国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

瘤胃微生物對(duì)牧草纖維降解的研究進(jìn)展

2013-01-26 02:08:29揚(yáng)州大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院侯玉潔史仁煌楊宏波趙國(guó)琦
中國(guó)飼料 2013年6期
關(guān)鍵詞:絲狀原蟲琥珀酸

揚(yáng)州大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院 徐 俊 侯玉潔 史仁煌* 劉 紅 楊宏波 趙國(guó)琦

中國(guó)飼料工業(yè)協(xié)會(huì) 丁健

揚(yáng)州大學(xué)試驗(yàn)農(nóng)牧場(chǎng) 朱建明

上海光明荷斯坦牧業(yè)有限公司 蘇衍菁

牧草對(duì)反芻動(dòng)物來(lái)說(shuō)必不可少,其經(jīng)瘤胃發(fā)酵形成揮發(fā)性脂肪酸可為反芻動(dòng)物提供70%~80%的能量,牧草纖維還對(duì)維持腸道健康和發(fā)揮最大生產(chǎn)潛力具有重要作用。然而,粗飼料在瘤胃中的降解率是決定其飼喂價(jià)值的關(guān)鍵因素(Sun,2006)。 植物形態(tài)、 結(jié)構(gòu) (Wilson和 Hatifield,1997)、 細(xì)胞壁組分 (Sun,2006), 動(dòng)物咀嚼行為(Pan 等,2003)和瘤胃內(nèi)環(huán)境(Miron 等,2001)等因素均會(huì)影響牧草纖維的消化。研究表明,提高粗飼料降解率不但可以提高動(dòng)物生產(chǎn)性能,還能減少營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)流向環(huán)境造成浪費(fèi)和污染 (Jung等,2011)。纖維的降解依賴于瘤胃內(nèi)棲息的大量微生物,包括細(xì)菌、真菌和原蟲等(Dijkstra和Tamminga,1995),它們共同作用將牧草纖維逐漸降解。本文主要介紹了瘤胃微生物對(duì)牧草的降解及影響纖維降解的因素。

1 瘤胃微生物對(duì)牧草纖維的降解

奶牛采食的粗飼料先經(jīng)咀嚼和反芻作用將粗飼料變短,然后經(jīng)瘤胃微生物進(jìn)一步降解,微生物的降解作用是決定粗飼料降解率高低的關(guān)鍵因素。瘤胃中微生物主要包括細(xì)菌、真菌和原蟲,細(xì)胞壁降解的80%由瘤胃中細(xì)菌和真菌完成,原蟲的作用僅占 20%(Sun等,2007)。

1.1 細(xì)菌對(duì)牧草纖維的降解 在瘤胃中,黃色瘤胃球菌(R.flavefaciens)、白色瘤胃球菌(R.albus)和產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌(F.succinogenes)是公認(rèn)的分解纖維的三種優(yōu)勢(shì)菌,它們對(duì)植物細(xì)胞壁的降解作用已通過(guò)電子顯微鏡觀察得到了充分證實(shí)(Jung 和 Engels,2001)。 瘤胃中 88%~91%的葡糖糖內(nèi)切酶和木聚糖酶,70%的淀粉酶和75%的蛋白酶是由飼料顆粒中緊密吸附的微生物分泌(Koike 等,2003),因此,與飼料顆粒緊密吸附的細(xì)菌對(duì)纖維的降解起主要作用(Miron等,2001)。

瘤胃細(xì)菌對(duì)飼料顆粒的吸附和降解作用因牧草種類而不同(Sun,2006;Akin,1989)。 以黑麥草為研究材料的試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),細(xì)菌可快速吸附于黑麥草上,15 min后細(xì)菌總數(shù)可達(dá)峰值(Edwards,2007)。黃色瘤胃球菌主要定植于黑麥草的表皮、薄壁組織和韌皮部邊緣(Latham等,1978)。以羊茅草和鴨茅草為研究材料的試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),羊茅草葉中不同組織部位的降解率不同,葉肉細(xì)胞和韌皮部纖維要比外周維管束鞘和表皮組織優(yōu)先降解,表皮和薄壁組織可完全被降解,植物組織類型的不同會(huì)改變微生物吸附的種類和數(shù)量,黃色瘤胃球菌不易附著在葉肉組織細(xì)胞和木質(zhì)部導(dǎo)管中(Sun等,2007),此外,羊茅草中纖維分解菌有70%是產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌和黃色瘤胃球菌(Cheng等,1984),它們可占細(xì)菌總數(shù)的0.1%~6.6%和 1.3%~2.9%(Krause 等,1999)。Shinkai和Kobayashi(2007)通過(guò)熒光原位雜交和實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法研究了產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌和黃色瘤胃球菌對(duì)鴨茅草的定植作用,產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌可緊密吸附于橫斷面邊緣及未降解的內(nèi)部組織,黃色瘤胃球菌要比產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌更傾向于吸附在葉鞘組織中,黃色瘤胃球菌對(duì)鴨茅草的降解起主導(dǎo)作用,其在瘤胃中的數(shù)量更多且降解莖桿的能力更強(qiáng)。Koike等(2003)通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性PCR和尼龍袋法研究了綿羊中三種主要纖維降解菌對(duì)鴨茅莖的吸附和降解情況,結(jié)果表明,三種纖維分解菌的數(shù)量隨時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸升高,且在24 h時(shí)產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌和黃色瘤胃球菌的數(shù)量達(dá)到峰值,分別為109cfu/g干物質(zhì)和107cfu/g干物質(zhì),而白色瘤胃球菌在48 h達(dá)到峰值,為106cfu/g干物質(zhì)。莖中中性洗滌纖維降解率隨時(shí)間的延長(zhǎng)不斷提高,這與細(xì)菌數(shù)量的變化趨勢(shì)并非一致,可能是因?yàn)槔w維酶活性滯后造成的。在鴨茅莖桿中吸附的細(xì)菌數(shù)量為產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌>黃色瘤胃球菌>白色瘤胃球菌,這與瘤胃食糜中三種細(xì)菌的數(shù)量相吻合。產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌是瘤胃食糜和牧草莖桿降解中最重要的細(xì)菌。

在對(duì)秸稈的研究中發(fā)現(xiàn),當(dāng)瘤胃中pH為6.0時(shí),吸附在大麥秸稈中的細(xì)菌量可達(dá)峰值,且黃色瘤胃球菌和產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌吸附量會(huì)達(dá)到飽和狀態(tài),分別為33 mg/g干物質(zhì)和23 mg/g干物質(zhì),它們?cè)诖篼溄斩捴械奈轿稽c(diǎn)各不相同(Bhat和o/rskov,1990)。而將玉米秸稈機(jī)械破碎后發(fā)現(xiàn),吸附于玉米秸桿上的纖維素分解菌和半纖維素分解菌的數(shù)量均得到顯著提高,這更有助于秸稈的消化(Kozakai等,2007)。

1.2 真菌對(duì)牧草纖維的降解 真菌可穿透牧草的角質(zhì)層屏障降解無(wú)法被細(xì)菌和原蟲降解的木質(zhì)化組織(Akin,1989),但真菌對(duì)低木質(zhì)化組織的降解能力有限(Hobson 和 Stewart,1997)。 Wilson 和Hatfield(1997)研究指出,真菌可以減弱植物纖維組織的內(nèi)部張力,使其變得疏松而易被瘤胃中微生物降解,雖然瘤胃中真菌遠(yuǎn)不及細(xì)菌多,但是真菌可以優(yōu)先深入到植物纖維組織內(nèi)部促進(jìn)細(xì)菌的進(jìn)一步降解(Varga和Kolver,1997)。真菌可以分泌多種降解植物細(xì)胞壁的酶,其中活性最高的是纖維素酶和木聚糖酶(Sun等,2007)。

瘤胃真菌可降解植物中的大部分多糖,并能溶解植物片段(Akin,1994)。研究發(fā)現(xiàn),在體外純培養(yǎng)中有40%~45%的麥秸片段干物質(zhì)在4 d內(nèi)消失,而約50%的纖維素和半纖維素被消化,約16%的木質(zhì)素也被損失。瘤胃真菌還有水解蛋白質(zhì)的能力,而纖維分解細(xì)菌則無(wú)此功能,真菌的假根可穿透植物組織的蛋白層,而這一層阻止了纖維菌進(jìn)入細(xì)胞壁(Wallace 和 Joblin,1985)。

Karunanandaa等(1995)研究發(fā)現(xiàn),用白腐真菌處理稻草的莖和葉,其體外干物質(zhì)消化率可分別提高13%和30%,真菌處理造成維管束鞘崩裂,使微生物更易接觸而促進(jìn)葉肉組織的消化。Edwards等(2008)研究表明,黑麥草在瘤胃中培養(yǎng)5 min時(shí)即可發(fā)現(xiàn)真菌的存在,樣品處理方法并不會(huì)影響真菌的定植。

1.3 原蟲對(duì)牧草纖維的降解 研究表明,瘤胃中缺乏原蟲時(shí),細(xì)胞壁在瘤胃中的降解率下降(Williams和 Coleman,1992), 且在原蟲中發(fā)現(xiàn)有纖維酶的存在(Wang 和 McAllister,2002),因此,原蟲也被認(rèn)為在植物細(xì)胞壁的降解過(guò)程中發(fā)揮著重要作用(Sun等,2007)。目前研究最多的分解纖維素的原蟲是真雙毛屬原蟲(Eudiplodinium maggii),單個(gè)蟲體可以吞噬148 ng的纖維素,它的消化速率達(dá)到 320 pg/min(Coleman,1992)。 除了內(nèi)毛屬原蟲(Entodinium spp)以外,在所有內(nèi)毛蟲目(Entodiniomorphid)的原蟲體內(nèi)均含有纖維素酶,且纖維素酶活性最高的原蟲是Eudiplodinium maggii、Epidinium ecaudatum caudatum 和 Ostracodinium obtusum bilobum。然而,由于原蟲在體外很難培養(yǎng)和存活,因此,有關(guān)原蟲對(duì)纖維降解作用的研究受到一定限制,有待于進(jìn)一步深入探討。

2 影響纖維消化的因素

2.1 動(dòng)物采食、日糧處理和飼喂方式 動(dòng)物采食、日糧處理、飼喂方式等均會(huì)影響微生物的生長(zhǎng)和底物纖維的消化(Varga和Kolver,1997)。動(dòng)物采食會(huì)影響瘤胃液和內(nèi)容物的周轉(zhuǎn)速率,而結(jié)構(gòu)性碳水化合物的降解速率與食糜流通速率有關(guān),且隨動(dòng)物采食量的提高而降低 (Russell等,1992)。將粗飼料粉碎和制粒后,纖維素酶與牧草的接觸面積增大更易于微生物的降解。氨化或堿處理牧草可溶解半纖維素和木質(zhì)素,進(jìn)而提高牧草消化率(Fahey等,1993)。另外,日糧的飼喂形式和飼喂頻率也會(huì)影響纖維的消化,飼喂?fàn)I養(yǎng)物質(zhì)均衡的全混合日糧、易發(fā)酵日糧,以及少量多次飼喂,均可促進(jìn)瘤胃內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài),提高纖維分解菌的數(shù)量以及纖維消化率(Robinson,1989)。

2.2 微生物因素 細(xì)菌與底物的吸附能力是影響底物消化率的重要因素,也是植物細(xì)胞壁多糖降解的前提條件 (Fernando等,2012;Lynd等,2002)。微生物與底物的吸附可以在細(xì)胞和分子水平上影響其生理生化反應(yīng)(R·oper和 Koch,1988)。

細(xì)菌間存在競(jìng)爭(zhēng)關(guān)系,并會(huì)相互抑制與底物的吸附(Fernando等,2012)。當(dāng)產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌與瘤胃球菌同時(shí)存在時(shí),產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌的吸附數(shù)量明顯受到抑制,這可能是與球菌黏附快而產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌黏附慢有關(guān)。當(dāng)產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌和黃色瘤胃球菌完成與底物的吸附后,添加白色瘤胃球菌并不影響其吸附,但出現(xiàn)部分已黏附的黃色瘤胃球菌的脫落,這可能是因?yàn)檫@兩種球菌的黏附位點(diǎn)相同或在黏附過(guò)程中相互抑制所致,而球菌和產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌的黏附位點(diǎn)不同(Mosoni等,1997)。當(dāng)原蟲與細(xì)菌或真菌共培養(yǎng)時(shí),細(xì)胞壁的降解速度較各微生物單獨(dú)培養(yǎng)時(shí)低,但真菌與細(xì)菌共培養(yǎng)時(shí),出現(xiàn)互作效應(yīng),從而提高細(xì)胞壁降解率(Lee等,2000)。

底物中微生物密度會(huì)影響其對(duì)纖維的吸附能力,高密度環(huán)境下,細(xì)菌間的競(jìng)爭(zhēng)則會(huì)嚴(yán)重影響對(duì)纖維的吸附和消化(Fernando等,2012)。某些細(xì)菌釋放的多肽物質(zhì)和累積的產(chǎn)物也會(huì)抑制微生物的吸附 (Pettipher和Latham,1979)。 細(xì)菌表面糖蛋白質(zhì)也會(huì)影響細(xì)菌的吸附能力,當(dāng)細(xì)菌表面糖蛋白變性或構(gòu)象改變時(shí),細(xì)菌對(duì)底物的吸附能力明顯降低。當(dāng)用高碘酸鹽、戊二醛和蛋白酶去除產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌表面的糖蛋白后,該菌與底物的黏附數(shù)量顯著降低(Gong和Forsberg,1989)。然而,用疊氮化鈉或甲醛殺死細(xì)菌,對(duì)細(xì)菌的黏附能力無(wú)影響,但是用加熱的方法(蛋白完全變性)可以強(qiáng)烈的抑制細(xì)菌的黏附能力(Roger等,1990)。

2.3 底物因素 植物組織結(jié)構(gòu)、細(xì)胞壁組分及其結(jié)構(gòu)等均會(huì)影響纖維的消化,大多數(shù)植物表皮存在一層蠟質(zhì)和角質(zhì)層,阻止了微生物對(duì)粗飼料的黏附。瘤胃細(xì)菌通常是通過(guò)對(duì)氣孔、皮孔或植物破損部位的入侵到達(dá)植物組織的內(nèi)部進(jìn)行對(duì)植物組織的進(jìn)一步消化和降解 (McAllister等,1994)。與此同時(shí),底物大小和形狀也會(huì)影響微生物的吸附,飼料顆粒的表面積越大越有利于微生物對(duì)纖維的降解,因?yàn)榱鑫肝⑸锟梢愿玫厝肭值街参锏膬?nèi)部進(jìn)行附著和分泌纖維降解酶。反芻動(dòng)物在進(jìn)食時(shí)對(duì)粗飼料的咀嚼作用,可破壞粗飼料表皮的角質(zhì)層,增大吸附表面積,暴露出更多的可消化位點(diǎn)供微生物利用,從而有利于牧草纖維的降解(McAllister等,1994)。

2.4 環(huán)境因素 溫度的變化會(huì)顯著影響瘤胃微生物的吸附能力。研究表明,產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌在4、22℃和37℃條件下,對(duì)微晶纖維素的黏附率分 別 為 50%、79%和 82%(Gong和 Forsberg,1989)。在50℃以上時(shí),白色瘤胃球菌和產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌的黏附率會(huì)降低,白色瘤胃球菌、黃色瘤胃球菌和產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌的黏附率均在 30~38 ℃時(shí)最大(Roger等,1990)。

pH對(duì)纖維分解菌的吸附作用的影響因不同細(xì)菌而異。對(duì)于產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌,當(dāng)pH由4.5上升到6時(shí),該菌對(duì)底物的黏附力有所增加;當(dāng)pH為6~7時(shí),該菌的黏附力保持穩(wěn)定;當(dāng)pH大于7.5時(shí),該菌的黏附力會(huì)急劇下降。對(duì)于黃色瘤胃球菌,當(dāng)pH為3.3~7.5時(shí),該菌的黏附力較穩(wěn)定;當(dāng)pH上升到8時(shí),該菌的黏附力會(huì)逐漸下降。對(duì)于白色瘤胃球菌,當(dāng)pH為5.5~8時(shí),該菌的黏附力不受影響(Roger等,1990)。

底物中離子種類和濃度也會(huì)極大地影響瘤胃微生物的吸附。提高底物中Ca2+或Mg2+濃度時(shí),產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌對(duì)纖維的黏附作用會(huì)顯著提高(Gong和 Forsberg,1989)。但 Roger等(1990)研究認(rèn)為,產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌對(duì)二價(jià)陽(yáng)離子并不敏感,Na+對(duì)其黏附能力的影響更大。黃色瘤胃球菌的黏附能力并不單獨(dú)受Ca2+、Mg2+或Na+的影響,不過(guò)當(dāng)同時(shí)缺少兩種二價(jià)陽(yáng)離子時(shí),黏附作用則會(huì)顯著降低。

3 展望

牧草中的結(jié)構(gòu)性碳水化合物是反芻動(dòng)物重要的能量來(lái)源,而纖維的降解是影響牧草營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的關(guān)鍵因素,瘤胃中微生物對(duì)不同牧草的降解規(guī)律存在一定的差異,因此,明確瘤胃微生物對(duì)不同牧草的降解機(jī)制對(duì)合理利用牧草纖維至關(guān)重要。雖然,目前關(guān)于牧草纖維降解機(jī)制的研究已取得一定進(jìn)展,但仍然有諸多問(wèn)題尚未解決,如對(duì)不同牧草結(jié)構(gòu)性碳水化合物瘤胃內(nèi)降解機(jī)制、代謝轉(zhuǎn)化途徑、營(yíng)養(yǎng)調(diào)控功能,以及對(duì)乳品質(zhì)、肉質(zhì)調(diào)控影響的研究還有待深入。與此同時(shí),利用現(xiàn)代基因工程技術(shù)、蛋白質(zhì)工程等方法,開展纖維分解菌和低木質(zhì)化牧草育種以及新型高效纖維素酶的開發(fā)也將更有助于促進(jìn)牧草在畜牧生產(chǎn)中的高效利用。

[1]Akin D.Histological and physical factors affecting digestibility of forages[J].Agronomy Journal,1989,81(1):17 ~ 25.

[2]Bhat S R W,φrskov E.Adhesion of cellulolytic ruminal bacteria to barley straw[J].Applied and environmental microbiology,1990,56(9):2698 ~ 2703.

[3]Briesacher S,May T,Grigsby K,et al.Use of DNA probes to monitor nutritional effects on ruminal prokaryotes and Fibrobacter succinogenes S85[J].Journal of Animal Science,1992,70(1):289 ~ 295.

[4]Cheng K J,Stewart C,Dinsdale D,et al.Electron microscopy of bacteria involved in the digestion of plant cell walls[J].Anim Feed Sci Tech,1984,10(2):93 ~ 120.

[5]Coleman G S.The rate of uptake and metabolism of starch grains and cellulose particles by Entodinium species,Eudiplodinium maggii,some other entodiniomorphid protozoa and natural protozoal populations taken from the ovine rumen[J].J appl bacteriol,1992,73:507 ~ 513.

[6]Dijkstra J,Tamminga S.Simulation of the effects of diet on the contribution of rumen protozoa to degradation of fibre in the rumen[J].British Journal of Nutrition,1995,74(5):617 ~ 634.

[7]Edwards J E,Kingston-Smith A H,Jimenez H R,et al.Dynamics of initial colonization of nonconserved perennial ryegrass by anaerobic fungi in the bovine rumen[J].FEMS Microbiology Ecology,2008,66(3):537 ~ 545.

[8]Fahey G,Bourquin L,Titgemeyer E,et al.Postharvest treatment of fibrous feedstuffs to improve their nutritive value[J].Forage cell wall structure and digestibility(foragecellwalls),1993,715 ~ 766.

[9]Gong J,F(xiàn)orsberg C W.Factors affecting adhesion of Fibrobacter succinogenes subsp.succinogenes S85 and adherence-defective mutants to cellulose[J].Appl Environ Microbiol,1989,55(12):3039 ~ 3044.

[10]Hobson P N,Stewart C S.Rumen Microbial Ecosystem[M].1997.

[11]Imam S H,Bard R,Tosteson T.Specificity of marine microbial surface interactions[J].Applied and environmental microbiology,1984,48(4):833 ~ 839.

[12]Jung H,Engels F.Alfalfa stem tissues:rate and extent of cell-wall thinning during ruminal degradation[J].NJAS-Wageningen Journal of Life Sciences,2001,49(1):3 ~ 13.

[13]Jung H J G,Samac D A,Sarath G.Modifying crops to increase cell wall digestibility[J].Plant Science,2011,185:65 ~ 77.

[14]Karunanandaa K,Varga G,Akin D,et al.Botanical fractions of rice straw colonized by white-rot fungi:changes in chemical composition and structure[J].Anim Feed Sci Tech,1995,55(3):179 ~ 199.

[15]Koike S,Kobayashi Y.Development and use of competitive PCR assays for the rumen cellulolytic bacteria:Fibrobacter succinogenes,Ruminococcus albus and Ruminococcus flavefaciens[J].FEMS microbiology letters,2006,204(2):361 ~ 366.

[16]Kozakai K,Nakamura T,Kobayashi Y,et al.Effect of mechanical processing of corn silage on in vitro ruminal fermentation,and in situ bacterial colonization and dry matter degradation[J].Canadian Journal of Animal Science,2007,87(2):259 ~ 267.

[17]Krause D O,Denman S E,Mackie R I,et al.Opportunities to improve fiber degradation in the rumen:microbiology,ecology,and genomics[J].FEMS microbiology reviews,2006,27(5):663 ~ 693.

[18]Lynd L R,Weimer P J,Van Zyl W H,et al.Microbial cellulose utilization:fundamentals and biotechnology[J].Microbiology and molecular biology reviews,2002,66(3):506 ~ 577.

[19]McAllister T A,Bae H D,Jones G A,et al.Microbial attachment and feed digestion in the rumen[J].J Anim Sci,1994,72(11):3004 ~ 3018.

[20]Miron J,Ben-Ghedalia D.Digestion of cell-wall monosaccharides of ryegrass and alfalfa hays by the ruminal bacteria Fibrobacter succinogenes and Butyrivibrio fibrisolvens[J].Canadian journal of microbiology,1993,39(8):780 ~786.

[21]Mosoni P,F(xiàn)onty G,Gouet P.Competition between ruminal cellulolytic bacteria for adhesion to cellulose[J].Curr Microbiol,1997,35(1):44 ~ 47.

[22]Orpin C G.The role of ciliate protozoa and fungi in the rumen digestion of plant cell walls[J].Anim Feed Sci Tech,1984,10(2):121 ~ 143.

[23]Pan J,Koike S,Suzuki T,et al.Effect of mastication on degradation of orchardgrass hay stem by rumen microbes:fibrolytic enzyme activities and microbial attachment[J].Anim Feed Sci Tech,2003,106(1):69 ~ 79.

[24]Pettipher G L,Latham M J.Characteristics of enzymes produced by Ruminococcus flavefaciens which degrade plant cell walls[J].Journal of General Microbiology,1979,110(1):21 ~ 27.

[25]R·oper H and Koch H.New carbohydrate derivatives from biotechnical and chemical processes[J].Starch-Strke,1988,40(12):453~464.

[26]Robinson P.Dynamic aspects of feeding management for dairy cows[J].Journal of Dairy Science,1989,72(5):1197 ~ 1209.

[27]Roger V,F(xiàn)onty G,Komisarczuk-Bony S,et al.Effects of Physicochemical Factors on the Adhesion to Cellulose Avicel of the Ruminal Bacteria Ruminococcus flavefaciens and Fibrobacter succinogenes subsp.succinogenes[J].Appl Environ Microbiol,1990,56(10):3081 ~ 3087.

[28]Russell J,O'connor J,F(xiàn)ox D,et al.A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets:I.Ruminal fermentation[J].Journal of Animal Science,1992,70(11):3551 ~ 3561.

[29]Shinkai T,Kobayashi Y.Localization of ruminal cellulolytic bacteria on plant fibrous materials as determined by fluorescence in situ hybridization and real-time PCR [J].Applied and environmental microbiology,2007,73 (5):1646~1652.

[30]Sun Y Z,Mao S Y,Yao W,et al.DGGE and 16S rDNA analysis reveals a highly diverse and rapidly colonising bacterial community on different substrates in the rumen of goats[J].Animal,2008,2(3):391 ~ 398.

[31]Tajima K,Aminov R,Nagamine T,et al.Diet-dependent shifts in the bacterial population of the rumen revealed with real-time PCR[J].Applied and environmental microbiology,2001,67(6):2766 ~ 2774.

[32]Varga G A,Kolver E S.Microbial and animal limitations to fiber digestion and utilization[J].The Journal of nutrition,1997,127(5):819S ~ 823S.

[33]Wallace R J,Joblin K N.Proteolytic activity of a rumen anaerobic fungus[J].FEMS microbiology letters,1985,29(1):19 ~ 25.

[34]Wang Y,McAllister T.Rumen microbes,enzymes and feed digestion:A review.Asian-Aust[J].J Anim Sci,2002,15:1659 ~ 1676.

[35]Williams A G,Coleman G S.The rumen protozoa[A].Springer-Verlag[C].1992.

[36]Wilson J,Hatfield R.Structural and chemical changes of cell wall types during stem development:consequences for fibre degradation by rumen microflora.1997.

猜你喜歡
絲狀原蟲琥珀酸
不同添加劑對(duì)污水處理中絲狀菌膨脹的控制作用研究進(jìn)展
生物化工(2022年4期)2022-09-20 09:18:08
針刺聯(lián)合琥珀酸普蘆卡必利片治療腦卒中后便秘的臨床觀察
幾種動(dòng)物來(lái)源的蜱攜帶的細(xì)菌和原蟲的檢測(cè)
肉牛常見原蟲病的癥狀及防治分析
琥珀酸美托洛爾的核磁共振波譜研究
α-生育酚琥珀酸酯的酶法合成研究進(jìn)展
水禽常見原蟲病的防治
繃帶型角膜接觸鏡在治療絲狀角膜炎應(yīng)用的臨床分析
脖頸冒肉芽 別拿手去掐
淺談因絲狀菌大量繁殖而引起的污泥膨脹
化工管理(2015年6期)2015-03-23 06:03:38
厦门市| 神木县| 仪征市| 广州市| 永福县| 绥中县| 泾源县| 兴山县| 香河县| 扶绥县| 大埔区| 榆社县| 枞阳县| 耒阳市| 江北区| 长寿区| 凤冈县| 灵山县| 蕲春县| 惠东县| 赣州市| 黄山市| 兰西县| 成安县| 贺州市| 绥宁县| 南陵县| 博野县| 剑阁县| 佳木斯市| 洱源县| 古田县| 沙坪坝区| 博野县| 浦东新区| 江安县| 伊金霍洛旗| 思南县| 澄江县| 墨竹工卡县| 闻喜县|