殷吉慶，劉文強，劉超，趙貴民，張翊華，劉維帥，華進聯(lián)，竇忠英，雷安民

1 西北農(nóng)林科技大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院 陜西省干細(xì)胞工程技術(shù)研究中心，楊凌 712100

2 楊凌示范區(qū)醫(yī)院病理科，楊凌 712100

角膜緣干細(xì)胞 (LSCs) 是角膜上皮再生和修復(fù)的源泉，在眼表重建中起著極為重要的作用[1-3]。1986年，Schermer等[4]首次通過實驗證明角膜緣干細(xì)胞位于角膜緣基底層“Vogt”柵欄區(qū)的乳頭狀結(jié)構(gòu)中。角膜緣干細(xì)胞具有成體干細(xì)胞的生物學(xué)特性，即慢周期性和高增殖潛能[1,5]，此外，LSCs是角膜上皮組織中體積最小的細(xì)胞，這一特征有助于角膜緣干細(xì)胞的分離與純化[6-7]。

角膜上皮增生過程為：角膜緣干細(xì)胞 (Limbal Stem Cells，角膜緣基底部最基層)→短暫擴充細(xì)胞(Transcient amplifying cell，角膜緣基底部)→有絲分裂后細(xì)胞 (Post mitotic cell，角膜上皮大多數(shù)非表面區(qū)域)→終末分化細(xì)胞 (Terminally differentiated cell，角膜淺表上皮細(xì)胞)?，F(xiàn)認(rèn)為，角膜上皮的更新是通過垂直向上運動和水平向心運動共同作用實現(xiàn)的，而其再生的最終源泉則是LSCs[8]。

角膜緣干細(xì)胞缺陷癥 (LSCD) 主要是由先天性疾病引起，后天疾病包括熱損傷或化學(xué)損傷，Stevens Johnson 綜合癥等[9-11]。由于角膜緣干細(xì)胞的缺失，角膜周邊的結(jié)膜細(xì)胞和血管會向角膜內(nèi)長入，角膜混濁，致使患者視力下降，嚴(yán)重時會導(dǎo)致角膜盲[12]。

Kenyon等[13]首先將角膜緣干細(xì)胞移植應(yīng)用于臨床。近年來，隨著人們對角膜緣干細(xì)胞研究的不斷深入，角膜緣干細(xì)胞的移植在臨床上的應(yīng)用逐漸得到推廣。1997年，Pellegrini等[14]首次提出角膜緣干細(xì)胞體外擴增移植技術(shù)，緩解了治療嚴(yán)重角膜病供體角膜缺乏、免疫排斥、自體移植損傷健眼等問題[15]。

據(jù)統(tǒng)計，通過角膜緣干細(xì)胞體外移植方法治愈角膜緣干細(xì)胞缺陷癥成功率可達(dá)75%[16]。盡管角膜緣干細(xì)胞移植術(shù)日見成熟，但術(shù)后角膜緣干細(xì)胞修復(fù)受損機體的作用情況并不明確。彌勝利等[17]通過檢測供體細(xì)胞 sry基因研究角膜緣干細(xì)胞是否長期存在于雌性受體眼表。在人工角膜移植后的2個月，一只受體母羊角膜組織中可檢測到sry基因存在；12個月后，盡管病理模型的損傷角膜已經(jīng)得到修復(fù)，但檢測不到sry基因存在。這就給我們留下了疑問，即移植到病理模型上的供體角膜緣干細(xì)胞究竟是如何對損傷角膜進行修復(fù)的？是否存在角膜外周細(xì)胞經(jīng)轉(zhuǎn)分化參與修復(fù)，或是外周血中的干細(xì)胞通過體內(nèi)循環(huán)參與了角膜的修復(fù)。本研究篩選 Venus熒光蛋白標(biāo)記的山羊角膜緣干細(xì)胞并建立轉(zhuǎn)基因細(xì)胞株，以其為種子細(xì)胞構(gòu)建人工熒光角膜上皮植片，為后期動態(tài)監(jiān)測供體角膜緣干細(xì)胞移行變化提供實驗基礎(chǔ)。

1 材料

1.1 實驗材料

2~12月齡關(guān)中奶山羊眼球由楊凌某屠宰場提供。羊膜由楊凌某醫(yī)院提供。

1.2 質(zhì)粒

pVenus質(zhì)粒 (帶黃色熒光蛋白) 由英國紐卡斯?fàn)柎髮W(xué)分子與細(xì)胞研究所惠贈。

1.3 主要試劑

DMEM/F12，Trizol，Opti-DMEM，新霉素(G418)，脂質(zhì)體LipofectamineTM2000均購自Invitrogen公司；表皮生長因子 (EGF) 購自 peprotech公司；氫化可的松、三甲碘原氨酸、腺氨酸、四型膠原(Collagen IV)、Dispase II酶、胰島素、胰蛋白酶、二甲基亞砜 (DMSO)、Integrinβ1單克隆抗體均購自Sigma公司；P63單克隆抗體購自Millipore公司；免疫熒光二抗 cy3購自碧云天生物技術(shù)公司；胎牛血清 (FBS)、兩性霉素B、EDTA購自Hyclone公司；谷氨酰胺購自 Merck公司；噻唑藍(lán) (MTT) 購自Amersco公司；PrimeScriptTMRT reagent試劑盒購自TaKaRa公司；Golden Easy PCR system、DNA marker購自 Tiangen公司；培養(yǎng)皿、培養(yǎng)板均購自Corning公司。

2 方法

2.1 山羊角膜緣干細(xì)胞原代分離與培養(yǎng)

2.1.1 角膜緣組織的取材

在無菌條件下摘除山羊眼球，用含青霉素(100 IU/mL)、鏈霉素 (100 IU/mL)、兩性霉素 B (2.5 μg/mL) 的無鈣鎂的PBS反復(fù)沖洗血污，環(huán)形剪取角膜緣外1 mm、角膜緣和角膜緣內(nèi)2 mm的角膜上皮組織，再將組織剪成若干個1 cm左右組織條，浸洗數(shù)次，每次15 min。

2.1.2 角膜緣上皮干細(xì)胞富集培養(yǎng)

將角膜緣組織條置于 1.2 IU DispaseII酶中，37℃消化90 min，而后在體視顯微鏡下，將其上皮層與基底層鈍性剝離，并收集角膜緣上皮層，剪碎。用含0.125%胰蛋白酶及0.02% EDTA消化液37℃消化角膜緣上皮5~7 min，以含10%新生牛血清培養(yǎng)液終止消化，吹打、分散細(xì)胞。收集的細(xì)胞使用Collagen IV 20 min快速粘附法富集角膜緣干細(xì)胞[18]。簡言之，以5×104個/mL細(xì)胞接種于100 μg/mL Collagen IV包被過的培養(yǎng)皿，培養(yǎng)20 min后將培養(yǎng)液移出，加入角膜緣干細(xì)胞條件培養(yǎng)液，37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，隔日換液。待到細(xì)胞生長融合至 70%~80%滿皿時傳代培養(yǎng)，每次傳代使用Collogen IV 20 min粘附富集角膜緣干細(xì)胞，在倒置顯微鏡下觀察其生長特性。

2.2 角膜緣干細(xì)胞的熒光標(biāo)記

2.2.1 G418最優(yōu)濃度篩選試驗

將第3代純化的角膜緣干細(xì)胞以1×105個/孔接種在24孔板中，加入含100~800 μg/mL不同濃度的G418的培養(yǎng)液，以100 μg/mL遞增，培養(yǎng)10~14 d，每天顯微鏡觀察細(xì)胞死亡情況，確定殺死全部角膜干細(xì)胞的G418最低濃度為最優(yōu)濃度。

2.2.2 pVenus質(zhì)粒轉(zhuǎn)染角膜緣干細(xì)胞

將原代角膜緣干細(xì)胞20 min Collagen IV快速富集培養(yǎng)，待細(xì)胞融合至70%~80%，按LipofectamineTM2000說明書步驟進行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染細(xì)胞培養(yǎng)24 h后，以1×104個/mL細(xì)胞接種于60 mm培養(yǎng)皿中，待細(xì)胞貼壁后換為含 500 μg/mL G418的培養(yǎng)液培養(yǎng) 1個月以殺死未轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在熒光顯微鏡下挑取帶有綠色熒光的陽性細(xì)胞克隆，并擴增培養(yǎng)。

2.3 熒光角膜緣干細(xì)胞株的相關(guān)檢測

2.3.1 熒光角膜緣干細(xì)胞生長狀態(tài)觀察

Leica熒光倒置顯微鏡下觀察G418篩選細(xì)胞的形態(tài)及熒光表達(dá)情況。

2.3.2 免疫熒光染色檢測

將熒光標(biāo)記角膜緣干細(xì)胞懸液以 5×103個/mL細(xì)胞接種于48孔培養(yǎng)板培養(yǎng)5 d后，對G418篩選后的角膜緣上皮干細(xì)胞的陽性標(biāo)記物P63和Integrin β1進行免疫熒光檢測。培養(yǎng)細(xì)胞先用 PBS漂洗5 min，重復(fù)3次，用4%多聚甲醛固定5~10 min，PBS漂洗3次，每次5 min。加入0.2% Trixon-100室溫作用10 min，PBS漂洗3次，每次5 min (僅核內(nèi)表達(dá) P63進行該步驟)。加入封閉液室溫作用30 min后，滴加一抗，4℃過夜。PBS漂洗5 min，重復(fù)3次。滴加紅色熒光二抗體cyc3稀釋液，37℃孵育1 h。PBS漂洗5 min，重復(fù)3次。使用熒光染料Hoechst 33342染細(xì)胞核，熒光倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞狀態(tài)及熒光表達(dá)情況，照相。以PBS代替單克隆一抗為陰性對照組。

2.3.3 半定量RT-PCR檢測

分別提取生長狀態(tài)良好的第6代轉(zhuǎn)染及未轉(zhuǎn)染角膜緣干細(xì)胞總RNA，并于260 nm波長測定其濃度。按PrimeScriptTMRT reagent試劑盒說明書分別取0.5 μg總RNA合成cDNA。為了確保兩種不同細(xì)胞的基因表達(dá)量處于指數(shù)期，先以倍比量的cDNA為模板，分別對β-actin、p63、pcna、venus基因進行PCR，分析PCR產(chǎn)物表達(dá)量關(guān)系，篩選相對基因引物的最佳循環(huán)數(shù)。簡言之，將4 μg/μL cDNA，倍比逐步稀釋為2 μg/μL、1 μg/μL、0.5 μg/μL四種濃度，分別取0.2 μL相對應(yīng)濃度的cDNA為模板，以38個循環(huán)次數(shù)為起點逐步降低2個循環(huán)數(shù)，直至基因的 4種表達(dá)量也是倍比關(guān)系，循環(huán)數(shù)最多的即最佳循環(huán)數(shù)。然后以β-actin為內(nèi)參，按照其相應(yīng)退火溫度及最佳循環(huán)數(shù) (表1) 進行PCR，然后取5 μL樣品在 2%瓊脂糖凝膠上電泳檢測，紫外照相系統(tǒng)照相，并分析目的條帶的表達(dá)量。

2.3.4 生長曲線制作及群體倍增時間測定

將生長狀態(tài)良好的第 3代轉(zhuǎn)染的角膜緣干細(xì)胞，以100個/孔細(xì)胞接種于96孔板中，每代細(xì)胞接70個孔。從細(xì)胞培養(yǎng)第2天起，每24 h檢測5孔細(xì)胞，每個待測孔加5 mg/mL MTT液20 μL，繼續(xù)培養(yǎng)4 h，待藍(lán)紫色復(fù)合物形成后，吸棄培養(yǎng)液加150 μL DMSO振蕩10 min，藍(lán)色顆粒充分溶解后，于酶聯(lián)免疫檢測儀上測定490 nm、650 nm處每孔OD值，每天以未接種細(xì)胞孔為空白組。計算均值，共計8個時間點。以培養(yǎng)時間為橫軸，每日OD值的平均值為縱軸，繪制生長曲線，以同代未轉(zhuǎn)染細(xì)胞為對照。分別在潛伏期后和進入平臺期前的一段角膜緣干細(xì)胞生長曲線隨機取 1個點，并分別標(biāo)記對應(yīng)橫軸，縱軸上的時間點 (T0) 和OD值，然后在縱軸選定該OD值得2倍數(shù)值，并在曲線上選定對應(yīng)該值的點及相應(yīng)時間點 (Tt)。細(xì)胞群體倍增時間(h) = Tt?T0，共設(shè)4個重復(fù)。

2.4 熒光角膜上皮植片的構(gòu)建

2.4.1 羊膜支架的制備

常規(guī)制備和保存羊膜[19]。37℃解凍羊膜30 min，PBS反復(fù)沖洗。加入0.1% EDTA 37℃消化40 min后，用細(xì)胞刮刀刮去羊膜上皮細(xì)胞，PBS清洗數(shù)次。將處理后羊膜基底面向上平鋪于培養(yǎng)皿內(nèi)，準(zhǔn)備好的硝酸纖維素膜附于其上，然后翻轉(zhuǎn)，放入一新皿內(nèi)，細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育30~60 min，待用。

2.4.2 羊膜角膜上皮植片的構(gòu)建

將GLSC-V以1×106個細(xì)胞/mL的濃度，用微量吸管小心滴加到羊膜上皮基底膜上，37℃恒溫操作臺上靜置20 min后，加入少量角膜緣干細(xì)胞條件培養(yǎng)液，移入培養(yǎng)箱過夜。第 2天待細(xì)胞粘附于羊膜上開始增殖時，再補加適量培養(yǎng)液培養(yǎng)。隔日換液，培養(yǎng)至5~7 d，再降低培養(yǎng)液面[20]，氣液交界面繼續(xù)培養(yǎng)10~15 d，細(xì)胞呈復(fù)層生長，表面有細(xì)胞開始脫落時，停止培養(yǎng)。

2.5 熒光角膜上皮植片的相關(guān)檢測

2.5.1 生物學(xué)觀察

Leica倒置熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞的生長狀態(tài)及熒光表達(dá)情況。

2.5.2 組織結(jié)構(gòu)的觀察

將分層角膜上皮植片固定于 4%的多聚甲醛溶液中。石蠟包埋、連續(xù)切片、HE染色、封片后在光學(xué)顯微鏡進行組織結(jié)構(gòu)的觀察并照相。取正常角膜上皮作為對照。

表1 角膜緣干細(xì)胞標(biāo)記基因的相關(guān)信息Table 1 The information of corresponding genes of LSCs

2.5.3 免疫化學(xué)檢測

常規(guī)方法制作熒光角膜緣上皮組織的冰凍切片，以抗角膜緣干細(xì)胞P63的單克隆抗體對培養(yǎng)獲得的復(fù)合上皮組織進行免疫熒光染色，以不加一抗作為陰性對照。

3 結(jié)果

3.1 山羊角膜緣干細(xì)胞生長特性觀察

經(jīng)Collagen IV 20 min粘附原代山羊角膜緣干細(xì)胞貼壁后以圓形居多，48 h后細(xì)胞數(shù)量明顯增多，大約1周后形成大量的片狀克隆 (圖1A)，克隆團中的細(xì)胞以鋪路石樣的多角形細(xì)胞為主，細(xì)胞間界限分明，細(xì)胞核仁明顯且大，常為2~3個 (圖1B)。細(xì)胞融合連生形成致密細(xì)胞單層，如果不傳代連續(xù)培養(yǎng)，細(xì)胞可以聚集生長，形成類似于胚胎干細(xì)胞的細(xì)胞集落。

圖1 山羊角膜緣干細(xì)胞形態(tài)觀察Fig. 1 The morphology of GLSCs. (A) The GLSCs formed holoclone (50×). (B) The GLSCs developed the typical polygon shaped phenotype (200×).

3.2 熒光角膜緣干細(xì)胞株的篩選

轉(zhuǎn)染 venus的角膜緣干細(xì)胞經(jīng) G418最佳濃度(500 μg/mL) 培養(yǎng)液篩選4周。熒光顯微鏡下觀察，培養(yǎng)皿中有若干個帶有綠色熒光的細(xì)胞克隆。將陽性克隆株在無菌條件下挑取出來，擴增培養(yǎng)。在光鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)仍以多角形為主。熒光顯微鏡下觀察，熒光蛋白在整個細(xì)胞中都表達(dá) (圖2A，2B)。

3.3 熒光角膜緣干細(xì)胞株的生物學(xué)特性檢測

3.3.1 免疫熒光檢測

GLSC-V在熒光鏡下觀察表達(dá)綠色熒光 (圖3A，3B)。免疫熒光檢測GLSC-V細(xì)胞P63、Integrinβ1的表達(dá)情況。結(jié)果顯示，該細(xì)胞中 P63、Integrinβ1都呈陽性表達(dá)，其中P63主要在核內(nèi)表達(dá) (圖3C)，Integrin β1在胞質(zhì)內(nèi)表達(dá) (圖3D)。Hoechst 33342 染色細(xì)胞核呈藍(lán)色熒光 (圖3E，3F)。

圖2 轉(zhuǎn)染venus角膜緣干細(xì)胞熒光觀察Fig. 2 GLSC-V showed green fluorescence. (A) Light microscope image of GLSC-V (200×). (B) Fluorescent microscope image of GLSC-V (200×).

圖3 GLSC-V免疫熒光檢測Fig. 3 Immunofluorescent staining of GLSC-V. (A, B) GLSC-V showed green fluorescence (200×); (C) GLSC-V were identified by immunofluorescence using a cy3-conjugated antibody against P63 protein (Red); (D) GLSC-V were identified by immunofluorescence using a cy3-conjugated antibody against Integrinβ1 protein (Red); (E, F) GLSC-V were mounted with Hoechst 33342 to mark the nuclei of all cells (Blue).

3.3.2 相關(guān)基因半定量RT-PCR檢測

對第 6代 GLSC-V與 GLSCs進行半定量RT-PCR檢測。從電泳結(jié)果看 (圖4)，兩種細(xì)胞的內(nèi)參β-actin表達(dá)量一致。GLSC-V中p63及pcna表達(dá)較GLSCs略有上調(diào)，兩種細(xì)胞的k3、k12均未見表達(dá)，GLSC-V中的venus熒光基因表達(dá)，GLSCs細(xì)

胞無venus表達(dá)。

3.3.3 生長曲線繪制及群體倍增時間

觀察第4代GLSC-V與GLSCs生長曲線 (圖5)，前 3天，兩種細(xì)胞的細(xì)胞增殖差異不明顯；在第 5天時兩種細(xì)胞進入對數(shù)增長期，第 6天細(xì)胞增殖走勢緩慢；第 7天細(xì)胞開始衰退。GLSC-V群體倍增時間為 (18±0.5) h，GLSCs為 (19±0.5) h。

圖4 GLSC-V與GLSCs基因的半定量RT-PCR分析Fig. 4 Semiquantitative RT-PCR analysis of GLSC-V and GLSCs. Representative semiquantitative RT-PCR profles showing mRNA expression of p63 (440 bp), pcna (154 bp), k3 (145 bp), k12 (150 bp), venus (495 bp), β-actin (157 bp) by GLSCs and GLSC-V.

圖5 GLSC-V與GLSCs細(xì)胞生長曲線Fig. 5 Growth curves of GLSC-V and GLSCs.

3.4 熒光角膜上皮植片的檢測

3.4.1 生物學(xué)特征觀察

GLSC-V細(xì)胞接種20 min后就幾乎貼附于去上皮羊膜，細(xì)胞多呈圓柱樣，少有不規(guī)則多角形。4~5 d后細(xì)胞已匯合呈單層，熒光倒置顯微鏡下，幾乎所有細(xì)胞表達(dá)綠色熒光 (圖 6A，6B)，降低培養(yǎng)液平面后細(xì)胞逐漸分層。通過光鏡觀察最上層細(xì)胞體積變大，呈扁平狀。

圖6 GLSC-V在羊膜上匯合成片F(xiàn)ig. 6 The GLSC-V were confluent on denued AM. (A) Light microscope image of GLSC-V on denude AM (50×). (B) Fluorescent microscope image of GLSC-V on denude AM (50×).

3.4.2 組織結(jié)構(gòu)觀察

常規(guī)組織切片 HE染色顯示熒光角膜上皮復(fù)合組織共 5~6層細(xì)胞連續(xù)貼附于羊膜基底膜上 (圖7A)，正常角膜上皮細(xì)胞有5~10層左右 (圖7B)；兩種上皮組織的上表2~3層細(xì)胞體積較大且呈扁平狀(圖7黑色箭頭所指部分)；基底部細(xì)胞較為密集，而且有一小部分體積小且立方狀的細(xì)胞 (圖 7紅色箭頭所指部分)。

圖7 熒光角膜及正常角膜上皮組織觀察Fig. 7 Histological observation of artificial and normal corneal epithelium using HE staining. (A) Artificial fluorescent corneal epithelium (200×). (B) Normal corneal epithelium (200×). Note a few smaller and cuber shape of cells (red arrow) compared to other epithelial cells, the superficial epithelial cells (black arrow) were flattened and larger size shown in (A, B).

3.4.3 免疫化學(xué)檢測

將人工角膜在熒光倒置顯微鏡下觀察，可見綠色熒光標(biāo)記的細(xì)胞層 (圖8A)。P63免疫熒光檢測顯示角膜上皮植片中僅基底部最下一層致密細(xì)胞表達(dá)P63，其余細(xì)胞都不表達(dá)P63，這符合角膜緣干細(xì)胞位于角膜緣基底層的結(jié)構(gòu)特點 (圖 8B)。通過Hoechst 33342標(biāo)記角膜上皮細(xì)胞核顯示人工角膜上皮共有5~6層構(gòu)成 (圖8C)。

4 討論

圖8 熒光常角膜上皮免疫熒光檢測Fig. 8 Immunofluorescent staining of fluorescent corneal epithelium. (A) The artificial corneal epithelium showed green fluorescence. (B) The lowest basal cells of fluorescent corneal epithelium expressed P63 (Red). (C) The fluorescent corneal epithelium with pVenus were mounted with Hoechst 33342 to mark the nuclei of all cells (Blue).

隨著角膜緣干細(xì)胞研究報道日漸增多，LSC的定位、分離、培養(yǎng)問題已基本得到解決。目前，關(guān)于眼表疾病的基礎(chǔ)研究主要致力于LSC微環(huán)境調(diào)控其增殖、分化的機制及LSC移植受損機體后的細(xì)胞移行、黏附、增殖和分化能力的變化[8]。并且 LSC作為組織工程角膜上皮的種子細(xì)胞，為臨床眼科疾病用藥物篩選提供細(xì)胞模型為眼表面重建及各種眼表疾病的治療開辟廣闊的前景。

許多研究者通過使用釉基質(zhì)基因探針技術(shù)、特異性 DNA 探針技術(shù)、熒光原位雜交技術(shù)、限制性片段長度多態(tài)性分析和X、Y 染色體等方法追蹤供體細(xì)胞長期存活情況[21]。Henderson等用 DNA 指紋技術(shù)檢測 5位病人在進行異體角膜緣干細(xì)胞移植3~5年后供體來源干細(xì)胞的存活情況，結(jié)果發(fā)現(xiàn)在病人眼表檢測不到供體來源干細(xì)胞[22]。盡管使用分子手段檢測供體細(xì)胞具有簡便靈敏度高等優(yōu)點，但并不能實現(xiàn)供體角膜細(xì)胞的實時觀察及檢測。故本研究選用黃色熒光蛋白 Venus標(biāo)記角膜緣干細(xì)胞，長期追蹤供體細(xì)胞存在情況。相比 GFP、Venus產(chǎn)生的熒光更強，靈敏度更高，并且 Venus對 pH和Cl?有較強的耐受性，對細(xì)胞毒害作用小，在細(xì)胞中表達(dá)穩(wěn)定，其獨特的優(yōu)勢已成為細(xì)胞生物學(xué)示蹤劑研究中的重要工具[23]。

目前還沒有公認(rèn)的標(biāo)準(zhǔn)來確定某種蛋白或某些蛋白可以作為LSCs的標(biāo)志物。根據(jù)對比未分化細(xì)胞表達(dá)的標(biāo)志性因子研究看，認(rèn)為可作為角膜緣干細(xì)胞的陽性標(biāo)記物有：ABCG2、K19、Integrin-α9、Integrin-β1、P63、Vimentin等；角膜緣干細(xì)胞陰性標(biāo)記物有：K3、K12、Cx43、Involucrin、P-cadherin等[24]。經(jīng)免疫化學(xué)檢測，Venus熒光標(biāo)記的角膜緣干細(xì)胞P63、Integrin β1呈陽性表達(dá)，說明轉(zhuǎn)染細(xì)胞具有低分化能力。p63是抑癌基因家族成員之一，其對于表皮發(fā)育的再生性增殖起關(guān)鍵作用，是公認(rèn)的角膜緣干細(xì)胞的核轉(zhuǎn)錄因子[25-26]。pcna是評價細(xì)胞增殖狀態(tài)的指標(biāo)之一。GLSC-V與GLSCs半定量RT-PCR結(jié)果發(fā)現(xiàn)，GLSC-V中p63表達(dá)量是GLSCs的1.5倍，GLSC-V中pcna表達(dá)量是GLSCs的1.2倍。兩種細(xì)胞中 p63、pcna表達(dá)差異，可能是由于挑取選擇得到的綠色熒光陽性克隆來源于原始干細(xì)胞，故 GLSC-V的陽性標(biāo)記物表達(dá)量較 GLSCs更高。GLSC-V與GLSCs中k3及k12均無表達(dá)，說明GLSC-V并未分化，仍然維持干細(xì)胞活性。從第4代GLSC-V與GLSCs生長曲線趨勢圖來看 (圖5)，第4代GLSC-V前5天活力較GLSCs差，可能是由于脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染細(xì)胞后，脂質(zhì)體對細(xì)胞有一定的毒害作用，而且每次傳代后G418的篩選作用，也可能會影響細(xì)胞活力，隨著轉(zhuǎn)染細(xì)胞逐漸適應(yīng)，細(xì)胞活力趨于穩(wěn)定；并且GLSC-V與GLSCs的群體倍增時間無差異，說明轉(zhuǎn)染后細(xì)胞經(jīng)培養(yǎng)篩選穩(wěn)定后，增殖能力并未下降。

目前角膜緣干細(xì)胞移植的手術(shù)方式主要包括：自體角膜緣干細(xì)胞移植；異體角膜緣干細(xì)胞移植；體外培養(yǎng)自體角膜緣干細(xì)胞或異體角膜緣干細(xì)胞移植。角膜緣干細(xì)胞體外培養(yǎng)移植所需的角膜緣組織少，避免對健眼的傷害，并且經(jīng)體外培養(yǎng)角膜組織相容性抗原-DR (HLA-DR) 陽性朗格罕氏細(xì)胞減少，降低了同種異體角膜緣干細(xì)胞移植的免疫排斥[27]。體外培養(yǎng)和移植角膜緣上皮細(xì)胞首選載體就是人羊膜，羊膜具有低抗原性、促進上皮化、抑制炎癥和新生血管的形成、抑制成纖維化、減少瘢痕形成等優(yōu)點[28-29]，許多研究者通過使用羊膜治療眼表疾病。

本研究先將 Venus標(biāo)記角膜緣干細(xì)胞接種在去上皮羊膜上培養(yǎng)形成細(xì)胞單層，再進行氣液界面培養(yǎng)。角膜上皮細(xì)胞同皮膚表皮細(xì)胞相似，生理環(huán)境下暴露于空氣中，使用氣液界面對于上皮細(xì)胞的生長、分化起了極為重要的作用。角膜上皮細(xì)胞層由5~10層細(xì)胞構(gòu)成，位于無血管的透明結(jié)締組織表面。上皮細(xì)胞層自前向后可分為表層、中層、深層和基底膜，表層為多邊形鱗狀上皮細(xì)胞；中層為翼狀細(xì)胞層；深層即基底細(xì)胞層為單層的柱狀上皮細(xì)胞，角膜緣干細(xì)胞就位于上皮細(xì)胞基底層底部。對正常和熒光角膜上皮組織進行 HE病理染色發(fā)現(xiàn)，兩種上皮組織的上表2~3層細(xì)胞體積較大且呈扁平狀，是典型的分化角膜上皮細(xì)胞，隨著細(xì)胞層數(shù)增多，細(xì)胞數(shù)目增多，而且在基底部一小部分區(qū)域還可以觀察到體積小、立方狀的細(xì)胞，這種細(xì)胞形態(tài)與角膜緣干細(xì)胞形態(tài)一致。此外，經(jīng)免疫熒光檢測 P63結(jié)果發(fā)現(xiàn)，熒光人工角膜上皮組織中僅基底部最下一層致密細(xì)胞表達(dá) P63，這是符合角膜緣干細(xì)胞分布在上皮基底部最基層的特點。

綜上所述，本研究建立的山羊角膜緣干細(xì)胞熒光蛋白 (Venus) 細(xì)胞株仍具備正常角膜緣干細(xì)胞的生理特性，可作為組織工程化種子細(xì)胞；并且體外構(gòu)建的熒光角膜上皮具有與正常角膜上皮相似結(jié)構(gòu)特征，可用于角膜上皮移植實驗，為今后研究角膜緣干細(xì)胞移植修復(fù)機理提供重要的實驗材料。

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