蘇秀華 張衍俊 (山東省嘉祥縣畜牧獸醫(yī)局 272400) 鄭麗艷 (山東省嘉祥縣科學(xué)技術(shù)局)
?
豬偽狂犬病診斷檢測方法研究進(jìn)展
蘇秀華 張衍俊 (山東省嘉祥縣畜牧獸醫(yī)局 272400) 鄭麗艷 (山東省嘉祥縣科學(xué)技術(shù)局)
偽狂犬病是由偽狂犬病毒(PRV)引起,最早發(fā)現(xiàn)于美國,因臨床表現(xiàn)與狂犬病類似,故稱偽狂犬病。該病在全球范圍內(nèi)的流行呈上升趨勢,世界上已有50多個國家和地區(qū)報導(dǎo)該病的流行。我國自1947年劉永純從豬體分離到PRV以來,已有24個省(市)、自治區(qū)報導(dǎo)流行。本文主要對血清學(xué)、分子生物學(xué)診斷與檢測方法,以及鑒別診斷方法進(jìn)行了綜述。
成年豬無明顯癥狀,母豬流產(chǎn)或產(chǎn)死胎,仔豬表現(xiàn)神經(jīng)癥狀,肌肉震顫,嚴(yán)重時四肢劃水樣運(yùn)動,體溫升高達(dá)41~42℃。取樣本的腦和脊髓做組織切片,蘇木素-伊紅染色后觀察呈現(xiàn)非化膿性腦炎變化,其他大體剖檢特征不明顯。在神經(jīng)細(xì)胞、膠質(zhì)細(xì)胞和毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞可檢出A型核內(nèi)包涵體。
此種方法也被稱為診斷PRV的黃金標(biāo)準(zhǔn)。病毒分離時可以采集病豬的組織有:腎臟、腦、肝、脾及扁桃體,勻漿后加上雙抗,接種到敏感細(xì)胞,直至出現(xiàn)特征性細(xì)胞病變(CPE)。這種方法的敏感性較差[1]。
探針技術(shù)由于其具有特異性良好、敏感程度高的優(yōu)點(diǎn),廣泛用于PRV的診斷和檢測中。Rirtle等首次使用核酸探針技術(shù)鑒定了野外分離的PRV,從而獲得了流行病學(xué)的研究資料。其后,用生物素和地高辛標(biāo)記的探針從三叉神經(jīng)節(jié)診斷出PRV DNA,并進(jìn)行了原位雜交,從單細(xì)胞的水平上檢出存在的潛伏感染。國內(nèi)也存在利用探針檢測技術(shù)的研究,采用32P探針標(biāo)記PRV全基因組和重組質(zhì)粒應(yīng)用斑點(diǎn)雜交技術(shù),從而獲取培養(yǎng)物中的PRV存在的信息,能檢測出10pg的PRV–DNA,并具有較高的特異性[2]。
4.1 常規(guī)PCR 目前,主要根據(jù)病毒生存必須的糖蛋白基因和毒力基因為模板設(shè)計引物,檢測的基因片段主要有g(shù)B、gD、gG和gE等,其中g(shù)D基因是該病毒的主要中和抗原基因。如Echeverria M G等以PRVgD基因為模板設(shè)計了一對引物,利用PCR法對19頭豬的組織樣本進(jìn)行了檢測,結(jié)果表明有15頭PCR反應(yīng)陽性,而病毒分離只得到了3株P(guān)RV。周復(fù)春等應(yīng)用PCR技術(shù)進(jìn)行了PRV的檢測,并對潛伏的感染部位也進(jìn)行了相應(yīng)的研究。其中檢出率最高的組織為三叉神經(jīng)節(jié),幾乎為100%[3]。石建平等對常規(guī)PCR法進(jìn)行了改進(jìn),提高PCR的效率,使PCR技術(shù)更趨于實用化,根據(jù)gD基因設(shè)計一對引物,選用高速離心和短時間100℃水浴釋放模板,將試驗縮短到4h內(nèi)完成[4]。陳本龍等(2009)根據(jù)gD基因設(shè)計引物,成功建立了檢測PRV的PCR體系[5]。
4.2 鑒別PCR Katz(1992)根據(jù)gE、TK基因設(shè)計的套式PCR能將PRV野毒株和不同疫苗株有效地鑒別開[6]。劉麗娜等設(shè)計了與PRV的gB、gD、gE基因的3對引物,建立了能有效區(qū)分野毒株和基因缺失疫苗毒的多重PCR診斷方法,敏感性試驗結(jié)果表明,多重PCR可以檢測到106pg三基因缺失疫苗毒或756pg PRV野毒的核酸模板量[7]。
酶聯(lián)免疫吸附試驗適用于實驗室大批樣品檢查,產(chǎn)地檢疫,流行病學(xué)調(diào)查和無本病健康豬群的建立,目前,國際上有各種商品化ELISA試劑盒出售。Mout (1978)[8]、Afshar(1987)[9]等分別建立了檢測偽狂犬病病毒抗體的間接ELISA方法。國內(nèi)蔣玉雯等(1988)[10]建立了檢測偽狂犬病病毒抗體間接ELISA方法,認(rèn)為ELISA敏感性高,且快速、簡便,適于大面積血清學(xué)調(diào)查。王勇等用gE鑒別ELISA試劑盒調(diào)查某豬場流行情況,母豬陽性率為81%,但缺點(diǎn)是此種方法費(fèi)用昂貴,難以在基層推廣[11]。
乳膠試驗?zāi)夹g(shù)是利用抗原和抗體特異性結(jié)合的特點(diǎn),將抗原先用乳膠包被,然后再與相應(yīng)血清反應(yīng),幾分鐘內(nèi)即可得出結(jié)果。王澤州等于2001年報道利用此種方法對四川省的20個豬場進(jìn)行了血清檢測,陽性率為14.7%,少數(shù)豬場陽性率達(dá)到95%。羅勇等利用乳膠凝膠實驗技術(shù)對疑似豬瘟病的病豬進(jìn)行了豬偽狂犬病毒的檢測,230份血清中陽性率11%[12]。
SN是檢測病毒比較經(jīng)典的血清學(xué)方法,應(yīng)用比較方便,很多國家都采用此法檢測PRV。Boelaert(1999)應(yīng)用SN對比利時北部地區(qū)4個豬場的母豬進(jìn)行了血清學(xué)調(diào)查,血清陽性率分別為68%、60%、43%、18%[13]。李曉慧等采用SN和LAT兩種方法對吉林省8個地區(qū)1050份血清進(jìn)行了檢測,確定吉林省PR血清陽性率為21.7%,兩種方法血清檢出率經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析準(zhǔn)確性差異不顯著[14]。邱德新等應(yīng)用血清中和實驗(SNT)和偽狂犬病乳膠凝集實驗(LAT)診斷試劑盒進(jìn)行了PRV抗體效價測定和相關(guān)性分析,結(jié)果表明兩種方法檢測結(jié)果符合率高,特異性強(qiáng),LAT比SNT敏感、快速簡便和實用[15]。
Gutekunst D E(1997)首次報道了利用微量瓊擴(kuò)試驗檢查豬血清中PRV抗體,由于AGID技術(shù)操作簡單。結(jié)果準(zhǔn)確,無需特殊設(shè)備,與SNT技術(shù)相比有很大的優(yōu)勢,因此適用于基層獸研單位和大型豬場的現(xiàn)場定性診斷及豬群隱性無感染的普查。吳斌等(1997)將AGID和SNT進(jìn)行了比較試驗,發(fā)現(xiàn)與SNT的陽性符合率為94%,可以作為一種檢測偽狂犬病和抗體水平的檢測。代明娟等(2002)利用AGID技術(shù)對5個豬場進(jìn)行了抗體檢測,結(jié)果分析表明豬場的血清陽性率為80.0%,再一次顯示了AGID技術(shù)的簡便和快捷[16]。
目前,可以用來診斷豬PRV的多種檢測手段中,傳統(tǒng)檢測手段可靠,但往往操作較復(fù)雜,或耗時較長,實際應(yīng)用中有一定的困難。血清學(xué)檢測手段,尤其是研制成功的部分ELISA試劑盒操作簡單,方便,不需要使用昂貴復(fù)雜的儀器,已經(jīng)被廣泛應(yīng)用,特別是鑒別ELISA試劑盒可鑒別野毒感染和已免疫動物,但一些ELISA方法還不夠完善。分子生物學(xué)方法特別是PCR技術(shù),隨著研究的深入將更加趨于敏感、簡便、快速、實用。建立和完善用于我國的PR控制和消滅該病的診斷方法,是我國廣大獸醫(yī)科研工作者面臨的重大課題之一。
[1] 祁賢, 張婉華, 葉向陽. 豬偽狂犬病毒sl株分離鑒定[J]. 中國獸醫(yī)科技, 2002, 32(4): 24-26.
[2] 郭萬柱, 劉亞剛, 婁高明. 獸醫(yī)病毒學(xué)[M]. 成都:四川科學(xué)技術(shù)出版社, 2003.
[3] 周復(fù)春, 陳煥春. 偽狂犬病病毒PCR檢測方法的建立[J1. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2000年增刊: 33.
[4] 石建平, 宣華, 盧強(qiáng)等. 偽狂犬病 PCR 檢測方法的建立及初步應(yīng)用[J]. 中國畜禽傳染病, 1996, 5: 16-20.
[5] 陳本龍, 張立懷, 王建華等. 豬偽狂犬病 PCR 檢測方法的建立[J]. 中國醫(yī)藥生物技術(shù), 2009(8): 310-311.
[6] Katz J B. Molecular analysis of pseudorabies virus vaccines and their rapid differentiation from wild type isolates using DNA amplified glycoprotein E and thymidine kinase gene segment polymorphism[ J]. Biological, 1992, 20: 187-195.
[7] 劉麗娜, 何啟蓋, 陳煥春等. 用多重 PCR 鑒別豬偽狂犬病野毒與疫苗毒的研究[J]. 中國獸醫(yī)科技, 2005, 35(2): 95-98.
[8] Mout F, Toma B, Fortier B. Appliaction of an enzyme-linked immunoassay for diagonosis of Aujeszky’s disease in swine. Vet Rec. 1978, 103(12): 264.
[9] Asfhar A, Wrihgt P F, Dulac G C. Evluation of an enzyme-linked immunoassay for detection of antibodies to Pseudorabies virus in porcine field sera. Can J Vet Res. 1987, 51: 539-541.
[10] 蔣玉雯, 黃國安, 馮軍. 應(yīng)用ELISA檢測豬的狂犬病病毒抗體[J]. 中國畜禽傳染病, 1988, 40(3): 35-36.
[11]王勇, 劉同賢, 王能力等. 豬偽狂犬病血清學(xué)診斷與防制[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技, 2012, 7,55-56.
[12] 羅勇, 陳創(chuàng)夫, 王鵬燕等. 疑似豬瘟病料豬偽狂犬病的檢測[J].畜牧獸醫(yī)雜志, 2006,26(3).
[13] Belaert F. Prevalence of herds with young sows seropositive to pseudorabies in northern Belgium[ J]. Prev Vet Med, 1999, 41(4): 239-255.
[14] 李曉慧, 胡業(yè)平, 王為等. 吉林省豬偽狂犬病血清學(xué)調(diào)查[C]. 中國畜牧獸醫(yī)學(xué)會家畜傳染病學(xué)分會第十次學(xué)術(shù)研討. 蘇州. 2003.
[15] 邱德新, 陳煥春, 何啟蓋等. 乳膠凝集試驗與血清中和試驗檢測豬偽狂犬病血清抗體的比較[J]. 中國預(yù)防醫(yī)學(xué)學(xué)報, 2000, 22(4): 302-305.
[16] 代明娟. 應(yīng)用瓊脂免疫擴(kuò)散試驗檢測豬偽狂犬病[J]. 黑龍江畜牧獸醫(yī), 2002, 5: 40.
(2012–10–11)
S858.28
A
1007-1733(2012)12-0095-02