李文香,郭會(huì)婧,郭 江,閆海燕,路子云,李建成,劉小霞,張青文
(1.河北北方學(xué)院農(nóng)林科技學(xué)院,河北張家口075000;2.河北省農(nóng)林科學(xué)院植物保護(hù)研究所,河北農(nóng)業(yè)有害生物綜合防治工程技術(shù)中心,河北保定071000;3.中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院昆蟲(chóng)系,北京100094)
中紅側(cè)溝繭蜂Microplitis mediator(Haliday)屬膜翅目,繭蜂科,小蜂繭蜂亞科,側(cè)溝繭蜂屬,廣泛分布于亞洲與歐洲[1,2].在我國(guó)河北、黑龍江、遼寧、內(nèi)蒙古、山東、山西、河南、陜西、新疆、江蘇等地均有分布[3].該蜂是一種寄主非常廣泛的內(nèi)寄生蜂,其寄主涉及到鱗翅目夜蛾科和尺蛾科40多種昆蟲(chóng)[4],其中包括棉鈴蟲(chóng) Helicover pa armigera(Noctuidae)、粘蟲(chóng)M ythimna separata(Walker)、甘藍(lán)夜蛾barathra brassicae等農(nóng)業(yè)上的重大害蟲(chóng)[5],是田間害蟲(chóng)生物控制的重要因子[6].目前,在明確該蜂生物學(xué)特性的基礎(chǔ)上,以粘蟲(chóng)為寄主在室內(nèi)已經(jīng)能夠大規(guī)模人工繁殖.中紅側(cè)溝繭蜂與寄主粘蟲(chóng)之間的生理調(diào)控關(guān)系,也一直是眾多學(xué)者關(guān)注、研究的熱點(diǎn)[7,8].但有關(guān)中紅側(cè)溝繭蜂滯育過(guò)程中各種生理指標(biāo)的含量變化卻至今未見(jiàn)報(bào)道,本文的研究為中紅側(cè)溝繭蜂滯育生理方面填補(bǔ)了空白.
寄主昆蟲(chóng)為粘蟲(chóng)Mythimna separate,3齡以下用新鮮玉米葉片飼養(yǎng),3齡以上用人工飼料飼養(yǎng),實(shí)驗(yàn)前已在本實(shí)驗(yàn)室繁殖飼養(yǎng)10代以上,本試驗(yàn)所用粘蟲(chóng)均為玉米葉飼養(yǎng).中紅側(cè)溝繭蜂采自河北省保定地區(qū)棉田,將被寄生的棉鈴蟲(chóng)采回室內(nèi)繼續(xù)用人工飼料飼養(yǎng),蜂羽化后,每天飼喂10%的蜂蜜水,然后在河北省植保所昆蟲(chóng)天敵實(shí)驗(yàn)室以粘蟲(chóng)為寄主進(jìn)行擴(kuò)繁10代以上.
寄生過(guò)程:挑選1齡末-2齡初的健壯粘蟲(chóng)幼蟲(chóng),放入接蜂箱 (40 cm×30 cm×25 cm)底部的新鮮玉米葉上,用羽化后交配24 h的中紅側(cè)溝繭蜂雌蜂進(jìn)行寄生接蜂,將浸有10%蜂蜜水的脫脂棉球掛在蜂箱的側(cè)面做為成蜂的食源.24 h后去除中紅側(cè)溝繭蜂,把粘蟲(chóng)分別轉(zhuǎn)入玻璃瓶?jī)?nèi)用新鮮玉米苗繼續(xù)飼養(yǎng).
滯育條件:16℃和光周期L:D=10∶14;非滯育條件:26℃和光周期L:D=14∶10.將被寄生寄主分別置于兩條件的光照培養(yǎng)箱中,環(huán)境設(shè)置溫度誤差±1℃,光照強(qiáng)度5 000-6 000Lx,相對(duì)濕度RH∶65%±5%.每個(gè)處理重復(fù)3次.
生理指標(biāo)的提取方法如下:準(zhǔn)備試管并貼好標(biāo)簽.試驗(yàn)將蟲(chóng)體 (60 mg)90℃加熱1 h.記錄蟲(chóng)體干重,放置試管A中.-80℃保存,待用.向每個(gè)樣品中加入100μl飽和的Na2SO4和200μl的甲醇.用玻璃棒將蟲(chóng)體研磨.用100μl的水沖洗.再用1 ml的甲醇∶氯仿=1∶1沖洗,液體全部進(jìn)入試管A中即為糖原.攪拌,2500 rpm/min,離心5 min.將上清液轉(zhuǎn)移至B1中.用1 ml的甲醇:氯仿=1∶1重復(fù)抽提A,上清液至B1.剩下的為A,將A置于冰中待用.
將B1中加入2.6 ml的氯仿,使液體體積達(dá)到5.0 ml,再加入0.5 ml的水,2 500 rpm/min,離心5 min.下層有機(jī)相轉(zhuǎn)移至B2中,水相留在B1.將B1也置于冰中待用.向B2中加入氯仿使體積至5.0 ml,再加入1.0 ml的水,攪拌后2 500 rpm/min,離心5 min.轉(zhuǎn)移下層有機(jī)相,先使有機(jī)相通過(guò)200 mg100網(wǎng)眼的硅膠,過(guò)濾至B3即為甘油三酯.再向硅膠中倒入8 ml的氯仿,每次1 ml.將B3低溫加熱氮?dú)?N2)吹干.將B1+B2,N2吹干.轉(zhuǎn)移水相,使之通過(guò)200 mg100網(wǎng)眼的硅膠,過(guò)濾至C1即為糖類(lèi).再向B1+B2中加入0.5 ml的水,使之再次過(guò)濾.
向試管A中加入1 ml66%的乙醇Na2SO4溶液.攪拌,2 500 rpm/min,離心5 min.上清液轉(zhuǎn)移至C即為海藻糖.記錄C的量.將試管A55℃加熱5 min.加入0.5 ml的30%的 KOH,攪拌,100℃加熱20 min.加入1 ml乙醇,攪拌,使液體再次分層.3 000 rpm/min,離心15 min.上清液轉(zhuǎn)移至D中即為蛋白質(zhì),用來(lái)測(cè)定蛋白質(zhì)含量.加入0.5 ml的水和1 ml乙醇.3 000 rpm/min,離心15 min.上清液也轉(zhuǎn)移至D中.再加入2.6 ml的氯仿.加入1 ml的水后,2 500 rpm/min,離心5 min.轉(zhuǎn)移下層液體至B3中.
糖類(lèi)物質(zhì)的測(cè)定采用硫酸蒽酮法.以葡萄糖作標(biāo)準(zhǔn)曲線.每個(gè)濃度值重復(fù)3次.
海藻糖的測(cè)定采用硫酸蒽酮法.以海藻糖作標(biāo)準(zhǔn)曲線.每個(gè)濃度值重復(fù)3次.
脂類(lèi)的測(cè)定采用香蘭素硫酸顯色法.以甘油三酸酯作標(biāo)準(zhǔn)曲線.每個(gè)濃度值重復(fù)3次.
蛋白的測(cè)定方法:溴酚藍(lán)顯色法.以牛血清蛋白作標(biāo)準(zhǔn)曲線.每個(gè)濃度值重復(fù)3次.
本論文用SPSS分析軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析.
從圖1可以看出,兩種條件下糖原的含量變化趨勢(shì)基本相同,糖原的濃度均是由低逐漸增加.滯育條件下蛹期濃度達(dá)到155.73μg/mg,非滯育條件下第6 d濃度最大為70.62μg/mg.除滯育條件下發(fā)育第16 d與非滯育條件下發(fā)育第6 d糖原濃度差異不顯著外,其它發(fā)育時(shí)期的糖原濃度均是顯著差異 (P<0.05):滯育條件下中紅側(cè)溝繭蜂體內(nèi)糖原含量一直顯著高于非滯育條件下的濃度.
從圖2可以看出,兩種條件下寄生蜂體內(nèi)海藻糖含量變化趨勢(shì)均出現(xiàn)逐漸增加的趨勢(shì),均在蛹期出現(xiàn)最高值.滯育條件下104.75μg/mg,非滯育條件下37.86μg/mg.兩種條件下中紅側(cè)溝繭蜂海藻糖含量從第16 d/6 d-蛹期濃度差異均顯著 (P<0.05).由圖可以看出,不同發(fā)育條件決定寄生蜂的發(fā)育速度,同時(shí)影響生理指標(biāo)含量.中紅側(cè)溝繭蜂滯育條件下發(fā)育慢但海藻糖含量增加快,非滯育條件正好相反.
圖1 滯育與非滯育條件中紅側(cè)溝繭蜂不同發(fā)育時(shí)間糖原含量比較
圖2 滯育與非滯育條件中紅側(cè)溝繭蜂不同發(fā)育時(shí)間海藻糖含量比較
從圖3可以看出,滯育繭冷藏過(guò)程中糖原含量變化總體趨勢(shì)為先增長(zhǎng)后逐漸降低.但糖原濃度一直保持較高水平.保存第10 d、20 d和蛹期的糖原含量無(wú)顯著差異;保存20~60 d的過(guò)程中也無(wú)顯著差異 (P>0.05).但10~20 d和蛹期與20~60 d的糖原濃度差異顯著 (P<0.05).海藻糖含量在滯育繭冷藏過(guò)程中前期呈逐漸增加趨勢(shì),后期即滯育即將結(jié)束時(shí)略有下降.在整個(gè)滯育過(guò)程中糖原含量一直處于較高水平,而海藻糖在滯育的中后期含量較高,滯育結(jié)束時(shí),也就是蛹期含量顯著下降.
由圖4可以看出,在整個(gè)發(fā)育過(guò)程中,除蛹期外,其他任何時(shí)期中紅側(cè)溝繭蜂的甘油三酯濃度在滯育條件下一直高于非滯育條件下,且差異均顯著.由此可見(jiàn):低溫和短光照可誘導(dǎo)中紅側(cè)溝繭蜂甘油三酯的含量增加,有利于向滯育的方向發(fā)展.但兩種條件下甘油三酯的含量變化趨勢(shì)大體一致,均在3齡期達(dá)到最大值,滯育條件下濃度為9.52μg/mg,非滯育條件下為6.83μg/mg.
圖3 中紅側(cè)溝繭蜂滯育過(guò)程中糖原和海藻含量比較
圖4 滯育與非滯育條件是紅側(cè)溝繭蜂不同發(fā)育時(shí)間甘油三酯含量比較
從圖5可以看出,甘油三酯的含量在中紅側(cè)溝繭蜂整個(gè)滯育過(guò)程中沒(méi)有明顯變化,且含量一直較少.儲(chǔ)存10~20 d的時(shí)候含量較少3.74-3.41μg/mg,后逐漸增多,存50 d時(shí)達(dá)到最大值7.34μg/mg,蛹期略有降低為5.03μg/mg.
由圖6可以看出,兩種條件下,中紅側(cè)溝繭蜂在發(fā)育過(guò)程中蛋白含量變化趨勢(shì)在前期大體相反,后期基本一致.在中紅側(cè)溝繭蜂進(jìn)入滯育之前,非滯育條件下蛋白質(zhì)含量較高-12 d/4d時(shí):13.89μg/mg;14 d/5d:14.74μg/mg.滯育條件下分別為5.53μg/mg、5.66μg/mg.二者差異顯著.
圖5 中紅側(cè)溝繭峰滯育過(guò)程甘油三酯含量比較
圖6 滯育與非滯育條件下中紅側(cè)溝繭蜂不同發(fā)育時(shí)間蛋白質(zhì)含量比較
由圖7可以看出,中紅側(cè)溝繭蜂在滯育過(guò)程中蛋白質(zhì)含量變化一直很平緩,數(shù)值無(wú)顯著差異,且含量一直較低.滯育繭冷藏第60 d時(shí)達(dá)到最大值為8.47μg/mg.蛹期含量最少為5.05μg/mg.
圖7 中紅側(cè)溝繭蜂滯育過(guò)程中蛋白含量變化
昆蟲(chóng)為了順利的越冬,一般可以通過(guò)越冬耐寒鍛煉提高其對(duì)低溫的耐受性.這種低溫鍛煉過(guò)程是通過(guò)抗凍保護(hù)性物質(zhì)在體內(nèi)的累積來(lái)靈活地調(diào)節(jié)蟲(chóng)體的過(guò)冷卻點(diǎn)、體內(nèi)降溫速度等來(lái)達(dá)到安全越冬的目的[9-11].抗凍保護(hù)性物質(zhì)如糖原、甘油、海藻糖、山梨醇和肌醇等.
本研究表明:中紅側(cè)溝繭蜂滯育條件下的糖原和海藻糖含量均高于非滯育條件下濃度,表明中紅側(cè)溝繭蜂進(jìn)入滯育時(shí)糖原和海藻糖是主要的累積物質(zhì),為其向滯育方向發(fā)展奠定了物質(zhì)基礎(chǔ).在滯育過(guò)程中,糖原的含量從進(jìn)入滯育狀態(tài)到滯育解除 (蛹期)一直處于較高水平;而海藻糖滯育的前期10-30 d時(shí)含量較少,后期逐漸增加,滯育解除時(shí)又降低.此結(jié)果顯示:糖原在整個(gè)滯育過(guò)程中起主導(dǎo)作用,海藻糖在滯育后期起一定作用.同樣以糖原或海藻糖為主進(jìn)入滯育的昆蟲(chóng)有:柞蠶Antheraea pernyi,其滯育蛹的血淋巴中所含糖類(lèi)為海藻糖和葡萄糖[12];麥紅吸漿蟲(chóng)在土中滯育的絕大部分時(shí)間,海藻糖含量一直維持在一個(gè)較高的水平[13];斑蛾 Zygaena trif olii,其滯育幼蟲(chóng)糖原含量是非滯育幼蟲(chóng)的兩倍多,糖原是其進(jìn)入滯育后最重要的能源[14].早在1982年Hayakawa和Chino就已經(jīng)提出滯育昆蟲(chóng)的糖醇積累型至少可分為兩種類(lèi)型:一類(lèi)為糖原積累型;另一類(lèi)為海藻糖積累型.由本試驗(yàn)結(jié)果可以看出:中紅側(cè)溝繭蜂屬于糖原積累型昆蟲(chóng).海藻糖在滯育后期雖出現(xiàn)上升趨勢(shì),但其生理功能目前尚未清楚,有待于進(jìn)一步研究[15].
有些越冬昆蟲(chóng)通常也利用甘油,山梨醇等來(lái)降低過(guò)冷卻點(diǎn),提高抗寒能力.許多昆蟲(chóng)在進(jìn)入滯育前或中均調(diào)節(jié)血淋巴中甘油三酯的含量,以保證血淋巴不被凍結(jié)[16,17].可以看出,昆蟲(chóng)的滯育與甘油三酯的含量有著密切關(guān)系[18,19],其中溫度和光周期的變化是甘油三酯增多或減少的主要影響因子[17,20].中紅側(cè)溝繭蜂在滯育過(guò)程中甘油三酯的含量一直高于非滯育條件下的含量,對(duì)其度過(guò)寒冷的冬季打下良好基礎(chǔ).可見(jiàn)滯育條件-低溫和短光照對(duì)中紅側(cè)溝繭蜂滯育前甘油三酯的積累有重要影響.在整個(gè)滯育過(guò)程中,滯育前期10-20 d時(shí)含量較低,中期30-60 d時(shí)含量較高,滯育結(jié)束-蛹期時(shí)含量又降低.此結(jié)果與仵鈞祥[13]報(bào)道的小麥吸漿蟲(chóng) (Sitodiplosis mosellana Gehin)滯育時(shí)甘油三酯的變化一致.
在滯育過(guò)程中,中紅側(cè)溝繭蜂的蛋白質(zhì)含量一直較低,且不同階段并無(wú)顯著差異.在滯育后期蛋白質(zhì)含量略高于非滯育條件下含量.這與趙章武等人研究結(jié)果一致即非滯育昆蟲(chóng)脂肪體或血淋巴中的可溶性蛋白質(zhì)含量低于滯育昆蟲(chóng)脂肪體或血淋巴中的可溶性蛋白質(zhì)含量[21].
在中紅側(cè)溝繭蜂整個(gè)滯育發(fā)育及滯育過(guò)程中,比較幾種生理指標(biāo)數(shù)值,糖原含量一直高于海藻糖、甘油三酯、蛋白質(zhì)的含量,故此研究結(jié)果表明中紅側(cè)溝繭蜂滯育時(shí)的主要抗寒物質(zhì)是糖原.
[1] Tobias VI.Brakonidy kavkaza(Hemenoptera:braconidae)[M].Nauka:Leningrad,1976:287
[2] Said M K,Mustafaǒ.Biology of Microplitis mediator(Hym:Braconidae)a gregarious endoparasite of Agrotis Segetum(Lep:Noctuidae)[J].Bio Control,1988,33(02):211-217
[3] 何俊華,王德安.中紅側(cè)溝繭科新記錄種:中紅側(cè)溝繭蜂 [J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),1992,7(03):123
[4] Shenefelt RD.Part 9.Braconidae;5.Macrogasterinae and Ichneutinae[A]Vecht J,Shenefelt RD.Hymenopterum catalogus nova edito[C].WJunk,Gravenhage:The Netherlands,1973:750-751.
[5] Arthur AP,Mason PG.Life history and immature stages of the parasitoid Microplitis mediator(Hymenoptera:Braconidae),reared on the bertha armyworm Mamestra configurata(Lepidoptera:Noctuidea)[J].Can Entom,1986,118(05):487-491
[6] 王德安,南留柱,孫洗,等.棉鈴蟲(chóng)低齡幼蟲(chóng)寄生蜂-側(cè)溝繭蜂生物學(xué)研究 [J].昆蟲(chóng)天敵,1984,6(04):211-216
[7] Vinson SB,Pennacchio F,Lanzrein B.Interactions between parasitoids and their hosts an introduction and perspective[J].J Insect Physiol,1998,44:701-702
[8] Blumberg D,Navon A,Goldenberg S,et al.Interactions among Helicoverpa armigera(Lepidoptera:Noctuidae),its larval endoparasitoid Microplitis croceipes(Hymenoptera:Braconidae),and Bacillus thuringiensis[J].J Econom Entom,1997,90(05):1181-1186
[9] Salt RW.Role of glycerol in the cold-harding of Bracon cephi(Gahan)[J].Can J Zool,1959,37:59-69
[10] Zachariassen KE.The mechanism of the cryo-protective effect of glycerol in beetles tolerant to freezing[J].J Insect Physiol,1979,25(01):29-32
[11] Liu HX,Li G,Wu WJ.Entomological Biochemical[M].Xi’an :Science and Technology Press of Shanxi,1998 :263
[12] Lu MX.Effect of temperature and p hotoperiod on dynamics of carbohydrate contents in haemolymph and fatty body of pupa of Antheraea pernyi[J].Acta Entomol Sinic,1992,35(01):1-7
[13] 仵均祥,袁峰,蘇麗.麥紅吸漿蟲(chóng)幼蟲(chóng)滯育期間糖類(lèi)物質(zhì)變化 [J].昆蟲(chóng)學(xué)報(bào),2004,47(02):178-183
[14] Wipking W,Viebahn M,Neumann D.Oxygen consumption,water,lipid and glycogen content of early and late diapause and non-diapause larvae of the burnet moth Zygaena trifolii[J].J Insect Physiol,1995,41(01):47-56
[15] Hayakawa Y.Growth-blocking peptide:an insect biogenic peptide that prevents the onset of metamorphosis[J].J Insect Physiol,1982,41:1-6
[16] Asahina E.Freezing and frost resistance in insects[A].Meryman HT.Crybiology[C].New York:Academic press 1966,6(05):425-482
[17] Asahina E.Frost resistance in insects[J].Adv Insect Physiol,1969,6:1-50
[18] Wyatt GR.The biochemistry of sugars and polysaccharides in insects[J].Adv Insect Physiol,1967,4:287-360
[19] Mansingh A.Studies on insect dormancy.Ⅱ.Relationship of cold-hardiness to diapause and quiescence in the Eastern tent caterpillar,Malacosoma americanum(Fab.),(Lasiocamnidae:Lepidoptera)[J].Can J Zool,1974,52:629-637
[20] Danks HV.Insect Dormancy:an Ecological Perspective[J].Bio Survey Can(Terrestrial Arthropods),Ottawa,1987,336-339
[21] 趙章武,黃永平.昆蟲(chóng)滯育關(guān)聯(lián)蛋白的研究進(jìn)展 [J].昆蟲(chóng)知識(shí),1996,33(03):187-191
河北北方學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版)2010年2期