黃俊寶,陳立才,曹中盛,孫濱峰,李艷大
(江西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)業(yè)工程研究所/江西省農(nóng)業(yè)信息化工程技術(shù)研究中心,江西 南昌 330200)
水稻紋枯病是由立枯絲核菌(Rhizoctonia solaniKühn)引起的一種世界性土傳真菌病害,隨著矮稈多蘗品種的密植、高肥、高產(chǎn)栽培技術(shù)的推廣和管理方式的改變,紋枯病的發(fā)生日趨嚴(yán)重,嚴(yán)重時(shí)產(chǎn)量損失超30%,嚴(yán)重威脅著我國(guó)水稻生產(chǎn)的安全[1]。當(dāng)前,水稻抗紋枯病育種至今未發(fā)現(xiàn)對(duì)其免疫的資源材料,缺少高抗品種[2],其防治措施仍以高效、快速、簡(jiǎn)便的化學(xué)防治為主[3],但不合理使用化學(xué)農(nóng)藥所導(dǎo)致的環(huán)境污染、農(nóng)藥殘留、抗藥性問(wèn)題日益突出[4-5]。近年來(lái),比較熱門的紋枯病生物防治雖然具有安全、無(wú)殘留、無(wú)抗藥性、環(huán)境兼容性好等優(yōu)點(diǎn)[6],且已篩選到具有明顯防治效果的生防菌[5-9],但其防效較慢,防治技術(shù)要求高,易受環(huán)境因素的影響,且難以應(yīng)對(duì)突發(fā)性病蟲(chóng)害[10],因而其實(shí)際應(yīng)用受到限制。因此,尋找更適宜的防治方法來(lái)控制水稻紋枯病顯得更為迫切。
植物誘導(dǎo)抗病性是植物抵御病害侵染的重要機(jī)制[11],利用激發(fā)子可激活作物自身免疫系統(tǒng),誘導(dǎo)作物產(chǎn)生系統(tǒng)、持久和廣譜的抗病性,為作物病害的綠色防治提供了新思路。茉莉酸類物質(zhì)(Jasmonates, JAs)是植物誘導(dǎo)抗病研究領(lǐng)域應(yīng)用較廣的一種高酶活性激發(fā)子[12]。研究表明,外源MeJA能提高植物過(guò)氧化物酶(Peroxidase,POD)、過(guò)氧化氫酶(Catalase, CAT)、超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase, SOD)、苯丙氨酸解氨酶(Phenylalnaine Ammonialyase, PAL)、多酚氧化酶(Polyphenoloxidase, PPO)、抗壞血酸過(guò)氧化物酶(Ascorbate Peroxidase, APX)等防御酶活性,顯著地減輕了巴西煙草病毒?。?3]、稻瘟?。?4]、水稻白葉枯?。?5]、辣椒青枯?。?6]等作物病害的發(fā)生,但關(guān)于MeJA誘導(dǎo)水稻抗紋枯病效應(yīng)的研究較少。為進(jìn)一步探索MeJA誘導(dǎo)水稻抗紋枯病的效應(yīng),本研究擬以菌絲生長(zhǎng)速率法測(cè)定MeJA對(duì)水稻紋枯病菌絲的抑菌效果,以外源MeJA噴施處理水稻幼苗的方式測(cè)定水稻紋枯病病情指數(shù),篩選出具有較好誘抗效果的MeJA濃度,并測(cè)定適宜濃度的MeJA噴施誘導(dǎo)處理對(duì)水稻防御酶活性的影響,以期為綠色防控水稻紋枯病提供技術(shù)支撐。
供試水稻品種:中嘉早17,其種子經(jīng)消毒催芽后播種于塑料盆中,培養(yǎng)至4葉1心期。
水稻紋枯病菌:AG1-IA菌絲融合群,由江西農(nóng)業(yè)大學(xué)植物病理實(shí)驗(yàn)室提供。
PDA培養(yǎng)基:稱取去皮馬鈴薯200 g切成小塊,加蒸餾水1000 mL煮沸20~30 min,用紗布過(guò)濾后補(bǔ)加蒸餾水至1000 mL,加入葡萄糖20 g,瓊脂粉20 g,加熱溶化后分裝,121 ℃高壓滅菌20 min。
茉莉酸甲酯:購(gòu)自美國(guó)Merck公司,以少量二甲基亞砜(Dimethyl Sulfoxide,DMSO)溶解,再用含0.1% Tween-80的蒸餾水配成10.00 mmol/L溶液備用。
1.2.1 MeJA對(duì)水稻紋枯病菌絲生長(zhǎng)的影響 采用菌絲生長(zhǎng)速率法測(cè)定MeJA對(duì)水稻紋枯病菌絲生長(zhǎng)的影響。MeJA設(shè)置7個(gè)濃度,分別為0、0.01、0.05、0.10、0.50、1.00、2.00 mmol/L,其中對(duì)照添加含0.1% Tween-80的等量無(wú)菌水。將預(yù)培養(yǎng)48 h的病菌菌絲塊(直徑0.5 cm)移至含不同濃度MeJA的PDA平板中央,于25 ℃下培養(yǎng),每個(gè)處理重復(fù)3次。48 h后用十字交叉法測(cè)定每個(gè)處理的菌落直徑,以3個(gè)重復(fù)的算術(shù)平均值為菌落直徑的測(cè)定結(jié)果,抑制率計(jì)算公式:抑制率(%)=[1-(處理菌落直徑-菌塊直徑)/(對(duì)照菌落直徑-菌塊直徑)]×100%[17]。
1.2.2 MeJA對(duì)水稻幼苗抗紋枯病的誘導(dǎo)效應(yīng) 參照Park等[18]的方法,將紋枯病菌轉(zhuǎn)接至PDA培養(yǎng)基正中央,置于25 ℃下培養(yǎng)48 h后,無(wú)菌條件下在菌落邊緣打孔,獲取直徑5 cm的菌塊備用。將濃度為0、0.01、0.05、0.10、0.50、1.00、2.00 mmol/L MeJA噴霧至4葉1心期的水稻幼苗上,使植株的全部葉片濕潤(rùn)滴液為止,對(duì)照(CK)為含0.1% Tween-80的無(wú)菌蒸餾水。處理12 h后,用無(wú)菌鑷子夾取直徑為5 cm菌塊接種在水稻葉鞘內(nèi)側(cè),每株接種一塊,每個(gè)處理10株,重復(fù)3次,接種后立即用保鮮膜包裹,噴水保濕處理24 h。出現(xiàn)典型癥狀后,立即取下保鮮膜,保溫保濕處理7 d左右進(jìn)行病情指數(shù)調(diào)查[19]:病情指數(shù)=∑(各級(jí)病株數(shù)×各級(jí)代表值)/(調(diào)查總株數(shù)×最高級(jí)代表值)×100;誘抗效果(%)=(對(duì)照組病情指數(shù)-處理組病情指數(shù))/對(duì)照組病情指數(shù)×100%。
1.2.3 MeJA對(duì)水稻幼苗防御酶活性的影響 水稻長(zhǎng)到4葉1心期時(shí),設(shè)置4種方式處理:CK為對(duì)照;T-R:接種紋枯病菌絲塊;T-MeJA:用0.10 mmol/L MeJA噴霧處理;T-MeJA+R:用0.10 mmol/L MeJA噴霧處理12 h后,轉(zhuǎn)接紋枯病菌保濕處理。方法同1.2.2。每種處理方式3次重復(fù)。分別在處理0、24、48、72、96 h后,取水稻葉片2.00 g于液氮中冷凍保存,用于測(cè)定POD、CAT、SOD、PAL和PPO酶的酶活性。
POD、PAL、PPO酶活性測(cè)定參照Qin等[20]的方法,CAT、SOD酶活性測(cè)定參照陳利鋒等[21]的方法。
應(yīng)用Excel 2019軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理和圖表繪制,應(yīng)用SPSS 25.0軟件中Duncan’s新復(fù)極差法進(jìn)行處理之間的差異顯著性分析。
由表1可知,將水稻紋枯病菌菌絲塊置于在含不同濃度MeJA的PDA平板上,菌絲生長(zhǎng)情況在數(shù)值上雖略有不同,但無(wú)明顯差異,說(shuō)明在0.01~2.00 mmol/L濃度范圍內(nèi)的MeJA對(duì)水稻紋枯病菌菌絲生長(zhǎng)無(wú)直接抑制作用。
表1 不同濃度MeJA對(duì)水稻紋枯病菌菌絲生長(zhǎng)的影響
使用0.01~2.00 mmol/L MeJA誘導(dǎo)處理均能降低水稻紋枯病病情指數(shù),尤以0.10 mmol/L MeJA處理后的紋枯病病情指數(shù)最低,為22.96,此時(shí)誘抗效果為51.56%;0.05 mmol/L MeJA的誘抗效果次之,為43.75%,但2種濃度MeJA的誘抗效果差異不顯著。此后,誘抗效果隨著MeJA濃度的增加而下降,當(dāng)濃度升高至2.00 mmol/L時(shí),誘抗效果僅為7.81%,說(shuō)明MeJA能誘導(dǎo)水稻對(duì)紋枯病產(chǎn)生抗性作用,且具有濃度效應(yīng)(圖1)。
圖1 不同濃度MeJA對(duì)紋枯病的誘抗效果
2.3.1 過(guò)氧化物酶(POD)酶活性 如圖2所示,CK的葉片POD酶活性隨著處理時(shí)間的推移而逐漸升高,但24 h后葉片POD酶活性變化差異不顯著;T-R、T-MeJA、T-MeJA+R這3種處理方式均能顯著提高水稻葉片的POD酶活性;T-R處理在24 h達(dá)到峰值,比CK提高了8%,此后POD酶活性變化差異不顯著;T-MeJA、T-MeJA+R對(duì)POD酶活性的影響要遠(yuǎn)高于T-R處理,這3種處理方式均在48 h達(dá)到峰值,分別比CK提高了42%、32%和7%,3種處理對(duì)POD酶活性的影響差異顯著,此后其酶活性變化呈下降趨勢(shì),但72 h后的POD酶活性變化趨于平緩;在48 h時(shí),不同處理對(duì)POD酶活性的影響差異顯著,T-MeJA和T-MeJA+R處理對(duì)POD酶活性的影響顯著高于T-R處理;在96 h時(shí),各處理后的POD酶活性仍顯著高于處理前,說(shuō)明外界刺激誘導(dǎo)效應(yīng)的可持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h。
圖2 不同處理對(duì)水稻葉片POD酶活性的影響
2.3.2 多酚氧化酶(PPO)酶活性 由圖3可知,與CK相比,T-MeJA、T-R和T-MeJA+R等3種處理均能顯著提升葉片PPO酶活性,葉片PPO酶活性隨著時(shí)間的推移而呈現(xiàn)明顯的先升后降的變化趨勢(shì),CK的葉片PPO酶活性隨著時(shí)間的推移而逐漸升高,但48 h后的葉片PPO酶活性變化無(wú)顯著差異;T-MeJA+R處理的葉片PPO酶活性在24 h達(dá)到峰值,比CK增加了70%,此后隨著時(shí)間的推移而緩慢下降;T-R和T-MeJA處理的葉片PPO酶活性在48 h達(dá)到峰值,分別比CK增加了54%和64%,72 h后的葉片PPO酶活性變化趨于平緩。從整體上看,T-R處理接種紋枯病對(duì)葉片PPO酶活性的誘導(dǎo)效應(yīng)不低于T-MeJA噴霧處理。各處理后的葉片PPO酶活性與處理前的差異顯著,說(shuō)明外界刺激誘導(dǎo)效應(yīng)的可持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h。
圖3 不同處理對(duì)水稻葉片PPO酶活性的影響
2.3.3 苯丙氨酸解氨酶(PAL)酶活性 由圖4可知,CK的葉片PAL酶活性在48 h后達(dá)到峰值,此后酶活性變化差異不顯著;T-R、T-MeJA、T-MeJA+R等3種處理方式均能顯著提高水稻葉片PAL酶活性,葉片中PAL酶活性在48 h達(dá)到峰值后隨著時(shí)間的推移而呈下降的趨勢(shì),T-R、T-MeJA、T-MeJA+R處理的葉片PAL酶活性峰值時(shí)分別比CK提高12%、27%和46%;48 h后T-R處理的葉片PAL酶活性變化差異不顯著,而T-MeJA與T-MeJA+R處理48 h后的葉片PAL酶活性呈明顯的下降趨勢(shì);T-R處理方式對(duì)葉片PAL酶活性的誘導(dǎo)效應(yīng)明顯低于T-MeJA、T-MeJA+R。各處理的葉片PLA酶活性在不同時(shí)段內(nèi)保持相似的變化趨勢(shì),在24~72 h之間,不同處理對(duì)葉片PAL酶活性的影響存在顯著差異,以T-MeJA+R的誘導(dǎo)效果最強(qiáng),T-MeJA次之,T-R則最弱,外界刺激誘導(dǎo)效應(yīng)的可持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h。
圖4 不同處理對(duì)水稻葉片PAL酶活性的影響
2.3.4 過(guò)氧化氫酶(CAT)酶活性 由圖5可知,CK的葉片CAT酶活性隨著時(shí)間的變化而略有提高,但差異不顯著;T-R、T-MeJA、T-MeJA+R等3種處理方式均能顯著提高水稻葉片CAT酶活性,葉片中的CAT酶活性均呈先升后降的變化趨勢(shì),CAT酶活性在48 h達(dá)到峰值,T-R、T-MeJA、T-MeJA+R處理的葉片CAT酶活性分別比CK提高39%、61%和78%,3種處理方式對(duì)葉片CAT酶活性的影響差異顯著;72 h時(shí),T-MeJA+R處理的葉片CAT酶活性明顯降低,T-R和T-MeJA處理的葉片CAT酶活性的下降趨勢(shì)較為平緩。T-R處理后接種紋枯病對(duì)葉片CAT酶活性的誘導(dǎo)效應(yīng)低于T-MeJA、T-MeJA+R處理。在96 h后,T-R、T-MeJA、T-MeJA+R各處理的葉片CAT酶活性分別比CK提高20%、40%和29%,3種處理方式對(duì)葉片CAT酶活性的影響也存在顯著差異,外界刺激誘導(dǎo)效應(yīng)的可持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h。
圖5 不同處理對(duì)水稻葉片CAT酶活性的影響
2.3.5 超氧化物歧化酶(SOD)酶活性 由圖6可知,CK葉片的SOD酶活性隨時(shí)間波動(dòng)變化,T-R、T-MeJA與T-MeJA+R這3種處理方式均能顯著提高水稻葉片中SOD酶活性,葉片中SOD酶活性均呈先升后降的變化趨勢(shì),在48 h達(dá)到峰值,T-R、T-MeJA、T-MeJA+R這3種處理的葉片SOD酶活性分別比CK提高了34%、56%和69%,3種處理方式對(duì)葉片SOD酶活性的影響差異顯著;T-R處理接種紋枯病對(duì)葉片SOD酶活性的誘導(dǎo)效應(yīng)明顯低于T-MeJA、T-MeJA+R,T-R、T-MeJA+R處理在72和96 h時(shí)的葉片SOD酶活性變化無(wú)顯著差異,但仍高于CK,說(shuō)明外界刺激誘導(dǎo)效應(yīng)的可持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h。
圖6 不同處理對(duì)水稻葉片SOD酶活性的影響
JAs是植物抗病信號(hào)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中的重要信號(hào)分子[22],能激發(fā)植株體內(nèi)處于蟄伏狀態(tài)的防御系統(tǒng),可誘導(dǎo)水稻對(duì)稻瘟?。?4,23]、白葉枯?。?5,24]、細(xì)菌性條斑?。?5]的抗性。目前的研究表明:茉莉酸(JA)、水楊酸(SA)和乙烯(ET)3種信號(hào)途徑均參與調(diào)控水稻紋枯病的抗性[3,26-30]。本研究結(jié)果顯示,0.01~2.00 mmol/L MeJA對(duì)水稻紋枯病菌的菌絲生長(zhǎng)無(wú)直接的抑制作用,但0.10 mmol/L MeJA噴霧處理可顯著降低水稻幼苗紋枯病病情指數(shù),表明一定濃度的MeJA能誘導(dǎo)水稻對(duì)紋枯病產(chǎn)生抗性。
水稻幼苗接種紋枯病菌、用MeJA誘導(dǎo)處理后均能顯著提高幼苗葉片中POD、PPO、PAL、CAT和SOD酶活性。吳樣孫等[31]用3個(gè)對(duì)紋枯病抗性不同的品種接種水稻紋枯病,PAL、PPO、POD的酶活性水平均比未接種的對(duì)照高。鐘慶燕[32]用JA處理的水稻植株P(guān)AL、POD和β-1,3-葡聚糖酶活性顯著增加。向妙蓮等[24]用MeJA處理水稻植株后的葉片POD、CAT、SOD和PPO酶活性均有不同程度的提高,這與本研究結(jié)果一致,表明施用外源MeJA與接種紋枯病菌均能引起水稻相關(guān)防御酶活性顯著升高,以此增強(qiáng)水稻幼苗自身防御能力,從而提高水稻幼苗對(duì)紋枯病的抗性。鐘慶燕[32]用JA處理對(duì)葉片PPO酶活性卻無(wú)明顯的誘導(dǎo)作用,這可能與所用水稻的品種抗性差異有關(guān)。對(duì)同一時(shí)間內(nèi)不同處理之間的差異顯著性分析可知,用MeJA誘導(dǎo)處理或誘導(dǎo)處理后再接種紋枯病菌,對(duì)POD、PAL、SOD、CAT酶活性誘導(dǎo)效應(yīng)均顯著高于單獨(dú)接種紋枯病,但單獨(dú)接種紋枯病對(duì)葉片PPO酶活性的影響效應(yīng)要高于MeJA誘導(dǎo)或MeJA誘導(dǎo)后接種紋枯??;MeJA誘導(dǎo)再接種紋枯病對(duì)PAL、SOD、CAT酶活性的誘導(dǎo)效應(yīng)明顯高于MeJA誘導(dǎo)處理,而2種處理方式在葉片POD和PPO酶活性誘導(dǎo)效應(yīng)方面的差異不顯著。
本研究發(fā)現(xiàn),MeJA對(duì)室內(nèi)苗期水稻紋枯病最佳誘抗效果達(dá)51.56%,誘抗持續(xù)時(shí)間超過(guò)96 h,說(shuō)明MeJA誘導(dǎo)水稻抗紋枯病應(yīng)用于實(shí)際生產(chǎn)的前景較好,但用相同濃度MeJA處理大田環(huán)境下苗期的水稻紋枯病抗性誘導(dǎo)效果卻不明顯。MeJA誘導(dǎo)水稻自身產(chǎn)生的紋枯病抗性較弱,且田間環(huán)境復(fù)雜多變,眾多因素可以影響其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),或許是田間效應(yīng)不明顯的主要原因。為形成具有實(shí)際生產(chǎn)應(yīng)用價(jià)值的水稻紋枯病綠色防控產(chǎn)品,還需在水稻-紋枯病互作機(jī)制及其抗性調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的基礎(chǔ)上,對(duì)MeJA田間應(yīng)用的條件及其效果開(kāi)展進(jìn)一步的研究。
江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)2023年8期