李小梅 夏建榮
(廣州大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院, 廣州 510006)
海洋硅藻是海洋初級生產(chǎn)力的重要組成部分,其固碳量可以達(dá)到海洋初級生產(chǎn)力的 40%[1]。海洋硅藻也與高等植物一樣利用核酮糖-1, 5-二磷酸羧化酶/氧化酶(Rubisco)固定 CO2。海洋藻類 Rubisco的Km(CO2)約為 40—60 μmol/L[2], 但實際海水中CO2濃度只有約 10 μmol/L(pH 8.0, 20℃), 因此海水中 CO2可能成為海洋硅藻光合固碳的限制因子, 但海洋硅藻的大部分種類均具有無機(jī)碳濃縮機(jī)制(CO2Concentrating Mechanism, CCM), 即通過 HCO3?的主動轉(zhuǎn)運(yùn)和碳酸酐酶(Carbonic anhydrase) 調(diào)控HCO3?和 CO2的相互轉(zhuǎn)化, 在核酮糖-1, 5-二磷酸羧化酶/氧化酶周圍提高CO2濃度, 以維持較高的光合效率[3]。隨著大量污染物排入海洋, 海水中氮磷濃度出現(xiàn)了不同程度的升高[4], 使氮磷比明顯高于或低于Redfield比率(N∶P≈16), 導(dǎo)致浮游植物無法達(dá)到最適生長, 而處于營養(yǎng)(氮磷)限制狀態(tài)[5]。利用人工海水在實驗室探討海洋藻類生長與氮磷比關(guān)系, 結(jié)果顯示兩者具有明顯的相關(guān)性[6—8]。在近海自然海區(qū)浮游植物初級生產(chǎn)力與氮磷比關(guān)系研究中發(fā)現(xiàn)具有類似的結(jié)果[9]。氮磷比除了影響浮游植物的生長,還對其光合作用產(chǎn)生明顯的影響, 如氮限制可以導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)色素(特別是葉綠素)含量的減少、光系統(tǒng)I、II反應(yīng)中心蛋白合成受阻而影響能量的轉(zhuǎn)換效率[10];氮限制也明顯降低 Rubisco活性與含量[11]。而磷限制可通過改變ATP/ADP的比例和降低Rubisco活性以影響卡爾文循環(huán)[12,13]。但氮磷限制對海洋浮游植物無機(jī)碳利用機(jī)制與碳酸酐酶活性影響還鮮有報道。本文利用海洋浮游硅藻三角褐指藻作為實驗材料, 在不同氮磷比人工海水中培養(yǎng), 探討三角褐指藻如何通過調(diào)控光合無機(jī)碳利用和碳酸酐酶活性以適應(yīng)營養(yǎng)限制環(huán)境。
三角褐指藻(Phaeodactylum tricornutumBohlin)購自中國科學(xué)院海洋研究所, 藻種用 f/2加富的人工海水進(jìn)行培養(yǎng), 培養(yǎng)條件為: 光強(qiáng)200 μmol photons/(m2·s), 溫度 20℃, 光暗周期 12∶12, 通過濾空氣, 培養(yǎng)至對數(shù)期離心收獲, 用于不同氮磷比實驗。在人工海水配制過中加入不同量的無機(jī)氮磷, 分別達(dá)到表1設(shè)置的濃度與N∶P。
表1 氮磷營養(yǎng)限制實驗中的N、P濃度和N∶P設(shè)置Tab.1 N, P concentrations and N/P ratios under N or P-limited experiments
采用半連續(xù)培養(yǎng), 每天照光前將藻離心收獲,更換新鮮培養(yǎng)液, 細(xì)胞起始密度維持在(1.5—2.0)×106/mL, 培養(yǎng)條件同上, 培養(yǎng)5—6d后, 用于實驗。
在培養(yǎng)第 5天, 分別在光照開始和光照12h后通過血球計數(shù)板對細(xì)胞進(jìn)行計數(shù), 半連續(xù)培養(yǎng)生長速率按以下公式計算:
X2和X1分別為光照后和光照前細(xì)胞密度,t2和t1分別為當(dāng)天光照結(jié)束與光照起始的時間。
在 4℃下用90%丙酮抽提 12h, 分別于 630 nm和664 nm處測其光密度值(OD值), 通過以下公式計算葉綠素含量[14]。
取半連續(xù)培養(yǎng)5d后的藻, 重懸于新鮮的f/2加富的人工海水中, 取5 mL加入反應(yīng)槽中, 用恒溫水浴槽控制溫度在 20℃, 光合放氧速率用生物氧測定儀(5300A, YSI)測定, 用鹵鎢燈照光, 通過調(diào)節(jié)鹵鎢燈與反應(yīng)槽的距離獲得不同光強(qiáng)。用下列公式對P-I曲線進(jìn)行非線性擬合[15]:
其中I為光照強(qiáng)度;P是光照強(qiáng)度I時所對應(yīng)的光合速率;Pm為光飽和光合速率;α是光合作用在光限制部分的初始斜率, 表示光合效率;Rd為暗呼吸速率。
半連續(xù)培養(yǎng)5d后的藻懸浮于pH 8.2的25 mmol/L Tris緩沖液中, 取 4 mL加入反應(yīng)槽, 在溫度 20℃,光強(qiáng)為 400 μmol photons/(m2·s)條件下, 用 YSI氧電極測定光合放氧速率。當(dāng)反應(yīng)槽中藻細(xì)胞光合放氧速率為0時(無機(jī)碳補(bǔ)償點), 注入NaHCO3溶液得到反應(yīng)體系中的可溶性無機(jī)碳(DIC)濃度梯度, 得到光合放氧速率對DIC濃度的響應(yīng)曲線(P-C曲線)。用下列公式對P-C曲線進(jìn)行非線性擬合:
其中V為光合放氧速率,Vmax為最大光合放氧速率;[DIC]為反應(yīng)介質(zhì)中總無機(jī)碳濃度;K0.5是當(dāng)光合放氧速率達(dá)到最大光合速率一半時對應(yīng)的無機(jī)碳濃度。
將半連續(xù)培養(yǎng)的藻細(xì)胞收獲, 重新懸浮于新鮮的 f/2加富的人工海水中, 封閉, 在光強(qiáng) 200 μmol photons/(m2·s), 溫度 20℃下, 連續(xù)光照, 每隔一定時間測定培養(yǎng)液中的pH, 至穩(wěn)定為止。
通過測定完整藻細(xì)胞對 K3Fe(CN)6的還原作用確定質(zhì)膜的氧化還原活性[16]。測定時將細(xì)胞懸浮于新鮮培養(yǎng)液中, 加入K3Fe(CN)6, 使培養(yǎng)液中K3Fe(CN)6的初始反應(yīng)濃度為0.50 mmol/L, 每隔30min取5 mL藻液離心, 取上清液測定其在420 nm處的吸光度。
采用Willbur和Anderson方法測定胞內(nèi)、外碳酸酐酶活性[17]。離心收集藻細(xì)胞, 懸浮于8 mL pH 8.3巴比妥緩沖液中。在 4℃下迅速加入 4 mL 4℃CO2飽和水, 用 pH計監(jiān)測反應(yīng)體系中 pH變化, 記錄pH從8.3降至7.3所需的時間。碳酸酐酶活性(U)的計算公式為:EU=10×(T0/T?1), 其中T0為反應(yīng)體系中未加藻細(xì)胞時pH下降所需的時間,T為反應(yīng)體系中加藻細(xì)胞時 pH下降所需的時間。胞外和總碳酸酐酶活性分別通過測定整個細(xì)胞和細(xì)胞經(jīng)超聲破碎后的碳酸酐酶活性獲得。碳酸酐酶活性單位(以單位細(xì)胞計)為EU/cell。胞內(nèi)碳酸酐酶活性=總碳酸酐酶活性?胞外碳酸酐酶活性。
實驗數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。數(shù)據(jù)利用方差分析及多重比較進(jìn)行分析, 并用星號“*”表示處理之間的差異顯著性水平(P<0.05)。
不同N∶P下半連續(xù)培養(yǎng)5d后三角褐指藻的生長速率(圖1), 在N∶P=16∶1的人工海水培養(yǎng)下三角褐指藻的生長速率最大, 約為0.8/d, 其余4種氮磷比培養(yǎng)下生長速率均明顯下降(P<0.05), 表明高于或低于 N∶P=16∶1時, 三角褐指藻的生長明顯受到氮磷營養(yǎng)的限制, 其中嚴(yán)重的氮限制(N∶P=1∶1)使生長速率降低 75%, 嚴(yán)重的磷限制(N∶P=256∶1)則導(dǎo)致光照 12h后細(xì)胞數(shù)目比起始光照時明顯下降, 表明三角褐指藻的生長對嚴(yán)重磷限制比嚴(yán)重氮限制更敏感。
圖1 不同N∶P培養(yǎng)下三角褐指藻的生長速率Fig.1 Growth rate in P.tricornutum grown under the varied nutrient levels
在不同氮磷水平培養(yǎng)下, 葉綠素a含量在(0.57—1.19)×10?7μg/cell 之間, 葉綠素c含量在(0.10—0.21)×10?7μg/cell(圖 2)。氮限制(N∶P = 4∶1 或 1∶1)導(dǎo)致葉綠素a含量分別下降 30.1% 和 47.6%(P<0.05), 磷限制(N∶P = 64∶1或 256∶1)下降39.1% 和52.4%(P<0.05), 但氮磷限制對葉綠素c含量沒有明顯影響(P>0.05)。
適應(yīng)不同 N∶P下生長的細(xì)胞再在封閉系統(tǒng)中培養(yǎng), 培養(yǎng)過程中 pH變化(圖 3), 隨著培養(yǎng)時間的延長, pH逐漸升高, 營養(yǎng)充足條件下(N∶P =16∶1)培養(yǎng)的細(xì)胞pH達(dá)到穩(wěn)定時(即pH補(bǔ)償點)接近9.9。氮磷限制培養(yǎng)的細(xì)胞pH補(bǔ)償點明顯下降(P< 0.05)
圖2 不同氮磷比對三角褐指藻葉綠素含量的影響Fig.2 Effects of N∶P ratios on chlorophyll content in P.tricornutum
圖3 不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)的三角褐指藻的pH漂移曲線Fig.3 pH-drift curves in P.tricornutum grown under the different nutrient levels
光合作用光反應(yīng)曲線經(jīng)常用于測定藻類的光適應(yīng)能力, 從圖4和表2可以看出不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)對光飽和光合速率具有明顯的影響(P<0.05), 與營養(yǎng)充足培養(yǎng)相比, 在嚴(yán)重氮磷限制(N∶P=1∶1或256∶1)培養(yǎng)下光飽和光合速率分別下降39.7%和48.0%。光合效率(α)變化范圍在 4.0—7.3 μmol O2/(cell?h)×10?10/μmol photons/(m2?s), 氮磷營養(yǎng)限制培養(yǎng)下藻細(xì)胞α值明顯下降(P<0.05)。不同營養(yǎng)水平處理的細(xì)胞暗呼吸速率也明顯不同, 氮磷限制培養(yǎng)明顯低于營養(yǎng)充足培養(yǎng)(P<0.05)。
在光合作用與無機(jī)碳濃度響應(yīng)曲線中(圖5、表3), 隨著反應(yīng)液中無機(jī)碳濃度的升高, 光合速率均明顯增加, 但不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)的細(xì)胞光合速率的變化存在一定差異, 氮磷限制導(dǎo)致最大光合速率下降28.7%和38.7%(P<0.05)。但達(dá)到最大光合速率一半時的CO2濃度在磷限制下下降了30%, 但氮限制并沒有明顯影響, 表明磷限制有助于提高細(xì)胞對CO2的親和力。
圖4 不同氮磷比培養(yǎng)的三角褐指藻的P-I曲線Fig.4 Photosynthesis-light response curves in P.tricornutumgrown under the medium with different N∶P
表2 不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)下P-I曲線參數(shù)Tab.2 The parameters of P-I curves in P. tricornutum grown under the medium of different N∶P
圖5 不同氮磷比培養(yǎng)的三角褐指藻的P-C曲線Fig.5 P-C curves of P.tricornutum grown under the medium with different N∶P
胞外碳酸酐酶活性經(jīng)常受到質(zhì)膜氧化還原活性的影響, 利用 K3Fe(CN)6的濃度變化可以測定質(zhì)膜氧化還原活性。圖6顯示不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)的細(xì)胞具有明顯不同的 K3Fe(CN)6氧化還原速率, 營養(yǎng)充足培養(yǎng)細(xì)胞反應(yīng)液中Fe(CN)63?下降速率更快, 表明在氮磷限制環(huán)境中生長的藻細(xì)胞質(zhì)膜氧化還原能力明顯低于營養(yǎng)充足條件下生長的細(xì)胞。
不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)對三角褐指藻碳酸酐酶活性的影響(圖7), 在不同營養(yǎng)水平培養(yǎng)下碳酸酐酶的活性明顯不同, 胞外碳酸酐酶的活性變化范圍在(0.76—1.52)×10?7EU/cell, 胞內(nèi)碳酸酐酶活性明顯低于胞外活性, 在(0.36—0.63)×10?7EU/cell。氮磷限制導(dǎo)致胞內(nèi)外碳酸酐酶活性明顯下降(P<0.05), 其中在氮限制下胞外碳酸酐酶活性分別下降 50%和37.5%, 在磷限制下下降22.3%和42.1%。嚴(yán)重的氮(N∶P=1∶1)或磷(N∶P=256∶1)限制導(dǎo)致胞內(nèi)碳酸酐酶活性下降36.5%和42.9%。
表3 不同N∶P培養(yǎng)下三角褐指藻P-C曲線的各參數(shù)Tab.3 The parameters of P-C in P.tricornutum grown under the different N∶P
圖6 不同氮磷比培養(yǎng)對質(zhì)膜氧化還原活性的影響Fig.6 The variation of plasma membrane redox activity in P.tricornutum grown under the medium with different N∶P
圖7 不同氮磷比培養(yǎng)對碳酸酐酶活性的影響Fig.7 Impacts of different N∶P on carbonic anhydrase activity in P.tricornutum
海洋浮游植物細(xì)胞內(nèi)氮磷元素的比例通常約為16∶1, 所以該比例常被用來作為判斷海洋浮游植物最適生長是否受到營養(yǎng)限制(氮磷限制)的指標(biāo)[18]。但不同浮游植物對營養(yǎng)鹽的需求也存在一定差異,其最適生長所需的N∶P也存在一定的變化。Ho和Hodgkiss通過對香港海域赤潮藻類初級生產(chǎn)力的研究發(fā)現(xiàn), 它們最適生長所需的N∶P在4—16[19]。本研究結(jié)果顯示在N∶P=16∶1時生長速率明顯高于N∶P比大于 16∶1(N∶P=64∶1或 256∶1)或小于 16∶1(N∶P= 4∶1或 1∶1), 表明三角褐指藻在 N∶P=4∶1或1∶1的培養(yǎng)液中存在明顯的氮限制, 在N∶P=64∶1或256∶1培養(yǎng)液中存在明顯的磷限制。植物對氮磷限制的響應(yīng)主要表現(xiàn)為: (1)促進(jìn)營養(yǎng)鹽的吸收和同化; (2)減少生長與代謝速率以平衡細(xì)胞內(nèi)資源的有效利用[20,21]。在本研究中所使用的 N∶P比范圍內(nèi), 三角褐指藻細(xì)胞明顯采用第二種策略適應(yīng)營養(yǎng)限制的環(huán)境, 表明在氮磷限制的環(huán)境中, 細(xì)胞已不足以恢復(fù)其最適生長, 但可以通過細(xì)胞生理活性的下調(diào)來維持適度的生長[20]。生長速率的降低也伴隨著葉綠素a含量的降低, 在營養(yǎng)限制環(huán)境中,原核與真核藻類色素含量的降低是一種常見現(xiàn)象,其原因可能在于氮是葉綠素a合成的原料, 氮限制可以導(dǎo)致葉綠素a的合成受限, 但氮磷限制對葉綠素c含量并沒有明顯影響, 表明氮磷限制并不影響藻細(xì)胞對光能的捕獲, 但對光能的吸收和利用能力降低, 營養(yǎng)物質(zhì)可能更多地流向其他代謝過程, 而對葉綠素a合成上的投入減少。
石巖峻等的研究表明不同氮磷水平對微小原甲藻光合特性具有明顯影響[22], Geider,et al.也發(fā)現(xiàn)營養(yǎng)限制下光飽和光合速率存在明顯的下降[11]。三角褐指藻細(xì)胞在氮磷限制條件下光飽和光合速率變化與之相似。光飽和光合速率大小與無機(jī)碳的獲取、細(xì)胞內(nèi) Rubisco活性和含量密切相關(guān)[15]。在氮限制下生長的萊茵衣藻光合蛋白的合成速率明顯降低[23]。大型海藻(Gracilaria secundata)在氮限制培養(yǎng)下Rubisco含量下降了 50%[24]。有關(guān)維管束植物的研究表明飽和光合速率也受到 Rubisco 的底物核酮糖二磷酸再生速率的影響, 核酮糖二磷酸再生速率受到光合作用產(chǎn)物的反饋限制。磷酸鹽可以作為卡爾文循環(huán)和光合作用光反應(yīng)的一種底物信號影響在Rubisco激活過程中Rubisco激活位點與非底物CO2的穩(wěn)定結(jié)合而增加這種反饋限制[13,25]。光合效率(α)與光捕獲效率和光合作用光能轉(zhuǎn)換效率密切相關(guān),在本研究中營養(yǎng)限制并沒有導(dǎo)致光能捕獲色素葉綠素c含量的變化, 表明在營養(yǎng)限制環(huán)境中, 光合效率的降低應(yīng)與光合作用光能的轉(zhuǎn)換效率有關(guān), 這與營養(yǎng)限制條件下葉綠素a含量的下降是一致的, 同時光合效率的變化也與光飽和光合速率的變化是一致的。而在營養(yǎng)限制環(huán)境中藻細(xì)胞暗呼吸速率的降低可能與呼吸作用相關(guān)酶的合成減少和活性降低有關(guān)。
pH 補(bǔ)償點常用來表示藻類利用 HCO3?的能力,pH補(bǔ)償點高于 9.2時被認(rèn)為藻類具有直接利用HCO3?的能力[26], 本研究結(jié)果顯示在實驗所設(shè)置的營養(yǎng)水平范圍內(nèi)三角褐指藻 pH補(bǔ)償點均高于 9.2,但在營養(yǎng)限制條件下 pH的補(bǔ)償點下降, 表明三角褐指藻在營養(yǎng)限制條件下還能直接利用 HCO3?, 但HCO3?的利用能力與營養(yǎng)充足培養(yǎng)的相比有所下降,這可能與氮磷限制環(huán)境中 HCO3?的主動轉(zhuǎn)運(yùn)所需能量(ATP)和載體蛋白合成減少有關(guān)。硝酸鹽還原與CO2固定需要消耗光合作用所產(chǎn)生的同化力, 碳氮的固定需要分享光合作用電子傳遞過程中產(chǎn)生的能量, 同時從無機(jī)氮合成氨基酸也需要細(xì)胞的碳骨架[27],因此氮代謝與光合無機(jī)碳利用過程是密切相關(guān)的。在微藻中 Rubisco和 CA合成所需的氮源需求的理論估計表明 CCM 活性的增加可能影響氮的利用效率[28]。氮限制導(dǎo)致小球藻(Chlorella emersonii)和鹽藻(Dunaliella tertiolecta)對無機(jī)碳的親和力明顯增加[28,29]; 但 Hu 和 Zhou的研究顯示, 在氮濃度達(dá)到300 μmol/L時對無機(jī)碳的親和力最大, 高于或低于這個濃度其對無機(jī)碳親和力均明顯下降[30]。我們的研究結(jié)果顯示在輕微的N限制(N∶P = 4∶1)下藻細(xì)胞對無機(jī)碳親和力并沒有明顯的影響, 表明氮濃度對藻類 CCM 的影響可能與藻的種類或與氮限制程度有關(guān)。小球藻(C.emersonii) 在磷限制環(huán)境中CCM 的活性受到部分抑制[31], 但在藻類C.vulgaris[32]和Nannochloropsissp.[30]中結(jié)果正好相反,我們的結(jié)果與后者相似。無機(jī)磷在細(xì)胞能量的傳遞過程中起著非常重要的作用, 由于無機(jī)碳的主動轉(zhuǎn)運(yùn)過程需要ATP提供能量, 因此在磷限制環(huán)境中無機(jī)碳轉(zhuǎn)運(yùn)可能受到抑制。同時, 在磷限制環(huán)境中細(xì)胞光合作用產(chǎn)生的大量糖類可以黏附在細(xì)胞表面,阻止 CO2擴(kuò)散進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)[33], 從而可能導(dǎo)致細(xì)胞對無機(jī)碳的親和力明顯增加。
除了 HCO3?的直接轉(zhuǎn)運(yùn), 三角褐指藻還可以通過CO2的擴(kuò)散和胞外CA催化海水中HCO3?轉(zhuǎn)化為CO2, 后者通過自由擴(kuò)散進(jìn)入細(xì)胞內(nèi), 以維持胞內(nèi)CO2的供應(yīng), 其中碳酸酐酶在調(diào)控細(xì)胞CCM機(jī)制方面具有重要作用。夏建榮等的研究表明在低氮磷濃度下小新月菱形藻胞內(nèi)外 CA活性明顯降低[34], 本研究結(jié)果顯示氮磷限制明顯抑制三角褐指藻胞內(nèi)外碳酸酐酶活性與之相似, 但 Kozlowska-Szerenos,et al.發(fā)現(xiàn)磷限制導(dǎo)致小球藻(C.vulgaris)胞內(nèi)外碳酸酐酶的活性均有所增加[35], 這可能與其碳酸酐酶的活性單位以單位葉綠素含量或細(xì)胞密度不同表示有關(guān), 在營養(yǎng)限制條件下葉綠素含量降低, 導(dǎo)致以單位葉綠素含量為單位的碳酸酐酶活性增加。Beardall,et al.的研究發(fā)現(xiàn)氮限制導(dǎo)致小球藻細(xì)胞具有較低CO2補(bǔ)償點和較高濃度的細(xì)胞內(nèi) CO2池, 同時減少氮在 Rubisco合成上的投入[36]。低氮磷濃度也明顯降低鹽藻Rubisco的合成量[11]。Majeau 和Coleman證實了Rubisco和CA基因表達(dá)存在一定的協(xié)同性[37],在光合固碳過程中 Rubisco和 CA維持一定的比例是非常重要的, 因此為了維持正常的光合效率, 在低氮磷環(huán)境中CA合成量也可能下降, CA的合成量減少也可使酶活性降低。另一方面, 胞外 CA活性的變化也受到質(zhì)膜氧化還原狀態(tài)的調(diào)節(jié), 我們的研究結(jié)果證實在氮磷營養(yǎng)充足的條件下, 細(xì)胞質(zhì)膜氧化還原的活性明顯高于氮磷營養(yǎng)限制培養(yǎng)的細(xì)胞,從而有利于啟動質(zhì)膜上的氧化還原鏈, 導(dǎo)致質(zhì)子逸出, 在胞外 CA活性位點周圍聚集, 從而激活胞外CA活性[38], 所以在營養(yǎng)充足培養(yǎng)下三角褐指藻細(xì)胞與營養(yǎng)限制培養(yǎng)相比具有較高的胞外CA活性。
三角褐指藻在 N∶P=16∶1的培養(yǎng)液中生長速率最大, 氮磷限制導(dǎo)致三角褐指藻生長速率明顯下降并伴隨葉綠素a含量的下降, 但對葉綠素c含量并沒有明顯影響。氮磷限制明顯地降低光飽和光合速率、光合效率和暗呼吸速率。
三角褐指藻在氮磷限制環(huán)境中 pH補(bǔ)償點明顯下降, 磷限制有利于藻細(xì)胞提高對無機(jī)碳的親和力,但氮限制并沒有明顯影響。氮磷限制導(dǎo)致藻細(xì)胞質(zhì)膜氧化還原活性和胞內(nèi)外碳酸酐酶活性下降。三角褐指藻在氮磷限制的環(huán)境中通過調(diào)節(jié)葉綠素含量、無機(jī)碳利用方式和碳酸酐酶活性以維持適度的生長。
[1] Granum E, Raven J A, Leegood R C.How do marine diatoms fix 10 billion tones of carbon per year [J]?Canadian Journal of Botany, 2005, 83: 898—908
[2] Badger M R, Anderews T J, Whitney S M,et al.The diversity and coevolution of Rubisco, plastids, pyrenoids and chloroplast based CO2concentrating mechanisms in algae [J].Canadian Journal of Botany, 1998, 70: 1052—1071
[3] Reinfelder J R.Carbon concentrating mechanisms in eukaryotic marine phytoplankton [J].Annual Review Marine Science, 2011, 3: 291—315
[4] Cloern J E.Our evolving conceptual model of coastal eutrophication problem [J].Marine Ecology Progress Series, 2001,210: 223—253
[5] Conley D J.Biogeochemical nutrient cycles and nutrient management strategies [J].Hydrobiologia, 1999, 410: 87—96
[6] Liu DY, Sun J, Chen Z T,et al.Effect of N∶P ratio on the growth of a red tide diatomSkeletonema costatum[J].Transactions of Oceanology and Limnology, 2002, 33(1): 39—44[劉東艷, 孫軍, 陳宗濤, 等.不同氮磷比對中肋骨條藻生長特性的影響.海洋湖沼通報, 2002, 33(1): 39—44]
[7] Liu H, Gao Y L, Yin K D,et al.Effects of N to P ration on the growth of two red tide diatomSkeletonema costatumandThalassiosira weissflogii[J].Journal of Tropical Oceanography, 2010, 29(6): 92—97 [劉皓, 高永利, 殷克東, 等.不同氮磷比對中肋骨條藻和威氏海鏈藻生長特性的影響.熱帶海洋學(xué)報, 2010, 29(6): 92—97]
[8] Hu Z X, Xu N, Li A F,et al.Effects of different N∶P ratios on the growth of three red tide algae [J].Acta Hydrobiologica Sinica, 2008, 32(4): 482—487 [胡章喜, 徐寧, 李愛芬, 等.氮磷比率對 3種典型赤潮藻生長的影響.水生生物學(xué)報, 2008, 32(4): 482—487]
[9] Hodgkiss I J, Ho K C.Are changes in N∶P ratios in coastal waters the key to increased red tide blooms [J]?Hydrobiologia, 1997, 352: 141—147
[10] Geider R J, La Roche J, Greene R M,et al.Response of the photosynthetic apparatus ofPhaeodactylum tricornutum(Bacillariophyceae) to nitrate, phosphate and iron starvation[J].Journal of Phycology, 1993, 29: 755—766
[11] Geider R J, Macintyre H L, Graziano L M,et al.Responses of the photosynthetic apparatus ofDunaliella tertiolecta(Chlorophyceae) to nitrogen and phosphorus limitation [J].European Journal of Phycology, 1998, 33: 315—332
[12] Brooks A.Effects of phosphorus nutrition on ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase activation, photosynthetic quantum yield and amounts of Calvin-cycle metabolites in spinach leaves [J].Australian Journal of Plant Physiology, 1986, 13:221—237
[13] Anwaruzzaman, Sawada S, Usuda H,et al.Regulation of ribulose 1, 5-bisphosphate carboxylase oxygenase activation by inorganic phosphate through stimulating the binding of the activator CO2to the activation sites [J].Plant Cell Physiology, 1995, 36: 425—433
[14] Jeffrey S W, Humphrey G F.New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton [J].Biochemie und Physiologie Pflanzen, 1975, 167: 191—194
[15] Henley W J.Measurement and interpretation of photosynthetic light-response curves in algae in the context of photoinhibition and diel changes [J].Journal of Phycology, 1993,29: 729—739
[16] Nimer N A, Warren M, Merret M J.The regulation of photosynthetic rate and activation of extracellular carbonic anhydrase under CO2-limiting conditions in the marine diatomSkeletonema costatum[J].Plant Cell Environment, 1998, 21:805—812
[17] Willbur K M, Anderson N G.Electronic and colorimetric determination of carbonic anhydrase [J].Journal of Biological Chemistry, 1948, 176: 147—154
[18] Redf i eld B C.The biology control of chemical factors in the environment [J].American Scientist, 1958, 46: 205—221
[19] Ho K C, Hodgkiss I J.Assessing the limiting factors of red tide by bottle bioassay [J].Asian Marine Biology, 1993, 10:77—94
[20] Davies J P, Grossman A R.Responses to deficiencies in macronutrients [A].In: Rochaix J D, Golschmidt-Clermont M, Merchant S (Eds.), The Molecular Biology of Chloroplasts and Mitochondria inChlamydomonas[C].Dordrecht:Kluwer Academic Publisher.1998, 613—633
[21] Giordano M, Hell R.Mineral nutrition in photolithotrophs:cellular mechanisms controlling growth in terrestrial and aquatic habitats [J].Recent Research Developments in Plant Physiology, 2001, 2: 95—123
[22] Shi Y J, Hu H H, Ma R Y,et al.Photosynthetic characteristics ofProrocentrum minimumand its nutrient uptake at different nitrogen and phosphorus levels [J].The Chinese Journal of Process Engineering, 2004, 4(6): 554—559 [石巖峻, 胡晗華, 馬潤宇, 等.不同氮磷水平下微小原甲藻對營養(yǎng)鹽的吸收和光合作用特性.過程工程學(xué)報, 2004, 4(6):554—559]
[23] Plumley F G, Schmidt G W.Nitrogen-dependent regulation of photosynthetic gene expression [J].Process of National Academic Science USA, 1989, 86: 2678—2682
[24] Ekman P, Lignell A, Pedersen M.Localization of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase inGracilaria secundata(Rhodophyta) and its role as a nitrogen storage pool [J].Botanica Marina, 1989, 32: 527—534
[25] Sharkey T D.Feedback limitation of photosynthesis and the physiological role of ribulose bisphosphate carboxylase carbamylation [J].Botanical Magazine, 1990, 2: 87—105
[26] Maberly S C, Spence D H N.Photosynthetic inorganic carbon use by freshwater plants [J].Journal of Ecology, 1983,71: 705—724
[27] Beardall J, Roberts S, Millhouse J.Effects of nitrogen limitation on inorganic carbon uptake and specific activity of ribulose-1,5-P2 carboxylse in green microalgae [J].Canadian Journal of Botany, 1991, 69: 1146—1150
[28] Huppe H C, Turpin D H.Integration of carbon and nitrogen metabolism in plant and algal cells [J].Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 1994, 45:577—607
[29] Young E B, Beardall J.Modulation of photosynthesis and inorganic carbon acquisition in a marine microalga by nitrogen, iron and light availability [J].Canadian Journal of Botany, 2005, 83(7): 917—928
[30] Hu H H, Zhou Q B.Regulation of inorganic carbon acquisition by nitrogen and phosphorus levels in theNannochloropsissp.[J].World Journal of Microbiology Biotechnology,2010, 26: 957—961
[31] Beardall J, Roberts S, Raven J A.Regulation of inorganic carbon acquisition by phosphorus limitation in the green algaChlorella emersonii[J].Canadian Journal of Botany, 2005,83: 859—864
[32] Kozlowska-Szerenos B, Zieliński P, Maleszewski S.Involvement of glycolate metabolism in acclimation ofChlorella vulgariscultures to low phosphate supply [J].Plant Physiology and Biochemistry, 2000, 38: 727—734
[33] Raven J A, Cockell C S, La Rocha C L.The evolution of inorganic carbon concentrating mechanisms in photosynthesis [J].Philosophical Transactions of Royal Society B, 2008,363: 2641—2650
[34] Xia J R, Huang J.Impacts of nitrogen and phosphorus on inorganic carbon utilization and carbonic anhydrase activity inNitzschia closteriumf.minutissima[J].Acta Ecologica Sinica, 2010, 30(15): 4085—4092 [夏建榮, 黃瑾.氮、磷對小新月菱形藻無機(jī)碳利用與碳酸酐酶活性的影響.生態(tài)學(xué)報, 2010, 30(15): 4085—4092]
[35] Kozlowska-Szerenos B, Bialuk I, Maleszewski S.Enhancement of photosynthetic O2evolution inChlorella vulgarisunder high light and increased CO2concentration as a sign of acclimation to phosphate deficiency [J].Plant Physiology and Biochemistry, 2004, 42: 403—409
[36] Beardall J, Griffiths H, Raven J A.Carbon isotope discrimination and the CO2accumulating mechanism inChloroella emersoni[J].Journal of Experimental Botany, 1982, 33:729—737
[37] Majeau N, Coleman J R.Correlation of carbonic anhydrase and ribulose-1, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase expression in pea [J].Plant Physiology, 1994, 104: 1393—1399
[38] Nimer N A, Miao X L, Brownlee C,et al.Inorganic carbon limitation, exofacial carbonic anhydrase activity, and plasma membrane redox activity in marine phytoplankton species [J].Journal of Phycology, 1999, 35: 1200—1205