魯梅,宋從從,石桂珍,楊青,李德青,竇祎凝
(濰坊工程職業(yè)學(xué)院 應(yīng)用化學(xué)與食品藥品學(xué)院,山東 青州,262500)
中國(guó)傳統(tǒng)食醋是指以谷物為主要原料,經(jīng)過(guò)多種微生物共同發(fā)酵,再經(jīng)長(zhǎng)時(shí)間陳釀而成的一種酸性液體調(diào)味料,在中國(guó)已經(jīng)有3 000多年的歷史[1]。按照食醋的醋酸發(fā)酵工藝,可將食醋分為固態(tài)發(fā)酵食醋和液態(tài)發(fā)酵食醋。山西老陳醋、鎮(zhèn)江香醋、四川麩醋、赤水曬醋和天津獨(dú)流醋等中國(guó)傳統(tǒng)谷物醋都是典型的固態(tài)發(fā)酵食醋[2];固態(tài)發(fā)酵食醋的開(kāi)放式發(fā)酵、多菌種協(xié)同、長(zhǎng)時(shí)間陳釀、多代謝產(chǎn)物共存的特點(diǎn)賦予了食醋豐富的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和風(fēng)味物質(zhì),使食醋具有開(kāi)胃、抗菌殺菌、抗氧化和減肥等功效[3]。
赤水曬醋是貴州省赤水市生產(chǎn)的一種極具地方特色的優(yōu)質(zhì)食醋產(chǎn)品,其工序繁多、選料考究、品質(zhì)精良,在中國(guó)西南地區(qū)享有盛譽(yù)。傳統(tǒng)的赤水曬醋用中草藥制曲、經(jīng)蒸煮、酒精發(fā)酵和醋酸發(fā)酵、曬醅、淋醋、陳釀、滅菌等幾十道工序精制而成[4]。目前有眾多的研究者對(duì)“中國(guó)四大名醋”的發(fā)酵機(jī)理、營(yíng)養(yǎng)成分、風(fēng)味形成和功能作用等各個(gè)方面進(jìn)行了研究,但對(duì)赤水曬醋的研究較少。目前僅有盧葉等[5]研究了赤水曬醋的有機(jī)酸組成,發(fā)現(xiàn)除乙酸外,不揮發(fā)酸中琥珀酸和乳酸的含量最高;石慶疊等[6]從赤水曬醋中篩選了3株醋酸菌,并研究了其發(fā)酵特性,發(fā)現(xiàn)C6菌株能耐9%(體積分?jǐn)?shù))的乙醇、8 g/L的氯化鈉和40 g/L的乙酸;唐杰等[7]研究了赤水曬醋的香氣成分,從曬醋中共鑒定出39種主要香氣成分;吳震等[8]研究了赤水曬醋生產(chǎn)過(guò)程的理化指標(biāo)和功能性指標(biāo)的變化,揭示了發(fā)酵規(guī)律;何銀等[9]、楊新等[10-11]從赤水曬醋中篩選了腐敗微生物并研究了其發(fā)酵特性,主要包括地衣芽孢桿菌、解淀粉芽孢桿菌、索諾拉沙漠芽孢桿菌、酸居芽孢桿菌、耐熱芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌等;李榮源等[12]研究了赤水曬醋各生產(chǎn)階段終點(diǎn)的微生物群落結(jié)構(gòu)組成,其在曬醅階段檢測(cè)到194種真菌和400種細(xì)菌;但目前尚沒(méi)有針對(duì)赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程原核微生物群落結(jié)構(gòu)變化的相關(guān)研究。赤水曬醋醋酸發(fā)酵階段具有開(kāi)放式和多菌協(xié)同的特點(diǎn),因此研究赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程原核微生物群落結(jié)構(gòu)變化對(duì)解析赤水曬醋的發(fā)酵機(jī)理及通過(guò)微生物調(diào)控技術(shù)改善赤水曬醋的品質(zhì)具有重要意義。
醋醅樣品,貴州省赤水市某醋廠。
DNA抽提試劑盒,賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司;瓊脂糖,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;蛋白酶K,上海生物工程有限公司;Premix ET Taq聚合酶,寶生物工程(大連)有限公司。
DW-25L262醫(yī)用低溫保存箱,青島海爾特種電器有限公司;5425R高速離心機(jī),德國(guó)Eppendorf公司;NanoDrop 2000超微量分光光度計(jì),美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司;HiSeq測(cè)序儀,美國(guó)Illumina公司;ELx 800酶標(biāo)儀,美國(guó)BioTek公司;QL-901旋渦混合器,海門(mén)其林貝爾儀器制造有限公司。
1.3.1 取樣方法
采用五點(diǎn)取樣法從貴州省赤水市某醋廠同一生產(chǎn)批次的3個(gè)不同的醋酸發(fā)酵池(A、B、C)中取樣,每隔3天取樣1次,每次取3個(gè)平行樣品,共采集18個(gè)樣品,將樣品置于-80 ℃冰箱中保存。
1.3.2 DNA提取
取50 g保存于冰箱中的醋醅樣品置于研缽中,添加液氮研磨5 min,然后使用DNA抽提試劑盒提取醋醅內(nèi)含物微生物DNA,使用NanoDrop 2000超微量分光光度計(jì)檢測(cè)DNA濃度及質(zhì)量。
1.3.3 PCR擴(kuò)增及測(cè)序
通過(guò)擴(kuò)增原核微生物16S rRNA V3~V4區(qū)研究醋醅的原核微生物群落結(jié)構(gòu),采用的上游引物為338F (5′-ACTCCTACGGGAGGCAGC-3′),下游引物為806R (5′-GGACTACNNGGGTATCTAAT-3′)。對(duì)指定測(cè)序范圍合成帶barcode的特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增及產(chǎn)物純化,構(gòu)建PE文庫(kù)后進(jìn)行Illumina HiSeq 2500平臺(tái)測(cè)序,由上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司完成。
1.3.4 理化指標(biāo)的檢測(cè)
總酸、乙醇、還原糖和乳酸含量的檢測(cè)方法參考文獻(xiàn)[13]。
利用QIIME 1.9對(duì)測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,使用Usearch去除嵌合體序列,并按照97%相似度對(duì)序列進(jìn)行操作分類(lèi)單元(operational taxonomic units,OTU)聚類(lèi)劃分,選取最豐富序列(most abundant)為OTU代表序列。細(xì)菌采用GreenGenes數(shù)據(jù)庫(kù)(http://greengenes.secondgenome.com/)對(duì)OTU代表序列進(jìn)行分類(lèi)注釋。然后根據(jù)注釋結(jié)果,使用R 3.6、Graphpad Prism 7和Canoco 5等軟件進(jìn)行后續(xù)分析繪圖。
赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程中醋醅樣品原核微生物群落的測(cè)序情況見(jiàn)表1,18個(gè)醋醅樣品檢測(cè)到的有效序列數(shù)為41 713~47 029條,總序列數(shù)為794 635條。按97%的相似度對(duì)測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行聚類(lèi)劃分,18個(gè)樣品的OTU數(shù)為51~156個(gè),共有213個(gè)OTU。且OTU數(shù)隨著醋酸發(fā)酵的不斷進(jìn)行而逐漸下降。所有樣品文庫(kù)的覆蓋率均>99.9%,表明樣品中序列沒(méi)有被檢測(cè)出的概率極低。將測(cè)序數(shù)據(jù)置于GreenGenes數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì),得到各個(gè)樣品中的物種數(shù),可見(jiàn)物種數(shù)與OTU數(shù)變化趨勢(shì)一致。
根據(jù)97%相似度水平下的OTU信息,采用表征α多樣性的ACE指數(shù)及Shannon指數(shù)對(duì)樣品微生物物種豐富度和多樣性進(jìn)行評(píng)估[14],結(jié)果見(jiàn)表1。ACE指數(shù)用于評(píng)估樣本中OTU數(shù)目的多少,指數(shù)越大,表明OTU數(shù)越多;Shannon指數(shù)用于評(píng)估樣本中微生物的多樣性,Shannon指數(shù)越大,群落的多樣性越高。從表1可以看出,赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程醋醅樣品的原核微生物群落OTU數(shù)和多樣性在第0~3天略微上升,在第3~15天逐漸下降。
基于97%相似度的OTU水平繪制的赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程的原核微生物群落稀釋曲線如圖1所示,當(dāng)檢測(cè)到的序列數(shù)>30 000以后,曲線趨于平緩,說(shuō)明測(cè)序深度較好,測(cè)序數(shù)據(jù)量合理。
由圖2-a可知,赤水曬醋的醋酸發(fā)酵過(guò)程中醋醅的原核微生物群落在門(mén)水平上可分為變形菌門(mén)(Proteobacteria,41.7%)、厚壁菌門(mén)(Firmicutes,43.25%)、藍(lán)細(xì)菌門(mén)(Cyanobacteria,14.29%)、擬桿菌門(mén)(Bacteroidetes,0.48%)和放線菌門(mén)(Actiobacteria,0.28%)。由圖2-b可知,醋酸發(fā)酵第0天,變形菌門(mén)、厚壁菌門(mén)和藍(lán)細(xì)菌門(mén)的總相對(duì)豐度>98%,隨著醋酸發(fā)酵的進(jìn)行,藍(lán)細(xì)菌門(mén)的相對(duì)豐度由42.11%下降至1.45%;而厚壁菌門(mén)的相對(duì)豐度由15.53%上升至62.43%;變形菌門(mén)的相對(duì)豐度由第0天的40.86%上升至第9天的48.83%,然后再下降至第15天的38.19%;擬桿菌門(mén)和放線菌門(mén)的相對(duì)豐度在第12天即下降至0.1%以下。
表1 醋醅中原核微生物群落α多樣性Table 1 Alpha diversity of prokaryotic microbial community in Cupei
圖1 醋醅中原核微生物群落稀釋曲線Fig.1 Rarefaction curve of prokaryotic microbial community in Cupei
a-門(mén)水平的組成;b-相對(duì)豐度變化圖2 原核微生物群落在門(mén)水平的組成及相對(duì)豐度變化Fig.2 The composition and relative abundance changes of the prokaryotic microbial community at the phylum level 注:圖2-a中原核微生物群落在門(mén)水平所占的比例為所有 樣品的平均值
如圖3-a所示,18個(gè)醋醅樣品中的原核微生物屬主要為乳桿菌屬(Lactobacillus,33.88%)、醋桿菌屬(Acetobacter,28.19%)、藍(lán)藻細(xì)菌屬(Acaryochloris,14.21%)、醋酸乳桿菌屬(Acetilactobacillus,8.97%)、未分類(lèi)的紅螺菌屬(Rhodospirillaceae_unclassified,4.84%)、農(nóng)桿菌屬(Agrobacterium,1.98%)、鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas,1.69%)和葡糖醋桿菌屬(Gluconacetobacter,1.23%)。由圖3-b可知,隨著醋酸發(fā)酵的進(jìn)行,乳桿菌屬的相對(duì)豐度由第0天的15.03%上升至第6天的39.30%,然后下降至第15天的23.05%;醋桿菌屬在第0天時(shí)的相對(duì)豐度為0.32%,第3天時(shí)上升至8.85%,第6~12天相對(duì)豐度為43.77%,第15天又下降至32.28%;而醋酸乳桿菌屬和葡糖醋桿菌屬在第0~6天的相對(duì)豐度極低,在第9~15天相對(duì)豐度逐漸上升,到第15天時(shí),醋酸乳桿菌屬和葡糖醋桿菌屬的相對(duì)豐度分別達(dá)36.78%和4.76%;藍(lán)藻細(xì)菌屬、未分類(lèi)的紅螺菌屬、農(nóng)桿菌屬、鞘氨醇單胞菌屬、未注釋到的菌屬(not_assigned)和黃單胞菌屬(Xanthomonas)、甲基桿菌屬(Methylobacterium)、寡養(yǎng)單胞菌屬(Stenotrophomonas)、假單胞菌屬(Pseudomonas)和泛菌屬(Pantoea)等菌屬的相對(duì)豐度隨著醋酸發(fā)酵過(guò)程的進(jìn)行而下降;李榮源等[12]研究發(fā)現(xiàn)醋酸發(fā)酵結(jié)束的醋醅中主要的細(xì)菌屬為乳桿菌屬和醋桿菌屬,這可能是數(shù)據(jù)處理方式的區(qū)別導(dǎo)致醋酸乳桿菌屬未被注釋到。另外可以發(fā)現(xiàn)赤水曬醋醋酸發(fā)酵的細(xì)菌群落組成與鎮(zhèn)江香醋[15]、山西老陳醋[16]、涼州熏醋[17]等固態(tài)發(fā)酵食醋的細(xì)菌群落較為相似,而與浙江玫瑰醋[18]和永春老醋[19]等液態(tài)發(fā)酵食醋的細(xì)菌群落有較大差異,這表明醋酸發(fā)酵工藝對(duì)微生物群落結(jié)構(gòu)有較大影響。由于醋酸發(fā)酵過(guò)程主要是微生物利用乙醇和糖類(lèi)物質(zhì)生成乙酸和其他有機(jī)酸并產(chǎn)生大量生物熱的過(guò)程,前期乳桿菌屬利用原料中的糖類(lèi)繁殖代謝,相對(duì)豐度升高,隨后由于小分子糖被耗盡以及酸度的升高,乳桿菌屬逐漸死亡,相對(duì)豐度下降;醋桿菌屬前期利用乙醇大量生成乙酸,后期由于乙醇幾乎被耗盡且酸度升高,因此相對(duì)豐度下降;藍(lán)藻細(xì)菌屬、未分類(lèi)的紅螺菌屬、農(nóng)桿菌屬、鞘氨醇單胞菌屬、未注釋到的菌屬和黃單胞菌屬、甲基桿菌屬、寡養(yǎng)單胞菌屬、假單胞菌屬和泛菌屬等菌屬主要來(lái)自原料、空氣和生產(chǎn)工具[15],醋酸發(fā)酵體系的高乙醇、高乙酸和高溫度使其凋亡;而醋酸乳桿菌屬和葡糖醋桿菌屬由于具有耐酸的特性[20-22],因此在醋酸發(fā)酵后期其相對(duì)豐度逐漸升高。
基于Bray-Curtis距離算法,以18個(gè)醋醅樣品中的OTU組成為原始數(shù)據(jù)進(jìn)行主坐標(biāo)分析(principal coordinate analysis,PCoA)(圖4-a)和聚類(lèi)分析(cluster analysis,CA)(圖4-b)。由圖4-a可以看出第一主坐標(biāo)軸(PCoA1)和第二主坐標(biāo)軸(PCoA2)對(duì)赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程醋醅中的原核微生物群落的解釋度分別為75.9%和15.2%,不同醋醅樣品基本按照發(fā)酵天數(shù)聚在一起,并隨著發(fā)酵時(shí)間在PCoA1上逐漸移動(dòng)。由圖4-b可以將赤水曬醋的醋酸發(fā)酵過(guò)程分為3個(gè)階段:發(fā)酵前期(第0~3天)、發(fā)酵中期(第6~12天)和發(fā)酵末期(第15天);另外平行樣品之間的距離小于不同時(shí)間樣品之間的距離,可以說(shuō)明平行樣品之間的一致性較好。
a-PCoA;b-CA圖4 醋醅中原核微生物群落的PCoA及CAFig.4 PCoA and CA of prokaryotic microbial community in Cupei
固態(tài)發(fā)酵食醋醋酸發(fā)酵過(guò)程中,醋酸菌將乙醇轉(zhuǎn)化為乙酸,乳酸菌將葡萄糖等小分子糖類(lèi)轉(zhuǎn)化為乳酸,同時(shí)伴隨著一系列其他生化反應(yīng)的發(fā)生,這些反應(yīng)共同賦予了食醋獨(dú)特的風(fēng)味[23]。從圖5可以看出,乙醇由5.78%下降到0.33%,而總酸由0.61%(以乙酸計(jì))上升至5.35%(以乙酸計(jì)),兩者變化趨勢(shì)基本相反。而乳酸和還原糖含量的變化趨勢(shì)都是先上升后下降,前期麩皮中的部分大分子糖類(lèi)由于酸水解作用導(dǎo)致還原糖含量上升,隨后由于乳酸菌等微生物利用還原糖轉(zhuǎn)化為其他物質(zhì)而下降;另一方面,前期乳酸菌利用還原糖產(chǎn)生乳酸,但后期醋酸菌等能利用乳酸生成乙偶姻,導(dǎo)致乳酸含量下降[24]。
冗余分析(redundancy analysis,RDA)主要反映菌群與環(huán)境因子之間的關(guān)系,環(huán)境因子箭頭所處的象限表示環(huán)境因子與排序軸間的正負(fù)相關(guān)性,箭頭連線的長(zhǎng)度代表著某個(gè)環(huán)境因子與群落分布和種類(lèi)分布間相關(guān)程度的大小,連線越長(zhǎng),說(shuō)有相關(guān)性越大,反之越小。箭頭連線和排序軸的夾角代表著某個(gè)環(huán)境因子與排序軸的相關(guān)性大小,夾角越小,相關(guān)性越高;反之越低[25]。由圖6可知,乳桿菌屬主要與乳酸和還原糖含量呈正相關(guān),醋桿菌屬、檸檬乳桿菌屬(Limosilactobacillus)、葡糖醋桿菌屬和醋酸乳桿菌屬主要與酸度呈正相關(guān),而農(nóng)桿菌屬、黃單胞菌屬和甲基桿菌屬等菌屬主要與酸度呈負(fù)相關(guān),且與乙醇含量呈正相關(guān)。
a-總酸、乙酸;b-還原糖、乳酸圖5 醋酸發(fā)酵過(guò)程理化指標(biāo)變化Fig.5 Changes in physical and chemical indicators during acetic acid fermentation
圖6 醋酸發(fā)酵過(guò)程原核微生物屬與環(huán)境因子的冗余分析Fig.6 Redundancy analysis of prokaryotic microbial genus and environmental factors during acetic acid fermentation
赤水曬醋醋酸發(fā)酵過(guò)程的OTU數(shù)和物種數(shù)均呈先略微上升后下降的趨勢(shì)。原核微生物群落在門(mén)水平上可分為變形菌門(mén)(41.7%)、厚壁菌門(mén)(43.25%)、藍(lán)細(xì)菌門(mén)(14.29%)、擬桿菌門(mén)(0.48%)和放線菌門(mén)(0.28%);在屬水平上,醋酸乳桿菌屬和葡糖醋桿菌屬的相對(duì)豐度隨著醋酸發(fā)酵的進(jìn)行一直上升,乳桿菌屬和醋桿菌屬相對(duì)豐度隨著醋酸發(fā)酵的進(jìn)行先上升后下降;藍(lán)藻細(xì)菌屬、未分類(lèi)的紅螺菌屬、農(nóng)桿菌屬、鞘氨醇單胞菌屬等原核微生物屬的相對(duì)豐度隨著醋酸發(fā)酵的進(jìn)行呈下降的趨勢(shì)。主坐標(biāo)分析表明:醋醅樣品按照醋酸發(fā)酵天數(shù)聚在一起,并隨著發(fā)酵的進(jìn)行在第一主坐標(biāo)軸上移動(dòng);通過(guò)聚類(lèi)分析可將醋酸發(fā)酵過(guò)程分為前期(第0~3天)、中期(第6~12天)和末期(第15天)這3個(gè)階段??偹嵊?.61%(以乙酸計(jì))上升至5.35%(以乙酸計(jì)),乙醇由5.78%下降至0.33%;還原糖和乳酸含量均呈先上升后下降的趨勢(shì)。此外,相關(guān)性分析表明乳桿菌屬主要與乳酸和還原糖含量呈正相關(guān),醋桿菌屬、檸檬乳桿菌屬、葡糖醋桿菌屬和醋酸乳桿菌屬主要與酸度呈正相關(guān),而農(nóng)桿菌屬、黃單胞菌屬和甲基桿菌屬等菌屬主要與酸度呈負(fù)相關(guān),且與乙醇含量呈正相關(guān)。