摘 要:為了探討棘孢木霉(Trichoderma asperellum)對蘋果幼苗生長、葉片光合參數(shù)和抗氧化系統(tǒng)的影響,設(shè)計了組培苗和盆栽苗兩大試驗系列。結(jié)果表明,棘孢木霉在蘋果根際具有較強的定殖能力,并且能夠顯著促進(jìn)組培苗根系的生長。具體來說,接種后的幼苗根部定殖率高達(dá)9×103CFU/克,根表面積、根長、根體積及投影面積均呈現(xiàn)出顯著的增長趨勢。在盆栽苗設(shè)計試驗中也觀察到了棘孢木霉對蘋果幼苗生長的促進(jìn)作用。與對照組相比,接種后的幼苗在株高、葉片光合作用及抗氧化酶系統(tǒng)方面均表現(xiàn)出明顯的優(yōu)勢。在幼苗生長的40~50天時,生長速度達(dá)到了峰值,相較于對照組,增長率分別為27.97%和32.86%。此外,經(jīng)棘孢木霉誘導(dǎo)的蘋果苗在葉片光合作用方面也展現(xiàn)出優(yōu)異的表現(xiàn),包括光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)、蒸騰速率(Tr)及葉綠素含量(Chi)的顯著提升。同時,過氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)和過氧化氫酶(CAT)的活性也明顯增強,而胞間CO2濃度及丙二醛(MDA)含量則顯著降低。
關(guān)鍵詞:棘孢木霉;蘋果;葉片;光合作用;抗氧化系統(tǒng)
目前,化學(xué)肥料和農(nóng)藥對保障糧食、果蔬高產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)起到不可替代的作用。它們的過度使用已經(jīng)對生態(tài)環(huán)境造成了嚴(yán)重的污染和破壞,同時也對食品安全和食品貿(mào)易產(chǎn)生了不良影響。研究表明,微生物農(nóng)藥和微生物肥料具有可持續(xù)性及與環(huán)境相容性的特點,有望成為化學(xué)藥劑的潛在替代品。近年來,越來越多的學(xué)者致力于研究木霉對植物的促生機(jī)制。
對植物起促生作用的有益微生物種類多樣,包括鏈霉菌屬(Streptomyces)、根瘤菌屬(Rhizobium)等。木霉屬(Trichoderma)真菌,具有高效性和廣譜性的抑菌功能并且能促進(jìn)植物生長[1-3],廣泛存在于土壤中。21世紀(jì)前大多研究都注重在木霉生物防治方面,對其促生機(jī)制研究甚少[4-6]。近年來,越來越多的研究表明,木霉菌可以穩(wěn)定地定殖在植物的根部,并通過改良土壤、引起植物新陳代謝的變化、分泌植物生長激素、抑制病原菌生長、誘導(dǎo)植物抗性、提高養(yǎng)分利用率等方式促生[7]。接種哈茨木霉菌可以有效促進(jìn)番茄幼苗生長并提高產(chǎn)量[8],而鉤狀木霉菌則對辣椒疫病具有生物防治作用[9]。此外,當(dāng)植株面臨非生物脅迫時,木霉的誘導(dǎo)作用可以顯著降低植株中的活性氧水平,從而提高其對逆境的抵抗力。例如,在玉米接種綠色木霉和哈茨木霉后,鹽和干旱對玉米的傷害得到了有效緩解[10-11]。
雖然目前關(guān)于木霉對作物生長發(fā)育及抗逆性的影響已有研究報道,但受試物種主要集中在番茄、小麥、玉米和水稻等禾本科植物上,而關(guān)于木霉對木本植物蘋果生長發(fā)育影響的研究較少。鑒于此,筆者在本試驗中以蘋果幼苗為試材,評價菌株ACCC30536對幼苗生長、葉片光合參數(shù)、葉綠素含量以及抗氧化酶活性等生理指標(biāo)的影響,以期為木霉開發(fā)成為新型生物農(nóng)藥提供一定的理論和科學(xué)依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料與儀器
1.1.1 供試菌株 棘孢木霉 ACCC30536菌株購買自泰斯拓生物。
1.1.2 供試植物 嘎拉蘋果組培苗,培養(yǎng)于魯東大學(xué)農(nóng)學(xué)院農(nóng)林作物抗逆育種實驗室,設(shè)置室內(nèi)溫度 24 ℃,光/暗周期 14小時/10 小時。
1.1.3 試劑與培養(yǎng)基 馬鈴薯葡萄糖瓊脂 (PDA) 培養(yǎng)基(表1)。
1.1.4 主要儀器
紫外可見分光光度計 TU-1810 (北京普析通用儀器有限責(zé)任公司);ME104E1/1000 電子天平 (賽多利斯科學(xué)儀器有限公司);SW-CJ-1BU 型潔凈工作臺 (蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司);ZQZY-CF 型振蕩培養(yǎng)箱 (上海知楚儀器有限公司)、DHT-450A 高溫鼓風(fēng)干燥箱(上海島韓實業(yè)有限公司)。
1.2 試驗方法
1.2.1 棘孢木霉孢子懸浮液制備 將棘孢木霉在PDA平板上28 ℃生長7天,將10毫升無菌水加入培養(yǎng)皿中,將培養(yǎng)皿中的孢子刮下。將孢子懸浮液轉(zhuǎn)移至30個直徑為30毫米玻璃珠的無菌錐形瓶(150毫升)中,用封口膜封口,將其放入恒溫振蕩器,最后制成木霉孢子懸浮液,用血球計數(shù)板測定孢子濃度,將其調(diào)整為1×105CFU/毫升,備用。
1.2.2 蘋果組培苗處理 將生根30~40天的蘋果苗在超凈工作臺中移栽至裝有滅菌苔蘚組培瓶中,放在植物組培室生長5天,然后將制作好的棘孢木霉孢子懸浮液接種至苔蘚組培瓶中。
1.2.3 蘋果組培苗根部定殖的測定 取接菌后的蘋果苗根部于 FAA 透明液中固定 1 分鐘,制作臨時裝片,于顯微鏡下觀察蘋果苗根部菌絲定殖情況。采用菌落計數(shù)法統(tǒng)計棘孢木霉菌定殖數(shù)量。在超凈工作臺內(nèi)取出接菌后的蘋果苗,將根部苔蘚清理干凈,利用研缽將蘋果根部研磨破碎,梯度稀釋后涂在PDA 培養(yǎng)基中,統(tǒng)計定殖數(shù)量。
1.2.4 蘋果盆栽苗處理 將生根30~40天的蘋果苗移栽至蛭石與營養(yǎng)土混合(體積比1∶1)的營養(yǎng)缽中(7厘米×7 厘米),之后緩苗1周,選取大小一致的蘋果苗分為2組??瞻讓φ战M(CK)用無菌水、處理組(T)用1×105CFU/毫升的棘孢木霉孢子懸浮液對蘋果苗進(jìn)行澆灌處理。
1.2.5 蘋果苗形態(tài)指標(biāo)測定 處理45天后,將生長在苔蘚組培瓶中蘋果植株取出,去除附著在根系上的苔蘚,從根莖處剪斷,用純水清洗根系3~4遍,放入掃描盒后鋪平,使用SNAPSCAN310掃描儀掃描拍照,用Win RHIZO根系掃描儀對掃描后的圖像進(jìn)行分析。
處理60天后,每組隨機(jī)選取5棵蘋果幼苗,用米尺測定株高;取整株植物于電子天平稱鮮質(zhì)量。
1.2.6 蘋果苗光合參數(shù)及葉綠素含量測定 在09:00—11:00用 LI-6400光合測定儀測定植株功能葉的光合參數(shù)。葉綠素含量采用紫外分光光度法測定[12]。
1.2.7 蘋果苗抗氧化酶活性測定 在不同處理植株上取相同部位成熟葉片,每個處理3次重復(fù),用純水洗干凈且吸干水分,將葉片剪碎,用電子天平稱0.1克葉片,加入1毫升磷酸緩沖液(pH 7.5),進(jìn)行冰浴勻漿。8000 g4 ℃離心10分鐘,取上清液,至冰上待測。
超氧化物歧化酶(SOD)活性測定:反應(yīng)混合物含有 100毫摩爾/升 磷酸鹽緩沖液(pH 7.8),75毫摩爾/升核黃素,2毫摩爾/升NBT,3毫摩爾/升 EDTA,200毫摩爾/升蛋氨酸和 50毫升酶提取物,在光照下在 25 ℃下開始光還原反應(yīng) 15分鐘后再暗反應(yīng)一段時間,在560納米下測量SOD的活性。
過氧化氫酶(CAT)活性測定:2.5毫升總反應(yīng)混合物包含 100毫摩爾/升磷酸緩沖液 (pH 7)和 100微升20 毫摩爾/升H2O2。通過添加酶提取物開始反應(yīng),3 分鐘內(nèi)在 240納米下監(jiān)測 H2O2 含量的減少。
過氧化物酶(POD)活性測定:取 2 只光徑 1厘米比色杯,1 只加入反應(yīng)物(100毫摩爾磷酸緩沖溶液50毫升,加入愈創(chuàng)木酚 28微升和 30%H2O219微升混合均勻)3毫升,磷酸氫鉀溶液 1毫升作為參比液;在另一只比色管中加入反應(yīng)混合物 3毫升,酶液提取物 1毫升,立即放入紫外分光光度計TU-1810 (北京普析通用儀器有限責(zé)任公司)中,470納米下測定光密度值,用愈創(chuàng)木酚氧化引起吸收度的增加來測量酶活性。使用牛血清白蛋白作為標(biāo)準(zhǔn)測量蛋白質(zhì)濃度[13]。
丙二醛含量測定:將稱取剪碎的葉片0.1克,用5毫升10%TCA和少量石英砂研磨,10 000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘,取提取液2毫升(對照加2毫升蒸餾水),加入2毫升0.6%TBA溶液,混勻物于沸水浴上反應(yīng)15分鐘,迅速冷卻后3000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘,取上清液于分光光度計450、532、600納米處測量吸光度值[13],計算公式:丙二醛含量=6.54×(OD532-OD600)-0.56×OD450。
1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析
運用 Excel 整理數(shù)據(jù),進(jìn)行平均值和標(biāo)準(zhǔn)差的計算;用 Sigma Plot 10 軟件對數(shù)據(jù)繪圖,數(shù)據(jù)取平均值 ±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3,3 個生物學(xué)重復(fù))。
2 結(jié)果與分析
2.1 接種棘孢木霉對組培苗生長的影響
經(jīng)棘孢木霉誘導(dǎo)后,蘋果組培苗的生長受到了顯著影響。在接種初期,地上部和地下部的生長保持一致。隨著時間的推移,特別是在接種后的第45天,地下部展現(xiàn)出了明顯的生長促進(jìn)作用,而地上部的變化相對較?。ㄈ鐖D1-A所示)。對根部進(jìn)行進(jìn)一步掃描分析,結(jié)果顯示,幼苗的根表面積、根長、根體積和投影面積均顯著提高,與對照相比,分別增加了60.54%、63.48%、57.73%和60.54%(如圖1-B所示)。這些差異極為顯著,表明蘋果苗與棘孢木霉之間存在一種有益的相互作用,這種作用有效地促進(jìn)了蘋果幼苗地上部和地下部的協(xié)同生長。
2.2 接種棘孢木霉對組培苗根部定殖的影響
接種棘孢木霉后,其在組培苗根部的定殖情況如圖2所示。圖2-A為對照組,只有少量側(cè)根;圖2-B為試驗組,經(jīng)棘孢木霉誘導(dǎo)后的蘋果幼苗根部被菌絲緊密纏繞;圖2-C顯示棘孢木霉在根部的定殖率為9×103CFU/克。
2.3 接種棘孢木霉對盆栽苗生長的影響
經(jīng)過棘孢木霉的誘導(dǎo)處理后,蘋果苗株高呈現(xiàn)出了穩(wěn)定的增長趨勢。在生長初期的前30天內(nèi),蘋果苗的生長速度相對較慢;但在接下來的30~50天階段,其生長速度顯著提升,特別是在誘導(dǎo)后的第40天和第50天,蘋果苗的高度分別顯著增加了27.97%和32.86%。經(jīng)過為期60天的生長后,試驗組蘋果植株的高度均明顯高于對照組。與對照組相比,經(jīng)過棘孢木霉的誘導(dǎo)處理的試驗組蘋果植株的鮮質(zhì)量增加了39.99%,進(jìn)一步證實了棘孢木霉對蘋果植株生長的積極促進(jìn)作用(如圖3所示)。
2.4 接種棘孢木霉對盆栽苗光合參數(shù)的影響
經(jīng)過棘孢木霉的誘導(dǎo)后,蘋果葉片的光合參數(shù)呈現(xiàn)出顯著高于對照組的趨勢。其中,凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)和蒸騰速率(Tr)分別比對照組提高了23.8%、28.2%和39.34%。而細(xì)胞間CO2濃度(Ci)比對照組降低了8.49%。另外,葉綠素含量比對照組增加了22.76%。這些結(jié)果表明,棘孢木霉對蘋果葉片的光合作用有著積極的促進(jìn)作用(圖4)。
2.5 接種棘孢木霉對盆栽苗抗氧化系統(tǒng)的影響
經(jīng)過棘孢木霉的誘導(dǎo)處理后,蘋果葉片中的過氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)和過氧化氫酶(CAT)的活性均顯著提高,同時丙二醛(MDA)含量則有所降低。與對照組相比,接種了棘孢木霉的蘋果幼苗POD、SOD和CAT的活性分別提高了1.96%、42.22%和12.58%,MDA含量降低了17.87%。綜合來看,棘孢木霉對蘋果葉片的酶活性產(chǎn)生了顯著影響(圖5)。
3 討 論
定殖是衡量微生物與植物互作的重要標(biāo)志[14]。當(dāng)微生物定殖于植物根際時,可以為植物提供水和氮、磷等礦物元素,而植物為微生物提供營養(yǎng)物質(zhì),如氨基酸、碳水化合物和有機(jī)酸等。研究表明,木霉菌在鹽脅迫下促進(jìn)了氮素的獲取和光合參數(shù)的改善,從而促進(jìn)了枸杞的生長[15];棘孢木霉M45a定殖于水稻根系組織,株高、地上部干質(zhì)量、根際土壤總氮含量和硝態(tài)氮含量顯著增加[16]。本研究中將棘孢木霉與蘋果組培苗共培養(yǎng),定殖于根部并顯著促進(jìn)了植株生長,說明其與根系發(fā)生了有益的相互作用。
一系列研究表明,木霉定殖能顯著促進(jìn)植物光合作用。例如,當(dāng)植物的根部與木霉菌發(fā)生互作時,會導(dǎo)致基因和色素的上調(diào),從而提高植物的光合作用效率[17]。Shoresh等[18-19]通過蛋白質(zhì)組學(xué)的方法深入研究了玉米與木霉之間的互作,他們發(fā)現(xiàn),木霉可以上調(diào)參與碳水化合物代謝、光合作用和應(yīng)激過程相關(guān)的蛋白質(zhì)的表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)玉米植株的生長。本研究結(jié)果表明,棘孢木霉侵染根系后,顯著促進(jìn)蘋果光合作用、增加蘋果葉片葉綠素含量。這暗示著,棘孢木霉可能通過提高蘋果葉綠素含量,使葉片更有效地吸收光能,并將其轉(zhuǎn)化為碳水化合物,從而促進(jìn)植物的生長和發(fā)育。
本研究結(jié)果表明,菌株還影響了蘋果幼苗的其他代謝活性。菌株提高了過氧化氫酶(CAT)和過氧化物酶(POD)的活性,降低了丙二醛(MDA)含量。POD和SOD可以參與清除細(xì)胞中的活性氧、防止細(xì)胞過氧化,在保持細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)完整、增強植物抗逆性、延緩植株衰老等方面具有重要作用[20]。MDA含量是膜脂質(zhì)過氧化的指標(biāo),指示植物的衰老程度。本研究中POD、SOD活性增強和MDA含量降低,表明木霉能夠有效提高蘋果的防御酶活性,降低脂質(zhì)過氧化水平,因此具有較大的生防潛力。
參考文獻(xiàn)
[1] HARMAN G E, HOWELl C R, VITERBO A, et al. Trichoderma species-opportunistic, avirulent plant symbionts[J]. Nature Reviews Microbiology, 2004, 2 (1) : 43-56.
[2] GHAZANFAR M U, RAZA M, RAZA W, et al. Trichoderma as potential biocontrolagent,its exploitation in agriculture: A review[J]. Plant Protection, 2018, 2 (3) : 109-135.
[3] OLOWE O M, NICOLA L, ASEMOLOYE M D, et al. Trichoderma: Potential bio-resource for the management of tomato root rot diseases in Africa[J].Microbiological Research, 2022, 257 : 126978.
[4] HARMAN G E. Trichoderma-not just for biocontrol anymore[J]. Phytoparasitica, 2011, 39 (2) : 103-108.
[5] HERMOSA R, RUBIO M B, CARDOZA R E, et al. The contribution of Trichoderma to balancing the costs of plant growth and defense[J]. International Microbiology the Official Journal of the Spanish Society for Microbiology, 2013, 16 (2) : 69-80.
[6] MAHATO S, BHUJU S, SHRESTHA J. Effect of Trichoderma viride as biofertilizeron growth and yield of wheat[J]. Malaysian Journal of Sustainable Agriculture, 2018, 2 : 1-5.
[7] 趙 欣,王怡霏,王嘉嘉,等. 木霉菌對作物及土壤生態(tài)環(huán)境的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報,2023,25(11):166-172.
[8] 孫 錦. 生物基質(zhì)應(yīng)用研究進(jìn)展與前景[J]. 寒旱農(nóng)業(yè)科學(xué),2023,2(11):981-98.
[9] 趙興麗,陶 剛,婁 璇,等.鉤狀木霉在辣椒根際定殖動態(tài)及其對辣椒疫病的生物防治[J]. 中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報,2020,22(5):106-114.
[10] 付 健,王玉鳳,張翼飛,等. 不同木霉菌對寒地鹽堿土壤玉米雜交種光合特性及活性氧代謝的影響[J]. 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報,2021,33(1):7-14.
[11] 鄧 薇,張祖銜,曹宇航,等. 綠色木霉緩解干旱脅迫對玉米幼苗根系生長的影響[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2022,54(2):40-45.
[12] 張以順,黃 霞,陳云鳳. 植物生理學(xué)實驗教程[M]. 北京:高等教育出版社,2009.
[13] CHEN, Y J, WAN S, ZHOU J, et al. Leaf chlorophyll fluorescence, hyperspectral reflectance, pigments content, malondialdehyde and proline accumulation responses of castor bean (Ricinus communis L.) seedlings to salt stress levels[J]. Industrial Crops and Products, 2010, 31 (1) : 13-19.
[14] 李紀(jì)順,陳 凱,李 玲,等. 木霉融合子Tpf-2的定殖及其對番茄防御酶系的影響[J]. 植物保護(hù),2018,44(4):65-69
[15] YAN K, ZHU M, SU H, et al. Trichoderma asperellum boosts nitrogen accumulation and photosynthetic capacity of wolfberry (Lycium chinense) under saline soil stress[J]. Tree Physiology, 2024, 44 (1), tpad148.
[16] 張 屹,何 英,肖姬玲,等. 棘孢木霉M45a的定殖能力及其對水稻促生作用研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2021,48(2):261-265.
[17] HARMAN G E, DONI F, KHADKA R B, et al. Endophytic strains of Trichoderma increase plants' photosynthetic capability[J]. Journal of Applied Microbiology[J]. 2021, 130 (2) : 529-546.
[18] SHORESH M, HARMAN G E. The molecular basis of shoot responses of maize seedlings to Trichoderma harzianum T22 inoculation of the root: A proteomic approach[J]. Plant Physiology. 2008, 147 (4): 2147-2163.
[19] SHORESH M, HARMAN G E. The relationship between increased growth and resistance induced in plants by root colonizing microbes[J]. Plant Signaling & Behavior,2008, 3 (9) : 737-739.
[20] 沈 菲. 不同品牌哈茨木霉及施用方式對青菜的促生作用[D]. 杭州:浙江農(nóng)林大學(xué),2023.