張 雯, 齊香君, 李彥軍
(陜西科技大學(xué) 生命科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 西安 710021)
細(xì)菌纖維素(Bacterial cellulose, 簡稱BC)是由醋酸桿菌(Acetobacterxylinum)高效合成的纖維素,其最終合成依賴于纖維素合成酶完成,纖維素合成酶表達(dá)量的多少,酶活力的高低,直接影響到BC的合成及產(chǎn)量高低.環(huán)鳥苷酸(cGMP)是纖維素合成酶的變構(gòu)激活劑,如果纖維素合成酶的變構(gòu)位點上沒有結(jié)合cGMP,纖維素合成酶將不具有活性.cGMP的合成與降解又與鳥苷酸環(huán)化酶(GC)和磷酸二酯酶(PDE)有關(guān).GC催化cGMP的合成, PDE催化cGMP的降解[1-4].
欲提高纖維素合成酶活性,最有效的途徑就是消除PDE對cGMP的降解作用,增加其胞內(nèi)含量,提高細(xì)菌纖維素合成酶活力,最終提高BC產(chǎn)量.本研究通過將氨芐抗性基因(Ampr基因)插入至PDE編碼基因(pde基因)BanⅡ、BssHⅡ酶切位點(所得重組基因記為pde′),使pde基因失活,將重組基因pde′克隆至質(zhì)粒pHSG398 EcoRⅠ、KpnⅠ酶切位點,構(gòu)建重組質(zhì)粒pde′-pHSG398.pde′-pHSG398轉(zhuǎn)化醋酸桿菌,利用同源雙交換使重組細(xì)胞內(nèi)pde′替換染色體上的pde基因,從而敲除醋酸桿菌的pde基因,使其喪失表達(dá)PDE的功能,構(gòu)建PDE失活型(PDE-)重組菌株,并利用加入氨芐青霉素及氯霉素的培養(yǎng)基篩選出PDE-重組菌株.
醋酸桿菌(Acetobacterxylinum) 由本實驗室分離純化而得;質(zhì)粒pHSG398 日本Takara生物公司;限制性核酸內(nèi)切酶BanⅡ、BssHⅡ、KpnⅠ、EcoRⅠ、Taq酶、T4連接酶、dNTPs、DNA Marker DL2000、Wide Range DNA Marker寶生物工程(大連)有限公司;Ampr基因 由質(zhì)粒pUC19經(jīng)PCR擴(kuò)增得到;pde基因引物、Ampr基因引物 利用primmer5.0軟件設(shè)計,由寶生物工程(大連)有限公司合成;氨芐青霉素、氯霉素.山東魯抗醫(yī)藥集團(tuán)有限公司;固體培養(yǎng)基:蔗糖5%,牛肉膏1.5%,Na2HPO40.44%,檸檬酸0.08%,瓊脂1.8%,無水乙醇1.0%(v/v),pH自然;發(fā)酵培養(yǎng)基:蔗糖5%,牛肉膏1.5%,Na2HPO40.44%,檸檬酸0.08%,無水乙醇1.0%(v/v),pH自然;氨芐青霉素培養(yǎng)基:蔗糖5%,牛肉膏1.5%,Na2HPO40.44%,檸檬酸0.08%,瓊脂1.8%,氨芐青霉素0.05%,無水乙醇1%(v/v);氯霉素培養(yǎng)基:蔗糖5%,牛肉膏1.5%,Na2HPO40.44%,檸檬酸0.08%,瓊脂1.8%,氯霉素0.05%,無水乙醇1%(v/v).
PCR儀(MJ PTC-200) 美國MJ Research公司;電泳儀(DYY-10C)、電泳槽(DYCP-31D) 北京市六一儀器廠;高速臺式冷凍離心機(TGL-16M) 長沙湘儀離心機儀器有限公司;高速離心機(TGL-16C) 上海安亭科學(xué)儀器廠;電熱恒溫培養(yǎng)箱(MG250B)、恒溫振蕩器(HYG-1A) 上海新瑞儀器有限公司;光學(xué)顯微鏡(XPS-8CA) 上海光學(xué)儀器有限公司;傅立葉變換紅外光譜儀 德國Brucher公司.
(1)DNA檢測[5]:瓊脂糖凝膠電泳法(電泳參數(shù):U=60 V,I=50 mA,P=50 W);
(2)BC膜處理[5]:將發(fā)酵所得BC膜浸泡于0.1 mol/L NaOH溶液中,80 ℃浸泡30 min,繼續(xù)加熱煮沸約2 h,再用蒸餾水反復(fù)沖洗,直到凝膠膜透明無色,pH為7.2;
(3)BC產(chǎn)量的測定[5]:靜態(tài)發(fā)酵BC膜處理后,用干燥濾紙吸干表面水分,105 ℃干燥至恒重,稱重.單位:g/L培養(yǎng)液;
(4)BC鑒定及基團(tuán)分析[6,7]:紅外光譜(樣品處理:將處理好的BC膜烘干后研成粉末,與溴化鉀以1∶100比例混合,充分研細(xì),然后用壓片機壓片,再放入紅外光譜儀中進(jìn)行測定).
1.3.1 菌體細(xì)胞的收集及染色體DNA的提取[8,9]
取一定量醋酸桿菌種子培養(yǎng)液涂布于固體培養(yǎng)基上,30 ℃培養(yǎng)24 h,刮菌膜于無菌水中,漩渦混合振蕩,脫脂棉過濾,12 000 rpm離心10 min收集沉淀,利用酚-氯仿抽提法提取染色體DNA.
1.3.2 醋酸桿菌pde基因的敲除[9,10]
(1)pde′基因的構(gòu)建及克隆
根據(jù)pde基因序列及Ampr基因序列[11]設(shè)計PCR引物,如表1所示.為便于pde′基因的構(gòu)建及與質(zhì)粒pHSG398的克隆,在Ampr基因PCR引物兩端分別添加限制性核酸內(nèi)切酶BanⅡ、BssHⅡ識別序列,在pde基因引物兩端分別添加限制性核酸內(nèi)切酶EcoRⅠ、KpnⅠ識別序列.PCR反應(yīng)過程中分別設(shè)置Mg2+濃度1 mM、2 mM、3 mM、4 mM,退火溫度46 ℃、48 ℃、50 ℃、52 ℃、54 ℃,考察其對PCR產(chǎn)物產(chǎn)量及特異性的影響.采用BanⅡ、BssHⅡ雙酶切分別切割pde基因、Ampr基因,利用T4連接酶將Ampr基因連接至pde基因BanⅡ、BssHⅡ酶切位點(所得重組基因記為pde′).采用EcoRⅠ、KpnⅠ雙酶切分別切割pde′基因、質(zhì)粒pHSG398,將pde′基因連接至pHSG398EcoRⅠ、KpnⅠ酶切位點,構(gòu)建重組質(zhì)粒pde′-pHSG398.
表1 擴(kuò)增基因PCR引物序列
注:(1)引物的酶切位點用下劃線標(biāo)識
(2)PDE-重組細(xì)胞的構(gòu)建及篩選
采用CaCl2轉(zhuǎn)化法使重組質(zhì)粒pde′-pHSG398轉(zhuǎn)化醋酸桿菌細(xì)胞,利用pde′基因上所帶的氨芐抗性標(biāo)記及質(zhì)粒pHSG398上的氯霉素抗性標(biāo)記,采用影印法將轉(zhuǎn)化液分別涂布于氨芐青霉素培養(yǎng)基及氯霉素培養(yǎng)基,30 ℃靜置培養(yǎng)24 h,篩選在氨芐青霉素培養(yǎng)基上生長而在氯霉素培養(yǎng)基上不生長的菌落30株,分別記為C1~C30,即為目的轉(zhuǎn)化子,即PDE-重組細(xì)胞.
1.3.3 PDE-重組菌株的發(fā)酵[5]
配制發(fā)酵培養(yǎng)基,分別接種醋酸桿菌出發(fā)菌株(Q)及PDE-重組菌株(C1~C30),(接種量10%,發(fā)酵液裝量200 mL/500 mL燒杯),30 ℃靜態(tài)培養(yǎng)4 d進(jìn)行BC的發(fā)酵生產(chǎn)(每個菌株3個平行實驗),發(fā)酵結(jié)束后將BC凝膠膜按1.2.3所述方法進(jìn)行處理,測定BC產(chǎn)量并進(jìn)行BC膜IR檢測.
1.3.4 PDE-重組菌株的遺傳穩(wěn)定性研究
將PDE-重組菌株(C1~C30)分別接種于氨芐青霉素培養(yǎng)基及氯霉素培養(yǎng)基上,連續(xù)轉(zhuǎn)接三代,驗證重組菌株的遺傳穩(wěn)定性能.
2.1.1 Mg2+濃度對PCR的影響
按照1.3.2.1所述方法考察Mg2+濃度對pde基因、Ampr基因PCR擴(kuò)增的影響,實驗結(jié)果如表2所示.PCR產(chǎn)物結(jié)果表明,隨著Mg2+濃度升高,PCR產(chǎn)物產(chǎn)量逐漸增多,而產(chǎn)物特異性逐漸降低,在Mg2+較高時,甚至出現(xiàn)多條非特異性雜帶.其原因為Taq酶活性的強弱依賴于游離Mg2+濃度的高低,從而影響PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量和質(zhì)量,而PCR反應(yīng)體系中,模板的純度、dNTPs的含量以及引物濃度均會影響游離Mg2+濃度.實驗結(jié)果表明,pde基因PCR反應(yīng)體系中Mg2+最佳濃度為3 mM,Ampr基因PCR反應(yīng)體系中Mg2+最佳濃度為2 mM.
表2 Mg2+濃度對pde基因、Ampr基因PCR產(chǎn)物的影響
-:產(chǎn)物量極少;+:產(chǎn)物量較大,特異性好;++/+++:產(chǎn)物量大,但非特異性產(chǎn)物較多
2.1.2 退火溫度對PCR的影響
按照1.3.2.1所述方法考察退火溫度對pde基因、Ampr基因PCR擴(kuò)增的影響,實驗結(jié)果如表3、表4所示.PCR產(chǎn)物結(jié)果表明,pde基因PCR反應(yīng)退火溫度為50 ℃時,PCR產(chǎn)物產(chǎn)量相對較高,且特異性好;Ampr基因PCR反應(yīng)退火溫度為36 ℃時,PCR產(chǎn)物產(chǎn)量相對較高,且特異性好.其原因為在PCR反應(yīng)中,退火溫度的高低決定著PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量及特異性,復(fù)性溫度過低,引物之間易形成引物二聚體,或引物與模板易發(fā)生非特異性結(jié)合,形成非特異性產(chǎn)物;溫度過高,引物與模板結(jié)合效率降低,PCR產(chǎn)物產(chǎn)量降低.
表3 不同復(fù)性溫度對pde基因PCR產(chǎn)物的影響
注:-:產(chǎn)物量極少或沒有;+:產(chǎn)物量較大,特異性好;++/+++:產(chǎn)物量大,但非特異性產(chǎn)物較多
表4 不同復(fù)性溫度對Ampr基因PCR產(chǎn)物的影響
注:-:產(chǎn)物量極少或沒有;+:產(chǎn)物量較大,特異性好;++/+++:產(chǎn)物量大,但非特異性產(chǎn)物較多
圖1 不同復(fù)性溫度下pde基因PCR產(chǎn)物電泳圖
圖2 不同復(fù)性溫度下Ampr基因PCR產(chǎn)物電泳圖
pde基因、Ampr基因PCR反應(yīng)產(chǎn)物凝膠電泳圖譜如圖1、圖2所示.由圖可知,pde基因PCR產(chǎn)物大小介于500 bp~750 bp之間,符合pde基因671 bp的大小;Ampr基因PCR產(chǎn)物稍大于750 bp,符合Ampr基因856 bp的大小.
根據(jù)1.3.2.1所述方法構(gòu)建pde′基因.pde基因、Ampr基因酶切及連接前后電泳圖譜,pde′基因、質(zhì)粒pHSG398酶切前后電泳圖譜,以及重組質(zhì)粒pde′-pHSG398電泳圖譜如圖3、圖4、圖5所示.由電泳圖譜可知,pde基因、Ampr基因進(jìn)行了正確切割及連接,重組質(zhì)粒pde′-pHSG398也進(jìn)行了正確構(gòu)建.
圖3 pde基因、Ampr基因酶切前后電泳圖譜
圖4 pde基因、Ampr基因重組前后電泳圖譜
圖5 pde′基因、pHSG398重組前后電泳圖譜
根據(jù)1.3.2.2所述方法,采用CaCl2轉(zhuǎn)化法,構(gòu)建PDE-重組細(xì)胞.利用氨芐青霉素培養(yǎng)基及氯霉素培養(yǎng)基篩選目的重組細(xì)胞,共篩選得到30株P(guān)DE-重組細(xì)胞.
由于DNA發(fā)生同源重組時,同時發(fā)生雙交換和單交換,僅發(fā)生單交換時,重組細(xì)胞基因組中不僅含有pde′基因,還含有宿主細(xì)胞的pde基因,因此需篩選發(fā)生雙交換的轉(zhuǎn)化子.雙交換的轉(zhuǎn)化子具有Ampr和Clms,因此篩選指標(biāo)為在加有氨芐抗生素的培養(yǎng)基上生長而在加有氯霉素的培養(yǎng)基上不生長的菌落,即為目的重組菌株.
醋酸桿菌出發(fā)菌株(Q)及PDE-重組菌株(C1~C30)發(fā)酵生產(chǎn)BC產(chǎn)量如表5所示.出發(fā)菌株(Q)及PDE-重組菌株(C9)發(fā)酵產(chǎn)物BC紅外圖譜如圖6、圖7所示.由表5可知,所篩選30株P(guān)DE-重組菌株發(fā)酵產(chǎn)BC與醋酸桿菌出發(fā)菌株相比較,產(chǎn)量均有所提高,最大產(chǎn)率提高了38%,表明pde基因的敲除可提高BC合成酶作用水平,從而提高BC產(chǎn)量.由圖6、圖7可知,PDE-重組菌株(C9)發(fā)酵產(chǎn)物BC膜紅外光譜圖與出發(fā)菌株(Q) 發(fā)酵產(chǎn)物BC膜紅外光譜圖特征吸收峰相似.1 059 cm-1左右處的吸收峰是由碳氧鍵的伸縮振動引起的,是纖維素分子的特征峰.在3 450 cm-1左右處的吸收峰,反映了分子間氫鍵引起的O-H基的伸縮振動.在1 500 cm-1和2 000 cm-1之間的吸收峰是由纖維素4′端的半縮醛基引起的.在1 645 cm-1左右處的吸收峰是由C-H鍵伸縮振動引起的.紅外光譜圖顯示pde基因敲除不影響菌株的BC合成能力.PDE-重組菌株(C1~C30)遺傳穩(wěn)定性實驗結(jié)果顯示,重組菌株接種于氨芐青霉素培養(yǎng)基及氯霉素培養(yǎng)基上,連續(xù)轉(zhuǎn)接三代,仍然具有Ampr和Clms,證明其pde-基因型穩(wěn)定,重組菌株遺傳穩(wěn)定性能良好.
表5 PDE-重組菌株與出發(fā)菌株BC產(chǎn)量的比較
圖6 出發(fā)菌株發(fā)酵BC紅外光譜圖
圖7 PDE-重組菌株(C9)發(fā)酵BC紅外光譜圖
通過基因敲除技術(shù)能夠敲除醋酸桿菌(Acetobacterxylinum)基因組中pde基因,成功構(gòu)建PDE-菌株,重組菌株具備BC高產(chǎn)能力,且遺傳穩(wěn)定性能良好.本研究為改善細(xì)菌纖維素發(fā)酵產(chǎn)量低、細(xì)菌纖維素生產(chǎn)難以工業(yè)化的現(xiàn)狀奠定了基礎(chǔ).
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