羅倉學(xué), 張冬梅
(陜西科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 西安 710021)
苦蕎是自然界中甚少的藥食兩用作物,但由于籽粒中含有高活性的胰蛋白酶抑制劑和蘆丁降解酶等抗?fàn)I養(yǎng)因子以及含有大量的抗性淀粉和過敏原等[1],從而降低了苦蕎麥的營養(yǎng)價值.苦蕎種子萌發(fā)后理化性質(zhì)發(fā)生了較大變化,營養(yǎng)價值大幅提高,含有更為豐富的氨基酸、各種酶類、可溶糖、不飽和脂肪酸、維生素和礦物質(zhì)等.從上世紀九十年代開始,人們越來越關(guān)注對芽苗菜營養(yǎng)價值的研究[2].萌發(fā)對苦蕎的營養(yǎng)品質(zhì)有改良作用.蕎麥籽粒萌發(fā)后,胰蛋白酶抑制劑的活性降低[3],胚中蘆丁降解酶活性在胚為子葉完全吸收后活性消失[4],氨基酸更為均衡[3],VB1、VB6、Vc、礦物質(zhì)等營養(yǎng)成分明顯提高[5],且含有大量的不飽和脂肪酸[6]和更為豐富的黃酮類物質(zhì)[3].
苦蕎芽菜的人工培養(yǎng)日漸興起,目前,對苦蕎萌發(fā)過程中活性成分的變化及保健功能的研究較多[7,8],但有關(guān)其萌發(fā)吸水特性和催芽的研究報道較少.本試驗采用不同吸水方式(浸種與濕紗布包裹)、硝酸鉀、變溫層積對苦蕎種子進行處理,分析了不同吸水方式和吸水時間、不同濃度硝酸鉀溶液和不同時間層積處理對苦蕎種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響,旨在提高苦蕎種子的萌發(fā)效果,為苦蕎芽菜的人工栽培提供參考.
1.1 材料
苦蕎種子:來自四川涼山州苦蕎生產(chǎn)基地.
1.2 儀器和試劑
KQ-200TDV型高頻數(shù)控超聲波清洗器(頻率60 kHz),昆山市超聲儀器有限公司;SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵,鄭州長城科工貿(mào)有限公司;101-2型電熱鼓風(fēng)干燥箱,北京科偉永興儀器有限公司;HPG-280B光照培養(yǎng)箱,哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司.
蘆丁、無水乙醇、氫氧化鈉、亞硝酸鈉、硝酸鋁、高錳酸鉀、硝酸鉀鈉均為分析純.
1.3 處理與方法
1.3.1 種子吸水率的測定[9]
1.3.2 種子吸水試驗
選取大小均勻一致的種子,用0.2% KMnO4溶液消毒15 min,蒸餾水沖洗,采取將種子放入蒸餾水中浸泡和濕紗布包裹兩種方式使其吸水膨脹.每種方式分別進行2 h、4 h、6 h、8 h、10 h、12 h、24 h時間梯度處理,種子吸脹后置于放雙層濾紙的玻璃培養(yǎng)皿中,每皿50粒種子,3次重復(fù),25 ℃光照培養(yǎng)箱中暗培養(yǎng).第4天統(tǒng)計發(fā)芽勢,第7天統(tǒng)計發(fā)芽率,第7天測量芽品鮮重.依照公式:
Gt為在7天的發(fā)芽種子數(shù),Dt為相對應(yīng)的發(fā)芽天數(shù).
Gt為某天的幼苗生長勢(鮮苗重、干重或長度).
1.3.3 硝酸鉀試驗
選取大小均勻一致的種子,用0.2% KMnO4溶液消毒15 min,蒸餾水沖洗干凈,用不同濃度KNO3溶液浸濕的紗布包裹種子吸水6 h.KNO3溶液的濃度梯度為: 0.10 mol/L、0.30 mol/L、0.50 mol/L、0.80 mol/L、1.00 mol/L.種子吸脹后,用蒸餾水沖洗,置于放雙層濾紙的玻璃培養(yǎng)皿中,每皿50粒種子,3次重復(fù),25 ℃光照培養(yǎng)箱中暗培養(yǎng).第4天統(tǒng)計發(fā)芽勢,第7天統(tǒng)計發(fā)芽率,第7天測量芽品鮮重.
1.3.4 變溫層積試驗
層積方法是用濕紗布卷將種子包裹后放入一塑料袋中保濕(松扎袋口)[10].選取種子,用0.2% KMnO4溶液消毒15 min,蒸餾水沖洗,用濕紗布包裹種子吸水6 h,取出種子后進行變溫層積處理.
變溫層積的條件為:高溫4 h/低溫4 h、高溫6 h/低溫6 h、高溫8 h/低溫8 h、高溫10 h/低溫10 h、高溫12 h/低溫12 h,高溫在室溫(20~25 ℃)下進行,低溫在3~6 ℃冰箱中進行,進行一次變溫層積處理.3次重復(fù),第4天統(tǒng)計發(fā)芽勢,第7天統(tǒng)計發(fā)芽率,第7天測量芽品鮮重.
1.3.5 總黃酮提取與測定[11]
將冷凍備用的蕎麥芽菜在60 ℃下烘干至恒重,粉碎過80目篩.采用超聲波提取苦蕎芽菜中的總黃酮.超聲波提取條件為:80%乙醇,1∶20料液比,在溫度75 ℃、功率160 W下提取20 min,連續(xù)提取兩次.以蘆丁為標準樣,比色法(亞硝酸鈉-硝酸鋁-氫氧化鈉顯色法)測定總黃酮含量,制作蘆丁標準曲線,得蘆丁濃度C與吸光度A關(guān)系曲線的回歸方程為C=8.840 5A-0.003 7,r2=0.997 2.
稱取一定量樣品,超聲波提取,510 nm處測吸光度,從標準曲線上讀出樣品液中蘆丁的含量,計算樣品的黃酮含量.
1.4 數(shù)據(jù)處理
采用Excel 2003對數(shù)據(jù)進行整理,用SPSS17.0數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進行方差分析和顯著性檢驗,多重比較用Duncan法.
由圖1 可以看出,苦蕎種子萌發(fā)的吸水過程可分為3個階段:0~6 h內(nèi)吸水極快且吸水量大,為物理吸水過程,到6 h吸水量達到最大吸水量的73.56%,平均每小時吸水12.26%;6~48 h為緩慢吸水階段,到48 h吸水量達到最大吸水量的98.42%,平均每小時吸水0.59%;48 h后種子吸水量基本不變.符合種子萌發(fā)的一般吸水過程.
圖1 苦蕎種子吸水曲線 圖2 不同吸水方式對苦蕎種子發(fā)芽指數(shù)的影響
2.2.1 浸泡吸水時間對種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響
浸種時間對苦蕎種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響見表1.
注:大小寫字母分別表示在0.01、0.05水平差異顯著.下表同.
對于種子萌發(fā)而言,在2~4 h范圍內(nèi),隨浸種時間延長,種子發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)均上升,進一步延長浸種時間,各項指標均降低.浸種4 h處理各項指標達到最大,其次為浸種2 h,24 h處理各項指標最低.浸種4 h與24 h差異顯著,其余各處理間差異不顯著.
從黃酮含量上看,浸種時間對苦蕎芽菜黃酮含量有較大影響.浸種4 h黃酮含量最高,其次為6 h、24 h、2 h、8 h、10 h,12 h含量最低.浸種4 h與10 h、12 h差異顯著.浸種24 h黃酮含量僅次于6 h.以往研究苦蕎種子萌發(fā)過程中黃酮成分的變化時,大多采取將種子浸種12 h或24 h使其吸水膨脹,本次試驗中,浸種4 h黃酮含量最高,是12 h、24 h的1.44倍和1.08倍.芽菜黃酮含量與種子萌發(fā)指標基本保持一致.
因此,25 ℃催芽條件下,苦蕎種子的浸種時間以2~6 h為宜.
2.2.2 濕紗布包裹吸水時間對種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響
濕紗布包裹吸水時間對苦蕎種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響見表2.
表2 不同濕紗布包裹吸水時間對苦蕎種子萌發(fā)的影響
從種子萌發(fā)上看,在0~6 h范圍內(nèi),隨吸水時間延長,發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)與活力指數(shù)均上升,進一步延長浸種時間,各項指標均下降.6 h處理各指標均達到最大,其次為4 h處理,24 h處理各項指標最低.6 h處理顯著優(yōu)于24 h處理,其余各處理間差異不顯著.
從黃酮含量上看,苦蕎芽菜黃酮含量隨濕紗布包裹吸水時間變化差異較大.與浸泡處理一樣,濕紗布包裹黃酮含量較優(yōu)的4個處理也依次為4 h、6 h、24 h、2 h.其余處理黃酮含量由高到低依次為10 h、8 h、12 h.吸水4 h與8 h、12 h差異顯著.吸水24 h黃酮含量僅次于6 h.吸水4 h黃酮含量分別為12 h、24 h的1.44倍和1.06倍.芽菜黃酮含量與種子萌發(fā)指標基本保持一致.
因此,25 ℃催芽條件下,苦蕎種子的濕紗布包裹吸水時間以2~6 h為宜.
結(jié)合苦蕎種子吸水曲線與萌發(fā)吸水過程可以看出,苦蕎種子的萌發(fā)與黃酮積累和吸水過程有一定關(guān)系,0~6 h為種子完成物理吸水過程,兩種方式吸水2~6 h萌發(fā)效果較好,這說明苦蕎種子萌發(fā)吸水時間以完成物理吸水過程的時間為好,即以2~6 h為宜.
2.2.3 兩種吸水方式對種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響
不同吸水方式對苦蕎種子萌發(fā)和芽菜黃酮含量的影響見圖2、圖3和圖4.從試驗結(jié)果總體看,采用濕紗布包裹的吸水方式優(yōu)于浸泡,這可能是濕紗布包裹種子的吸水過程不僅提供了種子萌發(fā)所需的充足水分,也保證了種子萌發(fā)所需的足夠氧氣,種子活力旺盛.本試驗中,從種子萌發(fā)效果看,濕紗布包裹的最優(yōu)吸水時間為6 h,浸泡吸水的最優(yōu)處理為4 h,前者的發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)分別是后者的1.07倍和1.31倍;從芽菜黃酮含量看,二者黃酮含量較高的4個處理都為4 h、2 h、6 h和24 h,且濕紗布包裹這4個處理的黃酮含量依次是浸泡的1.04倍、1.05倍、1.02倍和1.04倍.因此,可采用濕紗布包裹吸水的方式促使苦蕎種子吸脹萌發(fā).
圖3 不同吸水方式對苦蕎種子活力指數(shù)的影響 圖4 不同吸水方式對芽菜黃酮含量的影響
2.2.4 硝酸鉀溶液濃度對苦蕎種子發(fā)芽和芽菜黃酮含量的影響
不同濃度硝酸鉀處理對苦蕎種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響見表3.硝酸鉀滲調(diào)處理具有打破休眠、提高種子活力及種子萌發(fā)率的作用[12].
從種子萌發(fā)效果看,經(jīng)不同濃度硝酸鉀處理的種子與對照相比雖無顯著性差異,但種子發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)一般都高于對照.其中,0.5 mol/L處理效果最好,與對照相比,各項指標的增幅最大,分別達到13.20%,12.28%,12.5%,39.88%.當(dāng)硝酸鉀濃度低于0.5 mol/L時,各指標隨濃度增加而增大,當(dāng)濃度高于0.5 mol/L時,各指標隨濃度增加呈下降趨勢,1.0 mol/L處理效果最低,其發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)均低于對照.
表3 不同濃度硝酸鉀處理對苦蕎種子萌發(fā)和芽菜黃酮含量的影響
從黃酮含量變化看,經(jīng)不同濃度硝酸鉀處理的種子與對照相比無顯著性差異.低濃度(0.1~0.3 mol/L)的硝酸鉀溶液對苦蕎芽菜黃酮的積累有促進作用,而在高濃度(0.5~1.0 mol/L)時有抑制作用.0.3 mol/L的處理效果最好,其次為0.1 mol/L,二者的黃酮含量分別是對照的1.19倍和1.11倍.
2.2.5 變溫層積對苦蕎種子發(fā)芽的影響
變溫層積處理對苦蕎種子萌發(fā)及芽菜黃酮含量的影響見表4.層積處理是目前解除種子休眠最常用且最有效的方法,變溫層積也稱為濕溫/濕冷作用,高溫吸濕的處理使種子完成胚后熟或胚根長出,濕冷處理打破胚芽生長,從而解除種子休眠[13].
表4 變溫層積對苦蕎種子萌發(fā)的影響
從種子萌發(fā)效果看,暖溫/低溫層積時間的長短對苦蕎種子萌發(fā)有較大影響.層積6 h處理效果最好,其次為層積4 h.與對照相比,層積6 h各項指標的增幅最大,分別達到8.49%,5.26%,7.23%,7.14%.層積4 h發(fā)芽勢、發(fā)芽率和發(fā)芽指數(shù)高于對照,但活力指數(shù)低于對照.層積8 h、10 h、12 h各處理效果均低于對照,層積12 h與對照有顯著性差異.
從黃酮含量變化看,變溫層積處理抑制了苦蕎芽菜黃酮的積累.層積6 h處理黃酮含量高于其它處理,其次依次為層積10 h、8 h、4 h、12 h.以上各處理的黃酮含量比對照分別低5.93 mg/g、12.58 mg/g、17.56 mg/g、19.08 mg/g和22.62 mg/g.
(1) 苦蕎種子的萌發(fā)、芽菜黃酮積累和種子吸水過程有一定關(guān)系,0~6 h為苦蕎種子完成物理吸水的過程,浸泡與濕紗布包裹吸水均在2~6 h內(nèi)種子萌發(fā)和芽菜黃酮含量積累效果較好,因此,苦蕎種子萌發(fā)吸水時間以完成物理吸水過程的時間為好,即以2~6 h為宜.
(2)以往對苦蕎種子萌發(fā)的試驗研究都是采取將種子完全浸泡在水中使其吸水膨脹,且浸泡時間通常為12 h和24 h,本試驗研究發(fā)現(xiàn):從苦蕎種子萌發(fā)和黃酮含量積累整體上看,采用濕紗布包裹的吸水方式優(yōu)于浸泡,且較好的處理時間為2~6 h.
(3)濃度在0.3~0.8 mol/L的硝酸鉀溶液對苦蕎種子的萌發(fā)有一定的促進作用,0.5 mol/L為萌發(fā)最優(yōu)的滲調(diào)濃度,但硝酸鉀對苦蕎芽菜黃酮的積累則表現(xiàn)為低濃度(0.1~0.3 mol/L)促進、高濃度(0.5~1.0 mol/L)抑制,0.3mol/L的處理黃酮含量最高.
(4)本試驗中,變溫層積時間的長短對苦蕎種子萌發(fā)有一定促進作用,高溫6 h/低溫6 h效果最好,但變溫層積處理抑制了苦蕎芽菜黃酮的積累.從總體上看,硝酸鉀滲調(diào)處理的效果優(yōu)于變溫層積處理.
參考文獻
[1] 張 超, 黃衛(wèi)寧, 盧 艷. 蕎麥芽營養(yǎng)及生產(chǎn)研究進展[J]. 糧食與油脂,2005,(5):18-21.
[2] Marton M, Manodoki Zs, Csapo-KI Zs,etal. The role of sprouts in human nutrition:a review[J]. Acta Univ.Sapientian,Alimentaria,2010,(3): 81-117.
[3] 蔡 馬. 萌發(fā)對蕎麥營養(yǎng)成分的影響研究[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報,2004,13(3):18-21.
[4] 陳 鵬, 侯智法. 苦蕎種子萌發(fā)過程中蘆丁降解酶的代謝規(guī)律[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報,2010,19(7):48-52.
[5] 劉本國, 陳永生, 高海燕, 等. 苦蕎麥萌發(fā)過程中活性成分的變化[J]. 糧食加工,2010,(3):48-50.
[6] 張美莉, 吳繼紅, 趙 鐳, 等. 苦蕎和甜蕎萌發(fā)后脂肪酸營養(yǎng)評價[J]. 中國糧油學(xué)報, 2005,20(3):44-47.
[7]LIU C L, CHEN Y S, YANG J H,etal. Activity of tartary (Fagopyrumtataricum(L.) Gaertn.) and common (FagopyrumesculentumMoench) buckwheat sprouts[J]. J. Agric. Food Chem, 2008, (56): 173-178.
[8] Watanabe M. An anthocyanin compound in buckwheat sprouts and its contribution to antioxidant capacity[J]. Biosci Biotechnol Biochem,2007,71(2): 579-582.
[9] 田 聰, 謝麗瓊, 李 冠. 珍稀藥用植物新疆阿魏種子萌發(fā)特性研究[J]. 種子,2008,27(5):88-90.
[10] 張 義, 王劍峰. 赤霉素浸泡與層積時間對山櫻種子萌發(fā)的影響[J]. 長江大學(xué)學(xué)報(自然版),2005,2(8):26-27.
[11] 張美莉, 吳繼紅, 趙 鐳, 等. 超聲波法提取苦蕎黃酮的工藝研究[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報,2009,18(1):281-284.
[12] 劉春花, 高金鋒, 王鵬科, 等. 硝酸鉀處理對不同貯藏年限辣椒種子發(fā)芽的影響[J]. 種子,2005,24(4):28-32.
[13] 張艷杰. 南方紅豆杉種子休眠機理的研究[D].南京: 南京林業(yè)大學(xué)博士學(xué)位論文,2007.