王紅明 丁雪婧 陳 儉 宋守鋼 譚北平,2 章 雙,2*
(1.廣東海洋大學(xué)水產(chǎn)動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)與飼料實(shí)驗(yàn)室,湛江 524088;2.農(nóng)業(yè)部華南水產(chǎn)與畜禽飼料重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湛江 524088)
寡糖,又稱低聚糖,是一種具有2~20個(gè)糖單位的碳水化合物,糖單位間通過(guò)糖苷鍵連接而成。孫青云等[5]研究表明,寡糖能降低動(dòng)物腸道pH、促進(jìn)礦物質(zhì)吸收、促進(jìn)動(dòng)物腸道內(nèi)健康微生物菌群形成和提高動(dòng)物機(jī)體免疫力。而甘露寡糖(mannan-oligosaccharides,MOS)作為一類從酵母細(xì)胞壁提取出來(lái)的葡萄糖-甘露寡糖蛋白復(fù)合物,能參與多種生物功能和多種生理過(guò)程,具有吸附病原菌的功能[6]。在家禽[7]和仔豬[8]等動(dòng)物中已發(fā)現(xiàn),甘露寡糖可通過(guò)提高機(jī)體腸道的微生態(tài)狀況,減少胃腸道疾病,從而提高動(dòng)物免疫功能。甘露寡糖作為綠色添加劑在水產(chǎn)動(dòng)物研究較為廣泛,可以提高水產(chǎn)動(dòng)物生長(zhǎng)性能,優(yōu)化腸道菌群,促進(jìn)腸道發(fā)育,提高水產(chǎn)動(dòng)物免疫功能,在半滑舌鰨(Cynoglossussemilaevis)[9]、大黃魚(yú)(Larimichthyscrocea)[10]、奧尼羅非魚(yú)(Oreochromisniloticus×Oreochromisaureus)[11]、泥鰍(Misgurnusanguillicaudatus)[12]、黃顙魚(yú)(Pelteobagrusfulvidraco)[13]、歐洲鰻鱺(Anguillaanguilla)[14]等物種的養(yǎng)殖中均有應(yīng)用。甘露寡糖在水產(chǎn)動(dòng)物健康養(yǎng)殖中的積極作用已被廣泛證實(shí),但是大多從動(dòng)物生長(zhǎng)性能、生理生化和組織形態(tài)改變等宏觀層面進(jìn)行考察,利用高通量測(cè)序技術(shù)從轉(zhuǎn)錄組和腸道菌群方面對(duì)甘露寡糖功能進(jìn)行的研究還不多見(jiàn)。
高通量測(cè)序已經(jīng)成為一種常規(guī)的試驗(yàn)技術(shù)用于生命科學(xué)領(lǐng)域,包括轉(zhuǎn)錄水平和腸道菌群分析等。轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-seq)利用高通量測(cè)序來(lái)全面快速地獲得特定細(xì)胞或組織在某一狀態(tài)下幾乎所有轉(zhuǎn)錄本的序列信息和表達(dá)信息,準(zhǔn)確地分析基因表達(dá)差異、結(jié)構(gòu)變異和分子標(biāo)記等生命科學(xué)的重要問(wèn)題[15]?;?6S rRNA基因高通量測(cè)序已成為動(dòng)物腸道菌群結(jié)構(gòu)的形成及多樣性分析的常用技術(shù)[16]。在水產(chǎn)動(dòng)物中,高通量測(cè)序也已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)錄組和腸道菌群分析,用以研究生長(zhǎng)、發(fā)育、免疫等相關(guān)生命活動(dòng)的作用機(jī)制[17-18]。目前,轉(zhuǎn)錄組測(cè)序和腸道菌群分析已被用于石斑魚(yú)生長(zhǎng)調(diào)控、免疫調(diào)節(jié)等相關(guān)的作用機(jī)制研究。王登東等[19]和張海艷等[20]采用轉(zhuǎn)錄組測(cè)序分別分析了云龍石斑魚(yú)雜交生長(zhǎng)優(yōu)勢(shì)形成的機(jī)制和β-葡聚糖調(diào)節(jié)魚(yú)類免疫系統(tǒng)的作用機(jī)制。Ye等[21-22]采用16S rRNA高通量測(cè)序發(fā)現(xiàn)了花生粕和脫酚棉籽蛋白對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)生長(zhǎng)和腸道健康的影響作用。
甘露寡糖已被用于石斑魚(yú)養(yǎng)殖中。Ren等[23]從免疫相關(guān)酶活性、免疫相關(guān)基因表達(dá)、腸道切片以及生長(zhǎng)性能等方面研究珍珠龍膽石斑魚(yú)幼魚(yú),結(jié)果表明飼料中添加甘露寡糖料不能改善珍珠龍膽石斑魚(yú)幼魚(yú)的生長(zhǎng)性能和飼料利用率,但可以通過(guò)改善腸道形態(tài)完整性、增強(qiáng)抗氧化能力和非特異性免疫、增加免疫相關(guān)基因表達(dá)、降低腸道和肝臟中凋亡相關(guān)基因的表達(dá)來(lái)促進(jìn)腸道健康和維持免疫狀態(tài)。研究發(fā)現(xiàn),多種魚(yú)類消化道內(nèi)某些細(xì)菌能產(chǎn)生淀粉酶、蛋白質(zhì)水解酶、脂肪分解酶等胞外酶,用以促進(jìn)魚(yú)類消化脂肪、蛋白質(zhì)、淀粉等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的能力,進(jìn)而提高營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率[18]。目前為止,利用高通量測(cè)序分析甘露寡糖對(duì)石斑魚(yú)影響的研究暫未有報(bào)道?;诖耍狙芯窟x取珍珠龍膽石斑魚(yú)為研究對(duì)象,研究飼料中添加甘露寡糖對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)生長(zhǎng)性能、血清免疫指標(biāo)、轉(zhuǎn)錄組及腸道菌群的影響,以探究甘露寡糖調(diào)控珍珠龍膽石斑魚(yú)免疫的作用機(jī)理,為水產(chǎn)飼料行業(yè)尋求替代抗生素的物質(zhì)提供理論依據(jù)。
以魚(yú)粉、豆粕、玉米蛋白粉為主要蛋白質(zhì)源,以魚(yú)油、玉米油為主要脂肪源,配制基礎(chǔ)飼料,基礎(chǔ)飼料組成及營(yíng)養(yǎng)水平見(jiàn)表1。對(duì)照組飼喂基礎(chǔ)飼料,甘露寡糖組在基礎(chǔ)飼料中添加100 mg/kg甘露寡糖。甘露寡糖購(gòu)自青島某生物技術(shù)有限公司,甘露寡糖添加量參照于朝磊等[9]、Ren等[23]、徐磊等[24]的研究。試驗(yàn)飼料具體制作及營(yíng)養(yǎng)成分分析方法參照本實(shí)驗(yàn)室Ye等[22]、Liu等[25]的研究。
表1 基礎(chǔ)飼料組成及營(yíng)養(yǎng)水平(干物質(zhì)基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (DM basis) %
續(xù)表1項(xiàng)目 Items含量 Content預(yù)混料 Premix1.00誘食劑 Attractant0.15磷酸二氫鈣 Ca(H2PO4)21.50維生素C Vitamin C0.20氯化膽堿 Choline chloride0.50抗氧化劑 Antioxidant0.05合計(jì) Total100.00營(yíng)養(yǎng)水平 Nutrient levels粗蛋白質(zhì) Crude protein50.18粗脂肪 Crude lipid 11.63
每千克預(yù)混料含 One kg premix contained the following: VA 675 000 IU,VD3180 000 IU,VE 6 000 mg,VK31 200 mg,VB1900 mg,VB21 350 mg,VB61 050 mg,VB127.5 mg,泛酸鈣 calcium pantothenate 4 500 mg,煙酸 nicotinic acid 6 750 mg,葉酸 folic acid 375 mg,生物素 biotin 15 mg,維生素C磷酸酯 vitamin C phosphate 42 860 mg,肌醇 inositol 10 000 mg,F(xiàn)eSO4·H2O 64 286 mg,ZnSO4·H2O 26 283 mg,MnSO4·H2O 19 688 mg,Ca(IO3)2·H2O 128.6 mg,CoCl2·6H2O 323 mg,CuSO4·5H2O 2,357 mg,Na2SeO387.6 mg。
試驗(yàn)用魚(yú)來(lái)源于湛江市南三島商業(yè)養(yǎng)殖基地,購(gòu)回后于4.5 m×4.9 m×1.8 m的室外水泥池暫養(yǎng)2周,以適應(yīng)試驗(yàn)條件。試驗(yàn)在玻璃鋼桶(0.5 m3)中進(jìn)行,挑選240尾初始平均體重為(6.00±0.32) g的體質(zhì)健壯無(wú)病的幼魚(yú),隨機(jī)分為2組,每組3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)40尾魚(yú),養(yǎng)殖8周。養(yǎng)殖過(guò)程中,每天分別于08:00和17:00按照魚(yú)體重的3%~5%進(jìn)行飽食投喂2次(第1顆飼料沉入桶底未被攝食視為飽食),投喂量依據(jù)攝食情況和天氣變化調(diào)整。具體養(yǎng)殖條件為:水體溫度28~30 ℃,鹽度21%~24%,溶氧量≥6.8 mg/L。每天按照換養(yǎng)殖水體1/3的水量換水1次。
試驗(yàn)用魚(yú)在養(yǎng)殖期結(jié)束后禁食24 h。記錄存活尾數(shù)、體重和體長(zhǎng),以進(jìn)行生長(zhǎng)性能分析。從每個(gè)重復(fù)中隨機(jī)取8尾魚(yú),丁香酚麻醉后采用尾靜脈取血法抽取全血,每尾魚(yú)抽取1 mL后混合。按照海水魚(yú)淋巴細(xì)胞分離液試劑盒(產(chǎn)品編號(hào):P9980,北京索萊寶科技有限公司始)說(shuō)明書進(jìn)行操作,得到血細(xì)胞和血清樣品,于-80 ℃保存待測(cè)。其中,對(duì)照組和甘露寡糖組中3個(gè)重復(fù)的血細(xì)胞樣品分別混合后用于轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,每組中每個(gè)重復(fù)的血清樣品分別用于免疫指標(biāo)測(cè)定。另外,每個(gè)重復(fù)隨機(jī)取4尾魚(yú),取剝離腸道外脂肪組織的后腸混合成為1個(gè)樣品,置于液氮后于-80 ℃保存待測(cè),用于腸道菌群測(cè)定。
選用存活率(survival rate,SR)、增重率(weight gain rate,WGR)、特定生長(zhǎng)率(specific growth rate,SGR)、肥滿度(condition factor,CF)、飼料系數(shù)(feed coefficient rate,F(xiàn)CR)作為生長(zhǎng)性能指標(biāo),參照Ye等[22]和Liu等[25]的研究,分別按以下公式計(jì)算:
SR(%)=100×終末尾數(shù)/初始尾數(shù);
WGR(%)=100×(終末總重-
初始總重)/初始總重;
SGR(%/d)=100×(ln終末總重-
ln初始總重)/飼喂天數(shù);
CF(g/cm3)=100×魚(yú)體重/魚(yú)體長(zhǎng)度3;
FCR=攝入飼料干重/(終末總重+
死亡個(gè)體總重-初始總重)。
選用超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過(guò)氧化氫酶(catalase,CAT)、酸性磷酸酶(acid phosphatase,ACP)、堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)、溶菌酶(lysozyme,LZM)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)作為血清免疫指標(biāo)進(jìn)行檢測(cè)。血清SOD、CAT、ACP、AKP、LZM活性和MDA含量分別采用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的SOD(產(chǎn)品編號(hào):A001-3-2)、CAT(產(chǎn)品編號(hào):A007-1-1)、ACP(產(chǎn)品編號(hào):A060-2-1)、AKP(產(chǎn)品編號(hào):A059-2-2)、LZM(產(chǎn)品編號(hào):A050-1-1)、MDA(產(chǎn)品編號(hào):A003-1-2)試劑盒進(jìn)行測(cè)定。
采用TRIzol試劑盒(Invitrogen公司,美國(guó))提取樣品總RNA后,委托廣州基迪奧生物科技有限公司完成文庫(kù)的構(gòu)建和測(cè)序工作,建好的測(cè)序文庫(kù)用Illumina HiSeqTM進(jìn)行測(cè)序。去除測(cè)序接頭和低質(zhì)量的序列數(shù)據(jù)過(guò)濾原始數(shù)據(jù)后,采用Trinity Assembly Software軟件進(jìn)行轉(zhuǎn)錄本拼接并聚類,取最長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄本為非重復(fù)序列基因(Unigene)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)估和統(tǒng)計(jì)。所有Unigene分別在6個(gè)數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì),其中包括Nr、KEGG、Swissprot和KOG數(shù)據(jù)庫(kù)。利用錯(cuò)誤發(fā)現(xiàn)率(false discovery rate,F(xiàn)DR)和log2差異倍數(shù)(fold change,F(xiàn)C)來(lái)進(jìn)行篩選,篩選條件為FDR<0.05且|log2FC|>1。對(duì)基因進(jìn)行定量和差異分析,取差異顯著的基因用于KEGG和GO富集分析。
采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行非配對(duì)樣本t檢驗(yàn)分析,試驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SE)表示,P<0.05表示差異顯著。
如表2所示,甘露寡糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)的終末體重、WGR、SGR和CF均顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。甘露寡糖組和對(duì)照組之間珍珠龍膽石斑魚(yú)的FCR和SR無(wú)顯著差異(P>0.05)。
表2 飼料中添加甘露寡糖對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)生長(zhǎng)性能的影響Table 2 Effects of dietary MOS on growth performance of Epinephelus fuscoguttatus ♀×Epinephelus lanceolatus (n=3)
如表3所示,與對(duì)照組相比,甘露寡糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)的血清SOD、CAT、LZM和AKP活性均顯著升高(P<0.05),血清MDA含量顯著降低(P<0.05)。甘露寡糖組和對(duì)照組之間珍珠龍膽石斑魚(yú)的血清ACP活性無(wú)顯著差異(P>0.05)。
表3 飼料中添加甘露寡糖對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)血清免疫指標(biāo)的影響Table 3 Effects of dietary MOS on serum immune indices of Epinephelus fuscoguttatus ♀×Epinephelus lanceolatus (n=3)
2.3.1 血細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序和序列組裝
利用Illumina平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序,如表4所示,除去銜接子并過(guò)濾了低質(zhì)量序列后留下了高質(zhì)量堿基(clean bases)合計(jì)為14 462 786 068 nt。從原始讀長(zhǎng)(raw reads)濾過(guò)后得到97 715 428個(gè)高質(zhì)量讀長(zhǎng)(clean reads)。其中,對(duì)照組從47 953 578個(gè)原始讀長(zhǎng)中產(chǎn)生了46 493 708個(gè)高質(zhì)量讀長(zhǎng),甘露寡糖組從52 713 580個(gè)原始讀長(zhǎng)中產(chǎn)生了51 221 720個(gè)高質(zhì)量讀長(zhǎng)。
表4 轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)Table 4 Transcriptome sequencing data statistics
如表5所示,通過(guò)Trinity軟件組裝獲得總長(zhǎng)度為74 614 602 nt,Unigene總數(shù)為79 291個(gè),Unigene平均長(zhǎng)度為941 bp,N50長(zhǎng)度為2 141 bp,N90長(zhǎng)度為318 bp。
表5 轉(zhuǎn)錄組組裝數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)Table 5 Statistics of transcriptome assembly data
進(jìn)一步對(duì)Unigene做質(zhì)量評(píng)估,作長(zhǎng)度分布統(tǒng)計(jì)圖,如圖1所示,長(zhǎng)度小于1 000 bp的Unigene較集中分布在2 700~2 999 nt區(qū)間;長(zhǎng)度大于1 000 bp的Unigene有63 455個(gè),占總數(shù)80.03%。組裝結(jié)果表明測(cè)序質(zhì)量良好。
圖1 Unigene序列長(zhǎng)度統(tǒng)計(jì)Fig.1 Unigene sequence length statistics
2.3.2 Unigene功能注釋
如圖2所示,通過(guò)對(duì)組裝的測(cè)序結(jié)果分析,一共注釋到28 811個(gè)Unigene,占比36.34%。其中,在Nr、KEGG、Swissprot和KOG數(shù)據(jù)庫(kù)中分別注釋到28 664、14 866、19 668和16 506個(gè)Unigene。將組裝獲得的Unigene在Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì)分析,結(jié)果顯示注釋最多的5個(gè)物種分別為大黃魚(yú)(Larimichthyscrocea)(6 381個(gè),22.26%)、盲曹魚(yú)(Latescalcarifer)(6 335個(gè),22.10%)、斑馬魚(yú)(Stegastespartitus)(2 493個(gè),8.70%)、革首南極魚(yú)(Nototheniacoriiceps)(1 578個(gè),5.51%)和尼羅羅非魚(yú)(Oreochromisniloticus)(1 128個(gè),3.94%)。
圖2 轉(zhuǎn)錄組中Unigene的注釋 Fig.2 Annotation of Unigene from transcriptome
如圖3所示,KOG注釋結(jié)果顯示,32 518個(gè)Unigene聚類被分為25個(gè)功能類別。Unigene在一般功能預(yù)測(cè)(general function prediction only)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)(singnal transduction)和翻譯后藥物、蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)換、伴侶(posttranslational medication, protein turnover, chaperones)3個(gè)功能類別中富集最多,含有Unigene數(shù)目分別為6 347、6 108和3 129個(gè),分別占比19.52%、18.78%和9.62%。其中,富集于細(xì)胞運(yùn)動(dòng)(cell motility)功能上的Unigene最少,只有88個(gè)。
圖3 KOG聚類分析圖Fig.3 KOG cluster analysis diagram
如圖4所示,通過(guò)Blast2GO軟件得到Unigene的GO注釋信息,分別有17 795、7 625和9 745個(gè)Unigene注釋到參與到生物過(guò)程(biological process)、分子功能(molecular function)和細(xì)胞組成(cell component)中。在生物過(guò)程一類中,Unigene主要注釋到細(xì)胞過(guò)程(cell process)和新陳代謝過(guò)程(metabolic process),分別有4 026和3 557個(gè)Unigene。在分子功能一類中,Unigene主要注釋到催化活性(catalytic activity)(2 988個(gè)Unigene)和結(jié)合(binding),分別有2988和3 499個(gè)Unigene。在細(xì)胞組成一類中,Unigene主要注釋到細(xì)胞(cell)和細(xì)胞部分(cell part),均有2 130個(gè)Unigene。
圖4 Unigene的GO分類Fig.4 GO classification of Unigene
根據(jù)KEGG注釋信息可知,總共6 912個(gè)Unigene注釋到5個(gè)特定的通路中,包括生物系統(tǒng)(organism system)、環(huán)境信息處理(environmental information processing)、遺傳信息處理(genetic information processing)、代謝(mentabolism)和細(xì)胞過(guò)程。
2.3.3 差異表達(dá)基因(differentially expressed gene,DEG)分析
以FDR<0.05且|log2FC|>1為條件篩選甘露寡糖組和對(duì)照組之間DEG,結(jié)果如圖5所示,一共鑒定出9 964個(gè)DEG,包含3 801個(gè)上調(diào)表達(dá)基因和6 163個(gè)下調(diào)表達(dá)基因。
橫坐標(biāo)表示差異倍數(shù)對(duì)數(shù)值,縱坐標(biāo)表示FDR的負(fù)Log10值。The abscissa represented the logarithm value of difference multiple, and the ordinate represented the negative log10 value of FDR.圖5 差異表達(dá)基因的火山圖Fig.5 Volcano map of DEG
DEG的GO功能富集分析結(jié)果如圖6所示,分別有5 592、3 131和5 274個(gè)Unigene注釋到參與的生物過(guò)程、細(xì)胞組成和分子功能中。在生物過(guò)程一類中,富集到細(xì)胞過(guò)程的DEG數(shù)目最多(72.59%顯著下調(diào)),其次為新陳代謝過(guò)程、單一生物代謝過(guò)程。在細(xì)胞組成一類中,富集到膜和膜部分中的DEG數(shù)目最多,其中膜有53.85%顯著下調(diào),膜部分有47.34%顯著下調(diào)。在分子功能一類中,富集到結(jié)合中的DEG數(shù)目最多,有66.98%顯著下調(diào)。
圖6 差異表達(dá)基因的GO功能富集分析Fig.6 GO functional enrichment analysis of DEG
DEG的KEEG富集分析如圖7所示,共有741個(gè)DEG被注釋到171個(gè)通路中,甘露寡糖和對(duì)照組之間差異最大的20條KEGG富集通路中,與新陳代謝有關(guān)且差異顯著的信號(hào)通路有11個(gè),分別為煙酸與煙酰胺代謝(nicotinate and nicotinamide metabolism)、精氨酸生物合成(arginine biosynthesis)、微生物在不同環(huán)境中的代謝(microbial metabolism in diverse environments)、泛酸與CoA生物合成(pantothenate and CoA biosynthesis)、初級(jí)膽汁酸生物合成(primary bile acid biosynthesis)、酪氨酸代謝(tyrosine metabolism)、芳香族化合物的降解(degradation of aromatic compounds)、D-谷氨酰胺與D-谷氨酸代謝(D-glutamine andD-glutamate metabolism)、亞油酸代謝(linoleic acid metabolism)、碳代謝(carbon metabolism)、初級(jí)膽汁酸生物合成(primary bile acid biosynthesis)。與免疫有關(guān)且差異顯著的信號(hào)通路有4個(gè),分別為吞噬體(phagosome)、細(xì)胞黏附分子(cell adhesion molecules)、細(xì)胞因子-細(xì)胞因子受體相互作用(cytokine-cytokine receptor interaction)、免疫球蛋白A產(chǎn)生的腸道免疫網(wǎng)絡(luò)(intestinal immune network for IgA production)。其中,吞噬體和細(xì)胞黏附分子信號(hào)通路為顯著富集DEG數(shù)目最多的2條信號(hào)通路,含有DEG數(shù)目分別為52和46個(gè)。此外,細(xì)胞因子-細(xì)胞因子受體相互作用信號(hào)通路中顯著富集的DEG數(shù)目有34個(gè),免疫球蛋白A產(chǎn)生的腸道免疫網(wǎng)絡(luò)信號(hào)通路中顯著富集的DEG數(shù)目有13個(gè)。
圖7 差異表達(dá)基因KEGG富集分析Fig.7 KEGG enrichment analysis of DEG
2.4.1 珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道菌群多樣性分析
珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道菌群α多樣性分析如表6所示,甘露寡糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道菌群的OTU數(shù)量、Ace指數(shù)、Chao1指數(shù)和Shannon指數(shù)均顯著高于對(duì)照組(P<0.05),甘露寡糖組和對(duì)照組之間Simpson指數(shù)無(wú)顯著差異(P>0.05)。
表6 珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道菌群α多樣性分析Table 6 Alpha diversity analysis of intestinal microflora of Epinephelus fuscoguttatus ♀×Epinephelus lanceolatus (n=3)
基于加權(quán)Bray-Curtis距離進(jìn)行的PCoA如圖8所示,2個(gè)PCoA軸占2組之間變異的80.09%。甘露寡糖組在圖的下方,靠近主坐標(biāo)(PCo1),占總變化的71.52%。β多樣性分析結(jié)果表明不同處理可顯著影響腸道菌群的組成。
圖8 主坐標(biāo)分析Fig.8 PCoA
2.4.2 腸道菌群組成
珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道門水平菌群組成如圖9所示,在門水平上,對(duì)照組和甘露寡糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道中的菌群組成相同,包括變形菌門(Proteobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、藍(lán)藻門(Cyanobacteria)和厚壁菌門(Firmicutes),四者總相對(duì)豐度都超過(guò)了98%,還有部分未鑒定出及相對(duì)豐度極少的門類。不同門類菌群在2組中相對(duì)豐度有差異,甘露寡糖組中變形菌門相對(duì)豐度小于對(duì)照組,而擬桿菌門、藍(lán)藻門、厚壁菌門相對(duì)豐度高于對(duì)照組,其中,甘露寡糖組擬桿菌門和厚壁菌門相對(duì)豐度顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。
A:?jiǎn)蝹€(gè)樣品中菌群相對(duì)豐度;B:不同組中菌群的平均相對(duì)豐度;C:優(yōu)勢(shì)菌群相對(duì)豐度比較。*代表與對(duì)照組差異顯著(P<0.05)。下表同。A: microflora relative abundance of single sample; B: microflora mean relative abundance of indifferent groups; C: comparison of dominant microflora relative abundance. * mean significant difference compared with the control group (P<0.05). The same as below.圖9 珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道門水平菌群組成Fig.9 Intestinal microflora composition at phylum level of Epinephelus fuscoguttatus ♀×Epinephelus lanceolatus
如圖10所示,在屬水平上,對(duì)照組和甘露寡糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道中菌群組成相同,包括無(wú)色桿菌屬(Achromobacter)、德沃斯氏菌屬(Devosia)、鹽單胞菌屬(Halomonas)、甲基桿菌屬(Methylobacterium)、發(fā)光桿菌屬(Photobacterium)、紅游動(dòng)菌屬(Rhodoplanes)和鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)。與對(duì)照組相比,甘露寡糖組中發(fā)光桿菌屬相對(duì)豐度顯著下降(P<0.05),而德沃斯氏菌屬、鹽單胞菌屬和甲基桿菌屬相對(duì)豐度顯著升高(P<0.05)。
圖10 珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道屬水平菌群組成Fig.10 Intestinal microflora composition at genus level of Epinephelus fuscoguttatus ♀×Epinephelus lanceolatus
基于國(guó)內(nèi)外研究,飼料中添加甘露寡糖對(duì)畜禽類動(dòng)物幼體有促進(jìn)生長(zhǎng)的作用[8,26]。而飼料中添加適宜的甘露寡糖是否能夠有效促進(jìn)水產(chǎn)動(dòng)物生長(zhǎng)性能尚存在較大的爭(zhēng)議[23]。Lu等[27]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加不同水平的甘露寡糖可提高草魚(yú)(Ctenopharyngodonidella)幼魚(yú)終末體重和WGR。馬志紅等[28]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加1 g/kg甘露寡糖添能顯著提高鯉魚(yú)(Cyprinuscarpio)的WGR,降低FCR。高瞻[29]研究表明,飼料中添加甘露寡糖可以降低花鱸(Lateolabraxjaponicas)機(jī)體水分含量,同時(shí)提高機(jī)體粗脂肪和粗蛋白質(zhì)含量,有效改善魚(yú)肉的品質(zhì),提高WGR,降低FCR。本試驗(yàn)中,飼料中添加100 mg/kg甘露寡糖顯著提高了珍珠龍膽石斑魚(yú)的終末體重、WGR、SGR和CF,但對(duì)SR和FCR無(wú)顯著影響。但是,Ren等[23]在飼料中添加甘露寡糖的研究表明,添加0.3%~2.0%的甘露寡糖對(duì)龍虎斑的生長(zhǎng)性能均無(wú)顯著影響,這可能與甘露寡糖的添加量有直接關(guān)系,0.3%~2.0%的甘露寡糖添加量與其他研究相比,明顯高出許多??傮w而言,上述研究表明,盡管養(yǎng)殖品種有所差異,飼料中添加適量的甘露寡糖可顯著提高動(dòng)物的生長(zhǎng)性能。
SOD可催化氧自由基對(duì)過(guò)氧化氫和分子氧的歧化作用,提高吞噬細(xì)胞防御功能,在動(dòng)物機(jī)體抗氧化防御系統(tǒng)中起重要作用[30]。LZM是一種水解N-乙酰壁酸和N-乙酰葡糖胺的酶,是生物體內(nèi)重要的免疫因子之一,已在魚(yú)類組織、血清和黏液中發(fā)現(xiàn),并且大量存在于血細(xì)胞中。AKP是一種非特異性磷酸水解酶,可催化磷酸單脂的水解,促進(jìn)磷酸基團(tuán)的轉(zhuǎn)移反應(yīng),在動(dòng)物代謝中發(fā)揮重要調(diào)控作用[31]。CAT可清除細(xì)胞內(nèi)活性氧自由基,是一種保護(hù)細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)完整的酶類[32]。甘露寡糖具有抗原的特性,能夠刺激動(dòng)物機(jī)體做出免疫應(yīng)答反應(yīng)[30]。本試驗(yàn)中,飼料中添加甘露寡糖顯著提高了珍珠龍膽石斑魚(yú)血清中SOD、AKP、LZM和CAT活性。與本試驗(yàn)結(jié)果一致的是,飼料中添加甘露寡糖顯著提高半滑舌鰨(Cynoglossussemilaevis)稚魚(yú)體內(nèi)SOD、CAT和LZM活性,提高腸道發(fā)育和非特異性免疫水平[9];飼料中添加0.2%~0.3%魔芋甘露寡糖可以顯著增強(qiáng)黃顙魚(yú)血清SOD和LZM活性,增加其免疫器官指數(shù)[33];楊敏等[14]在飼料中添加適宜的甘露寡糖,可顯著提高歐洲鰻鱺血清SOD、AKP、LZM活性。劉愛(ài)君等[11]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加甘露寡糖能顯著提高奧尼羅非魚(yú)血清SOD和AKP活性。MDA是一種有害物質(zhì),其含量的升高是氧自由基過(guò)多產(chǎn)生的一種反應(yīng),損害細(xì)胞膜的流動(dòng)性,MDA含量降低表明對(duì)機(jī)體產(chǎn)生的毒性降低。此外,在本研究中,甘露聚糖組珍珠龍膽石斑魚(yú)血清MDA含量較對(duì)照組顯著降低,這與Lu等[27]在草魚(yú)中的研究結(jié)果一致。上述研究都表明飼料中添加甘露寡糖能在一定程度提高動(dòng)物機(jī)體的免疫相關(guān)酶活性,從而提高動(dòng)物免疫功能。
轉(zhuǎn)錄組研究可基于特定條件下基因的表達(dá)信息來(lái)推測(cè)未知基因的功能,進(jìn)而揭示基因在相應(yīng)通路中的作用機(jī)制。在魚(yú)類中,轉(zhuǎn)錄組測(cè)序已被廣泛應(yīng)用,主要用途包括檢測(cè)基因功能、篩選DEG及開(kāi)發(fā)分子標(biāo)記等。例如張海艷等[20]對(duì)β-葡聚糖刺激下斜帶石斑魚(yú)轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行了分析,獲得了DEG以及免疫相關(guān)條目,并篩選出部分顯著性差異表達(dá)的免疫基因。石立冬等[34]研究?;撬釋?duì)紅鰭東方鲀的熱應(yīng)激調(diào)控的影響,獲得了DEG的數(shù)據(jù)以及DEG注釋的具體通路,為研究牛磺酸對(duì)紅鰭東方鲀的熱應(yīng)激調(diào)控的影響和?;撬峥箲?yīng)激功能提供參考數(shù)據(jù)。朱婷芳等[35]對(duì)大彈涂魚(yú)單核巨噬細(xì)胞低氧脅迫比較轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析,獲得了不同時(shí)間巨噬細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),并且篩選出了相關(guān)DEG。珍珠龍膽石斑魚(yú)作為重要的海水養(yǎng)殖品種,其全基因序列還未公布,從基因水平研究飼料中添加甘露寡糖對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)免疫保護(hù)機(jī)制存在限制。本研究通過(guò)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù),鑒定出DEG顯著影響了魚(yú)體細(xì)胞組成、細(xì)胞代謝過(guò)程和分子功能等方面,這些改變暗示了細(xì)胞組織結(jié)構(gòu)與功能可能發(fā)生了重大改變。本研究中發(fā)現(xiàn)具有最多Unigene的條目是結(jié)合、催化活性、細(xì)胞過(guò)程、代謝過(guò)程和細(xì)胞組成,這些過(guò)程對(duì)機(jī)體正常生命活動(dòng)很重要。此外,KEEG通路富集分析發(fā)現(xiàn),DEG被注釋到171個(gè)通路中,與免疫緊密相關(guān)的吞噬體通路、細(xì)胞黏附因子通路、細(xì)胞因子-細(xì)胞因子受體通路以及免疫球蛋白A產(chǎn)生的腸道免疫網(wǎng)絡(luò)通路差異顯著,且顯著富集的DEG數(shù)目較多,其中吞噬體通路和細(xì)胞黏附因子通路是顯著富集DEG數(shù)目最多的2條信號(hào)通路,這些結(jié)果提示甘露寡糖的添加對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)的免疫功能產(chǎn)生了顯著影響。吞噬體是通過(guò)吞噬固有免疫細(xì)胞攝取顆粒而形成的高度動(dòng)態(tài)的細(xì)胞器,在微生物清除和抗原呈遞中發(fā)揮關(guān)鍵作用[36]。細(xì)胞黏附分子是介導(dǎo)細(xì)胞間或細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)間相互接觸和結(jié)合分子的統(tǒng)稱,以受體-配體結(jié)合的形式發(fā)揮作用,參與多種細(xì)胞活動(dòng),是免疫應(yīng)答、炎癥發(fā)生等重要生理病理過(guò)程的分子基礎(chǔ)[37]。細(xì)胞因子是指主要由免疫細(xì)胞分泌的小分子多肽,具有調(diào)節(jié)固有免疫和適應(yīng)性免疫、血細(xì)胞生成、細(xì)胞生長(zhǎng)等多種功能,其發(fā)揮作用是通過(guò)與靶細(xì)胞膜表面的受體相結(jié)合并將信號(hào)傳遞到細(xì)胞內(nèi)部而完成的,在免疫應(yīng)答過(guò)程中發(fā)揮重要調(diào)節(jié)作用[38]。由此可見(jiàn),飼料中添加甘露寡糖調(diào)控珍珠龍膽石斑魚(yú)的免疫功能的可能機(jī)制是甘露寡糖的攝入激活魚(yú)體內(nèi)免疫細(xì)胞中吞噬體的產(chǎn)生,進(jìn)而通過(guò)細(xì)胞黏附分子信號(hào)通路將信號(hào)傳遞,刺激產(chǎn)生細(xì)胞因子,起到免疫調(diào)節(jié)作用。這一機(jī)制在單胃動(dòng)物的研究中已被提出[39],但在魚(yú)類中還有待進(jìn)一步證實(shí)。
腸道本身具有重要的功能,腸道微生物的作用也不可忽視,腸道有益菌群具有營(yíng)養(yǎng)、免疫、抑制病原菌、定植阻抗等作用[40],而有害菌會(huì)使黏膜層滲透性增加,讓病原和食物大分子穿過(guò)黏膜屏障[41]。腸道微生物對(duì)魚(yú)類的健康也發(fā)揮重要作用。在斑馬魚(yú)(Daniorerio)中,腸道微生物可以調(diào)節(jié)消化道基因的表達(dá),促進(jìn)營(yíng)養(yǎng)代謝和免疫反應(yīng)[42]。在人類及其他哺乳動(dòng)物、爬行動(dòng)物蛇[43]和蜥蜴[44]、青石斑魚(yú)[45]腸道菌群中,厚壁菌門和擬桿菌門為優(yōu)勢(shì)菌群,其中的大部分細(xì)菌參與了食物的消化和代謝。本研究中,飼料中添加甘露寡糖后,珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道中擬桿菌門和厚壁菌門相對(duì)豐度較對(duì)照組顯著升高。擬桿菌門和厚壁菌門是人類腸道內(nèi)的優(yōu)勢(shì)有益菌,結(jié)合本研究中甘露寡糖對(duì)珍珠龍膽石斑魚(yú)免疫的促進(jìn)作用可知,飼料中添加甘露寡糖可能通過(guò)提高珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道中有益菌的相對(duì)豐度進(jìn)而使其免疫功能得到提高,這一結(jié)果與譚蓉等[46]的研究結(jié)果中腸道炎癥伴隨著擬桿菌門相對(duì)豐度的下降相吻合。飼料中添加甘露寡糖后珍珠龍膽石斑魚(yú)腸道菌群在屬水平上相對(duì)豐度的變化也進(jìn)一步說(shuō)明了這一點(diǎn)。與對(duì)照組相比,甘露寡糖組石斑魚(yú)腸道中發(fā)光桿菌屬相對(duì)豐度顯著下降,而德沃斯氏菌屬、鹽單胞菌屬和甲基桿菌屬相對(duì)豐度顯著升高。發(fā)光桿菌屬屬于弧菌科,由弧菌屬細(xì)菌引起的疾病是目前水產(chǎn)養(yǎng)殖中危害最大的細(xì)菌性疾病[47]。德沃斯氏菌屬、鹽單胞菌屬和甲基桿菌屬則是3種已知的益生菌[48]。類似地,王琨等[49]、何遠(yuǎn)法等[50]和張琴等[51]分別在牙鲆、對(duì)蝦凡納濱和刺參中研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加甘露寡糖可顯著降低腸道弧菌的數(shù)量。綜合而言,本研究結(jié)果表明甘露寡糖可通過(guò)調(diào)節(jié)腸道菌群平衡來(lái)提高珍珠龍膽石斑魚(yú)免疫功能,該結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果相吻合,轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果表明,免疫球蛋白A產(chǎn)生的腸道免疫網(wǎng)絡(luò)相關(guān)信號(hào)通路被顯著激活,這也為深入研究甘露寡糖提高魚(yú)類免疫力的作用機(jī)制提供了重要參考。
飼料中添加100 mg/kg甘露寡糖可以改善珍珠龍膽石斑魚(yú)的生長(zhǎng)性能和腸道菌群結(jié)構(gòu),提高機(jī)體免疫功能,并在轉(zhuǎn)錄組水平產(chǎn)生有利的免疫應(yīng)答效應(yīng)。