[3] Kanipes M I,Holder L C,Corcoran A T,et al.A deep-rough mutant of Campylobacter jejuni 81-176is noninvasive for intestinal epithelial cells[J].Infect Immun,2004,72(4):2452-2455.
[4] Erwin A L,Allen S,Ho D K,et al.Role of lgtC in resistance of nontypeable Haemophilus influenzaestrain R2866to human serum [J].Infect Immun,2006,74(11):6226-6235.
[5] Ho D K,Ram S,Nelson K L,et al.lgtC expression modulates resistance to C4bdeposition on an invasive nontypeable Haemophilus influenzae[J].J Immunol,2007,178(2):1002-1012.
[6] Bouchet B,Vanier G,Jacques M,et al.Interactions of Haemophilus parasuis and its LOS with porcine brain microvascular endothelial cells[J].Vet Res,2008,39(5):42.
[7] Bouchet B,Vanier G,Jacques M,et al.Studies on the interactions of Haemophilus parasuis with porcine epithelial tracheal cells:limited role of LOS in apoptosis and pro-inflammatory cytokine release[J].Microb Pathog,2009,46(2):108-113.
[8] Xu C,Zhang L,Zhang B,et al.Involvement of lipooligosaccharide heptose residues of Haemophilus parasuis SC096strain in serum resistance,adhesion and invasion [J].Vet J,2013,195(2):200-204
[9] Tadjine M,Mittal K R,Bourdon S,et al.Production and characterization of murine monoclonal antibodies against Haemophilus parasuis and study of their protective role in mice[J].Microbiology,2004,150:3935-3945.
[10] Raetz C R,Whitfield C.Lipopolysaccharide endotoxins[J].Annu Rev Biochem,2002,71:635-700.
[11] Klena J D,Gray S A,Konkel M E.Cloning,sequencing,and characterization of the lipopolysaccharide biosynthetic enzyme heptosyltransferase I gene(waaC)fromCampylobacter jejuni and Campylobacter coli[J].Gene,1998,222(2):177-185.
[12] Xu Z,Yue M,Zhou R,et al.Genomic characterization of Haemophilus parasuis SH0165,a highly virulent strain of serovar 5prevalent in China [J].PLoS One,2011,6 (5):e19631.