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金絲皇菊離體培養(yǎng)技術(shù)

2022-12-09 07:16梁小敏夏慧敏龔福保劉隆學(xué)
浙江農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年12期
關(guān)鍵詞:腋芽金絲種苗

梁小敏,夏慧敏,龔福保,劉隆學(xué)

(1.江西農(nóng)業(yè)工程職業(yè)學(xué)院,江西 樟樹(shù) 331200;2.江西省致遠(yuǎn)農(nóng)業(yè)發(fā)展有限公司,江西 高安 330800)

金絲皇菊(Chrysanthemummorifolium‘Huangju’)簡(jiǎn)稱皇菊,也叫九月菊、大黃菊,花大、色艷,富含黃酮、氨基酸和微量元素,具有較高的觀賞和藥用價(jià)值?!渡褶r(nóng)本草經(jīng)》記載菊花“久服利血?dú)猓p身耐老延年”,藥典記載其性涼,味甘、苦,微寒,有散風(fēng)清熱、平肝明目、清熱解毒、延緩衰老等作用[1-2]。

由于金絲皇菊市場(chǎng)一路走高,隨著引種和種植面積的擴(kuò)大,種苗繁育出現(xiàn)了一些問(wèn)題。金絲皇菊種苗繁殖分為扦插繁殖和分株繁殖2種,但這2種繁殖方式的繁殖系數(shù)低,且容易傳染母株病毒、導(dǎo)致產(chǎn)量降低、花型變小,嚴(yán)重影響其品質(zhì)和商業(yè)價(jià)值。植物組織培養(yǎng)技術(shù)在大量的種苗繁殖中均可有效地解決這方面的難題,但在金絲皇菊上的應(yīng)用報(bào)道還不多見(jiàn)[3-5]。為探索植物組織培養(yǎng)技術(shù)在金絲皇菊種苗上的應(yīng)用,對(duì)其進(jìn)行了系統(tǒng)試驗(yàn)研究。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

采用江西省致遠(yuǎn)農(nóng)業(yè)發(fā)展有限公司提供的金絲皇菊嫩莖段作為試驗(yàn)材料。

1.2 材料處理

選取生長(zhǎng)健壯的當(dāng)年生金絲皇菊嫩莖段(帶1~2個(gè)芽),去除多余的葉片及莖段,置于流水中用軟毛刷刷去表面的灰塵和泥土,將幼莖剪成帶腋芽的1.5~2 cm長(zhǎng)的莖段,于1%洗衣粉溶液浸泡1 min,然后流水沖洗0.5 h,置于超凈工作臺(tái)中,用75%乙醇溶液浸泡30 s,無(wú)菌水漂洗2~3次,轉(zhuǎn)入已加入2~3滴吐溫的0.1%升汞溶液中浸泡6 min滅菌,取出用無(wú)菌水漂洗5~6次,備用[6]。

1.3 培養(yǎng)基及配方

以基本培養(yǎng)基(MS)為培養(yǎng)基,蔗糖20 g·L-1,瓊脂5 g·L-1,以不同濃度的6-芐氨基嘌呤(6-BA)和萘乙酸(NAA)配制芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基。以MS為基本培養(yǎng)基,蔗糖20 g·L-1,瓊脂5 g·L-1,以不同濃度的6-BA和不同濃度的NAA配制增殖培養(yǎng)基。pH均調(diào)節(jié)為5.8~6.0[7],經(jīng)高壓滅菌處理后備用[8]。

1.4 試驗(yàn)方法

經(jīng)滅菌處理后的外植體,接入芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基,在適宜條件下誘導(dǎo)出芽。當(dāng)芽生長(zhǎng)至0.5 cm后,即轉(zhuǎn)入增殖培養(yǎng)基進(jìn)行增殖培養(yǎng)。

1.5 培養(yǎng)條件

光照強(qiáng)度3 000 lx,光照時(shí)問(wèn)12 h,培養(yǎng)溫度(22±1)℃[9]。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同濃度植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)金絲皇菊誘導(dǎo)芽的影響

將外植體莖段接入芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,進(jìn)行培養(yǎng)5~10 d[10],可見(jiàn)莖節(jié)上潛伏的腋芽開(kāi)始萌動(dòng)生長(zhǎng)。20 d左右可逐漸形成主芽及芽叢,記錄誘導(dǎo)數(shù)并計(jì)算誘導(dǎo)率(表1)。使用SPSS 25對(duì)其進(jìn)行單變量雙因素主效的方差分析和LSD多重比較,結(jié)果見(jiàn)表2。

表1 不同濃度激素下金絲皇菊芽誘導(dǎo)情況

表2 不同6-BA和NAA濃度下金絲皇菊的誘導(dǎo)率

從分析結(jié)果來(lái)看,6-BA濃度在0.1~0.5 mg·L-1,金絲皇菊芽誘導(dǎo)率差異顯著,其中6-BA為0.10 mg·L-1時(shí)誘導(dǎo)率較高,生長(zhǎng)良好,且隨著6-BA濃度的升高,其誘導(dǎo)率有下降的趨勢(shì),生長(zhǎng)狀況也較差。NAA濃度在0.05~0.25 mg·L-1,金絲皇菊芽誘導(dǎo)率差異顯著,其中NAA濃度為0.10和0.15 mg·L-1時(shí)金絲皇菊芽誘導(dǎo)率較高,低于或高于此濃度,其誘導(dǎo)率均下降。

試驗(yàn)表明,培養(yǎng)基MS+6-BA 0.1 mg·L-1+NAA 0.10~0.15 mg·L-1對(duì)腋芽的誘導(dǎo)率較高,且芽生長(zhǎng)健壯,是較理想的芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基配方。

2.2 不同激素濃度組合對(duì)金絲皇菊增殖的影響

當(dāng)腋芽長(zhǎng)至0.5 cm左右,將其從基部切下(均分割為單株),接入不同濃度的6-BA、NAA激素配制的增殖培養(yǎng)基中,5~10 d可見(jiàn)幼苗基部萌發(fā)出新芽[11]。約30 d后,記錄叢生芽情況(表3)。使用SPSS 25對(duì)其進(jìn)行單變量雙因素主效的方差分析和LSD多重比較,結(jié)果見(jiàn)表4。

表3 不同濃度激素下金絲皇菊增殖情況表

表4 不同6-BA和NAA濃度下金絲皇菊的增殖系數(shù)

從結(jié)果分析來(lái)看,6-BA濃度在0~0.4 mg·L-1,金絲皇菊試管苗的增殖系數(shù)差異顯著。其中,6-BA濃度為0.3 mg·L-1增殖系數(shù)最高,生長(zhǎng)良好。NAA濃度在0.05~0.25 mg·L-1,金絲皇菊試管苗的增殖系數(shù)差異顯著,其中,NAA濃度為0.05~0.10 mg·L-1增殖系數(shù)最高,且隨著NAA濃度的升高,增殖系數(shù)有下降的趨勢(shì)。

試驗(yàn)表明,培養(yǎng)基MS+6-BA 0.3 mg·L-1+NAA 0.05~0.10 mg·L-1,分化增殖的新生芽數(shù)多,幼苗生長(zhǎng)健壯,植株高大,是比較適宜的增殖培養(yǎng)基。

3 小結(jié)

本試驗(yàn)以金絲皇菊帶腋芽莖段為試驗(yàn)材料,進(jìn)行組培快繁。通過(guò)組織培養(yǎng)進(jìn)行快速繁殖金絲皇菊種苗,是一項(xiàng)可行的技術(shù)。通過(guò)不同激素濃度對(duì)芽誘導(dǎo)以及增殖的影響試驗(yàn),說(shuō)明較低濃度6-BA和NAA有利于腋芽的誘導(dǎo)和增殖。MS+6-BA 0.1 mg·L-1+NAA 0.10~0.15 mg·L-1是適宜的芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基,MS+6-BA 0.3 mg·L-1+NAA 0.05~0.10 mg·L-1是適宜的增殖培養(yǎng)基。至于6-BA與NAA兩因素之間的互作,則需要進(jìn)一步試驗(yàn)研究。金絲皇菊的生根和馴化移栽比較簡(jiǎn)單。適宜濃度的NAA可誘導(dǎo)生根,正常情況下進(jìn)行馴化即可成活,且成活率很高。

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