侯志慧, 王國紅, 吳春平, 李東亮
(新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與神經(jīng)生物學(xué)教研室,河南新鄉(xiāng)453003)
血液中的葡萄糖通過血腦屏障進入腦組織需要相應(yīng)的運載工具,即葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(glucose trans-port proteins,GLUT)來完成[1]。腦組織表達 GLUT1和GLUT3,GLUT1主要在微血管內(nèi)皮上表達,而神經(jīng)元則主要表達GLUT3。正常情況下,腦細胞主要依賴葡萄糖的有氧氧化獲得能量。缺氧缺血時,葡萄糖的有氧氧化受到抑制,腦細胞轉(zhuǎn)為依靠葡萄糖的無氧糖酵解來獲取能量。然而,無氧糖酵解產(chǎn)生ATP的效率下降,要滿足腦細胞對能量的需求,就需要大量葡萄糖作為底物,葡萄糖進入腦細胞必須借助細胞膜上的GLUT3進行跨膜轉(zhuǎn)運。因此GLUT3表達的多少就成為決定缺血時腦細胞對葡萄糖利用效率的首要因素,在腦缺氧缺血損傷的病理過程中起關(guān)鍵作用,是干預(yù)腦缺氧缺血損傷的重要靶點。探索缺氧缺血時增強神經(jīng)元葡萄糖供給和攝取能力的調(diào)控因素具有重要意義。本實驗室前期在缺氧缺血新生鼠和缺血-再灌注大鼠已經(jīng)證實孕酮(progesterone,PROG)對缺血腦組織有保護作用[1-2],還觀察到孕酮可上調(diào)缺氧缺血新生鼠腦組織GLUT1和GLUT3的表達[3]。為排除體內(nèi)復(fù)雜內(nèi)環(huán)境的影響,本研究采用神經(jīng)生長因子(nerve growth factor,NGF)誘導(dǎo)分化的具有典型神經(jīng)元結(jié)構(gòu)和功能特性的大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤PC12細胞,建立其氧糖剝奪(oxygen-glucose deprivation,OGD)損傷模型,模擬體內(nèi)腦缺氧缺血條件,進一步在體外研究孕酮抗神經(jīng)元缺氧缺血損傷的保護作用并探討其對GLUT3的干預(yù)作用。
1.1 主要試劑 2-(2-甲氧基-4-硝苯基)-3-(4-硝苯基)-5-(2,4-二磺基苯)-2H-四唑單鈉鹽[2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfophenyl)-2H-tetrazolium sodium salt,WST-8]細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒和乳酸鹽脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)檢測試劑盒均購自碧云天生物技術(shù)研究所;羊抗鼠GLUT3多克隆抗體購自Santa Cruz;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒A3500購自Promega;Trizol試劑和NGF 2.5S購自Invitrogen;胎牛血清購自杭州四季青公司;DMEM培養(yǎng)基、DMEM培養(yǎng)基(無糖,無酚紅)和孕酮均購自Sigma。
1.2 細胞系 PC12細胞購于中國科學(xué)院上海生科院細胞資源中心。
2.1 細胞培養(yǎng)及實驗分組 PC12細胞采用DMEM培養(yǎng)基,內(nèi)含10%胎牛血清、1×105U/L氨芐青霉素和1×105U/L鏈霉素,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)常規(guī)培養(yǎng),取對數(shù)生長期細胞進行實驗。實驗分為正常對照組(常規(guī)培養(yǎng),不行 OGD處理)、OGD組(無糖培養(yǎng)基、氧濃度<1%環(huán)境中進行OGD處理30 min后,恢復(fù)常氧常糖培養(yǎng)24 h)和PROG+OGD組(在OGD和復(fù)氧復(fù)糖期間培養(yǎng)基中含10 nmol/L孕酮,余同OGD組)。培養(yǎng)基中均不含酚紅,以避免對檢測結(jié)果的干擾。
2.2 PC12細胞的誘導(dǎo)分化 取對數(shù)生長期的PC12細胞,棄培養(yǎng)液,用PBS漂洗1次,加入預(yù)熱至37℃的0.25%胰酶1.5 mL,消化30 s,觀察細胞間有裂紋時,吸去胰酶,終止消化,加入預(yù)熱的含50 μg/L NGF 2.5S的 DMEM培養(yǎng)基,調(diào)整細胞密度至1×109cells/L,傳代培養(yǎng)5 d,待PC12細胞長出較長突起,具有典型神經(jīng)元特征時,取誘導(dǎo)分化良好的PC12細胞,按實驗需要密度接種于培養(yǎng)板中,再誘導(dǎo)分化48 h,選取貼壁好,誘導(dǎo)分化一致的培養(yǎng)孔隨機按上述分組。
2.3 OGD模型的建立 參照文獻建立PC12細胞的OGD模型。取對數(shù)生長期PC12細胞,棄孔內(nèi)培養(yǎng)液,用預(yù)熱無糖DMEM培養(yǎng)基漂洗2次,隨后換上預(yù)熱的無糖DMEM培養(yǎng)基和10 nmol/L孕酮無糖工作液,移去培養(yǎng)板蓋后將培養(yǎng)板放入(37.0±0.5)℃缺氧艙內(nèi),持續(xù)充入體積分數(shù)分別為95%N2+5%CO2的混合氣體行缺氧處理。缺氧氣體由艙底進入,艙頂排出,以10 L/min的流量置換艙內(nèi)氧氣,6min后(測定艙內(nèi)O2濃度降至1%以下)再以1 L/min的流量進行OGD處理30 min。OGD結(jié)束后取出培養(yǎng)板,OGD組更換為預(yù)熱的常糖DMEM培養(yǎng)基,PROG+OGD組更換為預(yù)熱的含10 nmol/L孕酮的常糖工作液,轉(zhuǎn)移到37℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)常氧培養(yǎng)24 h。
2.4 形態(tài)學(xué)觀察 將培養(yǎng)板置于倒置相差顯微鏡下觀察各組細胞形態(tài)變化,各組均取板孔正中視野進行觀察并拍照。
2.5 WST-8比色法檢測細胞活力[4]將對數(shù)生長期的PC12細胞以5×107cells/L的密度接種于96孔板中培養(yǎng),待細胞基本融合后,吸棄培養(yǎng)液,隨機進行分組。氧糖剝奪30 min并復(fù)氧復(fù)糖24 h后,每孔加入10 μL WST-8溶液。細胞培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)孵育1 h后,酶標(biāo)儀測定450 nm波長處吸光度值(A),630 nm參考波長進行雙波長測定。每組設(shè)4個復(fù)孔,實驗重復(fù)3次。
2.6 LDH活性測定[5]收集各組細胞培養(yǎng)上清液,按LDH檢測試劑盒說明書進行操作,1 cm光程比色杯中加入工作液1 mL,細胞培養(yǎng)上清液200 μL,混合均勻,37℃保溫30 s,讀取初始吸光度,同時開始精確計時,1、2、3 min時分別讀取吸光度,確定每分鐘平均吸光度變化(ΔA/min)。LDH(U/L)=(ΔA樣品/min-ΔA空白/min)×F。F= 反應(yīng)總體積 ×1 000/樣品體積×消光系數(shù)。
2.7 RT-PCR檢測GLUT1和 GLUT3 mRNA水平 收集各組細胞,采用RT-PCR法檢測GLUT1和GLUT3 mRNA表達,采用Trizol試劑盒(Invitrogen)提取樣品中總RNA,操作按照試劑盒說明進行,A260/A280測定RNA純度,取2 μg逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,反應(yīng)樣品分裝保存于-20℃。以 cDNA為模板,進行GLUT1、GLUT3和β-actin(內(nèi)參照)擴增。PCR反應(yīng)體系如下:10×PCR 緩沖液5 μL,MgCl2(25 mmol)3 μL,dNTPs(10 mmol)1 μL,上游引物(50 pmol)1 μL,下游引物(50 pmol)1 μL,模板 DNA 1 μg,DNA聚合酶(5×106U/L)0.5 μL,滅菌雙蒸水補至 50 μL。反應(yīng)條件為:94℃ 2 min進行循環(huán);94℃ 1 min,50℃ 1 min,72 ℃ 1 min,循環(huán) 30次(β-actin循環(huán)25次),再72℃ 5 min。使用PCR擴增儀(Biometra)進行擴增。PCR擴增產(chǎn)物 10 μL與 DNA marker DL2000一起在含溴化乙啶2.0%瓊脂糖凝膠上電泳分離。電泳條帶用NIH圖像軟件ImageJ進行灰度分析,以目的基因條帶/β-actin帶的灰度值表示該目的基因mRNA相對含量。所用引物由上海生物工程有限公司合成,引物序列詳見表1。
表1 引物序列Table 1.Primer sequences
2.8 Western blotting檢測GLUT3蛋白表達 收集PC12細胞后,加入細胞裂解液,冰上裂解20 min,超聲1 s,間隔5 s,連續(xù)5次,離心取上清,用BCA法測定蛋白質(zhì)濃度。各組取變性蛋白15 μg進行SDSPAGE電泳分離蛋白質(zhì)后,轉(zhuǎn)至PVDF膜上,經(jīng)漂洗、封閉后加入小鼠β-actin單克隆抗體(稀釋度為1∶5 000)和山羊GLUT3多克隆抗體(稀釋度為1∶200),4℃孵育過夜,TBST洗膜3次,每次15 min,加辣根過氧化物酶標(biāo)記的Ⅱ抗室溫孵育2 h,TBST洗膜3次,每次15 min,ECL顯影并掃描,以 Band Scan 5.0凝膠圖像處理軟件進行各條帶灰度分析。以β-actin為內(nèi)參照,各組GLUT3與β-actin條帶灰度比值表示該GLUT3相對含量。
正常對照組PC12細胞呈梭型,兩極伸出較長突起,有的突起可發(fā)出分枝,呈典型神經(jīng)元結(jié)構(gòu)特征,見圖1A;OGD組PC12細胞的密度降低,突起減少或消失,大部分細胞腫脹變圓,細胞有聚團現(xiàn)象,部分細胞裂解成碎片,見圖1B;PROG+OGD組細胞胞體腫脹程度較OGD組明顯減輕,大部分細胞仍呈梭形,有細而短的突起伸出,聚團現(xiàn)象不明顯,細胞碎片的形成減少,見圖1C。
WST-8比色法檢測細胞活力,A值與活細胞數(shù)成正比。OGD組A值降低,與正常對照組比較有顯著差異(P<0.01),而PROG+OGD組A值增高,顯著高于OGD組(P<0.01),提示孕酮可增加氧糖剝奪的PC12細胞的存活率,見表2。
Figure 1.Effect of PROG on morphology of PC12 cells injured by OGD(×400).A:normal control group;B:OGD group(the morphology changed obviously after OGD for 30 min and restoration for 24 h);C:PROG+OGD group(the morphology was much better than that of OGD group).圖1 PROG對氧糖剝奪損傷PC12細胞形態(tài)的影響
LDH漏出量是衡量細胞損傷的重要指標(biāo),與細胞損傷程度成正比。LDH活性檢測結(jié)果顯示,OGD組培養(yǎng)上清液中LDH活性明顯高于正常對照組(P<0.01),PROG+OGD組 LDH活性明顯低于OGD組(P<0.01),見表2。這提示PROG可減輕OGD對PC12細胞的損傷。
表2 PROG對氧糖剝奪損傷PC12細胞活力和LDH活性的影響Table 2.Effects of progesterone on the cell viability and LDH activity of PC12 cells injured by OGD(±s.n=12)
表2 PROG對氧糖剝奪損傷PC12細胞活力和LDH活性的影響Table 2.Effects of progesterone on the cell viability and LDH activity of PC12 cells injured by OGD(±s.n=12)
**P <0.01 vs normal group;▲▲P <0.01 vs OGD group.
Group Absorbance(A) LDH(U/L)Normal 0.986 ±0.060 687.5 ±82.7 OGD 0.600 ±0.050** 2 364.6 ±78.6**PROG+OGD 0.766 ±0.031▲▲ 1 552.2 ±234.7▲▲
RT-PCR結(jié)果顯示,GLUT1 mRNA在正常對照組、OGD組與PROG+OGD組均未檢測到。正常對照組GLUT3 mRNA有基礎(chǔ)表達;OGD組GLUT3 mRNA表達上調(diào),顯著高于正常對照組(P<0.01);PROG+OGD組GLUT3 mRNA表達量明顯高于OGD組(P<0.05),見圖2。
Western blotting檢測結(jié)果顯示,正常對照組PC12細胞GLUT3有少量基礎(chǔ)表達;OGD組PC12細胞GLUT3表達上調(diào),明顯高于正常對照組(P<0.01);而PROG+OGD組 GLUT3表達又明顯高于OGD組(P<0.01),見圖3。
孕酮被稱為神經(jīng)活性甾體。近年來研究表明孕酮有減少腦梗死面積[6]、提高認知能力和促進大腦功能恢復(fù)等作用。孕酮可通過抗興奮性氨基酸(excitativeamionacids,EAA)的神經(jīng)毒性作用、減輕Ca2+超載導(dǎo)致的神經(jīng)元損傷、抗氧自由基作用、抗神經(jīng)元凋亡作用等多種途徑而起到神經(jīng)保護作用[7]。為排除體內(nèi)復(fù)雜內(nèi)環(huán)境的影響,進一步在體外印證孕酮抗缺氧缺血損傷的神經(jīng)保護作用并進一步探討其機制,本研究建立PC12細胞的體外氧糖剝奪模型,模擬體內(nèi)缺氧缺血條件,觀察孕酮對OGD損傷的PC12細胞形態(tài)、損傷程度、細胞活力及GLUT3表達的影響,結(jié)果顯示:孕酮可以減輕OGD所致的PC12細胞腫脹,減少LDH漏出,從而減輕細胞損傷,并且提高細胞活力。這些結(jié)果提示在體外孕酮對OGD損傷的PC12細胞具有保護作用。這與前人及我們前期體內(nèi)動物研究所得到的孕酮對缺氧缺血損傷具有保護作用的結(jié)果相一致[1-3,8]。
Figure 2.Effects of PROG on the expression of GLUT1(A)and GLUT3(B)mRNA in PC12 cells injured by OGD.1:normal group;2:OGD group;3:PROG+OGD group;M:marker.±s.n=3.**P<0.01 vs normal group;▲P <0.05 vs OGD group.圖2 PROG對氧糖剝奪PC12細胞GLUT1和GLUT3 mRNA表達的影響
Figure 3.Effect of PROG on the expression of GLUT3 protein in PC12 cells injured by OGD.±s.n=3.**P<0.01 vs normal group;▲▲P <0.01 vs OGD group.圖3 PROG對氧糖剝奪PC12細胞GLUT3蛋白表達的影響
血液中的葡萄糖通過血腦屏障進入腦組織需要借助葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白這一運載工具來完成。GLUT3是神經(jīng)元上的主要葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白,負責(zé)將葡萄糖轉(zhuǎn)運入神經(jīng)元內(nèi)[9-10]。在人腦中神經(jīng)元的 GLUT3表達量明顯高于膠質(zhì)細胞和內(nèi)皮細胞,本實驗在PC12細胞沒有檢測到GLUT1 mRNA的表達,成為PC12細胞具有神經(jīng)元屬性的又一佐證。GLUT3對葡萄糖親合力高,其轉(zhuǎn)運效率比其它轉(zhuǎn)運蛋白要高,這有利于神經(jīng)元對葡萄糖的攝取,反映了腦細胞代謝旺盛的特點[11-12]。實驗室前期研究工作已經(jīng)表明,孕酮上調(diào)新生鼠腦缺氧缺血海馬組織GLUT1、GLUT3 mRNA 及蛋白的表達[3,8]。而本實驗結(jié)果顯示,正常對照組PC12細胞表達少量GLUT3 mRNA和蛋白,而OGD后GLUT3 mRNA和蛋白的表達增高,PROG干預(yù)后GLUT3 mRNA和蛋白表達較OGD組又顯著增加,這一結(jié)果與本室前期在體動物研究結(jié)果相吻合。該結(jié)果提示,上調(diào)GLUT3表達是神經(jīng)元對抗OGD損傷的內(nèi)源性保護機制之一,而孕酮可通過增強GLUT3表達進一步啟動和促進該保護機制的進行從而發(fā)揮其抗OGD損傷的保護作用。
缺氧缺血時GLUT3上調(diào)可能與低氧情況下增加低氧誘導(dǎo)因子1(hypoxia-inducible factor 1,HIF-1)的表達有關(guān)。HIF-1是一種隨著細胞內(nèi)氧濃度變化而調(diào)節(jié)其靶基因表達的轉(zhuǎn)錄激活因子,是由α和β亞基組成的一種異二聚體。有報道在局灶性腦缺血中,梗死周圍慢性缺血區(qū)域的HIF-1α表達增高[13]。HIF-1α除了介導(dǎo)缺氧應(yīng)答外,對腦缺血后的神經(jīng)損傷有保護作用,在腦缺血損傷和保護機制中起重要作用。Baranova等[14]研究結(jié)果顯示,當(dāng)機體遭受缺血缺氧損傷時HIF-1α表達增加,通過介導(dǎo)缺氧應(yīng)答反應(yīng),增加其靶基因的轉(zhuǎn)錄,對機體有一定的保護作用。受HIF-1直接作用的靶基因有60多個,包括促紅細胞生成素、血管內(nèi)皮生長因子、cyclin G2、NIP3、葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白、乳酸脫氫酶、醛縮酶A、烯醇化酶、轉(zhuǎn)錄蛋白、誘導(dǎo)型一氧化氮合酶、內(nèi)皮素-1等等[15]。這些靶基因產(chǎn)物或能增加缺氧組織的氧供應(yīng),或能降低細胞耗氧量,或增加葡萄糖的轉(zhuǎn)運等等,以維持內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定,使機體對缺氧產(chǎn)生耐受與適應(yīng)。本研究發(fā)現(xiàn)GLUT3 mRNA表達在PROG組中顯著增高,GLUT3蛋白水平的表達與mRNA相一致,PROG+OGD組GLUT3 mRNA、GLUT3蛋白表達不僅明顯高于正常對照組,也高于OGD組。這些結(jié)果提示,孕酮可能通過上調(diào)HIF -1α靶基因GLUT3的表達提高缺氧缺血時神經(jīng)元對葡萄糖的轉(zhuǎn)運效率,增強神經(jīng)元對缺氧缺血的耐受,產(chǎn)生神經(jīng)保護作用。本研究為孕酮用于臨床治療腦卒中奠定了理論基礎(chǔ)。
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