殷小冬 賈艷艷 李其勝 徐莉 焦加國(guó) 李青 楊文飛 杜小鳳 顧大路
殷小冬,賈艷艷,李其勝,等. 叢枝菌根真菌和解磷細(xì)菌復(fù)合接種對(duì)水稻叢枝菌根真菌侵染率和肥料利用率的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2023,39(8):1680-1687.
doi:10.3969/j.issn.1000-4440.2023.08.007
收稿日期:2023-06-06
基金項(xiàng)目:江蘇現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)單項(xiàng)技術(shù)研發(fā)項(xiàng)目[CX(22)3127];淮安市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院科研發(fā)展基金項(xiàng)目(HNY202130);淮安市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院高層次引進(jìn)人才科研啟動(dòng)發(fā)展基金項(xiàng)目(002201901413);淮安市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院科研發(fā)展基金項(xiàng)目(HNY202028);江蘇省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(BK20200264)
作者簡(jiǎn)介:殷小冬(1996-),男,安徽合肥人,碩士,研究實(shí)習(xí)員,主要從事微生物肥料研發(fā)。(E-mail)1553015412@qq.com
通訊作者:顧大路,(E-mail)gudalu666@aliyun.com
摘要:為探究叢枝菌根真菌和解磷細(xì)菌復(fù)合接種對(duì)水稻肥料利用率的影響,本研究以金粳818為試驗(yàn)材料,以接種滅活復(fù)合菌劑為對(duì)照,分析2種叢枝菌根真菌[異形根孢囊霉(Rhizophagus irregularis,RI)和摩西管柄囊霉(Funneliformis mosseae,F(xiàn)M)]和3種解磷細(xì)菌[芽孢桿菌屬細(xì)菌(Bacillus sp.,R1-3)、巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium,BM)、耐鹽節(jié)桿菌(Arthrobacter pascens,AP)]單接種和兩兩組合接種對(duì)水稻叢枝菌根真菌侵染率和肥料利用率的影響。結(jié)果表明,與單接種叢枝菌根真菌處理相比,加入解磷細(xì)菌后大部分處理的水稻菌根侵染率降低,其中FM+BM處理的叢枝菌根真菌侵染率下降至7.54%,顯著低于單接種叢枝菌根真菌處理。相較于對(duì)照和單接種叢枝菌根真菌或解磷細(xì)菌處理,復(fù)合接種處理在水稻生殖生長(zhǎng)期末整體上提高了氮肥、鉀肥利用率,其中FM+BM處理與對(duì)照相比分別提高了19.55個(gè)百分點(diǎn)、20.47個(gè)百分點(diǎn)。叢枝菌根真菌和解磷細(xì)菌復(fù)合接種有利于提高水稻生殖生長(zhǎng)期末氮肥利用率和鉀肥利用率,其中FM+BM為最優(yōu)組合。
關(guān)鍵詞:叢枝菌根真菌;解磷細(xì)菌;水稻;肥料利用率;侵染率
中圖分類號(hào):S144.1????? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A????? 文章編號(hào):1000-4440(2023)08-1680-08
Effects of combined inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi and phosphate-solubilizing bacteria on colonization rate and fertilizer use efficiency in rice
YIN Xiao-dong1 JIA Yan-yan1 LI Qi-sheng1 XU Li2 JIAO Jia-guo2 LI Qing1 YANG Wen-fei1 DU Xiao-feng1 GU Da-lu1
(1.Huaiyin Institute of Agricultural Sciences of the Xuhuai District of Jiangsu Province, Huaian 223001, China;2.College of Resources and Environmental Sciences, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China)
Abstract:In order to investigate the effects of combined inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi and phosphate-solubilizing bacteria on fertilizer use efficiency in rice, Jinjing 818 was used as experimental material in the study. The effects of two arbuscular mycorrhizal fungi (Rhizophagus irregularis, RI; Funneliformis mosseae, FM) and three phosphate-solubilizing bacteria (Racillus sp., R1-3; Bacillus megaterium, BM; Arthrobacter pascens, AP) on colonization rate and fertilizer use efficiency of rice were analyzed, and the inoculation of inactivated fungi was set as control. The results showed that the colonization rates of arbuscular mycorrhizal fungi in most treatments decreased after the addition of phosphate-solubilizing bacteria, and the colonization rate in FM+BM treatment decreased to 7.54%, which was significantly lower than that in the treatment of single inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi. Compared with control and single inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi or phosphate-solubilizing bacteria, combined inoculation improved the nitrogen use efficiency and potassium use efficiency overall at the end of reproductive growth period of rice. Compared with control, FM+BM treatment increased by 19.55 percentage points and 20.47 percentage points, respectively. Combined inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi and phosphate-solubilizing bacteria was beneficial to improve the nitrogen use efficiency and potassium use efficiency at the end of reproductive growth period of rice, and FM+BM was the best combination.
Key words:arbuscular mycorrhizal fungi;phosphate-solubilizing bacteria;rice;fertilizer use efficiency;colonization rate
水稻(Oryza sativa L.)位居中國(guó)三大主糧之首。長(zhǎng)期以來(lái)增施化肥是保證水稻高產(chǎn)的有效方法。然而,近年來(lái)糧食產(chǎn)量并沒有隨著化肥的過(guò)多投入表現(xiàn)出明顯增長(zhǎng)的趨勢(shì),氮、磷肥的生理利用率以及吸收效率急劇下降[1]。有研究結(jié)果表明,中國(guó)氮肥的農(nóng)田利用率僅為30%~35%[2],磷肥利用率為10%~25%[3],鉀肥利用率為25%~45%[4]。在淹水條件下,稻田土壤氮肥損失可達(dá)50%[5]。肥料的嚴(yán)重流失不僅造成水稻生產(chǎn)效益下降,還導(dǎo)致面源污染,嚴(yán)重威脅到農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展[6]。因此,研究如何提高稻田土壤肥料利用率對(duì)于減少化肥過(guò)量施用帶來(lái)的不良影響具有重要意義。
叢枝菌根真菌(Arbuscular mycorrhizal fungi,AMF)廣泛存在于農(nóng)田土壤中,能夠與80%陸生植物根系形成菌根共生體。植物通過(guò)光合作用將自身合成的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)供給AMF,AMF則通過(guò)遍布土壤的菌絲網(wǎng)絡(luò)不斷吸收土壤中的氮、磷等養(yǎng)分供給植物[7]。研究結(jié)果表明,接種AMF可顯著提高大豆根際土壤脲酶、氮同化關(guān)鍵酶的活性,促進(jìn)大豆對(duì)銨態(tài)氮的利用,提高大豆的磷素吸收量[8-10]。賈艷艷等[11]研究發(fā)現(xiàn),在氮肥減量施用條件下接種AMF可顯著提高土壤蛋白酶、脲酶及硝酸還原酶的活性,提高小麥的氮肥利用率和農(nóng)學(xué)效率。
此外,有研究發(fā)現(xiàn)AMF和解磷細(xì)菌存在功能上的互作。解磷細(xì)菌分泌的磷酸酶和有機(jī)酸等促進(jìn)植物生長(zhǎng)的物質(zhì)能夠增強(qiáng)AMF的侵染能力[12]。例如,熒光假單胞菌(Pseudomonas fluorescens)BBc6R8產(chǎn)生的細(xì)胞壁降解酶能提高AMF定殖率,促進(jìn)菌絲生長(zhǎng),進(jìn)而促進(jìn)植物生長(zhǎng)[13]。在沙土中復(fù)合接種AMF和解磷細(xì)菌比單接種更能增加葉片中氮、磷含量,促進(jìn)大豆對(duì)氮素和磷素的吸收,但降低了AMF的侵染率[14]。然而,也有研究結(jié)果表明在低磷土壤中,AMF和解磷細(xì)菌之間會(huì)競(jìng)爭(zhēng)養(yǎng)分,抑制對(duì)方的生長(zhǎng)[15]。解磷細(xì)菌和AMF功能互作的關(guān)系并不穩(wěn)定,并且AMF和解磷細(xì)菌復(fù)合作用對(duì)水稻對(duì)氮、磷吸收利用的相關(guān)研究較少。因此,探討不同AMF和解磷細(xì)菌菌株復(fù)合接種后對(duì)水稻對(duì)氮、磷吸收利用的影響,有助于提高水稻肥料利用率。
本研究擬以金粳818為試驗(yàn)材料,將2種AMF與3種解磷細(xì)菌進(jìn)行兩兩復(fù)合接種,研究其對(duì)水稻氮素吸收相關(guān)土壤酶活性、土壤速效養(yǎng)分以及氮、磷、鉀肥料利用率的影響,以期為提高稻田肥料利用率提供技術(shù)支撐。
1? 材料與方法
1.1? 供試菌株
供試AMF為異形根孢囊霉(Rhizophagus irregularis,RI)和摩西管柄囊霉(Funneliformis mosseae,F(xiàn)M),其中RI為本實(shí)驗(yàn)室保存菌種,F(xiàn)M購(gòu)自北京市農(nóng)林科學(xué)院。接種菌劑預(yù)先用三葉草盆栽繁殖,包括根系、孢子和擴(kuò)繁基質(zhì),1 g菌劑含15~25個(gè)孢子。
解磷細(xì)菌芽孢桿菌屬細(xì)菌(Bacillus sp.,R1-3)由江蘇徐淮地區(qū)淮陰農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所土壤與肥料中心提供;巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium,BM)購(gòu)自于中國(guó)農(nóng)業(yè)微生物菌種保藏管理中心,編號(hào)為ACCC 10011;耐鹽節(jié)桿菌(Arthrobacter pascens,AP)由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)土壤生態(tài)實(shí)驗(yàn)室提供。3種解磷細(xì)菌在試驗(yàn)條件下對(duì)土壤具有較好的解磷效果,能促進(jìn)植物的生長(zhǎng)發(fā)育[16-18]。接種前,將3種解磷細(xì)菌從-80 ℃冰箱中取出活化,用溶菌肉湯(LB)培養(yǎng)基搖至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期使用。
1.2? 供試水稻品種以及土壤
水稻品種為金粳818,2022年5月11日至2022年6月20日進(jìn)行育苗。2022年6月21日挑選水稻苗,去除根部的土壤,用70%乙醇溶液對(duì)根部進(jìn)行消毒,再用清水反復(fù)沖洗后備用。
試驗(yàn)所用土壤采集自江蘇省植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑工程研究中心(119°7′11″E,33°33′43″N),土壤類型為沙壤土,基本理化性質(zhì)見表1。土壤風(fēng)干后粉碎過(guò)2 mm篩,121 ℃下高壓濕熱滅菌2 h備用。
1.3? 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
試驗(yàn)于2022年6月在江蘇省植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑工程研究中心試驗(yàn)地進(jìn)行。試驗(yàn)所用花盆上口徑22.0 cm,下口徑14.5 cm,高19.5 cm,花盆用0.1%高錳酸鉀溶液浸泡1 d,清水反復(fù)沖洗后晾干備用,每盆裝土5 kg。一共設(shè)計(jì)13個(gè)處理,分別是(1)不施肥處理,CK1;(2)接種RI和FM復(fù)合的滅活菌劑,CK2;(3)單接種RI真菌,A1;(4)單接種FM真菌,A2;(5)單接種R1-3,B1;(6)單接種BM,B2;(7)單接種AP,B3;(8)雙接種RI+R1-3,A1B1;(9)雙接種RI+BM,A1B2;(10)雙接種RI+AP,A1B3;(11)雙接種FM+R1-3,A2B1;(12)雙接種FM+BM,A2B2;(13)雙接種FM+AP,A2B3。每個(gè)處理6個(gè)重復(fù),一共78個(gè)盆栽。其中CK1為空白組,用于計(jì)算水稻肥料利用率。RI和FM按照10 g/kg土壤進(jìn)行接種,先向盆中加入土壤,平整土壤表面,上層再加入一層土壤,保證菌劑在土壤表面下5 cm處。BM和AP按照土壤質(zhì)量5%接入。雙接種組按照相應(yīng)單接種菌量的一半接入。每盆土壤施入復(fù)合肥(N含量-P2O5含量-K2O含量:15%-15%-15%)2 g,其中氮肥的施用原則為基肥∶蘗肥∶促花肥∶?;ǚ?5∶1∶2∶2,蘗肥在移栽后7 d施用,促花肥和保花肥在穗分化期施用。
1.4? 樣品采集
在營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末和生殖生長(zhǎng)期末分別采樣一次,每次隨機(jī)選取3個(gè)盆栽樣本。將水稻植株連根取出,用清水反復(fù)沖洗干凈,待晾干后放入自封袋中。將采集的水稻植株分成地上和地下兩部分,地下根系用于測(cè)定根系侵染率;地上部分測(cè)定鮮質(zhì)量,然后放入105 ℃烘箱殺青30 min,再在75 ℃烘箱中烘干至恒質(zhì)量。烘干結(jié)束后將植株地上部分莖鞘、葉片和籽粒分別進(jìn)行稱質(zhì)量,粉碎,測(cè)定全氮、全磷、全鉀含量。盆栽土壤按照上、中、下3層取樣,混合均勻,去除石礫、植物殘?bào)w等雜質(zhì),一部分土壤樣品自然晾干后測(cè)定基本理化指標(biāo),另一部分保存在-20 ℃冰箱內(nèi)測(cè)定土壤酶活性、銨態(tài)氮含量和硝態(tài)氮含量。
1.5? 測(cè)定項(xiàng)目與方法
1.5.1? 菌根侵染率??? 采用脫色-藍(lán)色墨水染色法測(cè)定菌根侵染率,具體方法參考王幼珊等的方法[19]。根據(jù)菌絲、叢枝和泡囊的侵染情況進(jìn)行計(jì)算,沒有菌根結(jié)構(gòu)的根段為0,只有一半長(zhǎng)度的根段形成菌根為50,以此類推,記錄各等級(jí)下的根段數(shù)。
侵染率(%)=(0×根段數(shù)+10×根段數(shù)+20×根段數(shù)+…+100×根段數(shù))/觀察根段總數(shù)
1.5.2? 土壤理化指標(biāo)??? 土壤銨態(tài)氮含量采用氯化鉀浸提-雙波段比色法測(cè)定,硝態(tài)氮含量采用氯化鉀浸提-靚藍(lán)比色法測(cè)定,土壤速效磷含量采用碳酸氫鈉浸提-鉬銻抗比色法測(cè)定,土壤速效鉀含量采用醋酸銨浸提-火焰光度法測(cè)定[20],土壤脲酶活性采用茚三酮苯酚鈉-次氯酸鈉比色法測(cè)定,土壤蛋白酶活性采用茚三酮比色法測(cè)定[21]。
1.5.3? 植株養(yǎng)分含量??? 水稻經(jīng)硫酸-過(guò)氧化氫消煮后,分別測(cè)定全氮、全磷、全鉀含量[20]。
1.5.4? 產(chǎn)量? ??將每盆水稻全部脫粒,去除未灌漿的空粒后測(cè)定實(shí)際產(chǎn)量。
1.5.5? 肥料利用率??? 氮素積累量(g)=(莖鞘干質(zhì)量×莖鞘氮含量+葉片干質(zhì)量×葉片氮含量+籽粒干質(zhì)量×籽粒氮含量)
磷素積累量(g)=(莖鞘干質(zhì)量×莖鞘磷含量+葉片干質(zhì)量×葉片磷含量+籽粒干質(zhì)量×籽粒磷含量)
鉀素積累量(g)=(莖鞘干質(zhì)量×莖鞘鉀含量+葉片干質(zhì)量×葉片鉀含量+籽粒干質(zhì)量×籽粒鉀含量)
氮肥利用率(NRE)=(施肥組植株總氮素積累量-空白組植株總氮素積累量)/施氮量×100%
磷肥利用率(PRE)=(施肥組植株總磷素積累量-空白組植株總磷素積累量)/施磷量×100%
鉀肥利用率(KRE)=(施肥組植株總鉀素積累量-空白組植株總鉀素積累量)/施鉀量×100%
1.6? 數(shù)據(jù)處理與分析
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 22.0軟件統(tǒng)計(jì)分析,5%水平下Duncan’s新復(fù)極差法檢驗(yàn)各處理平均值之間的差異顯著性,用Pearson法進(jìn)行相關(guān)性分析,用OriginPro 2021軟件進(jìn)行繪圖。
2? 結(jié)果與分析
2.1? 接菌對(duì)水稻根系菌根侵染率的影響
未接種AMF處理的水稻根系未檢測(cè)到孢子和菌絲(圖1)。A1、A2處理的水稻根系侵染率可達(dá)31.28%和29.68%,說(shuō)明2種真菌均可在水稻根系定殖并且發(fā)揮作用。相較于單獨(dú)接種RI真菌的A1處理,雙接種的A1B1、A1B2、A1B3處理不同程度降低菌根侵染率,其中A1B3處理的菌根侵染率最低,為15.44%,但與A1處理沒有顯著差異(P=0.056)。相較于單獨(dú)接種FM真菌的A2處理,雙接種的A2B1處理下的菌根侵染率高達(dá)32.85%(P=0.684),而A2B2處理下的菌根侵染率顯著下降,達(dá)到7.54%(P=0.011)。
2.2? 接菌對(duì)土壤理化性質(zhì)的影響
表2顯示,在水稻營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末,土壤養(yǎng)分維持較低的水平且各試驗(yàn)組之間差異較小,CK1中土壤銨態(tài)氮、硝態(tài)氮含量最高;速效磷含量最高的為B1處理和A2B2處理,與A1B1處理相比具有顯著差異;速效鉀含量最高的為A2B1處理,顯著高于A2、B3、A1B3處理。在水稻生殖生長(zhǎng)期末,不同菌種組合處理的土壤養(yǎng)分含量存在差異;A1B3處理的硝態(tài)氮含量最高,顯著高于CK2、A1、B1、B3、A1B1、A1B2、A2B1;A2B2處理的速效磷含量最高,與B3、A1B1、A2B1處理相比具有顯著差異性;CK2的速效鉀含量最高,顯著高于A1B1處理。
CK1、CK2、A1、A2、B1、B2、B3、A1B1、A1B2、A1B3、A2B1、A2B2、A2B3見圖1注。同列數(shù)據(jù)后不同小寫字母表示不同處理間差異顯著(P<0.05)。
表3顯示,與CK1相比,CK2和接菌處理不同程度地提高了蛋白酶和脲酶的活性。在水稻營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末,A2B1處理的土壤蛋白酶、脲酶活性最高,顯著高于CK1;復(fù)合接種處理組的蛋白酶、脲酶活性整體高于單接種處理組。在水稻生殖生長(zhǎng)期末,與CK1相比,單接菌處理以及雙接種處理中的A2B1和A2B3均提高了蛋白酶活性,A1處理下蛋白酶活性最強(qiáng);除A1B1和A1B3處理外,其余接菌處理較CK1均不同程度地提高了脲酶活性,其中A1處理的脲酶活性最高,A2B3處理次之,均顯著高于CK2(P<0.05)。
2.3? 接菌對(duì)水稻養(yǎng)分積累的影響
圖2顯示,在水稻營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末,氮素積累量最高的為A2處理,顯著高于CK1和A2B1處理;除CK1處理外,其他接菌處理磷素積累量無(wú)顯著差異;接菌處理的鉀素積累量均高于CK2,其中A2、A1B1、A1B2處理與CK2相比具有顯著差異性。在水稻生殖生長(zhǎng)期末,在氮素積累方面,復(fù)合接種處理整體高于單接種處理,其中A2B2處理的氮素積累量最高,并顯著高于CK2和單接種處理(P<0.05);磷素積累量最高的為A2B2處理,顯著高于A1、A2、B2處理;鉀素積累量最高的為A2B2處理,顯著高于A1、A2、B1、B3、A1B1、A2B1處理和CK2。
CK1、CK2、A1、A2、B1、B2、B3、A1B1、A1B2、A1B3、A2B1、A2B2、A2B3見圖1注。同列數(shù)據(jù)后不同小寫字母表示不同處理間差異顯著(P<0.05)。
2.4? 接菌對(duì)水稻肥料利用率的影響
表4顯示,接菌處理整體上提高了水稻的肥料利用率。在水稻營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末,除A2B1處理外,其余接菌處理水稻氮肥利用率和磷肥利用率差異不顯著;各處理的磷肥利用率和鉀肥利用率之間及與對(duì)照的差異均不顯著。在水稻生殖生長(zhǎng)期末,A2B2處理的氮肥利用率顯著高于CK2,比CK2提高了19.55個(gè)百分點(diǎn);接菌處理的水稻磷肥利用率與CK2差異不顯著;A2B2處理的水稻鉀肥利用率最高,顯著高于A1、A2、B1、B3、A1B1、A2B1處理,A2B2處理的鉀肥利用率比CK2提高了20.47個(gè)百分點(diǎn)。
CK2、A1、A2、B1、B2、B3、A1B1、A1B2、A1B3、A2B1、A2B2、A2B3見圖1注。同列數(shù)據(jù)后不同小寫字母表示不同處理間差異顯著(P<0.05)。
2.5? 相關(guān)性分析
水稻生殖生長(zhǎng)期末各指標(biāo)之間的相關(guān)系數(shù)分析結(jié)果(表5)表明,氮肥利用率、磷肥利用率和鉀肥利用率之間存在極顯著正相關(guān)關(guān)系(P<0.01)。其中,水稻氮肥利用率與脲酶活性存在顯著正相關(guān)關(guān)系(r=0.397)。磷肥利用率與速效鉀含量、脲酶活性存在顯著正相關(guān)關(guān)系(r=0.374、r=0.407)。鉀肥利用率與速效鉀含量、脲酶活性存在顯著正相關(guān)關(guān)系(r=0.318、r=0.332)。
3? 討? 論
解磷細(xì)菌與AMF的侵染率、菌絲密度等生長(zhǎng)狀況具有差異性。有學(xué)者基于真菌-細(xì)菌合作共生的理論,將假單胞菌接入被根內(nèi)根孢囊霉(Rhizophagus intraradices)侵染的小麥中,發(fā)現(xiàn)菌根侵染率提高了2倍以上,且根外菌絲的密度顯著增加[22]。而本研究中除A2B1處理外,與單接種AMF相比,接種解磷細(xì)菌后菌根侵染率明顯下降,其中A2B2處理顯著降低,說(shuō)明加入解磷細(xì)菌反而抑制了AMF的生長(zhǎng),導(dǎo)致其定殖能力下降。在低磷土壤條件下,土壤中的磷被細(xì)菌優(yōu)先吸收,以微生物磷的形式固定在細(xì)菌體內(nèi),AMF自身生長(zhǎng)發(fā)育受到缺磷的限制[23]。根據(jù)前人研究結(jié)果,土壤微生物磷在被細(xì)菌吸收固定100 d后才能實(shí)現(xiàn)周轉(zhuǎn)利用[24],而本試驗(yàn)周期約為100 d,土壤速效磷含量為6.20 mg/kg,土壤養(yǎng)分含量較低,解磷細(xì)菌的接入短期內(nèi)為AMF孢子擴(kuò)繁做出貢獻(xiàn)的可能性大大降低。張林等[25]在菌絲室的低磷土壤中接種解磷細(xì)菌巨大芽孢桿菌后同樣發(fā)現(xiàn)摩西球囊霉的侵染率降低。
土壤蛋白酶和脲酶參與土壤有機(jī)氮向無(wú)機(jī)氮的轉(zhuǎn)化過(guò)程,其活性大小常用來(lái)反映土壤氮素供應(yīng)強(qiáng)度[26]。AMF不能單獨(dú)分泌土壤中的分解酶,但能夠促進(jìn)土壤微生物分泌多種酶,包括酸性磷酸酶[25]、堿性磷酸酶[25]、硝酸還原酶[27]、蛋白酶[28]和脲酶[28]等。本研究中,在水稻營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期末,無(wú)論是單接種AMF還是同時(shí)接種AMF和解磷細(xì)菌,土壤蛋白酶和脲酶的活性大部分低于單獨(dú)接種滅活復(fù)合菌劑。AMF對(duì)水稻根系的侵染需要一個(gè)過(guò)程,在營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期,AMF侵染初期依賴于宿主對(duì)其養(yǎng)分的供應(yīng),而對(duì)宿主的養(yǎng)分貢獻(xiàn)十分有限。在水稻生殖生長(zhǎng)期末,相比單獨(dú)接種滅活復(fù)合菌劑,單獨(dú)接種RI真菌提高了土壤脲酶的活性;在接種AMF的同時(shí)添加解磷細(xì)菌后,土壤脲酶的活性整體高于單獨(dú)接種滅活復(fù)合菌劑,但整體低于單獨(dú)接種AMF的處理,這可能是由于接種解磷細(xì)菌后AMF孢子和菌絲生長(zhǎng)受到抑制,從而減弱AMF促進(jìn)土壤酶分泌的能力。
在本研究中,相比單獨(dú)接種滅活復(fù)合菌劑,單接種AMF和解磷細(xì)菌處理的水稻氮肥利用率沒有顯著變化;在水稻生殖生長(zhǎng)期末 雙接種情況下部分處理顯著提高了氮肥利用率。水稻生殖生長(zhǎng)期末,土壤脲酶活性與氮肥利用率、磷肥利用率和鉀肥利用率均呈顯著正相關(guān)。微生物的數(shù)量和活性高度依賴于土壤中的碳,而土壤中往往缺乏碳元素,因此95%以上的微生物處于休眠狀態(tài)[29]。AMF從植物光合產(chǎn)物中獲取碳元素,在生長(zhǎng)過(guò)程中會(huì)分泌果糖、葡萄糖等低相對(duì)分子質(zhì)量化合物,這些物質(zhì)可直接被微生物吸收利用[30]。由于AMF分泌物的存在,根外菌絲表面碳質(zhì)量濃度較高,微生物更容易被吸引,有的細(xì)菌能在根系附近形成生物膜,加強(qiáng)自身抗性,形成穩(wěn)定的群體[31]。細(xì)菌在真菌菌絲表面定殖能力的大小受到真菌種類的影響。芽孢桿菌屬細(xì)菌R1-3、巨大芽孢桿菌、耐鹽節(jié)桿菌這3種菌株由于合成自身細(xì)胞的需要,對(duì)根外菌絲分泌的糖類物質(zhì)表現(xiàn)出趨化性,不斷擴(kuò)繁定殖。解磷細(xì)菌發(fā)揮作用的重要前提是能在土壤中生存生長(zhǎng),所以單接種解磷細(xì)菌可能由于土壤中缺少有效載體和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),受到土著微生物的干擾使得群體逐漸萎縮甚至消失[32]。不同細(xì)菌與真菌的組合在肥料利用率方面表現(xiàn)出的差異可能是由于3種細(xì)菌的生長(zhǎng)習(xí)性不同,在菌絲上定殖能力也受到影響。AMF可以識(shí)別合作的伙伴,當(dāng)真菌土壤中施入解磷細(xì)菌后,細(xì)菌也會(huì)分泌生長(zhǎng)激素、各種酶類等物質(zhì)促進(jìn)土壤養(yǎng)分的礦化,土壤中可利用養(yǎng)分增多,AMF在與解磷細(xì)菌競(jìng)爭(zhēng)養(yǎng)分的同時(shí)也保持著合作的可能性,宿主植物將光合作用的產(chǎn)物分享給土壤中的微生物,這時(shí)AMF和解磷細(xì)菌傾向于形成共生關(guān)系,共同協(xié)助土壤中的養(yǎng)分向宿主植物運(yùn)輸,形成植物-AMF-細(xì)菌三體結(jié)構(gòu)[33]。在本研究中,RI和FM在3種解磷細(xì)菌的幫助下共同維護(hù)與宿主植物的關(guān)系,促進(jìn)氮素和鉀素向水稻地上部運(yùn)輸,提高其肥料利用率。
綜上所述,在水稻生殖生長(zhǎng)期末,本研究篩選出FM+BM組合可最大程度提高氮肥利用率和鉀肥利用率。但該種模式是否具有普遍性?如何選擇AMF的最佳合作伙伴以達(dá)到水稻肥料利用率的最佳水平仍需要進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]? 閆? 湘,金繼運(yùn),梁鳴早. 我國(guó)主要糧食作物化肥增產(chǎn)效應(yīng)與肥料利用效率[J]. 土壤,2017,49(6):1067-1077.
[2]張艷紅,陳志青,楊? 碩,等. 增施納米三氧化鉬對(duì)水稻產(chǎn)量、品質(zhì)和氮肥利用率的影響[J]. 揚(yáng)州大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版),2022,43(5):27-36.
[3]錢衛(wèi)飛,徐巡軍,錢衛(wèi)東,等. 不同土壤類型水稻測(cè)土配方施肥對(duì)肥料利用率的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(1):83-85.
[4]魯艷紅,廖育林,聶? 軍,等. 五年定位試驗(yàn)鉀肥用量對(duì)雙季稻產(chǎn)量和施鉀效應(yīng)的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2014,20(3):598-605.
[5]蔡祖聰,顏曉元,朱兆良. 立足于解決高投入條件下的氮污染問題[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2014,20(1):1-6.
[6]LIU L, XU W, LU X K, et al. Exploring global changes in agricultural ammonia emissions and their contribution to nitrogen deposition since 1980[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2022,119(14):e2121998119.
[7]WU Q S, HE J D, SRIVASTAVA A K, et al. Mycorrhiza enhances drought tolerance of citrus by altering root fatty acid compositions and their saturation levels[J]. Tree Physiology,2019,39(7):1149-1158.
[8]宋福強(qiáng),程? 蛟,常? 偉,等. 田間施加AM菌劑對(duì)大豆生長(zhǎng)效應(yīng)的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2013,29(6):69-74.
[9]鄧? 胤,申? 鴻,羅文倩,等. 不同氮素形態(tài)比例條件下接種AMF對(duì)玉米氮同化關(guān)鍵酶的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2009,15(6):1380-1385.
[10]劉云龍,錢浩宇,張? 鑫,等. 叢枝菌根真菌對(duì)豆科作物生長(zhǎng)和生物固氮及磷素吸收的影響[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2021,32(5):1761-1767.
[11]賈艷艷,楊文飛,杜小鳳,等. 接種AM真菌和施氮對(duì)還田稻稈氮素釋放和小麥產(chǎn)量的影響[J]. 江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2020,32(3):8-13.
[12]SAXENA J, MINAXI, JHA A. Impact of a phosphate solubilizing bacterium and an arbuscular mycorrhizal fungus (Glomus etunicatum) on growth, yield and P concentration in wheat plants[J]. CLEAN-Soil, Air, Water,2014,42(9):1248-1252.
[13]DEVEAU A, PALIN B, DELARUELLE C, et al. The mycorrhiza helper Pseudomonas fluorescens BBc6R8 has a specific priming effect on the growth, morphology and gene expression of the ectomycorrhizal fungus Laccaria bicolor S238N[J]. New Phytologist,2007,175(4):743-755.
[14]畢銀麗,陳書琳,孔維平,等. 接種微生物對(duì)大豆生長(zhǎng)及其根際土壤的影響[J]. 生態(tài)科學(xué),2014,33(1):121-126.
[15]ZHANG L, FAN J, DING X, et al. Hyphosphere interactions between an arbuscular mycorrhizal fungus and a phosphate solubilizing bacterium promote phytate mineralization in soil[J]. Soil Biology and Biochemistry,2014,74:177-183.
[16]王應(yīng)蘭. 解磷微生物細(xì)菌的篩選、鑒定及其制備肥料的研究[D]. 貴陽(yáng):貴州大學(xué),2020.
[17]張? 振,李輝信,陳? 雄,等. 一株具有熒蒽降解能力的產(chǎn)吲哚乙酸菌的篩選鑒定及其特性[J]. 環(huán)境工程學(xué)報(bào),2014,8(11):5041-5048.
[18]李? 青,謝昶琰,張? 苗,等. 防控甜瓜枯萎病病菌的生防菌篩選及其根際定殖[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2023,39(2):336-343.
[19]王幼珊,張淑彬,張美慶. 中國(guó)叢枝菌根真菌資源與種質(zhì)資源[M]. 北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2012.
[20]鮑士旦. 土壤農(nóng)化分析[M]. 北京: 中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2000.
[21]關(guān)松蔭. 土壤酶及其研究法[M]. 北京: 農(nóng)業(yè)出版社,1986.
[22]FREY-KLETT P, GARBAYE J, TARKKA M T. Tansley review: the mycorrhiza helper bacteria revisited[J]. New Phytologist,2007,176:22-36.
[23]MARSCHNER P, CROWLEY D, RENGEL Z. Rhizosphere interactions between microorganisms and plants govern iron and phosphorus acquisition along the root axis-model and research methods[J]. Soil Biology and Biochemistry,2011,43(5):883-894.
[24]朱曉亞,李子豪,林啟美,等. 模擬不同春季降雨量下典型草原土壤微生物磷周轉(zhuǎn)特征[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2020,40(8):2655-2661.
[25]張? 林,丁效東,王? 菲,等. 菌絲室接種解磷細(xì)菌Bacillus megaterium C4對(duì)土壤有機(jī)磷礦化和植物吸收的影響[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2012,32(13):4079-4086.
[26]戴伊莎,成? 欣,劉幫艷,等. 秸稈和紫云英協(xié)同覆蓋對(duì)西南旱地土壤養(yǎng)分、酶活性及小麥產(chǎn)量的影響[J]. 土壤通報(bào),2021,52(6):1339-1347.
[27]ZAREA M J, KARIMI N, GOLTAPEH E M, et al. Effect of cropping systems and arbuscular mycorrhizal fungi on soil microbial activity and root nodule nitrogenase[J]. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences,2011,10:109-120.
[28]谷文超,張? 杰,周? 濃,等. 不同叢枝菌根真菌組合與接種時(shí)期對(duì)滇重樓幼苗根際土壤理化性質(zhì)與微生物數(shù)量的影響[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2020,26(22):116-130.
[29]BLAGODATSKAYA E, KUZYAKOV Y. Active microorganisms in soil: critical review of estimation criteria and approaches[J]. Soil Biology & Biochemistry,2013,67:192-211.
[30]TOLIJANDER J F, LINDAHL B D, PAUL L R, et al. Influence of arbuscular mycelial exudates on soil bacterial growth and community structure[J]. FEMS Microbiology Ecology,2007,61(2):295-304.
[31]ARTURSSON V, JANSSON J K. Use of bromodeoxyuridine immunocapture to identify active bacteria associated with arbuscular myccorhizal hyphae[J]. Applied and Environmental Microbiology,2003,69:6208-6215.
[32]吳? 翔,唐? 亞,甘炳成,等. 一種初步判斷細(xì)菌類微生物在土壤中定殖能力的方法[J]. 中國(guó)土壤與肥料,2020(3):204-209.
[33]BONFANTE P, ANCA I A. Plants, mycorrhizal fungi, and bacteria: a network of interactions[J]. Annual Review of Microbiology,2009,63:363-383.
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