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內(nèi)毒素血癥通過下調(diào)HNF4α表達加劇肝損傷

2022-11-02 08:39唐永靜陳云芬廖月程其嬌張桂娟王云何毅懷
天津醫(yī)藥 2022年10期
關(guān)鍵詞:內(nèi)毒素肝細胞血癥

唐永靜,陳云芬,廖月,程其嬌,張桂娟,王云,何毅懷△

重癥肝病在我國較為常見,其病死率高,預(yù)后差[1]。大范圍肝細胞的急性損傷(如細胞凋亡)是引起肝損傷進展的機制之一[2]。肝損傷進展受多種因素影響,包括合并細菌感染、高載量乙肝病毒感染等。有研究表明,內(nèi)毒素血癥與肝損傷進展關(guān)系密切,脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)作為內(nèi)毒素的主要成分,在內(nèi)毒素血癥中起著重要作用[3]。LPS與D-氨基半乳糖聯(lián)合,常被用于建立實驗性肝衰竭小鼠模型。本課題組前期預(yù)實驗發(fā)現(xiàn),LPS引起肝損傷的使用劑量尚無統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn),正常狀態(tài)下大量LPS才能引起肝損傷,但是在肝損傷的基礎(chǔ)上,非肝毒性劑量LPS將加劇肝損傷。這一發(fā)現(xiàn)與文獻[4-5]報道相一致,提示肝臟的基礎(chǔ)疾病可能增加肝臟對內(nèi)毒素血癥的敏感性,肝臟損傷程度越重,其對內(nèi)毒素血癥的損傷作用反應(yīng)越敏感,但具體機制不詳。肝細胞核因子4α(hepatocyte nuclear factor 4 alpha,HNF4α)作為肝細胞富集的重要轉(zhuǎn)錄因子,與肝細胞的抗損傷反應(yīng)密切相關(guān)[6]。有研究發(fā)現(xiàn),LPS可顯著下調(diào)大鼠肝臟中HNF4α的表達[7];而在肝癌中條件性上調(diào)HNF4α表達可抑制LPS誘導(dǎo)的細胞凋亡[8],提示HNF4α表達水平可在一定程度上反映肝臟對內(nèi)毒素血癥的敏感性。本研究旨在探索內(nèi)毒素血癥中HNF4α表達的變化特點、對肝細胞凋亡的作用及在肝損傷中的意義。

1 材料與方法

1.1材料

1.1.1實驗動物SPF級雄性BALB/c小鼠144只,6~8周齡,平均體質(zhì)量(25±4)g,購自遵義醫(yī)科大學(xué)動物實驗中心[動物生產(chǎn)許可證號:SYXK(黔)2021-0004]。將所有動物置于溫度(21.0±2.0)℃,濕度65%±5%條件下自由進食飲水,并保持12 h/12 h晝夜循環(huán)光照。實驗小鼠的使用遵循《實驗動物管理條例》[9]及遵義醫(yī)科大學(xué)實驗動物管理規(guī)定[倫審(2020)2-321號]。

1.1.2主要設(shè)備和試劑全自動曝光機(Clinx,ChemiScope 6000,中國),全自動生化分析儀(Beckman Coulter autoanalyzer,AU5800,美國)。裂解液(R0010,Solarbio,北京);鼠單 克 隆β-actin內(nèi) 參 蛋 白(sc-58673,Santa Cruz Biotechnology)、鼠 單 克 隆HNF4α(ab41898,Abcam,Cambridge,MA,USA)、兔單克隆胱天蛋 白酶3剪切體(Cleaved caspase-3,9664,CST)。辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的抗小鼠IgG二抗(sc-516102,Santa Cruz,USA)或抗兔IgG二抗(sc-2357,Santa Cruz)。

1.2動物分組和建模方法小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,采用隨機數(shù)字表法將小鼠分組。每組誘導(dǎo)12只小鼠,均給藥1次,注射前禁飲禁食6 h。誘導(dǎo)時間為24 h。

1.2.1CCl4誘導(dǎo)小鼠急性肝損傷CCl4組:分別腹腔注射0.5、1.0、2.0 mL/kg CCl4(按CCl4折算;CCl4與橄欖油按體積比為1∶4混合,0.22 μm濾菌器濾菌,4~8℃保存)。對照組:腹腔注射等體積橄欖油(0.22 μm濾菌器濾菌,4~8℃保存)。

1.2.2LPS誘導(dǎo)小鼠急性肝損傷LPS組:分別腹腔注射LPS,劑量為非肝毒性劑量(0.1 mg/kg、0.5 mg/kg)、肝毒性劑量(2.5 mg/kg,10 mg LPS溶于50 mL的PBS中;0.22 μm濾菌器濾菌,-20℃冰箱保存)。對照組:腹腔注射等體積

PBS。

1.2.3LPS干預(yù)CCl4誘導(dǎo)急性肝損傷模型小鼠CCl4組:腹腔注射1.0 mL/kg CCl4;LPS+CCl4組:分別腹腔注射0.1 mg/kg、0.5 mg/kg LPS預(yù)處理2 h,均給藥1次;然后腹腔注射1.0 mL/kg CCl4。對照組:腹腔注射等體積橄欖油或PBS。

1.2.4標(biāo)本收集與處理建模24 h后將小鼠置于有4 L CO2的安樂死盒中,待其失去知覺后,維持血液循環(huán)的同時收集血液和肝組織樣本。將收集到的血液標(biāo)本3 000 r/min離心15 min,吸取上清液,置于4℃冰箱過夜。取50 mg肝組織置于裂解液進行細胞裂解,置于-80℃冰箱保存;1 cm3大小的肝組織樣本置于4%多聚甲醛中固定24 h,隨后切成5 μm厚的組織切片,置于切片盒室溫保存。

1.3指標(biāo)檢測與方法

1.3.1肝功能的檢測采用全自動生化分析儀檢測血清丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶(ALT,速率法)及血清總膽紅素(TBil,重氮法)水平。

1.3.2蛋白免疫印跡(Western blot)法檢測HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白的表達將各組小鼠50 mg肝組織加入5 mL裂解緩沖液[含50 μL苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride,PMSF)],4℃下進行細胞裂解,BCA蛋白濃度測定試劑盒檢測總蛋白量。樣本經(jīng)10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(100 V恒壓)分離,然后按照凝膠面積以0.65 mA/cm2恒流電轉(zhuǎn)移1.5 h將蛋白自凝膠轉(zhuǎn)印至聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜。PVDF膜經(jīng)5%脫脂奶粉室溫封閉2 h后,加入1∶1 000稀釋的β-actin、HNF4α、Cleaved caspase-3一抗,4℃孵育過夜,TBST漂洗后用1∶2 000稀釋的HRP抗小鼠IgG二抗或抗兔IgG二抗孵育2 h,漂洗后滴加ECL化學(xué)發(fā)光試劑于全自動曝光機中顯影,利用Image J軟件分析條帶灰度值,計算HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白與β-actin的比值。實驗重復(fù)3次。

1.3.3原位末端標(biāo)記法檢測細胞凋亡情況各實驗組小鼠肝組織石蠟切片分別經(jīng)過脫蠟、脫水、去除組織蛋白、破膜后,取脫氧核糖核苷酸末端轉(zhuǎn)移酶(TdT)與脫氧核糖核苷酸衍生物地高辛按體積比1∶14混合,滴到肝組織上,保持濕盒內(nèi)濕度,37℃孵育2 h。紫外激發(fā)波長330~380 nm,發(fā)射波長420 nm;FITC綠光激發(fā)波長465~495 nm,發(fā)射波長515~555 nm;CY3紅光激發(fā)波長510~560 nm,發(fā)射波長590 nm。細胞核在DAPI染色后在紫外線下呈藍色,F(xiàn)ITC熒光素標(biāo)記的陽性凋亡細胞核呈綠色。切片通過全息掃描(Pannoramic DESK/MIDI/250/1000,3DHISTECH,Hungary)及CaseViewer 2.3軟件(3DHISTECH,Hungary)采集圖像。每張切片高倍鏡下隨機讀取5個視野,計算細胞凋亡指數(shù)(apoptotic index,AI)=陽性細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%。實驗重復(fù)3次。

1.4統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 18.0軟件進行數(shù)據(jù)處理。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,若方差齊組間多重比較行LSD-t檢驗;若方差不齊組間多重比較行Tamhane′s T2檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 CCl4對小鼠肝損傷及細胞凋亡的影響0.5、1.0、2.0 mL/kg CCl4組小鼠的血清ALT、TBil水平及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平均明顯高于對照組,且均呈劑量依賴性增高(均P<0.05),見表1、圖1。

Tab.1 Comparison of serum ALT and TBil levels,and protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue between the four groups of mice induced by different doses of CCl4表1不同劑量CCl4誘導(dǎo)組血清ALT、TBil水平及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平比較(±s)

Tab.1 Comparison of serum ALT and TBil levels,and protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue between the four groups of mice induced by different doses of CCl4表1不同劑量CCl4誘導(dǎo)組血清ALT、TBil水平及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平比較(±s)

**P<0.01;a與對照組比較,b與0.5 mL/kg CCl4組比較,c與1.0 mL/kg CCl4組比較,P<0.05。

組別對照組0.5 mL/kg CCl4組1.0 mL/kg CCl4組2.0 mL/kg CCl4組F n 12 12 12 12 ALT(U/L)42.08±5.53 2 496.25±202.35a 4 458.00±506.94ab 6 502.08±599.06abc 493.724**TBil(μmol/L)1.28±0.15 1.93±0.17a 4.45±0.27ab 6.35±0.69abc 404.139**組別對照組0.5 mL/kg CCl4組1.0 mL/kg CCl4組2.0 mL/kg CCl4組F HNF4α 1.00±0.00 1.95±0.05a 6.46±0.25ab 11.48±0.43abc 4 020.010**Cleaved caspase-3 1.00±0.00 1.71±0.11a 5.55±0.21ab 8.48±0.16abc 6 745.702**

Fig.1 Western blot detection of HNF4α and Cleaved caspase-3 protein expression in liver tissue induced by different doses of CCl4圖1 Western blot檢測不同劑量CCl4誘導(dǎo)組肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達

2.2 LPS對小鼠肝損傷及細胞凋亡的影響2.5 mg/kg LPS組小鼠血清ALT、TBil水平及肝組織Cleaved caspase-3蛋白表達水平高于對照組、0.1 mg/kg LPS組、0.5 mg/kg LPS組,肝組織HNF4α蛋白表達水平低于對照組、0.1 mg/kg LPS組、0.5 mg/kg LPS組(P<0.05);對照組、0.1 mg/kg LPS組、0.5 mg/kg LPS組間差異均無統(tǒng)計學(xué)意義,見表2、圖2。

Tab.2 Comparison of serum ALT and TBil levels,and protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue between the four groups of mice induced by different doses of LPS表2不同劑量LPS組血清ALT、TBil水平及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平比較(±s)

Tab.2 Comparison of serum ALT and TBil levels,and protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue between the four groups of mice induced by different doses of LPS表2不同劑量LPS組血清ALT、TBil水平及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平比較(±s)

**P<0.01;a與對照組比較,b與0.1 mg/kg LPS組比較,c與0.5 mg/kg LPS組比較,P<0.05。

組別對照組0.1 mg/kg LPS組0.5 mg/kg LPS組2.5 mg/kg LPS組F HNF4α 1.00±0.00 0.94±0.10 0.86±0.07 0.47±0.03abc 156.332**Cleaved caspase-3 1.00±0.00 1.06±0.10 2.44±0.14 7.40±0.16abc 7 022.815**組別對照組0.1 mg/kg LPS組0.5 mg/kg LPS組2.5 mg/kg LPS組F n 12 12 12 12 ALT(U/L)32.92±5.89 37.67±9.12 53.33±8.51 5 725.50±109.62abc 29 112.963**TBil(μmol/L)1.18±0.29 1.48±0.21 1.50±0.21 5.44±0.22abc 836.544**

2.3 LPS及CCl4對小鼠肝損傷及肝細胞凋亡的影響CCl4組、0.1 mg/kg LPS+CCl4組和0.5 mg/kg LPS+CCl4組小鼠血清ALT、TBil水平,肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平及肝細胞凋亡指數(shù)均高于對照組(P<0.05)。0.1 mg/kg LPS+CCl4組和0.5 mg/kg LPS+CCl4組小鼠血清ALT、TBil水平,肝組織Cleaved caspase-3蛋白表達水平及肝細胞凋亡指數(shù)均高于CCl4組,HNF4α蛋白表達水平低于CCl4組(P<0.05);0.5 mg/kg LPS+CCl4組與0.1 mg/kg LPS+CCl4組間差異無統(tǒng)計學(xué)意義,見表3,圖3、4。

Fig.2 Western blot detection of HNF4α and Cleaved caspase-3 protein expression in liver tissue induced by different doses of LPS圖2 Western blot檢測不同劑量LPS誘導(dǎo)組肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達

Tab.3 Comparison of serum ALT and TBil levels,protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue and apoptotic index between the four groups表3各組血清ALT、TBil水平,肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平及肝細胞凋亡指數(shù)比較(±s)

Tab.3 Comparison of serum ALT and TBil levels,protein expression levels of HNF4α and Cleaved caspase-3 in liver tissue and apoptotic index between the four groups表3各組血清ALT、TBil水平,肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平及肝細胞凋亡指數(shù)比較(±s)

**P<0.01;a與對照組比較,b與CCl4組比較,P<0.05。

組別對照組CCl4組0.1 mg/kg LPS+CCl4組0.5 mg/kg LPS+CCl4組F n 12 12 12 12 ALT(U/L)34.75±2.24 3 412.08±122.68a 5 683.00±177.65ab 6 269.92±98.71ab 6 236.269**TBil(μmol/L)1.26±0.26 3.38±0.29a 5.40±0.20ab 6.28±0.16ab 1 011.176**組別對照組CCl4組0.1 mg/kg LPS+CCl4組0.5 mg/kg LPS+CCl4組F HNF4α 1.00±0.00 3.41±0.26a 2.45±0.14ab 1.55±0.08ab 513.070**Cleaved caspase-3 1.00±0.00 2.29±0.15a 2.78±0.23ab 3.23±0.31ab 238.550**凋亡指數(shù)0.52±0.11 27.58±0.83a 31.93±0.73ab 36.71±0.82ab 6 101.197**

Fig.3 Western blot detection of HNF4α and Cleaved caspase-3protein levels in liver tissue of mice圖3 Western blot檢測各組小鼠肝臟HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達水平

Fig.4 TUNEL detection of hepatocyte apoptosis of mice in each group(×20)圖4原位末端標(biāo)記染色檢測各組小鼠肝細胞凋亡情況(×20)

3 討論

肝臟損傷與代謝紊亂、飲酒、肝炎病毒感染等多種因素有關(guān),如合并細菌感染會顯著加重肝臟損傷,但其具體機制尚未明確[10-11]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(PERK)-磷酸化真核翻譯起始因子2α(eIF2α)信號通路可通過抗肝細胞凋亡減輕小鼠肝損傷[2],與文獻[12-13]報道一致。有研究表明,肝損傷時,將觸發(fā)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(ER)應(yīng)激,激活PERK、活化轉(zhuǎn)錄因子6(ATF6)和需肌醇酶1α(IRE1α)以阻礙蛋白質(zhì)合成,減輕肝臟負荷,促進細胞存活[14]。一旦ER穩(wěn)態(tài)受到破壞,ER應(yīng)激將觸發(fā)促凋亡信號,凋亡的激活受多種信號通路共同影響。目前主要有3條凋亡途徑:C/EBP同源蛋白(CHOP)基因的激活轉(zhuǎn)錄、Jun-氨基末端激酶(JNK)的激活通路及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)特有的caspase-3激活等[15]。有研究表明,HNF4α表達短暫性下調(diào)對急性肝損傷可能有益,可以重新分配轉(zhuǎn)錄資源;但持續(xù)存在的刺激將促使HNF4α表達持續(xù)下調(diào),其下調(diào)程度與肝損傷程度密切相關(guān)[16]。本研究結(jié)果顯示,與對照組相比,CCl4及LPS均可加重小鼠肝損傷及肝細胞凋亡,肝毒性劑量LPS組肝損傷程度更為顯著,且可下調(diào)HNF4α蛋白表達;而CCl4組肝組織HNF4α蛋白表達上調(diào),提示HNF4α在不同原因引起的肝損傷中存在多種表達模式。有研究表明,肝臟因其解剖位置易成為細菌誘導(dǎo)損傷和產(chǎn)生炎癥的主要受累器官;累積的LPS可參與肝細胞直接損傷或通過促進炎癥反應(yīng)加重肝損傷[17]。大量LPS可以參與肝細胞損傷并誘導(dǎo)其凋亡,血清LPS水平與肝細胞凋亡呈正相關(guān)[18]。肝損傷合并細菌感染及內(nèi)毒素血癥均可導(dǎo)致肝損傷程度加重[19-20]。本研究結(jié)果顯示,非肝毒性劑量LPS誘導(dǎo)組小鼠血清ALT、TBiL及肝組織HNF4α、Cleaved caspase-3蛋白表達無明顯差異,均未引起肝損傷;肝毒性劑量LPS誘導(dǎo)組小鼠血清ALT、TBiL及Cleaved caspase-3蛋白表達顯著增加,HNF4α蛋白表達下調(diào),與相關(guān)研究結(jié)果一致[21],提示肝細胞凋亡與肝臟損害程度相關(guān),但HNF4α對肝細胞凋亡及肝損害的作用及機制尚未確定。

本研究通過CCl4聯(lián)合非肝毒性劑量的LPS模擬肝損傷合并內(nèi)毒素血癥實驗?zāi)P停l(fā)現(xiàn)0.1 mg/kg LPS+CCl4組和0.5 mg/kg LPS+CCl4組小鼠血清ALT、TBil水平,肝組織Cleaved caspase-3蛋白表達水平及肝細胞凋亡指數(shù)均高于對照組和CCl4組,HNF4α蛋白表達水平低于對照組和CCl4組。由此進一步說明,在肝損傷的基礎(chǔ)上非肝毒性劑量的LPS也能夠通過抑制HNF4α表達,增加肝細胞對凋亡的敏感性來加劇肝損害。

綜上所述,內(nèi)毒素血癥對肝損傷的影響除與內(nèi)毒素水平有關(guān)外,還與肝細胞的基礎(chǔ)狀態(tài)及損傷后HNF4α的反應(yīng)性上調(diào)水平有關(guān)。HNF4α可能通過調(diào)控肝細胞凋亡影響肝損傷進展過程,HNF4α在不同肝損傷模型中存在多種調(diào)節(jié)模式。但在肝損傷中差異調(diào)控HNF4α的機制,及HNF4α在肝細胞凋亡和肝損傷中的具體作用機制尚待進一步研究。

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