王文杰 戴 春 呂昌云
1.徐州醫(yī)學(xué)院研究生學(xué)院,江蘇 徐州 221002;2.徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,江蘇 徐州 221002;3.總參軍訓(xùn)和兵種部徐州干休所,江蘇 徐州 221002
隨著放射診斷技術(shù)的不斷發(fā)展和介入治療的廣泛應(yīng)用,對比劑腎?。╟ontrast-induced nephrology,CIN)開始引起了人們的關(guān)注。研究表明,在4622例住院患者中,腎功能不全發(fā)生率為7.2%,其中CIN是僅次于腎灌注不足和腎毒性藥物引起腎衰竭的第三大常見原因[1-2]。因此研究如何有效地預(yù)防或減少造影劑的腎毒性具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。
臨床上用于改善貧血狀態(tài)的重組人促紅細(xì)胞生成素(recombinant human erythropoietin,rhEPO)具有抗氧化、抑制細(xì)胞凋亡、抑制炎癥反應(yīng)、免疫調(diào)節(jié)、血管修復(fù)、抗纖維化及促進(jìn)腎小管上皮細(xì)胞再生等作用[3-8]。但rhEPO是否對對比劑腎損害有保護(hù)作用,目前國內(nèi)尚缺乏充分的研究及報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)擬通過對不同劑量rhEPO的研究,探討其對大鼠CIN的保護(hù)作用,為臨床應(yīng)用提供理論依據(jù)。
1.1.1 動(dòng)物 健康雄性SD大鼠40只,體重180~240 g,由徐州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
1.1.2 藥品與試劑 rhEPO(益比奧,沈陽三生制藥有限責(zé)任公司),吲哚美辛(美國Sigma公司),N-硝基-L-精氨酸甲酯(美國Sigma公司),泛影葡胺(上海旭東海普藥業(yè)有限公司)。
1.2.1 CIN動(dòng)物模型建立 大鼠禁食、水12 h,水合氯醛腹腔麻醉后,分離左股靜脈埋入留置針,依次注射預(yù)先配置的吲哚美辛10 mg/kg,15 min后注射左旋硝基精氨酸甲酯(L-NAME)10 mg/kg;15 min 后注射泛影葡胺 10 mL/kg[9]。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)步驟 將所有大鼠編號(hào),隨機(jī)分成5組,每組8只,全部大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d。①空白對照組:造模前3天腹腔注射生理鹽水1.5 mL/d,造模當(dāng)天股靜脈每隔15分鐘注射生理鹽水1.5 mL,共3次。②實(shí)驗(yàn)對照組:造模前3天腹腔注射生理鹽水1.5 mL/d,造模當(dāng)天每隔15 min分別注射吲哚美辛10 mg/kg、N-硝基-L-精氨酸甲酯 10 mg/kg、生理鹽水 1.5 mL。 ③模型組:造模前3天腹腔注射生理鹽水1.5 mL/d,造模當(dāng)天每隔15分鐘分別注射吲哚美辛10 mg/kg、N-硝基-L-精氨酸甲酯10 mg/kg、泛影葡胺10 mL/kg。④rhEPO 1組:造模前3天腹腔注射rhEPO 3000 IU/(kg·d),造模當(dāng)天同模型組。⑤rhEPO 2組: 造模前 3天腹腔注射 rhEPO 600 IU/(kg·d),造模當(dāng)天同模型組。每組大鼠分別于造模前、造模后48、72 h時(shí)內(nèi)眥取血測血肌酐(Scr)、尿素氮(BUN),造模后 72 h處死大鼠后迅速取腎,去除腎包膜,于10%甲醛緩沖溶液內(nèi)固定備作腎組織病理檢查(以上均在冰臺(tái)上操作)。
切片常規(guī)脫蠟,HE染色,光鏡觀察。腎小管評(píng)分采用Paller法[10]評(píng)分,即根據(jù)腎小管擴(kuò)張程度、腎小管萎縮程度、腎小管上皮細(xì)胞空泡變性程度、腎小管上皮細(xì)胞壞死程度、間質(zhì)纖維化程度及腎間質(zhì)炎癥細(xì)胞浸潤程度的無、輕、中、重分別計(jì)0、1、2、3分。每張切片連續(xù)觀察10個(gè)不重疊的高倍視野,并計(jì)算平均得分。
應(yīng)用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,各組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
各組實(shí)驗(yàn)前 Scr、BUN無明顯差異(P>0.05);空白對照組與實(shí)驗(yàn)對照組之間各時(shí)間點(diǎn)Scr、BUN無明顯差異 (P>0.05);與空白對照組比較,模型組造影后48、72 h Scr較實(shí)驗(yàn)前上升>25%,提示造模成功。與空白對照組比較,模型組、rhEPO 1、2 組造影后 48、72 h Scr、BUN 均有明顯上升 (P<0.05);與模型組比較,rhEPO1、2 組造影后48、72 h Scr、BUN均有明顯下降(P<0.05)。rhEPO 1 組(3000 IU/kg)明顯優(yōu)于小劑量 rhEPO 2 組(600 IU/kg)(P<0.05)。 見表 1、2。
表1 各組大鼠 Scr水平比較(,μmol/L,n=8)
表1 各組大鼠 Scr水平比較(,μmol/L,n=8)
注:與空白對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與rhEPO 1組比較,cP<0.05
空白對照組可見腎小管上皮細(xì)胞無明顯損傷,偶見單個(gè)腎小管上皮細(xì)胞脫落、再生現(xiàn)象,腎小管結(jié)構(gòu)正常(圖1)。實(shí)驗(yàn)對照組可見腎小球系膜細(xì)胞和基質(zhì)輕度增生,毛細(xì)血管袢管腔無壓迫,腎小管上皮腫脹(圖2)。模型組可見大量腎小管上皮細(xì)胞刷狀緣脫落、空泡變性、細(xì)胞脫落至小管腔,部分腎小管結(jié)構(gòu)破壞,腎小球內(nèi)皮細(xì)胞、上皮細(xì)胞腫脹、變性,系膜基質(zhì)輕度增多,腎間質(zhì)灶性水腫、炎性細(xì)胞浸潤(圖3),較空白對照組大鼠腎小管上皮細(xì)胞損傷評(píng)分顯著增加 (P<0.05),見表3。rhEPO 1組可見腎小管上皮細(xì)胞輕度腫脹,部分空泡變性,腎間質(zhì)少量炎性細(xì)胞浸潤,較模型組腎小管上皮細(xì)胞損傷明顯減輕 (圖4),rhEPO 2組可見腎小球系膜細(xì)胞和基質(zhì)中度增生,毛細(xì)血管袢管腔無壓迫(圖5),較模型組腎小管上皮細(xì)胞損傷有所減輕,兩組與模型組腎小管損傷評(píng)分的差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),rhEPO 1和2組之間腎小管上皮細(xì)胞損傷評(píng)分差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P>0.05),見表3。
表2 各組大鼠BUN水平比較(,mmol/L,n=8)
表2 各組大鼠BUN水平比較(,mmol/L,n=8)
注:與空白對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與rhEPO 1組比較,cP<0.05
表3 各組大鼠腎小管損傷評(píng)分比較(,分)
表3 各組大鼠腎小管損傷評(píng)分比較(,分)
注:與空白對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05
?
近年來,盡管對比劑不斷改良:由離子型到非離子型,由高滲型到等滲型,但由于長期以來依賴碘對比劑的診治項(xiàng)目不斷上升,CIN病例數(shù)還在不斷增長。對比劑腎病是以使用對比劑后3 d內(nèi),發(fā)生無其他原因可解釋的急性腎減退,通常以血清肌酐上升超過44 μmol/L或較基礎(chǔ)值上升 >25%作為診斷標(biāo)準(zhǔn)[11]。
對比劑腎病的發(fā)病機(jī)制目前尚未完全闡明,綜合現(xiàn)階段的研究成果,主要有腎缺血[12]、腎小管細(xì)胞毒性損傷[13]、氧自由基損傷[14]、腎小管阻塞[15]及細(xì)胞凋亡。另有學(xué)者提出對比劑作為一種過敏原,可能通過刺激血管內(nèi)皮細(xì)胞而激活補(bǔ)體,引起全身過敏反應(yīng)以及腎臟的免疫反應(yīng)并最終導(dǎo)致CIN的發(fā)生[16-17]。目前有多個(gè)藥物用于預(yù)防CIN,其中,已被證實(shí)具有CIN預(yù)防作用的藥物包括茶堿、維生素C和前列腺E1等,而rhEPO對對比劑腎病的預(yù)防作用尚未見報(bào)道。
圖1 空白對照組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)(HE,×400)
圖2 實(shí)驗(yàn)對照組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)(HE,×400)
圖3 模型組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)(HE,×400)
圖4 rhEPO 1組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)(HE,×400)
圖5 rhEPO2組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)(HE,×400)
現(xiàn)已發(fā)現(xiàn),EPO不僅具有促進(jìn)機(jī)體生成紅細(xì)胞的作用,而且還具有多種非造血功能。Li等[17]發(fā)現(xiàn)EPO可以降低凋亡蛋白(Bad、Bax)活性,增加抗凋亡蛋白(Bcl-2,Bcl-xL)活性,誘導(dǎo)X染色體相關(guān)的凋亡蛋白抑制劑 (XIAP)表達(dá),滅活caspases,保持線粒體膜電位,抑制細(xì)胞色素C釋放,發(fā)揮促細(xì)胞生存和抗細(xì)胞凋亡效應(yīng);Dang等[18]通過動(dòng)物實(shí)驗(yàn)證實(shí)給予糖尿病大鼠EPO,可以顯著降低腎臟還原型輔酶Ⅱ(NADPH)氧化酶的活性及其p47phox亞基的mRNA水平,發(fā)揮抗氧化作用。Shurtz等[19]報(bào)道EPO可抑制持續(xù)不臥床腹膜透析患者的炎癥反應(yīng),表現(xiàn)為減少外周血中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù),抑制中性粒細(xì)胞激活,減少炎癥細(xì)胞因子的產(chǎn)生等;Ribatti等[20]發(fā)現(xiàn),EPO能通過抑制缺氧引起的血管內(nèi)皮細(xì)胞凋亡,通過維持和重建血供,促血管生成進(jìn)而修復(fù)組織損傷。Lin等[8]的研究還發(fā)現(xiàn),EPO能通過促進(jìn)骨髓內(nèi)Lin-/Sca-T+干細(xì)胞增生而促進(jìn)再灌注損傷后近端腎小管上皮細(xì)胞的再生。以上均表明EPO可能是腎小管損傷疾病潛在治療藥物。CIN既存在明顯的腎組織缺血缺氧、又有對比劑對腎小管細(xì)胞的直接毒性作用,EPO對這種對比劑腎病動(dòng)物模型是否具有保護(hù)作用,目前國內(nèi)尚未見報(bào)道。
本實(shí)驗(yàn)參考Agmon等[9]的方法,預(yù)先應(yīng)用吲哚美辛和硝基左旋精氨酸甲酯(L-NAME)阻斷前列腺素和一氧化氮合酶,然后注射造影劑,成功建立了對比劑腎病大鼠模型。為排除吲哚美辛和L-NAME對大鼠腎功能是否有影響,筆者專門設(shè)置了實(shí)驗(yàn)對照組,結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)對照組Scr、BUN水平及腎損傷評(píng)分均與空白對照組無明顯差異(P>0.05),提示在本實(shí)驗(yàn)條件下吲哚美辛和L-NAME對大鼠腎功能未造成損傷。造模組造影后48、72 h Scr較實(shí)驗(yàn)前上升 >25%,腎組織病理切片HE染色可見大量腎小管上皮細(xì)胞刷狀緣脫落、空泡變性、細(xì)胞脫落至小管腔,部分腎小管結(jié)構(gòu)破壞,腎小球內(nèi)皮細(xì)胞、上皮細(xì)胞腫脹、變性,系膜基質(zhì)輕度增多,腎間質(zhì)灶性水腫、炎性細(xì)胞浸潤等,提示對比劑腎病大鼠模型是成功的。
在本研究中,各組大鼠(空白對照組除外)腎臟的病理切片中腎小球內(nèi)的細(xì)胞和基質(zhì)均表現(xiàn)出不同程度的增生,考慮可能與注射吲哚美辛和L-硝基-N-精氨酸甲酯有關(guān),可能機(jī)制為:①吲哚美辛可抑制環(huán)氧化酶-1(cyclooxygenase-1,COX-1)表達(dá),導(dǎo)致前列腺素(PGs)生成減少[21],而 PGs中的前列腺素 E1(prostaglandin E1,PGE1)可通過抑制血小板的聚集,降低血栓素 A2(thromboxane A2,TXA2)水平,減輕血管內(nèi)皮的損傷,使血漿內(nèi)皮素(entholia,ET)水平下降[22]。由于PGs減少導(dǎo)致ET生成增多。②L-NAME可以抑制NO的產(chǎn)生和釋放[23],NO不僅能對抗ET的生物學(xué)效應(yīng),而且負(fù)反饋抑制ET的釋放[24]。NO減少導(dǎo)致ET分泌增加[25]。而ET又通過自分泌和旁分泌的方式介導(dǎo)多種細(xì)胞因子,促進(jìn)腎小球系膜細(xì)胞的增生和細(xì)胞外基質(zhì)的形成[26]。
國內(nèi)有學(xué)者研究了不同劑量EPO對大鼠腎臟缺血再灌注損傷后的保護(hù)作用[27],以此為參照,本實(shí)驗(yàn)最大劑量采用3000 IU/kg。既往對中風(fēng)的嚙齒類動(dòng)物模型研究表明,EPO起組織保護(hù)作用的最小劑量為500 IU/kg,由于其他組織細(xì)胞EPO受體親和力小于骨髓造血細(xì)胞[29],因此本實(shí)驗(yàn)最小劑量采用600 IU/kg。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在注射造影劑前預(yù)先給予rhEPO可明顯改善腎功能、減輕腎臟組織病理損傷,這表明rhEPO可有效減輕造影劑所誘導(dǎo)的大鼠急性腎損傷。實(shí)驗(yàn)表明,不同劑量rhEPO給藥干預(yù)均能使大鼠腎功能得到明顯的保護(hù),但通過對腎功能和組織形態(tài)學(xué)的比較發(fā)現(xiàn),大劑量給藥組效果優(yōu)于小劑量給藥組,但是rhEPO各干預(yù)組之間腎小管損傷評(píng)分并沒有明顯差異,分析可能是由于病理切片的選材、切片制作及實(shí)驗(yàn)樣本量較小的原因。
綜上所述,在本實(shí)驗(yàn)條件下,rhEPO對造影劑誘導(dǎo)的大鼠急性腎損傷有保護(hù)作用,無論是從生化檢測還是從組織形態(tài)學(xué)方面都得到了證實(shí),且大劑量干預(yù)組優(yōu)于小劑量干預(yù)組。這種作用可能是通過抗凋亡、抗氧自由基、減輕炎癥反應(yīng)、血管修復(fù)及促進(jìn)腎小管細(xì)胞再生的協(xié)同機(jī)制來實(shí)現(xiàn)的,相信更多的依據(jù)將在以后的實(shí)驗(yàn)中證實(shí)。鑒于rhEPO在治療腎性貧血中已得到廣泛應(yīng)用,且副作用較小,應(yīng)用方便,故應(yīng)用于預(yù)防CIN的前景良好。但隨著rhEPO應(yīng)用劑量的增加,其帶來的副作用也隨之增加,諸如血栓形成、高血壓等,因此臨床上用于預(yù)防CIN的最佳合理劑量尚需更多的臨床研究加以評(píng)價(jià)。
[1]Nash K,Hafeez A,Hou S.Hospital-acquired renal insufficiency[J].Am J Kidney Dis,2002,39:930-936.
[2]Mccullough PA,Wolyn R,Rocher LL,et al.Acute renal failure after coronary intervention:incidence,risk factors,and relationship to mortality[J].Am J Med,1997,103:368-375.
[3]Toba H,Sawai N,Morishita M,et al.Chronic treatment with recombinant human erythropoietin exerts reno protective effects beyond hemato poiesis in streptozotocin-induced diabetic rat[J].Eur J Pharmacol,2009,612(1-3):106-114.
[4]Brines M,Cerami A.Erythropoietin mediated tissue protection: reducing collateral damage from the primary injury response[J].J Intern Med,2008,264(5):405-432.
[5]Gorio A,Gokmen N,Erbayraktar S,et al.Recombinant human erythro-poietin counteracts secondary injury and markedly enhances neurological recovery from experimental spinal cord trauma [J].Proc Natl Acad Sci USA,2002,99:9450-9455.
[6]Ribatti D,Presta M,Vacca A,et al.Human erythropoietin induces a poranrgiogenic phenotype in cultured endothelial cells and stimulates neovascularization in vivo[J].Blood,1999,93:2627.
[7]Toba H,Sawai N,Morishita M,et al.Chronic treatment with recombinant human erythropoietin exerts reno protective effects beyond hemato poiesis in streptozotocin-induced diabetic rat[J].Eur J Pharmacol,2009,612(1-3):106-114.
[8]Lin F,Cordes K,Li L,et al.Hematopoietic stem cells contribute to the regeneration of renal tubules after renal ischemia-reperfusion injury in mice[J].J Am Soc Nephrol,2003,14:1188-1199.
[9]Agmon Y,Peleg H,Greenfeld Z,et al.Nitric oxide and prostanoids protect the renal outer medulla from radiocontrast toxicity in the rat[J].J Clin Invest,1994,94(3):1069-1075.
[10]Paller MS,Hoidal JR,F(xiàn)erris TF.Oxygen Free Radicals in ischemicacute renal failure in the rat[J].J Clin Invest,1984,74:1156-1164.
[11]MorcosSK,Thomsen HS,Webb JA,et al.Contrast-media-induced nephrotoxicity:a consensus report[J].Eur Radiol,1999,9(8):1602-1613.
[12]Heyman SN,Brezis M,Epstein FH,et al.Early renal medullar hypoxic injury from radio contrast and indo methacin[J].Kidney Int,1995,40(3):632-642.
[13]Hoh Y,Yano T,Sendo T,et al.Involvement of denovo ceramide synthesis in radio contrast induced renal tubular cell injury E [J].Kidney Int,2006,69(2):288-297.
[14]Dounousi E,Papavasiliou E,Makedou A,et al.Oxidative stress is progressively enhanced with advancing stages of CKD [J].Am J Kidney Dis,2006,48(5):752-760.
[15]Persson PB,Tepel M.Contrast medium-induced nephropathy:the pathophysiology[J].Kidney Int,2006,(Suppl 1):8-10.
[16]Steven F,John D,Kevin M,et al.N-acetyl cysteine in the prevention of radio contrast-induced nephropathy[J].J Am Soc Nephrol,2004,15(2):251-259.
[17]Li F,Chong ZZ,Maiese K.Erythropoietin on a tightrope:Balancing neuronal and vascular protection between intrinsic and extrinsic pathways[J].Neurosignals,2004,13(6):265-289.
[18]Dang J,Jia R,Tu Y,et al.Erythropoietin prevents reactive oxygen species generation and renal tubular cell apoptosis at high glucose level[OL].http://dx.doi.Org/10.1016/j.biopha.2010-06-11.
[19]Shurtz SR,Kristal B,Shasha SM,et al.Interaction between erythropoietin and peripheral polymorphonuclear leukocytes in continuous ambulatory diaysis patients[J].Nephron,2002,91(4):759-761.
[20]Ribatti D,Presta M,Vacca A,et al.Human erythropoietin induces a poranrgiogenic phenotype in cultured endothelial cells and stimulates neovascularization in vivo[J].Blood,1999,93:2627.
[21]孔維信,顧勇,馬驥.腎大部切除大鼠腎皮質(zhì)環(huán)加氧酶2的表達(dá)及調(diào)節(jié)[J].復(fù)旦學(xué)報(bào),2005,32(11):6-17.
[22]遲志波.前列腺素E1對糖尿病慢性并發(fā)癥及血漿內(nèi)皮素的影響[J].實(shí)用糖尿病雜志,2005,1(5):55-56.
[23]Sosnovtseva OV,Pavlov AN,Pavlova ON,et al.The effect of L-NAME on intra-and inter-nephron synchronization[J].Eur J Pharm Sci,2009,36(1):39-50.
[24]孫奧麗,孫永波,孫海峰.內(nèi)皮舒張因子和內(nèi)皮素之間調(diào)控關(guān)系動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究[J].醫(yī)學(xué)研究雜志,2007,36(3):61-63.
[25]唐玉瓊,何小解.內(nèi)皮素與一氧化氮對腎病大鼠系膜細(xì)胞增生的影響[J].中國現(xiàn)代醫(yī)學(xué)雜志,2002,12(19):12-15.
[26]云鷹,曹廣海.清熱解毒、化瘀通絡(luò)方對系膜增生性腎炎大鼠腎組織腫瘤壞死因子α、內(nèi)皮素1的影響[J].中國中西醫(yī)結(jié)合兒科學(xué),2010,2(3):231-234.
[27]楊橙,胡林昆,趙天.重組人促紅細(xì)胞生成素對大鼠腎臟缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].復(fù)旦學(xué)報(bào),2010,37(5):539-543.