寧曉春,高思丹,楊莉娜,陳生蓉,何 濤*
(1 青海大學(xué) 生態(tài)環(huán)境工程學(xué)院,西寧 810016;2 青海省園林植物與觀賞園藝重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,西寧 810016;3 省部共建三江源生態(tài)與高原農(nóng)牧業(yè)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,西寧 810016;4 青海大學(xué) 農(nóng)牧學(xué)院,西寧 810016)
黑果枸杞(Lyciumruthenicum),屬茄科(Solanaceae)枸杞屬(Lycium)植物,為多棘刺灌木,主要分布于西北荒漠地區(qū),具有非常高的藥用價(jià)值、營(yíng)養(yǎng)價(jià)值及經(jīng)濟(jì)價(jià)值[1]。黑果枸杞是原花青素含量最高的天然野生果實(shí),是最有效的原生態(tài)天然抗氧化劑[2]。果實(shí)成熟后呈紫黑色,藏藥中稱其為“旁瑪”,可清心熱,治療婦科疾病[3]。黑果枸杞果實(shí)中氨基酸種類豐富,含有7種必需氨基酸[4],對(duì)降血脂[5]、降血糖[6]、抗氧化[7]、抗腫瘤等有一定的功效。黑果枸杞抗旱性、耐鹽性較好,且高度耐貧瘠,可正常生長(zhǎng)于沙地、鹽堿地、荒漠化地區(qū),對(duì)水土保持、防風(fēng)固沙具有重大意義[8]。近年來(lái),隨著商業(yè)利益的驅(qū)動(dòng),野生黑果枸杞的生存空間受到嚴(yán)重威脅,野生資源遠(yuǎn)遠(yuǎn)滿足不了市場(chǎng)需求。因此,眾多學(xué)者利用人工種植、引種馴化、組織培養(yǎng)等方法對(duì)野生黑果枸杞的資源保護(hù)和品種改良展開(kāi)研究[9-10]。
植物原生質(zhì)體是去除了細(xì)胞壁的裸露細(xì)胞,在適宜培養(yǎng)條件下能夠細(xì)胞壁再生、分裂分化從而發(fā)育成完整植株[11]。原生質(zhì)體的分離和再生在植物遺傳育種、遺傳轉(zhuǎn)化、性狀改良、分子鑒定、基因重組等領(lǐng)域具有重要的意義[12-14]。目前這種技術(shù)手段已成功應(yīng)用于薔薇科(Rosaceae Juss.)、十字花科(Brassicaceae Burnett)、傘形科(Apiaceae)、豆科(Leguminosae sp.)、茄科(Solanaceae)等數(shù)十個(gè)科的植物中[15-19],寧夏枸杞(Lyciumbarbarum)原生質(zhì)體的分離與再生已有報(bào)道[20],而與之同屬的黑果枸杞原生質(zhì)體再生尚未建立成熟的實(shí)驗(yàn)體系。
本研究以野生黑果枸杞無(wú)菌苗為外植體,以愈傷組織為游離材料,在獲得高產(chǎn)量、高活力原生質(zhì)體的基礎(chǔ)上開(kāi)展培養(yǎng)條件優(yōu)化,并對(duì)分化得到的再生植株進(jìn)行遺傳穩(wěn)定性分析。此研究為原生質(zhì)體水平上枸杞的生理生化和基因轉(zhuǎn)移創(chuàng)建了新的實(shí)驗(yàn)系統(tǒng),為利用體細(xì)胞雜交技術(shù)轉(zhuǎn)移野生植物抗逆遺傳性狀奠定基礎(chǔ),并為枸杞優(yōu)良品種的選育提供材料。
野生黑果枸杞(Lyciumruthenicum)采自青海省柴達(dá)木盆地都蘭縣。
1.2.1 愈傷組織的誘導(dǎo)將野生黑果枸杞種子消毒,置于不含植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的MS培養(yǎng)基中萌發(fā),待無(wú)菌苗生長(zhǎng)30 d后,切取葉片、葉柄及莖段作為外植體,接種于含有不同濃度2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)和6-芐氨基腺嘌呤(6-BA)的MS培養(yǎng)基中,于24 ℃、16 h光照/8 h黑暗光周期、2 000 Lx光照強(qiáng)度下培養(yǎng),30 d后觀察愈傷組織誘導(dǎo)情況。
1.2.2 原生質(zhì)體的游離分別取3 g幼嫩葉片和愈傷組織(葉片、葉柄、莖段誘導(dǎo)得到)作為游離材料,置于10 mL酶液中(含1.5%纖維素酶,1%離析酶,0.5% 半纖維素酶,0.5 mol·L-1甘露醇,0.1% MES和0.05 mol·L-1CaCl2),在搖床上以70 r·min-1轉(zhuǎn)速25 ℃黑暗處理11 h,用150目細(xì)胞網(wǎng)篩過(guò)濾,洗液(含0.5 mol·L-1甘露醇,0.1% MES和0.05 mol·L-1CaCl2)洗滌,18%蔗糖純化,培養(yǎng)液洗滌并離心收集原生質(zhì)體。
1.2.3 原生質(zhì)體培養(yǎng)及植株再生將純化后的原生質(zhì)體密度調(diào)整至104~105個(gè)·g-1左右,使用液體淺層和固液雙層兩種方式培養(yǎng),培養(yǎng)基選用MS1和MS2(表1);24 ℃黑暗靜置培養(yǎng),每2周添加1次新鮮培養(yǎng)基,待形成小愈傷組織后,轉(zhuǎn)移至固體培養(yǎng)基中培養(yǎng)(先弱光后正常)。30 d后,將固體培養(yǎng)基上生長(zhǎng)較好的愈傷組織,轉(zhuǎn)移至含有不同濃度6-BA(0~2.0 mg·L-1)和IBA(0~0.2 mg·L-1)的MS分化培養(yǎng)基上,45 d后觀察不定芽的形成情況。不定芽長(zhǎng)至2 cm左右后,移入不含植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的MS培養(yǎng)基中進(jìn)行生根培養(yǎng)。取根系生長(zhǎng)健壯的再生苗煉苗1周,移栽至混有營(yíng)養(yǎng)土和蛭石(2∶1)的基質(zhì)中,30 d后觀察再生植株生長(zhǎng)情況。
1.2.4 再生植株遺傳穩(wěn)定性分析(1)流式細(xì)胞儀檢測(cè)。參照高思丹等[21]的方法,以野生黑果枸杞親本植株作為參照樣本用于裂解和染色處理,植物倍性檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海月下生物科技中心,采用美國(guó)Beckman公司的Cytoflex LX流式細(xì)胞儀,激發(fā)波長(zhǎng)為405 nm,檢測(cè)結(jié)果用CytExpert軟件分析。
表1 原生質(zhì)體培養(yǎng)所需培養(yǎng)基
(2)ISSR分子檢測(cè)。以野生黑果枸杞親本植株作為對(duì)照,隨機(jī)選取6株原生質(zhì)體再生植株進(jìn)行ISSR分子檢測(cè)。DNA提取采用CTAB法,引物UBC 824(TCTCTCTCTCTCTCTCG)和UBC 834(AG-AGAGAGAGAGAGAGYT)由上海生工生物工程有限公司合成,退火溫度分別為48.4和48.7℃。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性45 s,退火45 s,72 ℃延伸2 min,36個(gè)循環(huán),72 ℃延伸7 min。擴(kuò)增產(chǎn)物在1×TAE配制的1.5%瓊脂糖凝膠中進(jìn)行電泳分離,電壓150 V,時(shí)間60 min。電泳結(jié)束后用凝膠成像儀拍照并分析。
1.2.5 統(tǒng)計(jì)分析數(shù)據(jù)處理和分析采用Excel和SAS軟件。
(1)原生質(zhì)體活力檢測(cè)使用熒光雙醋酸酯(FDA)法。原生質(zhì)體活力(%)=發(fā)黃綠色熒光原生質(zhì)體數(shù)/視野中的原生質(zhì)體總數(shù)×100%,原生質(zhì)體產(chǎn)量(個(gè)·g-1)=(懸浮液中原生質(zhì)體數(shù)/mL×總體積)/材料總鮮重(g)。
(2)倍性計(jì)算公式:待測(cè)樣本倍性=參照樣本倍性水平×(待測(cè)樣本峰熒光均值/參照樣本峰熒光均值)。
(3)ISSR只計(jì)算清晰穩(wěn)定的條帶,在同一遷移率位置有譜帶記為“1”,無(wú)譜帶記為“0”,記錄譜帶構(gòu)建“0,1”矩陣。
GS=2Nij/(Ni+Nj)
GS為遺傳相似系數(shù),Nij為親本植株和再生植株中相同條帶數(shù),Ni為親本植株條帶數(shù),Nj為再生植株條帶數(shù)。
葉片、葉柄和莖段3種外植體在含有單一2,4-D(0.5~1.5 mg·mL-1)的MS培養(yǎng)基上,均可誘導(dǎo)出愈傷組織(表2)。葉片外植體接種2~3 d后,外植體出現(xiàn)卷曲(圖1,A2);15 d左右邊緣膨大,在切口周圍有愈傷組織產(chǎn)生(圖1,A3);25 d后,形成大量黃綠色顆粒狀愈傷組織,質(zhì)地均一、松散(圖1,A4)。葉柄及莖段外植體接種后,15 d左右外植體膨大;25 d后大量愈傷組織形成,顏色較葉片愈傷組織淺,質(zhì)地較松散(圖1,B4、C4)。
表2 不同外植體愈傷組織誘導(dǎo)率及生長(zhǎng)情況
在含有2,4-D(0.5~1.5 mg·mL-1)的MS培養(yǎng)基中添加6-BA(0.2~1.0 mg·mL-1)后,愈傷組織的誘導(dǎo)率和生長(zhǎng)情況不及只有單一2,4-D的MS培養(yǎng)基(表2)。在含有同一濃度2,4-D的培養(yǎng)基中,隨著6-BA濃度的增加,愈傷組織的誘導(dǎo)率下降,這一現(xiàn)象在葉片、葉柄和莖段外植體中均存在。在含有6-BA的MS培養(yǎng)基中,誘導(dǎo)的愈傷組織少,顏色淺,生長(zhǎng)緩慢,質(zhì)地較軟,有的褐變或水漬化(圖1)。
綜合比較,黑果枸杞葉片為誘導(dǎo)愈傷組織的最適外植體,含有0.5 mg·mL-12,4-D的MS培養(yǎng)基為誘導(dǎo)愈傷組織的最適培養(yǎng)基。在該培養(yǎng)條件下,愈傷組織的誘導(dǎo)率可達(dá)100%,愈傷組織呈黃綠色顆粒狀,質(zhì)地松散,生長(zhǎng)迅速。
A1-A7. 葉片愈傷組織在不同培養(yǎng)基上處理不同天數(shù);B1-B7. 葉柄愈傷組織在不同培養(yǎng)基上處理不同天數(shù);C1-C7. 莖段愈傷組織在不同培養(yǎng)基上處理不同天數(shù)圖1 黑果枸杞不同外植體在不同培養(yǎng)基上誘導(dǎo)的愈傷組織A1-A7. The leaf calli were treated on different media for different days;B1-B7. The petiole calli were treated on different media for different days;C1-C7. The stem segment calli were treated on different media for different daysFig.1 Calli induced from different explants of L. ruthenicum on different media
表3 不同外植體及不同繼代次數(shù)愈傷組織的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力
在外植體來(lái)源上,用葉片和愈傷組織游離產(chǎn)生的原生質(zhì)體存在顯著差異(表3)。以葉片、葉柄、莖段的愈傷組織作為外植體,繼代1次后產(chǎn)生的原生質(zhì)體在產(chǎn)量和活力上均顯著高于葉片,其中葉片愈傷組織原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力最高,分別為7.77×106個(gè)·g-1和92%;而直接用葉片游離產(chǎn)生的原生質(zhì)體產(chǎn)量只有2.34×106個(gè)·g-1,活力為66%。
在愈傷組織繼代上,葉片、葉柄、莖段的愈傷組織隨著繼代次數(shù)的增加,游離產(chǎn)生的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力逐漸降低(表3)。繼代1次的葉片愈傷組織游離產(chǎn)生的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力分別為7.77×106個(gè)·g-1和92%;繼代2次時(shí),原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力分別下降為4.06×106個(gè)·g-1和83%;繼代3次時(shí),原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力分別下降到2.07×106個(gè)·g-1和64%。綜合比較,繼代1次的葉片愈傷組織是黑果枸杞原生質(zhì)體游離的最適外植體。
酶液中不同甘露醇濃度對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力有顯著影響(表4)。當(dāng)甘露醇濃度較低時(shí)(0.3 mol·L-1),原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力均較低,分別只有1.44×106個(gè)·g-1和71%,且溶液中細(xì)胞團(tuán)多、細(xì)胞碎片多,存在大量脫壁不全的原生質(zhì)體。當(dāng)甘露醇濃度為0.5 mol·L-1時(shí),原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力最高,分別為7.77×106個(gè)·g-1和92%,游離產(chǎn)生的原生質(zhì)體為規(guī)則的球形。
在培養(yǎng)方式上,固液雙層培養(yǎng)優(yōu)于液體淺層培養(yǎng)(表5)。在相同培養(yǎng)方式下,不同培養(yǎng)基(MS1、MS2)產(chǎn)生的培養(yǎng)效果也不同(表5)。以固液雙層培養(yǎng)為例,使用MS2培養(yǎng)基,2 d時(shí)出現(xiàn)第一次細(xì)胞分裂,培養(yǎng)10 d后的分裂頻率為45.9%,培養(yǎng)20 d后形成細(xì)胞團(tuán)的比例為22.9%;而使用MS1培養(yǎng)基,3 d時(shí)才出現(xiàn)第一次細(xì)胞分裂,培養(yǎng)10 d后的分裂頻率為32.7%,培養(yǎng)20 d后形成細(xì)胞團(tuán)的比例為25%。綜合比較認(rèn)為,MS2-固液雙層培養(yǎng)適于黑果枸杞原生質(zhì)體培養(yǎng)。在該培養(yǎng)方式下,培養(yǎng)第2天可觀察到第1次細(xì)胞分裂(圖2,D),5 d左右進(jìn)行第二次細(xì)胞分裂(圖2,E),接著開(kāi)始第三次細(xì)胞分裂(圖2,F(xiàn)),培養(yǎng)10 d時(shí)的分裂頻率為45.9%,14 d左右形成細(xì)胞團(tuán)(圖2,G),培養(yǎng)20 d時(shí)形成細(xì)胞團(tuán)的比例達(dá)到22.9%,此時(shí)可在培養(yǎng)皿中看到肉眼可見(jiàn)的小愈傷組織(圖2,H)。
將培養(yǎng)皿中的小愈傷組織轉(zhuǎn)移至含有0.5 mg·mL-12,4-D的 MS固體培養(yǎng)基中(圖2,I),約30 d后形成質(zhì)地松散的黃綠色愈傷組織(圖2,J);將長(zhǎng)勢(shì)較好的愈傷組織轉(zhuǎn)移至含有1.5 mg·mL-16-BA和0.1 mg·mL-1IBA的MS分化培養(yǎng)基中,4周后愈傷組織分化出不定芽(圖2,K);將不定芽轉(zhuǎn)移至不含植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的MS固體培養(yǎng)基中(圖2,L),10 d左右不定芽開(kāi)始生根(圖2,M);經(jīng)煉苗后,將再生苗移栽至土壤基質(zhì)中,再生苗可正常生長(zhǎng)(圖2,N)。
2.6.1 ISSR分子檢測(cè)對(duì)瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)并分析。只對(duì)清晰條帶進(jìn)行統(tǒng)計(jì),UBC824引物在黑果枸杞親本植株和原生質(zhì)體再生植株中共擴(kuò)增出7條譜帶,其中多態(tài)性譜帶為2條(圖3,A);UBC834引物在黑果枸杞親本植株和原生質(zhì)體再生植株中共擴(kuò)增出9條譜帶,多態(tài)性譜帶有3條(圖3,B)。經(jīng)計(jì)算,6株再生植株與親本植株之間的遺傳相似系數(shù)在0.815~0.929之間,平均遺傳相似系數(shù)為0.875,說(shuō)明由原生質(zhì)體培養(yǎng)獲得的再生植株能較好地保持親本的遺傳性狀。
表4 不同甘露醇濃度下原生質(zhì)體的產(chǎn)量和活力
表5 不同培養(yǎng)條件原生質(zhì)體培養(yǎng)
A. 黑果枸杞原生質(zhì)體;B. FDA活力檢測(cè);C. 葉片愈傷組織游離的原生質(zhì)體;D. 第一次細(xì)胞分裂;E. 第二次細(xì)胞分裂;F. 第三次細(xì)胞分裂;G. 細(xì)胞團(tuán)的形成;H. 小愈傷組織的形成;I. 轉(zhuǎn)移至固體培養(yǎng)基中的愈傷組織;J. 生長(zhǎng)30 d的愈傷組織;K. 愈傷組織分化出不定芽;L. 原生質(zhì)體再生植株;M. 再生植株生根;N. 移栽后正常生長(zhǎng)的再生植株圖2 黑果枸杞原生質(zhì)體的培養(yǎng)A. Protoplast of L. ruthenicum;B. Viability of freshly isolated protoplasts stained by FDA;C. Protoplast derived from leaf calli;D. The first cell division;E. The second cell division;F. The third cell division;G. Microcolony formation;H. Micro-calli formation;I. Regenerating calli transferred to the solid medium;J. Regenerating calli grown for 30 days;K. Adventitious buds differentiated by regenerating calli;L. Complete regenerated plant from protoplasts;M. Rooting of regenerated plant;N. Regenerated plants normal grow after transplantingFig.2 Protoplast culture of L. ruthenicum
A. 引物UBC824;B.引物UBC834;M. DL5000;Q. 黑果枸杞(親本植株);1-6. 由原生質(zhì)體培養(yǎng)獲得的再生植株圖3 野生黑果枸杞ISSR檢測(cè)結(jié)果A. Primer UBC824;B. Primer UBC834;M. DL5000;Q. L. ruthenicum (parent plant);1-6. Regenerated plant from protoplast cultureFig.3 ISSR results of L. ruthenicum
A. 親本植株(參照樣本);B. 原生質(zhì)體再生植株圖4 流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果A. Parental plant (control sample);B. Regenerated plant of L. ruthenicumFig.4 Flow cytometry test results
2.6.2 流式細(xì)胞檢測(cè)根據(jù)流式細(xì)胞儀檢測(cè)原理,峰的平均熒光強(qiáng)度可以反映細(xì)胞核中DNA總量的變化。結(jié)果顯示,原生質(zhì)體再生植株的熒光均值為2 294 178.3,變異系數(shù)為5.67;而親本植株的熒光均值為2 387 634.8,變異系數(shù)為4.55。通過(guò)計(jì)算可知,原生質(zhì)體再生植株為二倍體,與親本植株相同,在倍性上沒(méi)有發(fā)生改變(圖4)。
制備原生質(zhì)體的材料來(lái)源是影響原生質(zhì)體培養(yǎng)成功的關(guān)鍵因素。目前,懸浮培養(yǎng)或愈傷組織培養(yǎng)最為廣泛,相比之下,愈傷組織是建立高效原生質(zhì)體分離體系的必要條件,而懸浮培養(yǎng)具有較高的胚胎發(fā)生能力,是極好的原生質(zhì)體來(lái)源,但實(shí)驗(yàn)條件要求嚴(yán)格,耗時(shí)耗力。Li等[22]首次成功建立油茶(Camelliaoleifera)懸浮培養(yǎng)的原生質(zhì)體分離方法時(shí)是在高質(zhì)量的愈傷組織基礎(chǔ)上進(jìn)行的,Taylor等[23]發(fā)現(xiàn)一些品種的懸浮培養(yǎng)周期甚至達(dá)到10~14周,而且并不一定會(huì)獲得再生植株。本研究利用不同外植體誘導(dǎo)愈傷組織,在此基礎(chǔ)上直接分離原生質(zhì)體,既縮短了培養(yǎng)周期,也簡(jiǎn)便了培養(yǎng)方法,而且能獲得高產(chǎn)高效的原生質(zhì)體細(xì)胞,是一種更加快捷高效的培養(yǎng)體系。另外,較植物本身而言,葉片組織是能夠釋放大量原生質(zhì)體的寶貴材料,在原生質(zhì)體培養(yǎng)初期為細(xì)胞密度、再生愈傷組織形成等都具有一定的貢獻(xiàn)。舒小娟等[24]分離葡萄(VitisviniferaL.cv.‘Heixiangjiao’)原生質(zhì)體時(shí)發(fā)現(xiàn)葉片愈傷組織來(lái)源的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力都較高;Chand等[25]分離龍葵(Solanumdulcamara)原生質(zhì)體時(shí)也得出一致結(jié)論,并發(fā)現(xiàn)繼代3次的葉片愈傷組織產(chǎn)量和活力最高;本研究對(duì)比了3種不同外植體的愈傷組織,同樣發(fā)現(xiàn)葉片愈傷組織是分離優(yōu)質(zhì)原生質(zhì)體的最佳材料來(lái)源,且繼代1次后的葉片愈傷組織產(chǎn)量和活力最高,隨著繼代次數(shù)的增加,游離得到的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力逐漸降低。因此,推測(cè)愈傷組織繼代次數(shù)可影響原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力變化,未經(jīng)繼代的初始愈傷組織因存在外植體,其愈傷組織形態(tài)多變且穩(wěn)定性較差,對(duì)原生質(zhì)體純化及培養(yǎng)形成干擾,初始愈傷組織經(jīng)過(guò)1~3次繼代后逐漸穩(wěn)定,且指數(shù)生長(zhǎng)期階段的愈傷組織正處于細(xì)胞分裂旺盛期,選取該階段愈傷組織可大大提高原生質(zhì)體的產(chǎn)量和活力,但二者存在的正相關(guān)關(guān)系還有待進(jìn)一步研究證明。
原生質(zhì)體培養(yǎng)的另一個(gè)關(guān)鍵因素是培養(yǎng)方法與培養(yǎng)基的選擇。Borgato等[26]發(fā)現(xiàn)利用液體淺層直接培養(yǎng)時(shí),原生質(zhì)體細(xì)胞壁無(wú)法再生和分裂。本研究發(fā)現(xiàn)液體淺層培養(yǎng)黑果枸杞原生質(zhì)體時(shí),細(xì)胞大多聚集于培養(yǎng)皿周圍,細(xì)胞團(tuán)形成率相對(duì)較低,且易褐化、易污染。Yang等[27]認(rèn)為雙層培養(yǎng)體系是棉原生質(zhì)體培養(yǎng)的最佳方法。本研究以固液雙層的培養(yǎng)方法,讓原生質(zhì)體在既含有液體培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)成分的同時(shí)又能吸收到固體培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),同時(shí)又將次生代謝物被固體培養(yǎng)基所吸附,不僅迅速提高了原生質(zhì)體第一次分裂時(shí)間,降低了褐化程度,而且增加了細(xì)胞的透氣性,培養(yǎng)效果優(yōu)于單一液體淺層培養(yǎng)的方式。培養(yǎng)基成分對(duì)原生質(zhì)體培養(yǎng)時(shí)的細(xì)胞分裂水平起關(guān)鍵作用[28],決定了離體細(xì)胞能否持續(xù)分裂并生長(zhǎng)[29]。Xu Ziqin等[30]發(fā)現(xiàn)無(wú)機(jī)鹽濃度過(guò)高后原生質(zhì)體在培養(yǎng)時(shí)出現(xiàn)嚴(yán)重褐變現(xiàn)象;Zhao Kongnan等[29]研究蕓苔屬(Brassica)原生質(zhì)體時(shí)提出,添加過(guò)多氨基酸以及核苷酸等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)并不一定會(huì)引起原生質(zhì)體的高頻率分裂,反而容易引起褐變,因此認(rèn)為改良MS培養(yǎng)基是大多數(shù)蕓苔屬原生質(zhì)體培養(yǎng)的最佳培養(yǎng)基;本研究利用MS1和MS2培養(yǎng)基(表1)培養(yǎng)黑果枸杞原生質(zhì)體時(shí)改變了培養(yǎng)基成分,適量添加谷氨酰胺、葡萄糖等成分參與蛋白質(zhì)合成及細(xì)胞代謝,有效降低了原生質(zhì)體褐化,但本研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)過(guò)培養(yǎng)的原生質(zhì)體分裂率保持在最高水平的狀態(tài)下時(shí)其細(xì)胞團(tuán)形成率卻呈現(xiàn)較低水平,這可能與MS2培養(yǎng)基中添加的成分有很大關(guān)系,猜測(cè)黑果枸杞原生質(zhì)體第一次分裂時(shí)間、培養(yǎng)后的分裂率及細(xì)胞團(tuán)形成率都可能受MS2培養(yǎng)基成分的影響。
植物由親本到再生的整個(gè)過(guò)程中遺傳的完整性也十分關(guān)鍵,微小的突變很可能造成植株的遺傳變異[31]。Irene等[32]、Karp等[33]檢測(cè)原生質(zhì)體培養(yǎng)過(guò)程中各階段DNA含量時(shí)發(fā)現(xiàn)愈傷增殖階段、不定芽再生階段均可能發(fā)生變異。本研究通過(guò)ISSR以及FCM技術(shù)分析再生植株時(shí)并未發(fā)現(xiàn)明顯變異現(xiàn)象,再生植株在遺傳相似系數(shù)以及倍性檢測(cè)中均與親本保持一致,但值得注意的是,高思丹等[21]研究黑果枸杞葉片再生植株時(shí)發(fā)現(xiàn)葉片再生植株與親本植株在DNA總量上表現(xiàn)出差異,這一現(xiàn)象在本研究結(jié)果中也有體現(xiàn),推測(cè)是造成ISSR條帶部分增加或缺失的原因之一。植物體細(xì)胞發(fā)生變異一方面可培育產(chǎn)生新品種,另一方面為遺傳穩(wěn)定性研究增加困難。遺傳穩(wěn)定性研究常見(jiàn)的有ISSR、FCM等技術(shù),ISSR技術(shù)在小麥(TriticumaestivumL.)、水稻(OryzasativaL.)、辣椒(CapsicumannuumL.)等多個(gè)品種的遺傳鑒定中都發(fā)揮出重要作用[34],F(xiàn)CM技術(shù)可清楚地體現(xiàn)親本植株與再生植株之間遺傳倍性的穩(wěn)定性水平,可靠且快速,Jedrzejczyk等[35]、Faisal等[36]在鑒定遺傳穩(wěn)定性時(shí)都用到該方法。本研究以這兩種為主要鑒定方法,發(fā)現(xiàn)黑果枸杞再生植株與親本植株之間有不明顯差異,再生植株由原生質(zhì)體生長(zhǎng)為完整植株的過(guò)程中,需經(jīng)過(guò)細(xì)胞培養(yǎng)、愈傷形成以及不定芽產(chǎn)生等,這一系列過(guò)程都需要激素誘導(dǎo),上述提到細(xì)胞在愈傷增殖階段以及不定芽再生階段都可能發(fā)生變異,因此產(chǎn)生這一結(jié)果可能的原因有多種,是植物激素的相互作用還是培養(yǎng)過(guò)程中植株本身存在的變異,需要利用細(xì)胞、分子等手段進(jìn)一步研究。