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轉移抑制與metastamiR調節(jié)的聯系

2010-02-11 04:43王偉強李書軍翻譯丁燕南娟校對
中國肺癌雜志 2010年2期
關鍵詞:可抑制級聯靶點

王偉強 李書軍 翻譯 丁燕 南娟 校對

天津醫(yī)科大學總醫(yī)院,天津市肺癌研究所,天津市肺癌轉移與腫瘤微環(huán)境重點實驗室

癌癥轉移需要轉移級聯的各個步驟中多個基因的協調表達。調節(jié)這些遺傳程序的分子可能在多個水平上影響轉移。乳腺癌轉移抑制因子1(BRMS1)通過調節(jié)許多蛋白質編碼的、轉移相關的基因以及轉移調節(jié)小分子RNA(術語為metastamiR)來抑制級聯中的多個步驟進而抑制轉移。在此專題中,我們將重點闡述BRMS1的生物學特性與metastamiR調節(jié)之間的聯系。

引言

癌癥轉移的形成需完成幾個步驟,且每個步驟均為不同的且高度協調的遺傳程序。轉移中的每一步均是限速的,這意味著任何一步受阻,腫瘤細胞即不能進展至下一步。轉移抑制因子是一組基因產物,根據定義,它們可阻斷轉移,但不能阻止原發(fā)腫瘤的形成,并有可能成為干預癌細胞最致命特性——轉移的靶點[1-4]。BRMS1轉移抑制因子主要通過改變SIN3:組蛋白去乙?;福℉DAC)染色質重構復合體來調節(jié)多個轉移相關基因,進而抑制轉移級聯的多個步驟[5-8]。另外,BRMS1可協調調節(jié)多個metastamiR(轉移相關小分子RNA),包括上調轉移抑制miRNA以及下調轉移促進miRNA[9]。

小分子RNA(miRNA)是一類非編碼RNA基因[10-12]。miRNA主要在轉錄后水平上調節(jié)基因表達。miRNA基因主要由RNA聚合酶II進行轉錄,轉錄時形成一個典型的發(fā)卡樣結構(pri-miRNA)。RNAse III Drosha連同共同因子DiGeorge綜合征關鍵區(qū)域基因8(DGCR8),可以識別并剪切發(fā)卡結構,并生成pre-miRNA轉運至細胞漿。Dicer酶和其它核糖核蛋白可進一步使發(fā)卡結構形成成熟的約22個核苷酸的miRNA,miRNA與RNA誘導沉默復合體(RISC)結合后,可靶向作用于mRNA的3'UTR,進而調節(jié)翻譯[13,14]。鑒于成熟的miRNA序列短,特定的miRNA理論上可靶向作用于數以百計的mRNA,因此miRNA為許多正常和病理細胞過程的關鍵調節(jié)因子。miRNA在哺乳動物細胞中被發(fā)現后不久,在癌癥中也發(fā)現了miRNA的調節(jié)異常。在慢性淋巴細胞白血病中miR-15/16有頻繁下調或缺失[15]。之后,有研究發(fā)現在大多數癌癥中miRNA既有促癌作用,也有抑癌作用[16]。新近,研究發(fā)現數個miRNA在不依賴原發(fā)腫瘤發(fā)生的情況下即可調節(jié)癌轉移過程[17]。

兩篇新近論文促使作者撰成本篇短評。首先,BRMS1可上調轉移抑制性miR-146a/b的表達,而miR-146a/b單獨即可抑制乳腺癌的轉移[18]。其次,BRMS1可協同調節(jié)多個metastamiR的表達[9]。在這篇綜述中,我們將回顧已知的BRMS1的metastamiR靶點以及BRMS1的這些功能如何與已知的BRMS1的生物學作用相一致。

BRMS1調節(jié)轉移相關基因

采用微細胞介導染色體轉移技術將11號染色體轉入轉移性乳腺癌細胞可抑制轉移,由此發(fā)現了BRMS1[19]。緊隨此項研究,采用差異顯示雜交技術鑒定出了差異表達基因[20]。利用這些分析, 全長的BRMS1被克隆。當BRMS1轉染至轉移性細胞中時,原位乳腺癌、黑色素瘤和非小細胞肺癌仍能繼續(xù)生長,但它們的轉移能力下降[20-24]。

有關生物學機制,我們及其他研究者均發(fā)現BRMS1可改變轉移的不同步驟所需的幾種組分:恢復縫隙連接的細胞間信息交流[25]、促進失巢凋亡[22]、抑制在軟瓊脂中的生長[20,26]及轉移/侵襲[22,23,26]。在分子水平上,當BRMS1重新表達時,可改變轉錄組[27]和蛋白質組[28,29]。這些變化包括(但不僅局限于此):表皮生長因子受體(EGFR;[8,30])、骨橋蛋白(OPN;[8,31-33])、尿激酶型纖溶酶原激活劑(uPA;[34,35])、C-X-C趨化因子受體4(CXCR4;[36])和成束蛋白(fascin)[37]。研究認為這些改變主要是由于BRMS1與SIN3:HDAC染色質重構復合體之間的相互作用[5-8,38]??傊珺RMS1轉移抑制機制的假說認為BRMS1是轉移相關基因表達的表觀遺傳學調節(jié)因子。

MetastamiR—miRNA功能的新發(fā)現

我們猜想,BRMS1除了調控轉移相關蛋白編碼基因外,也可調控包括miRNA在內的非編碼基因。利用miRNA雜交技術,研究發(fā)現BRMS1可調節(jié)miRNA的一個亞組,此亞組中的數個miRNA可被稱為metastamiR。有趣的是,通常當促進轉移的metastamiR減少時,抑制轉移的metastamiR往往會增多[9]。

Ma,Weinberg及其同事首次發(fā)現并報道了一種metastamiR-miR-10b的存在[39]。miR-10b可促進離體與在體的腫瘤細胞侵襲,且不影響腫瘤細胞的生存或增殖。重要的是,促進了在體的轉移(備注:離體的轉移無法被測量;僅可應用體外實驗來模擬參與轉移的步驟)。其它促轉移metastamiRs亦已被體內功能數據證實,包括:miR-21,-143, -182,-373和520c[40]。

miR-143和-182可分別促進肝細胞癌和黑色素瘤的轉移[41,42]。miR-143可通過NFκB上調其表達,并可降低細胞間粘附。miR-182可促進體內遷移,且是位于染色體7q31-q34上的部分microRNA簇,此外,microRNA簇還包括miR-96和miR-183(miR-183-96-182)。在晚期人黑色素瘤中,這一區(qū)域擴增頻繁[43],這進一步支持此microRNA簇在浸潤行為中的作用。有趣的是, 此microRNA簇與人進行性聽力喪失有關[44,45]。

對理解miR-182在控制癌細胞行為中作用的重要的補充是,miRNA基因常位于染色體的近端。miRNA簇在基因上相互連接,通過一個共同的啟動子頻繁轉錄,并可產生多順反子初級轉錄產物[46]。因此,單個microRNA在協同網絡中表達,這意味著單個microRNA與其它microRNA的共同表達使得分析microRNA簇中單個的microRNA的功能復雜化。因此,在癌癥中,當對miR-182進行單獨檢測時, miR-96和-183可能也參與到其中。然而,據我們所知,目前尚無人采用功能分析的方法對任一microRNA簇的單體和/或聯合功能進行系統的研究。我們認為這些分析對確定microRNA在癌癥生物學中的作用至關重要。

miR-21可促進侵襲和遷移,同時減少凋亡。采用antagomir[47]短暫性敲除miR-21可顯著降低乳腺癌和結直腸癌細胞向肺的實驗性轉移[48]。利用miRNA表達數據庫,通過對轉導有非轉移性MCF7的人乳腺癌細胞進行高通量分析,鑒定出了miR-373和-520c。應用transwell遷移實驗篩選轉導子發(fā)現,miR-373和-520c是體外遷移和侵襲的促進因子[49]。實驗性轉移檢測進一步顯示miR-373和-520c均為真正的metastamiR,因為它們可促進腫瘤轉移至多個部位。

另一類metastamiR可抑制轉移。轉移抑制metastamiR包括:miR-31[50], -146a/b[18],-206[51]和 -335[51]。許多研究小組發(fā)現miR-146在炎癥中起作用[52-55]。miR-146a和b均可抑制乳腺癌細胞侵襲和遷移,其機制可能是通過靶向作用于IRAK1和TRAF6而下調NFκB[53]。miR-146a/b通過促進侵襲和轉移的EGFR[18]和/或信號分子ROCK1[56]的表達,可進一步降低癌細胞的轉移潛能。擴展至體內的這些研究顯示miR-146a和b均可抑制乳腺癌細胞系中的實驗性轉移[18]。

miR-206和-335是首先被鑒定的抑制性metastamiR。Tavazoie等比較了源于人乳腺癌細胞系MDA-MB-231的各轉移性變異體中miRNA的表達[51]。在轉移性變異體中有6個特定miRNA的表達同時處于低水平。其中3個metastamiR——miR-335、-126和-206,可抑制轉移;而miR-126也可抑制細胞增殖和腫瘤發(fā)生。因此,只有miR-335和-206可被歸類為轉移抑制因子。miR-335和-206抑制轉移的關鍵步驟是抑制侵襲和遷移。

盡管大部分metastmiRs似乎在腫瘤細胞的侵襲和轉移中發(fā)揮著關鍵作用,但迄今為止只有1個metastmiR被證明在轉移級聯的多個步驟中起作用。最近有報道稱miR-31可抑制細胞侵襲、促進失巢凋亡并抑制異位定殖[50],并使原位乳腺癌模型的肺轉移減少95%,同時依然允許原位生長。通過基因個體發(fā)育分析發(fā)現, miR-31可抑制卷曲蛋白3 (Fzd3)、整合素α-5(ITGA5)、肌球蛋白磷酸酶-Rho-相互作用蛋白(M-RIP)、基質金屬蛋白酶 16(MMP 16)、根蛋白(RDX)和RhoA。

我們認為,更多microRNA的表達與腫瘤的浸潤、侵襲、轉移和存活相關。然而,我們的討論僅限于體內功能數據已發(fā)表且對轉移具有選擇性調節(jié)作用的microRNA。無疑,metastamiR的數量還會繼續(xù)增加。

盡管每一metastamiR均存在多個靶點,但最終結果皆為轉移的增多抑或是減少。有趣的是,已知的轉錄抑制因子BRMS1,既可增加轉移抑制metastamiR的表達又可降低轉移促進metastamiR的表達。BRMS1如何協同調節(jié)如此眾多的轉移相關的遺傳過程,目前仍不明了。許多metastamiR可能通過數量有限的信號通路聯系起來,而BRSM1通過直接和間接的機制來調節(jié)它們的表達。

在多個水平上調節(jié)的關鍵性轉移信號通路

MetastamiR和轉移抑制因子均可作用于轉移級聯的特定步驟。已有研究證實有11個miRNA可促進或阻斷轉移。這一數量有可能增加,因為已發(fā)現至少有20多個miRNA可影響轉移的所有重要步驟,如上皮-間質轉化(EMT)、細胞凋亡與血管生成。BRMS1是第一個被發(fā)現的可調節(jié)miRNA的轉移抑制因子。同樣,25個其它轉移抑制因子中的一部分亦可能直接或間接影響metastamiR的表達。

更有意義的是BRMS1和miR-31間的相似性。兩者均可阻斷轉移級聯的多個步驟;兩者均可阻斷異位定殖;以及兩者均可改變幾種轉移相關蛋白的表達和信號通路。

這些發(fā)現連同有關miRNA和轉移相關級聯反應的文獻的大量出現,促使我們將這一綜述的重點擴展至這一領域的發(fā)展現狀。而且,幾項臨床研究已發(fā)現miRNA的表達與復發(fā)、轉移的發(fā)展和/或生存之間存在相關性[57]。因此,我們的目的是關注轉移調節(jié)小分子RNA(metastamirs)的證據、其存在的意義以及它們的發(fā)現過程中呈現的一些技術和理論的思索。

miR-10b最終通過激活RhoC[39]對轉移起正性調節(jié)作用,RhoC在BRMS1細胞中的表達也下降[9]。BRMS1、miR-10b與RhoC之間的聯系值得深思;然而,我們在闡述其間關系時仍需謹慎。上皮-間質轉化誘導轉錄因子TWIST1,是miR-10b的正性調節(jié)因子。表達BRMS1的細胞可下調TWIST1和miR-10b的表達。由于TWIST1和miR-10b啟動子仍未完全被鑒定,目前無法確定BRMS1是僅作用于TWIST1還是作用于TWIST1和miR-10b。

同樣, 參與miR-10b級聯的數個分子同時受BRMS1的調節(jié)。例如,EGFR通過Jak/stat信號(不依賴Erk/MEK信號T)可刺激TWIS進而引起EMT[58]。BRMS1可直接(通過降低受體表達)和間接(通過減弱磷酸肌醇信號)下調EGF信號[30]。EGFR表達和TWIST-miR-10b-RhoC軸的降低可能是BRMS1調節(jié)miR-146a/b的結果,miR-146a和miR-146b均可靶向作用于EGFR[18]。

我們以及來自多個其它實驗室的數據均清晰顯示BRMS1對轉移的調節(jié)是多層次的。在細胞內對基因的直接及間接作用都是可操控的。BRMS1可以在轉錄水平或通過一種轉錄中間體直接改變基因表達(如:通過改變轉錄因子的表達,像TWIST)。同時,BRMS1也可通過如上所述的調控轉錄或通過改變miRNA的表達而減少翻譯以調節(jié)蛋白表達。

結論

對多細胞機體來說,最重要的是細胞不會遷移至其它部位并與其它組織整合。那樣會造成混亂并破壞動態(tài)平衡。失效的安全冗余(fail safe redundancies)似乎可成為控制癌轉移的通路。但是,這一冗余的出現需付出代價。盡管我們對癌轉移研究所呈現的成果已初步形成復雜的轉移調節(jié)系統,但我們的發(fā)現(連同許多其它實驗室的發(fā)現)同時又提出了如下幾個問題:

·為什么細胞可產生多個調節(jié)因子以操控單個分子?在不同的作用機制和分子之間存在什么類型的相互作用?

·為什么細胞可產生具有眾多靶點的單個分子(像miRNA)?是否存在特異性的靶點?是否還有其它共同因子參與?miRNA表達的化學計量學是否重要?

·metastamiR是否會成為有用的臨床治療靶點?如果會,miRNA的混亂會造成更多還是更少的脫靶效應?

·是否所有的轉移抑制因子均可改變metastamiR的表達?轉移抑制因子“通路”中是否存在重疊現象?

·外源miRNA與內源miRNA是否有相似的作用?當某一miRNA存在于簇中時,人為再引入單個miRNA是否會產生生物學效應?或者是否應該對miRNA進行成對的(或更有序的)研究?

·在轉移中pri-miRNA和pre-miRNA是否也起作用?

·miRNA (metastamiR)以及轉移抑制因子和/或促進因子的反饋機制是什么?

致謝

基金資助:USPHS基金 CA87728(D.R. Welch)和F32CA113037(D.R. Hurst);美國陸軍醫(yī)學研究和裝備司令部W81-XWH-08-1-0786(M.D. Edmonds)提供的博士獎學金;國家腫瘤研究基金會和腫瘤轉移研究中心(D.R. Welch)。

由于篇幅有限,在此我們向相關工作未被引用的作者表示歉意。

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