唐桃霞 孔維萍 任凱麗 程鴻 張化生
摘要:為探究熱激處理對(duì)甜瓜未授粉子房培養(yǎng)中胚珠膨大發(fā)育與內(nèi)源激素的影響,以期為揭示胚珠膨大和單倍體培養(yǎng)的機(jī)理研究奠定基礎(chǔ)。以熱激和對(duì)照培養(yǎng)不同天數(shù)的甜瓜未受粉子房為試材,對(duì)胚珠膨大率進(jìn)行動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè),并采用UPLC-ESI-MS/MS法測(cè)定順式玉米素核糖核苷(CZR)、赤霉素3(GA3)、反式玉米素(ZT)、吲哚-3-乙酸(IAA)及脫落酸(ABA)含量,并分析了這5種內(nèi)源激素與胚珠膨大發(fā)育的關(guān)系。結(jié)果表明,與對(duì)照25 ℃室溫培養(yǎng)相比,32 ℃熱激處理4 d有利于胚珠的膨大及內(nèi)源激素的積累,且在胚珠膨大期5種內(nèi)源激素的變化趨勢(shì)一致,均為遞增。各內(nèi)源激素間的比例關(guān)系處于動(dòng)態(tài)變化中,且在整個(gè)膨大期,熱激處理下IAA/(ZT+CZR)、IAA/ABA和IAA/GA3均較對(duì)照25 ℃室溫培養(yǎng)高;胚珠膨大率與內(nèi)源激素IAA呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)達(dá)0.818,與ZT、CZR和ABA均呈顯著正相關(guān),與(ZT+CZR)/GA3呈顯著負(fù)相關(guān)。
關(guān)鍵詞:甜瓜;未授粉子房;胚珠膨大發(fā)育;熱激;內(nèi)源激素
中圖分類號(hào):S652? ? ? ? ? ? ? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A? ? ? ? ? ? ? 文章編號(hào):2097-2172(2023)01-0053-06
doi:10.3969/j.issn.2097-2172.2023.01.013
Effect of Heat Shock on Endogenous Hormones during Ovule Expansion
in Unpollinated Ovary Culture of Melon
TANG Taoxia, KONG Weiping, REN Kaili, CHENG Hong, ZHANG Huasheng
(Institute of Vegetables, Gansu Academy of Agricultural Sciences, Lanzhou Gansu 730070, China)
Abstract: In order to explore the effect of heat shock treatment on ovule expansion and endogenous hormones in unpollinated ovary culture of melon, and to lay a foundation for revealing the mechanism of ovule expansion and haploid culture. The unpollinated ovary of melon cultured for different days under the heat shock and control culture was used as the test material, the ovule expansion rate was monitored dynamically, the contents of cis-zeatin ribonucleoside(CZR), gibberellin 3(GA3), trans-zeatin (ZT), indole-3-acetic acid(IAA) and abscisic acid(ABA) were determined by UPLC-ESI-MS/MS method, and the relationship between these 5 endogenous hormones and ovular expansion was analyzed. The results showed that heat shock treatment was beneficial to ovule enlargement and accumulation of endogenous hormones compared with the control culture at 25℃, and the changes of 5 endogenous hormones in ovule enlargement stage were consistent and increased. The proportional relationship between the hormones was in dynamic change, and the ratios of IAA/(ZT+CZR), IAA/ABA and IAA/GA3 under heat shock treatment were higher than the control throughout the expansion period. The ovule expansion rate was significantly positively correlated with the endogenous hormone IAA(the correlation coefficient was 0.818), and was significantly positively correlated with ZT, CZR and ABA, but was negatively correlated with (ZT+CZR)/GA3.
Key words: Melon; Unpollinated ovary; Ovule expansion; Heat shock; Endogenic hormone
單倍體育種技術(shù)可以突破傳統(tǒng)選系周期長(zhǎng)進(jìn)度慢的局限[1 - 2 ],而瓜類作物單倍體育種常采用離體雌核培養(yǎng)途徑。離體雌核發(fā)育(in vitro gynogenesis)是指通過未受精子房或胚珠的離體培養(yǎng),誘導(dǎo)大孢子或雌配子細(xì)胞分裂形成胚狀體或經(jīng)由愈傷組織形成胚狀體,最終產(chǎn)生單倍體(haploid)或雙單倍體(doubled? haploid)植株的過程。為此,前人針對(duì)離體雌核發(fā)育的影響因素展開了大量研究,如基因型、外植體發(fā)育時(shí)期、預(yù)處理、培養(yǎng)基組成成分和培養(yǎng)條件等,均取得了突破性的進(jìn)展[3 - 5 ],但由于離體雌核培養(yǎng)影響因素眾多,發(fā)育機(jī)制尚不明確,導(dǎo)致誘導(dǎo)技術(shù)存在低效性和不可復(fù)制性,因而嚴(yán)重影響育種應(yīng)用。
熱激處理作為離體雌核培養(yǎng)預(yù)處理的一種有效方式[6 ],在葫蘆科作物甜瓜、黃瓜、南瓜等方面均有報(bào)道[7 - 9 ],但對(duì)其控制單倍體化過程的分子和生理機(jī)制知之甚少。Zhu等 [10 ]研究發(fā)現(xiàn),西瓜未受精胚珠在熱激誘導(dǎo)下,其植物激素等相關(guān)基因的表達(dá)變化可能是誘導(dǎo)未受精胚珠發(fā)育的重要因素,然而在甜瓜中熱激是如何影響未受粉子房(胚珠)發(fā)育和激素變化的還未見報(bào)道。為此,我們分析了甜瓜未受粉子房培養(yǎng)胚珠膨大過程中相關(guān)激素的動(dòng)態(tài)變化規(guī)律,以期為揭示胚珠膨大和單倍體培養(yǎng)的機(jī)理研究奠定基礎(chǔ)。
1? ?材料與方法
1.1? ?供試材料
指示甜瓜品種為厚皮甜瓜自交系C29,由甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所西甜瓜研究室提供。
1.2? ?試驗(yàn)方法
以厚皮甜瓜自交系C29開花前1 d未授粉的子房為外植體。外植體經(jīng)流水沖洗后去掉表皮置于無菌操作臺(tái),75%乙醇震蕩消毒30 s,橫切成約1~2 mm薄片,5% NaClO 震蕩消毒10 min,無菌水清洗3次,用無菌濾紙吸干水分后接種到pH 為5.8的MS培養(yǎng)基[MS+30 g/L Suc(蔗糖)+8.0 g/L Agr(瓊脂)+0.06 mg/L TDZ(噻苯隆)+20.00 mg/L AgNO3(硝酸銀)+0.5 g/L CH(水解酪蛋白)]上,分成兩組,一組置于25 ℃室溫培養(yǎng)(對(duì)照,C),另一組置于32 ℃熱激處理4 d(H)[6 ],然后轉(zhuǎn)入對(duì)照條件下一同培養(yǎng)。晝/夜光周期均為16 h/8 h,分別于開始培養(yǎng)2 d(C1和H1)、4 d(C2和H2)、7 d(C3和H3)、12 d(C4和H4)、20 d(C5和H5)后取樣,每處理取8瓶為混合樣,3次重復(fù),取樣前統(tǒng)計(jì)觀察胚珠膨大發(fā)育情況。
1.3? ?測(cè)定方法
1.3.1? ? 樣品前處理? ? 樣品前處理主要包括激素提取、固相萃取、濃縮復(fù)溶。詳細(xì)步驟按照胡盼盼等[11 ]和Liu等[12 ]的方法,激素提取步驟略有改動(dòng),準(zhǔn)確稱取 0.5 g 液氮研磨好的樣品于 10 mL 離心管中,加入鋼珠,加入 2.5 mL 提取液(甲醇、水、甲酸按體積比7.9∶2.0∶0.1配制,含少量抗氧化劑),破碎 3 min 以上;冰上超聲 30 min,4 ℃浸提 12 h;離心(4 ℃,12 000 rpm,20 min)后取上清;濾渣中加入 2.0 mL 提取液,冰上超聲 30 min,混勻離心,4 ℃浸提 1 h;離心(4 ℃,12 000 rpm,20 min)后取上清,合并浸提液。
1.3.2? ? 上機(jī)檢測(cè)? ? 采用 UPLC-ESI-MS/MS 分析方法,對(duì)IAA(吲哚-3-乙酸)、ZT(反式玉米素)、CZR(順式玉米素核糖核苷)、GA3(赤霉素3)和ABA(脫落酸)含量進(jìn)行定量檢測(cè)。液相色譜條件和質(zhì)譜條件參照胡盼盼等[11 ]的方法,進(jìn)樣量略有改動(dòng),為1.0 μL。CZR、GA3、ZT、IAA、ABA出峰時(shí)間分別為1.64、1.68、1.70、1.92、2.08 min,吸收峰之間分離良好,互不干擾,說明本實(shí)驗(yàn)提取方法和檢測(cè)條件較為可靠。通過計(jì)算各內(nèi)源激素的回歸方程和相關(guān)系數(shù),標(biāo)準(zhǔn)品濃度與峰面積的相關(guān)系數(shù)均大于0.999,關(guān)聯(lián)度較高,符合后續(xù)數(shù)據(jù)分析需要(表1)。
1.4? ?數(shù)據(jù)處理
采用Microsoft Execl 2016軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和計(jì)算,采用SPSS 19.0軟件統(tǒng)計(jì)分析。
2? ?結(jié)果與分析
2.1? ?未受粉子房培養(yǎng)胚珠膨大率變化
胚珠膨大是未受粉子房培養(yǎng)發(fā)育過程的第一步。培養(yǎng)觀察發(fā)現(xiàn),甜瓜未受粉子房培養(yǎng)的胚珠膨大至20 d時(shí)膨大率達(dá)最高,因此,胚珠膨大期實(shí)驗(yàn)以0~20 d為期限。取樣前統(tǒng)計(jì)觀察培養(yǎng)不同天數(shù)32 ℃熱激處理4 d和對(duì)照25 ℃室溫培養(yǎng)的胚珠膨大發(fā)育情況,由表2可知,同一處理胚珠膨大率隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加而提高,熱激處理和對(duì)照最大增幅分別為93.00%、80.00%;同一時(shí)期,除培養(yǎng)2 d(C1和H1)外,其余培養(yǎng)時(shí)間下熱激處理的胚珠膨大率均較對(duì)照高,增幅為12.85~27.77個(gè)百分點(diǎn)。上述結(jié)果初步說明熱激有利于甜瓜未受粉子房的胚珠膨大。
2.2? ?胚珠膨大期內(nèi)源激素含量動(dòng)態(tài)變化
由表3可知,隨著胚珠的膨大,5種內(nèi)源激素變化均為遞增趨勢(shì)。其中IAA變化幅度最大,熱激處理變幅為51.71~138.17 ng/g,對(duì)照變幅為31.94~91.98 ng/g,同一時(shí)期熱激處理較對(duì)照IAA含量差異顯著,差異為19.77~46.19 ng/g。內(nèi)源ZT含量熱激處理變幅為9.05~19.00 ng/g,對(duì)照變幅為7.29~16.93 ng/g。CZR隨著胚珠的膨大逐漸升高,培養(yǎng)前期(2~12 d)對(duì)照均較熱激處理高,但到胚珠膨大后期(20 d),熱激處理的胚珠內(nèi)源CZR大幅升高,且較對(duì)照的含量高3.75 ng/g。ABA的變化趨勢(shì)恰好與CZR相反,培養(yǎng)前期(2~7 d)熱激處理均較對(duì)照的高,但到胚珠膨大中后期(12~20 d)對(duì)照胚珠內(nèi)源ABA大幅升高,且分別較熱激處理的含量高出4.92(12 d)、24.72 ng/g(20 d)。GA3含量熱激處理變幅為17.25~78.85 ng/g,對(duì)照變幅為19.24~83.74 ng/g,且除培養(yǎng)第7 d時(shí)熱激處理較對(duì)照高外,其余時(shí)期均表現(xiàn)為對(duì)照較熱激處理高。綜上可知,熱激處理能顯著影響甜瓜胚珠膨大期內(nèi)源激素的變化,與對(duì)照相比,可提高甜瓜胚珠膨大期IAA和ZT的含量。
2.3? ?內(nèi)源激素間的比例關(guān)系
內(nèi)源性植物激素是植物體自身合成的、控制其生長(zhǎng)發(fā)育的一類微量或痕量信號(hào)分子[13 ],對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育的整個(gè)過程發(fā)揮著重要的調(diào)控作用,而決定生理效應(yīng)的往往不是某種激素的絕對(duì)量,而是各激素間相互作用的結(jié)果[14 - 15 ],因此,本研究對(duì)胚珠膨大期的5類激素間的動(dòng)態(tài)平衡進(jìn)行了分析比較,結(jié)果如圖1所示。各激素間的平衡狀態(tài)處于動(dòng)態(tài)變化中,其中熱激處理和對(duì)照的(ZT+CZR)/IAA值變化趨勢(shì)基本一致,均為先下降,在12 d時(shí)降至最低,然后又上升,且在整個(gè)膨大期對(duì)照的(ZT+CZR)/IAA值均較熱激處理的高,說明熱激處理可能促進(jìn)IAA產(chǎn)生(圖1-A)。對(duì)照的(ZT+CZR)/ABA值逐漸降低,熱激處理的變化趨勢(shì)為“W”型,而在剛開始2 d時(shí)熱激處理和對(duì)照的比值接近,熱激培養(yǎng)過程中(ZT+CZR)/ABA值下降,轉(zhuǎn)到對(duì)照條件下后開始上升,說明熱激處理可能增加雌核內(nèi)ABA的含量(圖1-B)。熱激處理的(ZT+CZR)/GA3值變化趨勢(shì)基本為逐漸下降,僅在12 d時(shí)有所上升,變化范圍在0.37~0.62,對(duì)照的(ZT+CZR)/GA3值變化趨勢(shì)也為逐漸下降,僅在7 d時(shí)有所上升,(ZT+CZR)/GA3值變化范圍為0.28~0.51(圖1-C)。對(duì)照的GA3/ABA值變化趨勢(shì)為先上升后下降,在4 d時(shí)最高;熱激處理的變化趨勢(shì)為“W”型趨勢(shì)(圖1-D)。對(duì)照的IAA/ABA值逐漸下降,熱激處理的IAA/ABA值先下降后上升,在4 d時(shí)最低,且在整個(gè)膨大期內(nèi),熱激處理的IAA/ABA值均高于對(duì)照(圖1-E)。熱激處理的IAA/GA3值變化趨勢(shì)為先下降后上升再下降,對(duì)照的IAA/GA3值基本平穩(wěn),且在整個(gè)膨大期內(nèi),熱激處理的IAA/GA3值均高于對(duì)照(圖1-F)。綜上所述,熱激處理會(huì)增加IAA含量,進(jìn)而促進(jìn)胚珠膨大。
2.4? ?胚珠膨大與內(nèi)源激素相關(guān)性分析
對(duì)胚珠膨大率與5種內(nèi)源激素以及內(nèi)源激素之間的相關(guān)程度進(jìn)行分析的結(jié)果(表4)表明,甜瓜胚珠膨大期其胚珠膨大率與內(nèi)源激素IAA呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.818;與ZT、CZR、ABA均呈顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.755、0.706、0.732;與(ZT+CZR)/GA3呈顯著負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.651;與其余指標(biāo)均有不同程度的相關(guān)性,但均未達(dá)到顯著;胚珠膨大期內(nèi)各內(nèi)源激素間也具有一定的相關(guān)性,如IAA與ZT、CZR、ABA之間均呈極顯著正相關(guān);ZT與CZR、ABA均呈極顯著正相關(guān),與GA3呈顯著正相關(guān);CZR與ABA呈極顯著正相關(guān),與(ZT+CZR)/GA3呈顯著負(fù)相關(guān);GA3與ABA呈極顯著正相關(guān),與(ZT+CZR)/ABA呈極顯著負(fù)相關(guān),與(ZT+CZR)/GA3呈顯著負(fù)相關(guān);ABA與(ZT+CZR)/GA3呈極顯著負(fù)相關(guān)。
3? ?討論與結(jié)論
植物離體培養(yǎng)的理論與實(shí)踐證明,培養(yǎng)基中添加的外源激素是通過內(nèi)源激素水平來起作用的[16 ],越來越多的研究也表明植物生長(zhǎng)發(fā)育的各個(gè)階段都受到內(nèi)源激素的調(diào)節(jié)與控制[17 ]。本研究結(jié)果表明,在胚珠膨大期,內(nèi)源激素CZR、GA3、ZT、IAA和ABA含量均直線上升,且熱激處理的雌核膨大率及IAA和ZT含量均較對(duì)照室溫培養(yǎng)的高。前人研究表明,在胚誘導(dǎo)期間進(jìn)行熱激處理,對(duì)于單倍體胚胎形成可能有益,且熱激(32 ~ 35 ℃)處理對(duì)瓜類作物的子房和胚珠培養(yǎng)起到積極作用[6,18 ];朱迎春等[19 ]也研究表明,熱激處理可能增加了子房細(xì)胞的活躍程度,且熱激蛋白、植物激素和胚胎發(fā)育相關(guān)基因的表達(dá)變化可能是誘導(dǎo)未受精胚珠發(fā)育的重要因素。
各類植物激素的生理作用具有相對(duì)專一性,但植物的各種生理反應(yīng)是不同種類植物激素相互作用的結(jié)果,在體胚發(fā)生過程中,植物激素的平衡是調(diào)控胚胎發(fā)育的重要條件[20 ]。從本研究結(jié)果來看,胚珠膨大期內(nèi),熱激處理的IAA/(ZT+CZR)值、IAA/ABA和IAA/GA3值均較對(duì)照室溫培養(yǎng)的高,說明高比例的IAA有利于促進(jìn)細(xì)胞膨大(胚珠的膨大),這與吳貝等[21 ]和劉曉曉等[22 ]研究結(jié)果相似。張亞芳等[23 ]研究發(fā)現(xiàn)IAA/ABA 呈先降后升趨勢(shì),對(duì)芽的分化與生長(zhǎng)有著重要的促進(jìn)作用,本研究中對(duì)照室溫培養(yǎng)的IAA/ABA值逐漸下降,而熱激處理的先下降后上升,推測(cè)熱激更有利于胚狀體形成。
由胚珠膨大率和各激素間的相關(guān)性分析可知,甜瓜胚珠膨大期內(nèi)其胚珠膨大率與內(nèi)源激素IAA呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)達(dá)0.818,這進(jìn)一步證明IAA是參與調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)發(fā)育的重要激素,影響細(xì)胞的擴(kuò)增和分裂、細(xì)胞的伸長(zhǎng)和分化以及多種生理反應(yīng)[24 ];且與ZT、CZR和ABA也均呈顯著正相關(guān),與(ZT+CZR)/GA3呈顯著負(fù)相關(guān),說明未授粉胚珠膨大是由多種內(nèi)源激素共同作用的。
綜上,胚珠膨大期各內(nèi)源激素的含量、變化規(guī)律以及平衡關(guān)系對(duì)胚珠的膨大發(fā)育具有重要的調(diào)控功能,熱激處理較對(duì)照更有利于胚珠的膨大及IAA和ZT含量的積累。此外還發(fā)現(xiàn),胚珠膨大率與IAA呈極顯著正相關(guān),與ZT、CZR和ABA均呈顯著正相關(guān),這為單倍體形成的機(jī)理研究奠定了一定的基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1] 柯思佳,錢春桃,包衛(wèi)紅,等.? 甜瓜離體雌核發(fā)育誘導(dǎo)單倍體研究進(jìn)展[J].? 中國(guó)瓜菜,2018,31(9):1-5.
[2] KALINOWSKA K, CHAMAS S, UNKEL K, et al.? State-of-the-art and novel developments of in vivo haploid technologies[J].? The oretical and Applied Genetics, 2019,
132(3): 593-605.
[3] 唐桃霞.? 西葫蘆未授粉子房培養(yǎng)及胚囊植株倍性鑒定技術(shù)研究[D].? 楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2015.
[4] 閔子揚(yáng),鄒? ?甜,阮萬輝,等.? 西瓜離體雌核發(fā)育誘導(dǎo)單倍體植株再生[J].? 分子植物育種,2019,17(13):4404-4409.
[5] DENG Y, TANG B, ZHOU X, et al.? Direct regeneration of haploid or doubled haploid plantlets in cucumber (Cucumis sativus L.) through ovary culture[J].? Plant Cell, Tissue and Organ Culture(PCTOC), 2020, 142(2): 253-268.
[6] 周? ?霞,鄧? ?英,陳勁楓.? 瓜類作物離體雌核誘導(dǎo)單倍體研究進(jìn)展[J].? 園藝學(xué)報(bào),2020,47(9):1810-1826.
[7] 高寧寧,李曉慧,康利允,等.? 厚皮甜瓜未受精子房離體培養(yǎng)獲得胚囊再生植株[J].? 果樹學(xué)報(bào),2020,37(7):1036-1045.
[8] 周? ?霞,張? ?璐,周俊國(guó),等.? 黃瓜未授粉子房離體培養(yǎng)獲得胚囊再生植株[J].? 園藝學(xué)報(bào),2020,47(3):455-466.
[9] 鄧? ?英,唐? ?兵,吳康云,等.? 南瓜未授粉子房培養(yǎng)形成再生植株的研究[J].? 西北植物學(xué)報(bào),2018,38(2):381-385.
[10] ZHU Y, SUN D, YUN D, et al.? Comparative transcriptome analysis of the effect of different heat shock periods on the unfertilized ovule in watermelon (Citrullus lanatus)[J].? Journal of Integrative Agriculture, 2020, 19(2): 528-540.
[11] 胡盼盼,張香粉,趙? ?霞,等.? 草莓新莖分枝與獨(dú)腳金內(nèi)酯的關(guān)系[J].? 果樹學(xué)報(bào),2019,36(5):578-589.
[12] LIU W, XU J, FU W, et al.? Evidence of stress imprinting with population level differences in two moss species[J].? Ecology and evolution, 2019, 9(11): 6329-6341.
[13] 李玉璇,段春鳳,關(guān)亞風(fēng).? 植物樣品中內(nèi)源性植物激素時(shí)空分布的研究進(jìn)展[J].? 色譜,2019,37(8):806-814.
[14] 肖關(guān)麗,楊清輝.? 植物組織培養(yǎng)過程中內(nèi)源激素研究進(jìn)展[J].? 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2001,16(2):136-138.
[15] 張? ?莉. 植物內(nèi)源激素對(duì)楊樹枝條分枝角度的影響[D].? 泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.
[16] 張慧君,欒非時(shí),王學(xué)征,等.? 甜瓜自交系不定芽再生過程中內(nèi)源激素含量的變化[J].? 中國(guó)蔬菜,2012(24):43-47.
[17] 劉? ?燕,于美玲,張? ?然,等.? 甘肅野生草地早熟禾內(nèi)源激素含量的變化與無融合生殖率的關(guān)系研究[J].? 草業(yè)學(xué)報(bào),2020,29(7):99-111.
[18] SHALABY T A. Factors affecting haploid induction through in vitro gynogenesis in summer squash (Cucurbita pepo L.)[J].? Scientia Horticulturae, 2007, 115(1): 1-6.
[19] 朱迎春,李衛(wèi)華,安國(guó)林,等.? 熱激處理的西瓜未受精胚珠轉(zhuǎn)錄組分析[J].? 植物遺傳資源學(xué)報(bào),2021,
22(3):834-850.
[20] 劉華英,蕭浪濤,何長(zhǎng)征.? 植物體細(xì)胞胚發(fā)生與內(nèi)源激素的關(guān)系研究進(jìn)展[J].? 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2002(4):349-354.
[21] 吳? ?貝,季玉潔,李盼盼,等.? 薄皮甜瓜果實(shí)早期發(fā)育的細(xì)胞學(xué)觀察及內(nèi)源激素變化[J].? 北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),2016,31(2):64-68.
[22] 劉曉曉,潘玉朋,劉? ?策,等.? 不同果型黃瓜子房的組織學(xué)觀察及其與內(nèi)源激素含量的關(guān)系[J].? 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2021,49(5):96-103.
[23] 張亞芳,何? ?鋼,榮廣天,等.? 雞血藤愈傷組織培養(yǎng)過程中內(nèi)源激素變化研究[J].? 生物技術(shù)通報(bào),2017,
33(3):66-70.
[24] SCHALLER G E, BISHOPP A, KIEBER J J.? The yin-yang of hormones: cytokinin and auxin interactions in plant development[J].? The Plant Cell, 2015, 27(1): 44-63.
收稿日期:2022 - 10 - 14;修訂日期:2022 - 11 - 09
基金項(xiàng)目:甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院中青年基金(2020GAAS44);甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物育種專項(xiàng)(2022GAAS05)。
作者簡(jiǎn)介:唐桃霞(1988 — ),女,甘肅臨洮人,助理研究員,主要從事西甜瓜育種工作。Email: tangtaoxia@126.com。
通信作者:孔維萍(1975 — ),女,甘肅永靖人,副研究員,主要從事西甜瓜育種工作。Email: wpk33@126.com。