国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

Notch信號通路對周圍T淋巴細(xì)胞活性及分化的調(diào)控作用①

2013-01-25 08:04陳國慶綜述審校第三軍醫(yī)大學(xué)第二附屬醫(yī)院普通外科重慶400037
中國免疫學(xué)雜志 2013年7期
關(guān)鍵詞:淋巴細(xì)胞分化調(diào)控

陳國慶 綜述 楊 樺 審校 (第三軍醫(yī)大學(xué)第二附屬醫(yī)院普通外科,重慶400037)

Notch是一種物種間表達高度保守的跨膜蛋白受體,其在胚胎及出生后個體的生長發(fā)育中起重要的調(diào)節(jié)作用。Notch首次在果蠅中被發(fā)現(xiàn),因其功能缺失后果蠅翅膀產(chǎn)生缺口而得名。在哺乳動物中,Notch受體有4種:Notch1-Notch4,其配體分為Delta like與 Jagged兩類,前者包括 Delta1、Delta3、Delta4或 DLL1、DLL3、DLL4,后者包括 Jagged1 和Jagged2。當(dāng)配體與Notch受體結(jié)合而將其激活后,Notch活性片段進入細(xì)胞核,調(diào)控Notch靶基因HES家族或HEY家族的表達。在胸腺和骨髓中,Notch受體的激活可促進淋巴前體細(xì)胞向T淋巴細(xì)胞方向進行分化[1,2]。胸腺和骨髓內(nèi)形成的T淋巴細(xì)胞進入周圍淋巴組織后,CD4+T淋巴細(xì)胞需在抗原呈遞細(xì)胞所呈遞抗原的刺激下逐漸分化為Th1或Th2效應(yīng)淋巴細(xì)胞,然后參與機體的抗原特異性免疫反應(yīng)。此前研究發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)錄因子T-bet和GATA3在周圍CD4+T淋巴細(xì)胞Th1和Th2方向的分化中起著重要作用[3,4],但近年來越來越多的研究發(fā)現(xiàn)Notch表達同樣在周圍CD4+T淋巴細(xì)胞分化中起重要作用,并調(diào)控其活性。本文就Notch通路及其在周圍CD4+T淋巴細(xì)胞的活性和兩極分化中的調(diào)控作用作一綜述。

1 Notch信號通路概述

1.1 CSL參與的Notch經(jīng)典信號通路 哺乳動物Notch受體由N1-N4四個基因編碼,每一個基因都合成單獨的跨膜多肽,新合成的Notch前體蛋白在高爾基體中進行加工修飾后轉(zhuǎn)運到細(xì)胞表面形成異源二聚體,其中包括細(xì)胞內(nèi)片段和細(xì)胞外片段[5,6]。當(dāng)配體與Notch受體結(jié)合后,Notch受體胞外片段發(fā)生構(gòu)象變化,ADAM金屬蛋白酶切割胞內(nèi)片段使其從細(xì)胞膜表面脫落,脫落的胞內(nèi)片段再經(jīng)過γ-分泌酶的切割修飾后形成Notch受體的細(xì)胞內(nèi)活性片段NICD(Notch1 intracellular domain,NICD),并轉(zhuǎn)移進入細(xì)胞核[7,8]。NICD進入細(xì)胞核后與核結(jié)合蛋白CSL(CBF1 suppressor of hairless-Lag1,CSL)(小鼠為RBP-J)相結(jié)合并啟動靶基因HES的轉(zhuǎn)錄,這是研究較多的經(jīng)典通路[9]。在Notch未被激活的狀態(tài)下,CSL與羧基末端結(jié)合蛋白CTBP1(Carboxy-terminal binding protein 1,CTBP1)等分子組成轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合物,阻斷Notch靶基因啟動子區(qū)域的轉(zhuǎn)錄起始位點,抑制靶基因的轉(zhuǎn)錄。在CTBP1基因敲除小鼠中,Notch靶基因Hey1表達即明顯增強[10]。另外,NICD與CSL結(jié)合后,組蛋白乙?;窹300、P300/CBP相關(guān)因子PCAF可進一步激活NICD-CSL復(fù)合物,促進Notch靶基因的轉(zhuǎn)錄[11]。

1.2 NF-κB參與的Notch信號通路 經(jīng)典通路中,Notch受體激活后,其活性片段NICD進入細(xì)胞核與CSL(RBP-J)結(jié)合,并啟動靶基因HES的轉(zhuǎn)錄。但是,將小鼠RBP-J基因敲除后的研究發(fā)現(xiàn),T淋巴細(xì)胞Notch受體激活后其分泌IFN-γ仍舊升高明顯,同時HES1和HES5表達無明顯變化。這提示我們,Notch受體激活后有其他的信號傳導(dǎo)通路[12]。

既往研究已明確,T淋巴細(xì)胞表面TCR受體的激活可促進NF-κB的活性;TCR的激活還可促進Notch受體的激活,這提示在TCR激活的T淋巴細(xì)胞中 NF-κB和 Notch受體之間可能存在相互作用[13]。近來研究表明,Notch受體與 NF-κB之間的確存在著密切聯(lián)系。Notch1可以激活NF-κB,并且Notch1可通過CSL依賴的方式調(diào)控NF-κB抑制劑IκBα 的水平[14,15]。T 淋巴細(xì)胞的 Notch 受體激活后,其活性片段NICD與NF-κB的相互作用促進了NF-κB在細(xì)胞核內(nèi)的停留,從而促進了 NF-κB與DNA的結(jié)合及其作用的發(fā)揮[16]。在Notch1低表達的小鼠中,周圍T淋巴細(xì)胞的NF-κB活性降低,IFN-γ 分泌減少[17];相反,在 Notch3過表達小鼠中,胸腺細(xì)胞的NF-κB持續(xù)被激活,可導(dǎo)致T淋巴細(xì)胞白血病的發(fā)生[18]。反過來,NF-κB 還可以影響Notch信號通路。T淋巴細(xì)胞中,NF-κB被激活后,其組成之一Rel蛋白可促進Notch配體Jagged1的表達,并促進 Jagged1與 Notch受體的結(jié)合[19]。這說明,Notch受體與NF-κB之間存在相互聯(lián)系。免疫共沉淀研究亦證實,Notch和NF-κB、NICD和Rel形成復(fù)合物結(jié)合于 IFN-γ編碼基因的啟動子區(qū)域[16]。有意義的是,研究證實 CSL 與 NF-κB 在DNA的結(jié)合位點序列有重疊區(qū)域,二者之間可能存在著結(jié)合目的DNA序列的競爭性機制,共同調(diào)控Notch下游靶基因的表達,但具體機制有待進一步研究[20]。

2 Notch通路調(diào)控周圍T淋巴細(xì)胞的活性

此前研究發(fā)現(xiàn),Notch信號通路激活后可阻斷促凋亡核受體蛋白Nur77的活性,從而抑制TCR激活后引起的T淋巴細(xì)胞的凋亡[21]。GSK3β(glycogen synthase kinase 3β,GSK3β)是一種糖原合成酶激酶,Notch受體激活后可促進PI3K/AKT通路的激活而磷酸化GSK3β,抑制GSK3β的活性,并促進抗凋亡蛋白BCL-2的表達,抑制細(xì)胞的凋亡,應(yīng)用Notch受體激活的阻斷劑后細(xì)胞凋亡明顯增多[22]。另一方面,GSK3β是Notch信號通路的抑制劑,而PI3K/AKT又可通過GSK3β抑制Notch通路的活性[23,24]。上述研究表明,Notch 信號通路與 PI3K/AKT通路間存在相互作用,Notch信號通路激活后具有抑制T淋巴細(xì)胞凋亡的功能,PI3K/AKT通路介導(dǎo)此作用。

T淋巴細(xì)胞表面受體TCR的激活可引起細(xì)胞內(nèi)信號傳導(dǎo),調(diào)控T淋巴細(xì)胞的活性。研究進一步發(fā)現(xiàn),TCR激活后可通過促進Notch受體的激活而影響T淋巴細(xì)胞的活性。激活周圍CD4+和CD8+T淋巴細(xì)胞TCR受體的同時阻斷Notch受體的激活則抑制了 T淋巴細(xì)胞的增殖及 IFN-γ的分泌[17]。在CD4+T淋巴細(xì)胞中,其CD4分子與Notch受體共定位在細(xì)胞表面,CD4受體激活后促進CD4+T淋巴細(xì)胞分泌IL-10,但阻斷Notch受體激活后IL-10分泌被抑制[25]。與此研究結(jié)果一致的是,脂多糖LPS激活的抗原呈遞細(xì)胞與CD4+T淋巴細(xì)胞共培養(yǎng)后促進CD4+T淋巴細(xì)胞的IL-10分泌和CD8+T淋巴細(xì)胞的IFN-γ分泌[26]。腺病毒激活的抗原呈遞細(xì)胞與CD4+T淋巴細(xì)胞共培養(yǎng)后,促進T淋巴細(xì)胞Th1和Th2活性,表現(xiàn)為促進其IFN-γ、IL-2和IL-4的分泌[27]。另有研究發(fā)現(xiàn),Notch受體促進T淋巴細(xì)胞IL-2分泌的同時,還可促進T淋巴細(xì)胞表面IL-2受體的表達,從而參與了 IL-2的正反饋調(diào)控[13]。上述研究提示Notch受體在T淋巴細(xì)胞的活性調(diào)控中發(fā)揮重要作用。

3 Notch通路調(diào)控周圍T淋巴細(xì)胞的兩極分化

近來研究發(fā)現(xiàn),Notch受體調(diào)控激活的T淋巴細(xì)胞向Th1、Th2或調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞向Tr方向進行分化。

3.1 Notch受體調(diào)控T淋巴細(xì)胞的Th1方向分化

研究發(fā)現(xiàn),DLL1可激活CD4+T淋巴細(xì)胞表面Notch3受體,促進激活的CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向進行分化[28]。在此研究中,純化的CD4+T淋巴細(xì)胞與DLL1共培養(yǎng),CD4+T淋巴細(xì)胞的IFN-γ分泌增多、IL-4分泌減少;然后通過轉(zhuǎn)染的方式使CD4+T淋巴細(xì)胞過表達Notch-3后與DLL1共培養(yǎng),結(jié)果發(fā)現(xiàn)過表達Notch-3的CD4+T淋巴細(xì)胞分泌IFN-γ進一步升高。上述結(jié)果表明,DLL1-Notch-3通路促進了CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向分化。T-bet是一種選擇性地表達于Th1細(xì)胞的新型轉(zhuǎn)錄因子。DLL1與CD4+T淋巴細(xì)胞共培養(yǎng)后,CD4+T淋巴細(xì)胞的T-bet表達即明顯升高[3]。另外,體內(nèi)實驗中,給予小鼠體內(nèi)注射DLL1,機體由Th1細(xì)胞介導(dǎo)的抗寄生蟲的免疫反應(yīng)明確增強[28]。上述研究證實了Notch受體激活后具有促進CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向進行分化,并促進其對病原體反應(yīng)的功能。

體外研究進一步發(fā)現(xiàn),Notch受體在最初48小時內(nèi)決定CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向進行分化[29]。CD4+T淋巴細(xì)胞在促Th1方向分化的環(huán)境中培養(yǎng),在48小時內(nèi)阻斷Notch受體后,CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向分化失敗,表現(xiàn)為特異性表達于Th1細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄因子T-bet的編碼基因Tbx21不再表達;但是在Notch受體被阻斷的條件下,通過病毒轉(zhuǎn)染方式使CD4+T淋巴細(xì)胞再次表達Notch-1受體的激活片段NICD后,Th1細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子T-bet的編碼基因Tbx21再次表達;而且研究證實,NICD、CSL明確結(jié)合于Tbx21基因的啟動子區(qū)域,這提示Notch1受體具有調(diào)控T淋巴細(xì)胞向Th1方向進行分化的功能。

3.2 Notch受體調(diào)控T淋巴細(xì)胞的Th2方向分化

Notch受體在CD4+T淋巴細(xì)胞的Th2方向分化中同樣起著調(diào)控作用[30,31]。在上文提及的研究中,CD4+T淋巴細(xì)胞與表達DLL1的抗原呈遞細(xì)胞共培養(yǎng)后,CD4+T淋巴細(xì)胞向Th1方向分化,并分泌IFN-γ[28,29];然而,另有研究發(fā)現(xiàn),CD4+T 淋巴細(xì)胞與表達Jagged1的抗原呈遞細(xì)胞共培養(yǎng)后,CD4+T淋巴細(xì)胞向Th2方向分化,并分泌IL-4和IL-5;而且,將 CD4+T淋巴細(xì)胞的 RBP-J基因敲除后,CD4+T淋巴細(xì)胞分泌IL-4明顯降低,說明RBP-J參與了此過程[30]。在RBP-J基因敲除小鼠的研究支持了上述觀點,RBP-J參與了Notch激活后促進IL-4 表達的通路[32]。

MAML1蛋白是一種促進Notch靶基因表達的轉(zhuǎn)錄輔激活因子。針對MAML1基因敲除小鼠的研究發(fā)現(xiàn),小鼠周圍T淋巴細(xì)胞發(fā)育正常,且主要表現(xiàn)為Th1細(xì)胞介導(dǎo)的免疫反應(yīng);當(dāng)小鼠腸道感染鼠鞭蟲時,機體因缺乏Th2介導(dǎo)的免疫反應(yīng)而不能徹底清除鼠鞭蟲感染[31]。

另有對CD4+T淋巴細(xì)胞的Notch1基因特異性敲除小鼠的研究發(fā)現(xiàn),Notch1通路不參與CD4+T淋巴細(xì)胞的Th1或Th2方向分化,而且不參與Th1細(xì)胞介導(dǎo)的免疫反應(yīng),但是此研究中未考慮其他Notch 受體的作用[33]。

上述各個研究的研究方法、模型之間存在很大的差異,研究結(jié)果也不完全一致,關(guān)于Notch通路在T淋巴細(xì)胞分化中的作用尚有爭議,需要進一步的研究。

3.3 Notch受體調(diào)控調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞Tr的分化

調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞是不同于Th1和Th2的具有調(diào)節(jié)功能的T細(xì)胞群體,因其具有免疫抑制作用,在多種免疫性疾病中起重要的調(diào)節(jié)作用,近來受到人們的廣泛關(guān)注。根據(jù)Tr表面標(biāo)記、產(chǎn)生的細(xì)胞因子和作用機制的不同,Tr可分為CD4+CD25+Tr細(xì)胞、Tr1和Th3等多種亞型。CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞的免疫抑制作用表現(xiàn)在激活以后抑制CD4+和CD8+T淋巴細(xì)胞的活化和增殖。

研究發(fā)現(xiàn),在CD4+CD25+Tr細(xì)胞激活后,其DLL1表達升高[18]。而且,給予CD4+T淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)染DLL1后,明確抑制了T淋巴細(xì)胞的增殖活性和T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的炎癥反應(yīng),這提示DLL1-Notch通路在T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的免疫耐受中發(fā)揮重要作用[34]。Jagged1同樣在免疫抑制中發(fā)揮作用;轉(zhuǎn)染后過表達Jagged1的抗原呈遞細(xì)胞可促使CD4+T淋巴細(xì)胞向Tr方向進行分化,并抑制T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的免疫反應(yīng)[35]。

針對小鼠心臟移植后排斥反應(yīng)的研究發(fā)現(xiàn),持續(xù)表達DLL1的抗原呈遞細(xì)胞促進了Tr的生成,抑制IFN-γ的分泌,并同時促進了IL-10的分泌,從而明顯降低了移植物的免疫應(yīng)答反應(yīng)[36]。

4 總結(jié)和展望

從上述一系列的研究可發(fā)現(xiàn),抗原呈遞細(xì)胞表達Notch受體配體Jagged或DLL,激活CD4+T淋巴細(xì)胞的Notch信號通路,這在CD4+T淋巴細(xì)胞的分化和活性調(diào)控中發(fā)揮重要作用。但是,相關(guān)研究剛剛起步,發(fā)表的成果很少,而且各個研究的模型、方法并不相同,各個研究的結(jié)果也并不完全一致。Notch通路在Th1、Th2分化及活性中的作用尚無定論。相信隨著更多研究的發(fā)表,更加標(biāo)準(zhǔn)化的研究方法和模型會逐步確立,Notch通路在周圍CD4+T淋巴細(xì)胞中的調(diào)控作用會進一步明確。

1 Tan J B,Visan I,Yuan J S et al.Requirement for Notch1 signals at sequential early stages of intrathymic T-cell development[J].Nature Immunol,2005;6(7):671-679.

2 Pui J C,Allman D,Xu L et al.Notch1 expression in early lymphopoiesis influences B versus T lineage determination[J].Immunity,1999;11(3):299-308.

3 Szabo S J,Kim S T,Costa G L et al.A novel transcription factor,T-bet,directs TH1 lineage commitment[J].Cell,2000;100(6):655-669.

4 Zheng W,F(xiàn)lavell R A.The transcription factor GATA-3 is necessary and sufficient for TH2 cytokine gene expression in CD4 T cells[J].Cell,1997;89(4):587-596.

5 Logeat F,Bessia C,Brou C et al.The Notch1 receptor is cleaved constitutively by a furin-like convertase[J].Proc Natl Acad Sci USA,1998;95(14):8108-8112.

6 Brou C,Logeat F,Gupta N et al.A novel proteolytic cleavage involved in Notch signaling:the role of the disintegrinmetalloprotease TACE[J].Mol Cell,2000;5(2):207-216.

7 Lieber T,Kidd S,Young et al.Kuzbanian-mediated cleavage of Drosophila Notch[J].Genes Dev,2002;16(2):209-221.

8 Mumm J S,Schroeter E H,Saxena M T et al.Ligand-induced extracellular cleavage regulates γ-secretase-like proteolytic activation of Notch1[J].Mol Cell,2000;5(2):197-206.

9 Jarriault S,Brou C,Logeat F et al.Signaling downstream of activated mammalian Notch[J].Nature,1997;377(6547):355-358.

10 Oswald F,Winkler M,Cao Y et al.RBP-Jκ/SHARP recruits CtIP/CtBP corepressors to silence Notch target genes[J].Mol Cell Biol,2005;25(23):10379-10390.

11 Wallberg A,Pedersen K,Lendahl U et al.p300 and PCAF act cooperatively to mediate transcriptional activation from chromatin templates by Notch intracellular domains in vitro[J].Mol Cell Biol,2002;22(22):7812-7819.

12 Tanigaki K,Tsuji M,Yamamoto N et al.Regulation of αβ/γδ T-cell lineage commitment and peripheral T-cell responses by Notch/RBP-J signaling[J].Immunity,2004;20(5):611-622.

13 Adler S H,Chiffoleau E,Xu L et al.Notch signaling augments T-cell responsiveness by enhancing CD25 expression[J].J Immunol,2003;171(6):2896-2903.

14 Oswald F,Liptay S,Adler G et al.NF-κB2 is a putative target gene of activated Notch-1 via RBP-Jκ[J].Mol Cell Biol,1998;18(4):2077-2088.

15 Oakley F,Mann J,Ruddell R G et al.Basal expression of IκBα is controlled by the mammalian transcriptionalrepressorRBP-J(CBF1)and its activator Notch1[J].J Biol Chem,2003;278(27):24359-24370.

16 Shin H M,Minter L M,Cho O H et al.Notch1 augments NF-κB activity by facilitating its nuclear retention[J].EMBO J,2006;25(1):129-138.

17 Palaga T,Miele L,Golde T E et al.TCR-mediated Notch signaling regulates proliferation and IFN-γ production in peripheral T cells[J].J Immunol,2003;171(6):3019-3024.

18 Bellavia D,Campese A F,Alesse E et al.Constitutive activation of NF-κB and T-cell leukemia/lymphoma in Notch3-transgenic mice[J].EMBO J,2000;19(13):3337-3348.

19 Bash J,Zong W X,Banga S et al.Rel/NF-κB can trigger the Notch signaling pathway by inducing the expression of Jagged1,a ligand for Notch receptors[J].EMBO J,1999;18(10):2803-2811.

20 Vales L D,F(xiàn)riedl E M.Binding of C/EBP and RBP(CBF1)to overlapping sites regulates interleukin-6 gene expression[J].J Biol Chem,2002;277(45):42438-42446.

21 Jehn B M,Bielke W,Pear W S et al.Cutting edge:Protective effects of Notch-1 on TCR-induced apoptosis[J].J Immunol,1999;162(2):635-638.

22 Sade H,Krishna S,Sarin A.The anti-apoptotic effect of Notch-1 requires p56lck-dependent,Akt/PKB-mediated signaling in T cells[J].J Biol Chem,2004;279(4):2937-2944.

23 McKenzie G,Ward G,Stallwood Y et al.Cellular Notch responsiveness is defined by phosphoinositide 3-kinase-dependent signals[J].BMC Cell Biol,2006;7:10-20.

24.Foltz D R,Santiago M C,Berechid B E et al.Glycogen synthase kinase-3β modulates Notch signaling and stability[J].Curr Biol,2002;12(12):1006-1011.

25 Benson R A,Adamson K,Corsin-Jimenez M et al.Notch1 co-localizes with CD4 on activated T cells and Notch signaling is required for IL-10 production[J].Eur J Immunol,2005;35(3):859-869.

26 Sauma D,Ramirez A,Alvarez K et al.Notch signalling regulates cytokine production by CD8+and CD4+T cells[J].Scand J Immunol,2012;75(4):389-400.

27 Fukuyama Y,Tokuhara D,Sekine S et al.Notch-ligand expression by NALT dendritic cells regulates mucosal Th1-and Th2-type responses[J].Biochem Biophys Res Commun,2012;418(1):6-11.

28 Maekawa Y,Tsukumo S,Chiba S et al.Delta1-Notch3 interactions bias the functional differentiation of activated CD4+T cells[J].Immunity,2003;19(4):549-559.

29 Minter L M,Turley D M,Das P et al.Inhibitors of γ-secretase block in vivo and in vitro T helper type 1 polarization bypreventing Notch upregulation of Tbx21[J].Nature Immunol,2005;6(7):680-688.

30 Amsen D,Blander J M,Lee G R et al.Instruction of distinct CD4 T helper cell fates by different notch ligands on antigenpresenting cells[J].Cell,2004;117(4):515-526.

31 Tu L,F(xiàn)ang T C,Artis D et al.Notch signaling is an important regulator of type 2 immunity[J].J Exp Med,2005;202(8):1037-1042.

32 Tanaka S,Tsukada J,Suzuki W et al.The interleukin-4 enhancer CNS-2 is regulated by Notch signals and controls initial expression in NKT cells and memory-type CD4 T cells[J].Immunity,2006;24(6):689-701.

33 Tacchini-Cottier F,Allenbach C,Otten L A et al.Notch1 expression on T cells is not requiredfor CD4+T helper differentiation[J].Eur J Immunol,2004;34(6):1588-1596.

34 Hoyne G F,Dallman M J,Lamb J R.Linked suppression in peripheral T-cell tolerance to the house dust mite derived allergen Der p1[J].Int Arch Allergy Immunol,1999;118(2-4):122-124.

35 Hoyne G F,Le Roux I,Corsin-Jimenez M et al.Serrate1-induced Notch signaling regulates the decision between immunity and tolerance made by peripheral CD4+T cells[J].Int Immunol,2000;12(2):177-185.

36 Wong K K,Carpenter M J,Young L L et al.Notch ligation by Delta1 inhibits peripheral immune responses to transplantation antigens by a CD8+cell-dependent mechanism[J].J Clin Invest,2003;112(11):1741-1750.

猜你喜歡
淋巴細(xì)胞分化調(diào)控
遺傳性T淋巴細(xì)胞免疫缺陷在百草枯所致肺纖維化中的作用
甲狀腺切除術(shù)后T淋巴細(xì)胞亞群的變化與術(shù)后感染的相關(guān)性
樓市調(diào)控是否放松
兩次中美貨幣政策分化的比較及啟示
碘-125粒子調(diào)控微小RNA-193b-5p抑制胃癌的增殖和侵襲
分化型甲狀腺癌切除術(shù)后多發(fā)骨轉(zhuǎn)移一例
魯政委:房地產(chǎn)同城市場初現(xiàn)分化
如何調(diào)控困意
經(jīng)濟穩(wěn)中有進 調(diào)控托而不舉
新興市場貨幣:內(nèi)部分化持續(xù)
乐至县| 正安县| 西充县| 鹤山市| 天长市| 洛南县| 洛宁县| 汉沽区| 万州区| 区。| 安吉县| 乐至县| 息烽县| 故城县| 涿州市| 喀喇沁旗| 成武县| 沂南县| 澄迈县| 紫金县| 平果县| 江津市| 苍山县| 法库县| 元朗区| 贵港市| 长丰县| 军事| 海丰县| 嫩江县| 中西区| 广州市| 隆尧县| 濮阳县| 韩城市| 张家口市| 鹤壁市| 黄山市| 阿拉善右旗| 甘南县| 嘉兴市|