鄭 婕 莊遠(yuǎn)航 郭梓琪 許 藝 鐘俊杰 黃維峰 胡 芳 李海渤 雷建軍,2* 吳 昊*
(1 韶關(guān)學(xué)院英東生物與農(nóng)業(yè)學(xué)院,廣東韶關(guān) 512005;2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,廣東廣州 510642;3 廣東省粵北食藥資源利用與保護(hù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東韶關(guān) 512005)
辣椒(spp.)是茄科辣椒屬的重要蔬菜作物,也是我國(guó)栽培面積最大的蔬菜作物(鄒學(xué)校 等,2020;王立浩 等,2021)。廣東省作為我國(guó)重要的南菜北運(yùn)基地,辣椒年種植面積達(dá)9.92 萬(wàn)hm(李穎 等,2020)。隨著廣東省農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)結(jié)構(gòu)調(diào)整以及脫貧攻堅(jiān)的大力開(kāi)展,粵北地區(qū)辣椒種植面積逐年增大,辣椒病害發(fā)生也日趨嚴(yán)重。辣椒炭疽病是一種世界性的辣椒病害,每年全球因炭疽病導(dǎo)致辣椒減產(chǎn)約50%,熱帶或亞熱帶地區(qū)受到的影響最為嚴(yán)重(Than et al.,2008;Ridzuan et al.,2018)。印度每年因炭疽病造成辣椒減產(chǎn)10%~54%,越南因炭疽病導(dǎo)致辣椒產(chǎn)量下降最高可達(dá)80%(Saxena et al.,2016)。辣椒炭疽病在我國(guó)可導(dǎo)致辣椒減產(chǎn)30%~40%,嚴(yán)重時(shí)減產(chǎn)50%左右(林清 等,2005;周黛媛 等,2022),廣東省地處亞熱帶和熱帶,是辣椒炭疽病的高發(fā)地區(qū)。
辣椒炭疽病的典型癥狀是在病果和病葉上出現(xiàn)同心輪紋狀病斑,病原菌不僅為害生長(zhǎng)期的辣椒果實(shí)和莖葉,還能在采后貯運(yùn)過(guò)程中持續(xù)造成果實(shí)腐爛,嚴(yán)重影響干鮮椒的產(chǎn)量和品質(zhì)。引起辣椒炭疽病的病原菌屬于半知菌亞門(mén)炭疽菌屬(),該屬種類(lèi)繁多且類(lèi)別復(fù)雜,常見(jiàn)優(yōu)勢(shì)種有(異名)、(曾被鑒定為)以及(曾被鑒定為)(Mongkolporn,2019)。我國(guó)已報(bào)道的辣椒炭疽病致病菌至少有15種,且不同地區(qū)的優(yōu)勢(shì)種差異較大(Diao et al.,2017)。由于不同的炭疽病菌對(duì)殺菌劑的敏感性存在差異(滿(mǎn)益龍 等,2016),而殺菌劑的不合理施用不僅會(huì)導(dǎo)致農(nóng)藥浪費(fèi)和環(huán)境污染,還可能導(dǎo)致病原菌出現(xiàn)耐藥性甚至抗藥性。因此有必要針對(duì)辣椒主要產(chǎn)區(qū)的炭疽病菌進(jìn)行分離和鑒定,為指導(dǎo)田間高效防治藥劑的施用奠定基礎(chǔ)。為此,本試驗(yàn)對(duì)采集自廣東省韶關(guān)市南雄市辣椒種植區(qū)的辣椒炭疽病病果進(jìn)行病原菌分離純化和微生物學(xué)、分子生物學(xué)方法鑒定,并利用12 種殺菌劑進(jìn)行室內(nèi)毒力測(cè)定,以期為粵北地區(qū)辣椒炭疽病防治提供依據(jù)。
2020 年10 月于廣東省韶關(guān)市南雄市湖口鎮(zhèn)辣椒基地,采集疑似感染炭疽病的朝天椒果實(shí)樣本。將獲得的果實(shí)樣本帶回實(shí)驗(yàn)室,通過(guò)組織分離法將病果的病健交界處剪成5 mm × 5 mm 小塊,用0.1%HgCl消毒1 min,滅菌ddHO 沖洗5~6 次后用無(wú)菌吸水紙吸干水分,接種到番茄燕麥瓊脂(tomato oatmeal agar,TOA)培養(yǎng)基中進(jìn)行分離培養(yǎng)及菌落純化。TOA 培養(yǎng)基:番茄汁150 mL、CaCO0.6 g、燕麥片40 g、瓊脂粉20 g、蒸餾水1 L,121 ℃滅菌20 min。
用打孔器在TOA 培養(yǎng)基上培養(yǎng)1 周的菌落邊緣打取直徑0.3 cm 的小菌塊,取3~5 個(gè)菌塊置于50 mL 液體TOA 培養(yǎng)基中,在28 ℃恒溫?fù)u床中130 r·min培養(yǎng)72 h。在超凈工作臺(tái)中將培養(yǎng)好的菌塊轉(zhuǎn)移至新的無(wú)菌培養(yǎng)皿中,加入滅菌的蒸餾水,28 ℃光照條件下培養(yǎng)12 h。之后去除培養(yǎng)皿中的蒸餾水,置于28 ℃黑暗條件下處理12 h。待孢子囊成熟后,將菌塊轉(zhuǎn)移至無(wú)菌試管中,加5 mL 滅菌蒸餾水,利用渦旋儀振蕩2 min 使孢子囊脫落。孢子懸液用于顯微觀察和針刺接種。
為了確定病原菌致病性,依據(jù)柯赫氏法則將病原分離物重新接種朝天椒,發(fā)病后再進(jìn)行分離鑒定(方中達(dá),1998)。取新鮮健康的朝天椒綠果,對(duì)果實(shí)表面進(jìn)行消毒,采用針刺接種法將5 μL 病菌孢子懸浮液(孢子濃度為1 × 10個(gè)·mL)接種至果實(shí)表面,對(duì)照組接種等量滅菌ddHO,于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),濕度80%,每個(gè)處理進(jìn)行3 次生物學(xué)重復(fù)。
觀察并記錄病原菌菌落在TOA 培養(yǎng)基上的形態(tài)、大小及顏色等特征。誘導(dǎo)病菌的孢子懸浮液并進(jìn)行顯微制片,通過(guò)顯微鏡觀察并記錄病原菌的分生孢子形態(tài)特征。
利用真菌基因組DNA 快速抽提試劑盒〔生工生物工程(上海)股份有限公司,B518229〕,對(duì)病原菌的基因組DNA 進(jìn)行抽提和純化。對(duì)病原菌的核糖體轉(zhuǎn)錄間隔序列(internal transcribed spaces,ITS)、β-微管蛋白基因(β-tubulingene,)、3-磷酸甘油醛脫氫酶基因(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase gene,)、幾 丁質(zhì)合成酶A 基因(chitin synthase A gene,)和肌動(dòng)蛋白基因(actin gene,)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,所用引物見(jiàn)表1。PCR 的反應(yīng)體系包括病原菌基因組DNA 100 ng,引物4 mmol·L,KOD 酶0.4 μL,2× KOD buffer 10 μL,dNTP 4 mmol·L,ddHO 補(bǔ)足至20 μL。PCR 程序設(shè)置為:98 ℃預(yù)變性5 min;98 ℃變性30 s,60 ℃退火45 s,68 ℃延伸30 s;共35 個(gè)循環(huán)。PCR 產(chǎn)物通過(guò)1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè),將擴(kuò)增長(zhǎng)度符合預(yù)期的PCR產(chǎn)物連接到pEASY-blunt zero 載體上,對(duì)陽(yáng)性克隆進(jìn)行測(cè)序及進(jìn)一步的序列分析。
表1 病原菌分子鑒定相關(guān)基因克隆所用引物
將、、、和基 因片段的測(cè)序結(jié)果在GenBank 中進(jìn)行BLAST 序列比對(duì),利用數(shù)據(jù)庫(kù)中的炭疽菌屬模式菌株的、、、和基因序列作為參考序列(Diao et al.,2017)。將上述基因序列進(jìn)行串聯(lián)分析,利用Geneious v4.8.3 軟件對(duì)組合數(shù)據(jù)集進(jìn)行鄰接(neighbor-joining,NJ)系統(tǒng)聚類(lèi)分析,通過(guò)自展法(bootstrap analysis)對(duì)系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)進(jìn)化枝的穩(wěn)定性進(jìn)行評(píng)估,重復(fù)1 000 次。本試驗(yàn)涉及的炭疽菌屬模式菌株的相關(guān)信息詳見(jiàn)表2。
表2 用于系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析的炭疽菌菌株
供試12 種常用殺菌劑購(gòu)買(mǎi)于本地市場(chǎng)(表3)。先將12 種殺菌劑配制成待測(cè)母液,然后按比例加至TOA 培養(yǎng)基中:在無(wú)菌條件下,按10、100、1 000 μg·mL的終濃度將所需母液量加入培養(yǎng)基中,空白對(duì)照為加入等量無(wú)菌水的培養(yǎng)基。用接種針挑取直徑為3 mm 的菌塊接種至培養(yǎng)基的中央,28 ℃培養(yǎng)7 d,每個(gè)濃度梯度進(jìn)行3 次生物學(xué)重復(fù)。采用“十”字交叉法對(duì)菌落直徑進(jìn)行測(cè)量并記錄數(shù)據(jù)。將抑菌效果較好的6 種有效藥劑挑出進(jìn)行第2輪試驗(yàn),其中咪鮮胺、苯甲·丙環(huán)唑和甲基硫菌靈濃度梯度為0.5、1.0、2.0、4.0、8.0 μg·mL,腈菌唑、唑醚·代森聯(lián)和醚菌酯濃度梯度為5、10、20、40、80 μg·mL。采用生長(zhǎng)速率法測(cè)定和計(jì)算不同藥劑的抑菌率。根據(jù)各殺菌劑濃度對(duì)數(shù)值及對(duì)應(yīng)的抑菌率作回歸分析,計(jì)算各殺菌劑的毒力回歸方程(=+)、抑菌有效中濃度(EC)及相關(guān)系數(shù)()。
表3 供試藥劑及生產(chǎn)廠家
抑菌率=(對(duì)照菌落直徑-處理菌落直徑)/(對(duì)照菌落直徑-接種菌餅直徑)× 100%
采用Microsoft Excel 2010 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和作圖,利用DPS v7.05 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。
辣椒炭疽病多發(fā)生于每年7 月初至9 月中旬,正是成熟辣椒大量采收和貯運(yùn)的關(guān)鍵時(shí)期。2020年,廣東省韶關(guān)市南雄市朝天椒種植區(qū)大面積暴發(fā)辣椒炭疽病,嚴(yán)重地塊的病果率高達(dá)80%。該病原菌主要為害紅熟后的辣椒果實(shí),并在采后貯運(yùn)過(guò)程中持續(xù)造成果實(shí)腐爛。發(fā)病初期,被害果實(shí)出現(xiàn)褐色不規(guī)則病斑。貯運(yùn)過(guò)程中密封的濕熱環(huán)境加速病害的蔓延,病斑上出現(xiàn)橘黃色的孢子團(tuán)。發(fā)病后期,病斑擴(kuò)散至整個(gè)果實(shí),病果失水干枯并發(fā)生脫落(圖1-a)。
圖1 南雄辣椒炭疽病發(fā)病癥狀及病原菌形態(tài)
通過(guò)組織分離法,在TOA 培養(yǎng)基上分離到白色的真菌菌落(圖1-b)。對(duì)分離得到的病原菌進(jìn)行純化,菌落在培養(yǎng)基上呈圓形,菌絲呈白色絨狀,后期逐漸變?yōu)榛疑⒂型沫h(huán)紋(圖1-c)。分生孢子為無(wú)色單胞,形狀為長(zhǎng)棒狀,長(zhǎng)軸為8~17 μm,短軸為4~6 μm(圖1-d)。
利用針刺接種法對(duì)新鮮的朝天椒綠果進(jìn)行炭疽病菌孢子懸液的接種,2 d 后接種位置出現(xiàn)炭疽病病斑,病情發(fā)展迅速。接種后第6 天,炭疽病病斑凹陷,呈長(zhǎng)橢圓形,直徑可達(dá)10~15 mm,中央產(chǎn)生大量橙色粘稠的孢子團(tuán),外周呈褐色;對(duì)照未出現(xiàn)病斑,針刺位置可清晰辨認(rèn)(圖2)。根據(jù)柯赫氏法則,將本次試驗(yàn)的發(fā)病組織重新進(jìn)行組織分離,得到的病原菌與之前分離的原始病原菌一致,確定該菌為南雄朝天椒炭疽病的致病菌,并將該菌株命名為NX-1。
圖2 辣椒炭疽病病原菌的致病性測(cè)定結(jié)果
對(duì)南雄辣椒炭疽病菌NX-1 的、、、和基因進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,獲得長(zhǎng)度分別為558、759、248、291 bp 和 250 bp的DNA 序列(圖3)。對(duì)上述基因片段進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果通過(guò)多基因的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)進(jìn)行分析,結(jié)果表明病原菌NX-1 與炭疽菌模式菌株CBS 120708 為一個(gè)進(jìn)化支(圖4)。結(jié)合NX-1 的形態(tài)學(xué)特征和多基因系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析結(jié)果,將南雄辣椒炭疽病菌NX-1 鑒定為炭疽菌。
圖3 NX-1 分子鑒定相關(guān)基因的PCR 擴(kuò)增
圖4 炭疽病菌NX-1 的多基因系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析結(jié)果
通過(guò)10、100、1 000 μg·mL3 個(gè)濃度梯度的12 種藥劑對(duì)炭疽病進(jìn)行初步的抑菌效果鑒定,結(jié)果表明:咪唑類(lèi)和三唑類(lèi)的單劑(咪鮮胺和腈菌唑)或復(fù)配劑(苯甲·丙環(huán)唑)均表現(xiàn)出良好的抑菌效果;取代苯基類(lèi)的甲基硫菌靈抑菌效果較好,但百菌清效果一般;甲氧基丙烯酸酯類(lèi)的單劑(醚菌酯)或復(fù)配劑(唑醚·代森聯(lián))也表現(xiàn)出較好的抑菌效果;春雷·王銅和甲霜·噁霉靈這兩種復(fù)配劑只能在高濃度條件下具有抑菌作用;噁霉·絡(luò)氨銅的抑菌效果較差;烯酰嗎啉和噻菌酮幾乎沒(méi)有抑菌作用(圖5、6)。
圖5 不同濃度殺菌劑對(duì)炭疽病菌NX-1 菌絲生長(zhǎng)的抑制作用
圖6 不同濃度殺菌劑對(duì)炭疽病菌NX-1 的抑制率
采用咪鮮胺、苯甲·丙環(huán)唑、甲基硫菌靈、腈菌唑、唑醚·代森聯(lián)和醚菌酯6 種抑菌效果較好的殺菌劑對(duì)NX-1 進(jìn)一步進(jìn)行室內(nèi)毒力測(cè)定,結(jié)果表明,6 種藥劑均能不同程度地抑制炭疽病菌菌絲的生長(zhǎng),其抑菌作用由強(qiáng)到弱依次為:咪鮮胺>苯甲·丙環(huán)唑>甲基硫菌靈>腈菌唑>唑醚·代森聯(lián)>醚菌酯(圖7)。咪鮮胺和苯甲·丙環(huán)唑的EC均在1 μg·mL以?xún)?nèi),分別為0.019 6 μg·mL和0.282 8 μg·mL,抑菌效果較強(qiáng);其次是甲基硫菌靈和腈菌唑,EC分別為1.694 6 μg·mL和7.475 6 μg·mL;唑醚·代森聯(lián)和醚菌酯的EC較高,分別為16.130 8 μg·mL和19.942 8 μg·mL(表4)。
圖7 6 種有效藥劑對(duì)炭疽病菌NX-1 菌絲生長(zhǎng)的抑制作用
表4 6 種有效殺菌劑對(duì)炭疽病菌NX-1 的室內(nèi)毒力測(cè)定
近年來(lái),廣東省南雄市的辣椒種植逐漸成為了具有地方特色的北運(yùn)蔬菜產(chǎn)業(yè)。然而,辣椒的炭疽病害也隨著南雄辣椒種植面積的擴(kuò)大而日趨嚴(yán)重。本試驗(yàn)從南雄市湖口鎮(zhèn)辣椒基地采集疑似辣椒炭疽病的自然發(fā)病朝天椒果實(shí),獲得分離純化的辣椒炭疽病病原菌,通過(guò)致病性測(cè)定、微生物形態(tài)學(xué)分析和分子生物學(xué)研究方法確定南雄朝天椒炭疽病病原菌的種類(lèi)為。近年來(lái),分子生物學(xué)在真菌的分類(lèi)研究中發(fā)揮了很大作用,序列分析、多基因的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析等方法被廣泛應(yīng)用(Marin-Felix et al.,2017)?;蚴欠肿訖z測(cè)中最常用的靶基因,但該基因沒(méi)有足夠的變異位點(diǎn)用以區(qū)分所有的菌種(Innis et al.,1991)。本試驗(yàn)使用的多基因系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析是基于、、、和5 個(gè)基因的串聯(lián)分析,該方法在親緣關(guān)系較近、外形相似的真菌間的分析比較與種類(lèi)鑒定中較單基因序列分析更具優(yōu)勢(shì)。
通過(guò)對(duì)12 種殺菌劑的抑菌效果鑒定和室內(nèi)毒力測(cè)定,表明咪鮮胺、苯甲·丙環(huán)唑、甲基硫菌靈、腈菌唑、唑醚·代森聯(lián)和醚菌酯均對(duì)南雄辣椒炭疽病菌表現(xiàn)出不同程度的抑制作用。從EC來(lái)看,咪鮮胺和苯甲·丙環(huán)唑的抑菌作用最強(qiáng),其EC分別為0.019 6 μg·mL和0.282 8 μg·mL。因此,咪鮮胺和苯甲·丙環(huán)唑均可用于南雄辣椒炭疽病的防治,可將咪鮮胺作為首選殺菌劑,或二者交替使用。此外,由于田間環(huán)境影響因素較多,殺菌劑的室內(nèi)毒力與田間實(shí)際防治效果可能有所差異,今后將進(jìn)一步測(cè)定咪鮮胺和苯甲·丙環(huán)唑在大田中對(duì)辣椒炭疽病菌的影響,以期在實(shí)際的辣椒生產(chǎn)中指導(dǎo)企業(yè)和農(nóng)民在辣椒炭疽病害管理過(guò)程中科學(xué)、高效用藥,降低生產(chǎn)成本和農(nóng)藥施用量,為食品安全和生態(tài)環(huán)境提供保障。