董田玉 劉遠遠 段思琦 付雪瑞 常彥忠
1河北醫(yī)科大學(xué)解剖教研室,石家莊050017;2河北師范大學(xué)鐵代謝分子生物學(xué)研究室,石家莊050024;3河北醫(yī)科大學(xué)期刊社,石家莊050017;4河北醫(yī)科大學(xué)大型科研儀器設(shè)備共享服務(wù)平臺,石家莊050017
基因編輯技術(shù)主要包括鋅指核酸酶 (zinc finger nucleases,ZFN)、類轉(zhuǎn)錄激活因子效應(yīng)物核酸酶(transcription activator like effector nucleases,TALEN)、規(guī)律性重復(fù)短回文序列簇 (clustered regularly interspaced short palindro mic repeats/cas endonuclease,CRISPR/Cas)系統(tǒng)。近年來,CRISPR/Cas系統(tǒng)在基因工程領(lǐng)域取得了重要突破。該項技術(shù)雖然研究時間不長,但在生物研究和醫(yī)學(xué)領(lǐng)域產(chǎn)生了重大影響。在人類疾病中,呼吸系統(tǒng)類疾病高居癌癥死亡率之首,科學(xué)家利用CRISPR/Cas基因編輯技術(shù)在治療肺癌等疾病中進行了深入研究,并獲得重大突破。本文重點介紹了近年來基因編輯技術(shù)及其在呼吸系統(tǒng)等疾病中應(yīng)用及其研究進展。
1.1 ZFN 編輯技術(shù) 鋅指蛋白是上世紀80年代由科學(xué)家在非洲爪蟾的轉(zhuǎn)錄因子中發(fā)現(xiàn),后逐步發(fā)展完善成為較早的一類人工編輯基因組的技術(shù)[1]。ZFN 由特異識別DNA的鋅指蛋白和FokⅠ核酸內(nèi)切酶的剪切結(jié)構(gòu)域兩部分構(gòu)成,是一種人工合成的融合蛋白。將人工設(shè)計產(chǎn)生的鋅指蛋白與非特異性FokⅠ剪切結(jié)構(gòu)域結(jié)合形成具有活性的二聚體,即可對目標(biāo)基因進行特異剪切。ZFN 作為第一代被廣泛使用的基因剪切工具,在小鼠、大鼠、斑馬魚及人類細胞中的技術(shù)建立已經(jīng)較為成熟。2003年,科學(xué)家成功地利用該技術(shù)對果蠅和人類細胞的基因進行編輯[2]。但是由于ZFN的設(shè)計復(fù)雜,構(gòu)建時間長并且成功率低,不能廣泛的被實驗室掌握,因此該技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用在一定程度上受到了阻礙。
1.2 TALEN 技術(shù) 隨著對基因編輯技術(shù)的深入研究,TALEN 技術(shù)逐漸取代了ZFN 技術(shù),成為第二代基因編輯技術(shù)[3]。TALENs 核酸酶是由特異識別結(jié)合DNA 的TALE蛋白和FokⅠ核酸內(nèi)切酶融合組成。TALE 蛋白是一類從植物病原菌黃單胞菌屬分離出的效應(yīng)蛋白,識別靶標(biāo)序列,同樣地利用限制性核酸內(nèi)切酶FokⅠ對基因組進行編輯。2009年,Moscou和Bogdanove[4]發(fā)現(xiàn)了TALE蛋白特異識別并結(jié)合DNA 的作用機制。2011 年,Sander等[5]將改造的Tale 蛋白與FokⅠ核酸內(nèi)切酶構(gòu)建了TALEN 技術(shù),并證實其能定向修飾基因組。此后,有大量實驗證明該技術(shù)在人類細胞、小鼠、大鼠、斑馬魚等不同物種均適用[5]。與ZFN 相比,在識別靶序列的特異性上,TALEN 更具優(yōu)勢。此外,TALEN 的毒性低,蛋白設(shè)計也相對簡單,因而成為基因治療研究中的有力工具。但是,其重復(fù)序列多,工作量大,在實驗室廣泛應(yīng)用仍存在困難。
1.3 CRISPR/Cas技術(shù) CRISPR/Cas技術(shù)是第三代基因編輯技術(shù),開啟了基因編輯技術(shù)領(lǐng)域的新篇章[6]。CRISPR/Cas系統(tǒng)是一種適應(yīng)性免疫系統(tǒng),通過靶向DNA或RNA 來保護微生物免受外來核酸 (如噬菌體)的侵襲,約50%的細菌種類和迄今為止幾乎所有的古細菌物種都有這種系統(tǒng)[7]。該系統(tǒng)的顯著特征是在基因組上含有CRISPRarray序列,由富含AT 的前導(dǎo)序列和串聯(lián)重復(fù)序列組成,這些串聯(lián)重復(fù)序列又被序列特異的間隔隔開。CRISPR/Cas系統(tǒng)抵抗外源DNA 入侵。CRISPR/Cas系統(tǒng)通過三個階段介導(dǎo)適應(yīng)性免疫 (免疫和防御)[8]:首先,適應(yīng)階段,當(dāng)病毒或其他外來遺傳物質(zhì)入侵時,細菌將部分外源的DNA 捕獲并整合到CRISPR array的串聯(lián)重復(fù)序列中,形成新的間隔序列。其次,表達階段,將CRISPR array轉(zhuǎn)錄并加工成單獨的cr RNA,每個cr RNA 帶有病毒或質(zhì)粒的RNA 片段以及CRISPR 重復(fù)序列的一部分成為成熟的cr RNA。第三,干擾階段,cr RNA 引導(dǎo)Cas蛋白的復(fù)合物或單個Cas蛋白對入侵者進行切割,最終達到免疫的效果。
CRISPR 有很多變化,而且CRISPR/Cas系統(tǒng)也具有廣泛的自然多樣性,包括靶向DNA 的系統(tǒng)、靶向RNA 的系統(tǒng)以及同時靶向DNA 和RNA 的系統(tǒng)。CRISPR/Cas系統(tǒng)也以不同的方式運行,通過各種效應(yīng)子-cr RNA 復(fù)合物介導(dǎo)的不同機制識別和切割其核酸靶點。根據(jù)其獨特的效應(yīng)蛋白,CRISPR/Cas系統(tǒng)目前分為6種類型 (Ⅰ~Ⅵ),又分為兩大類:1類系統(tǒng) (TypeⅠ、TypeⅢ和TypeⅣ型)使用多個Cas蛋白復(fù)合物來實現(xiàn)免疫應(yīng)答,2類系統(tǒng) (TypeⅡ、TypeⅤ和TypeⅥ型)利用單個核酸酶Cas效應(yīng)子進行免疫應(yīng)答[9-10]。例如屬于TypeⅡ型系統(tǒng)的Cas9,只需要Cas9蛋白即可與成熟的cr RNA 組裝成RNP復(fù)合物對DNA 進行切割[11-12]。2013 年,CRISPR/Cas技術(shù)正式用于DNA 編輯修飾中[13]。與前兩種基因編輯技術(shù)相比,該技術(shù)的構(gòu)建成本更低、操作更加便捷、編輯效率也更高效。其不斷地研究發(fā)現(xiàn)為生物學(xué)及臨床應(yīng)用領(lǐng)域的發(fā)展帶來了巨大變革,在基因治療領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景。
2.1 疾病模型中的應(yīng)用 CRISPR/Cas9技術(shù)對生物學(xué)研究發(fā)展最直接的影響之一是建立植物、動物和細胞模型。首先,因為CRISPR/Cas9技術(shù)極大地減少了修改傳統(tǒng)真核生物模型和細胞系基因組所需的時間和精力 (酵母除外,對于酵母而言,已有數(shù)十年的強大基因操作工具)。其中一個關(guān)鍵的例子是基因敲除小鼠的產(chǎn)生。在2013年之前,基因敲除小鼠是用改良的胚胎干細胞制造的,整個過程需要1~2年,而Cas9介導(dǎo)的基因敲除可以在幾周到幾個月內(nèi)完成[14-15]。最近,有學(xué)者提出可以通過使用Cas9介導(dǎo)的基因驅(qū)動方法來進一步加速定制小鼠模型的產(chǎn)生[16]。這種方法也適用于創(chuàng)建非人類靈長類動物模型[17]。同樣,CRISPR 工具易于重新編程,使其得以大規(guī)模應(yīng)用,從而快速創(chuàng)建細胞系庫。其次,CRISPR/Cas9技術(shù)可以容易地處理多種其他生物的基因,包括寄生蟲、微生物和非模型生物[18],例如甲殼類動物[19]、黃蜂[20]、蝴蝶[21]和硅藻[22]。第三,CRISPR/Cas9技術(shù)被用于創(chuàng)建特定的動物和細胞模型,以重現(xiàn)在人類患者發(fā)現(xiàn)的基因變異[23]。這些特定的模型使疾病模型更加精確,可用于了解一系列人類疾病的分子病理學(xué),并開發(fā)新的治療策略來治療這些疾病。例如,通過Cas9介導(dǎo)的基因編輯創(chuàng)建了亨廷頓舞蹈癥的豬模型,從而可以在相關(guān)的動物模型中研究這種疾病[24]。第四,Cas9可在體內(nèi)加速構(gòu)建疾病模型,例如癌癥[25-26]。此外,已經(jīng)創(chuàng)建了d Cas9-EGFP 敲入小鼠,可以輕松、動態(tài)地跟蹤目標(biāo)基因組區(qū)域[27]。利用這些小鼠模型,研究人員可以更容易地在特定的細胞類型中實現(xiàn)多個基因敲除,更快地為疾病建模,從而研究多種生物學(xué)過程,包括癌癥、傷口愈合[28]、突觸傳遞[29]、晝夜節(jié)律[30]和T 細胞分化[31]等。
2.2 呼吸系統(tǒng)疾病治療中的應(yīng)用 氧化應(yīng)激可導(dǎo)致肺纖維化引起呼吸疾病[32]。通過CRISPR/Cas9 技術(shù)在細胞實驗中已證明低聚原花色素對非小細胞肺癌細胞 (A549)中過氧化氫誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激起到保護作用。實驗發(fā)現(xiàn),低聚原花色素刺激的A549細胞中改變了Nrf2的表達。Nrf2是對氧化還原反應(yīng)敏感的轉(zhuǎn)錄因子,可以引起其下游靶基因在轉(zhuǎn)錄水平和蛋白質(zhì)水平上的變化。通過CRISPR/Cas9技術(shù)敲除Nrf2可以消除Nrf2與抗氧化反應(yīng)元件ARE 的結(jié)合,從而消除了低聚原花色素介導(dǎo)的針對過氧化氫誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激的保護作用[33]。研究表明在A549細胞的抗氧化反應(yīng)中低聚原花色素通過Nrf2-ARE 途徑起重要作用,這項研究為呼吸疾病的治療提供了理論依據(jù)[34]。
而且在臨床試驗中CRISPR/Cas9技術(shù)已經(jīng)開始作為肺癌的干預(yù)手段。該試驗主要對PD-1 的功能進行了研究。PD-1只能在活化的T 細胞中表達,該基因可促進細胞的凋亡,是臨床上的一個免疫檢查點。當(dāng)PD-1被敲除時會延長T 細胞的存活時間,這是因為T 細胞周期檢查點被抑制所導(dǎo)致,引起活化的T 細胞的存活時間延長。通過CRISPR/Cas9技術(shù)敲除PD-1基因后,血液中活化的具有免疫功能的T 細胞數(shù)量明顯增加,以此來抑制腫瘤生長[35]。此次試驗中,通過收集病患自體來源的T 細胞 (外周血液中),利用CRISPR/Cas9技術(shù)將PD-1基因敲除而喪失基因功能,再通過擴增篩選出已敲除PD-1的T 淋巴細胞,并將其分批回輸患者身體中,通過觀察臨床效果發(fā)現(xiàn)敲除PD-1基因?qū)Ψ伟┯幸种谱饔肹36]。
2.3 AIDS和白血病治療中的應(yīng)用 CRISPR/Cas9技術(shù)已廣泛應(yīng)用于哺乳動物細胞基因組的體外編輯。盡管這種方法顯示出潛在的臨床實用性,并且已經(jīng)開始進行臨床試驗以探索基于CRISPR 療法的安全性和可行性[37]。有研究表明,G 蛋白偶聯(lián)因子超家族成員CCR5基因是治療人類免疫缺陷病毒Ⅰ型 (hu man i mmunodeficiency vir us type 1,HIV-1)感染的理想靶點,因為CCR5 缺失的血細胞對HIV-1進入具有很大的抗性[38]。2019 年,Xu 等[39]利用CRISPR/Cas9技術(shù),在人體造血干細胞上進行CCR5基因編輯,實現(xiàn)了基因編輯后的成體造血干細胞在人體長期穩(wěn)定的造血系統(tǒng)重建,初步證明了CRISPR/Cas9治療AIDS和白血病的可行性和在人體內(nèi)的安全性。該研究將經(jīng)CRISPR/Cas9編輯的CCR5敲除后的供者來源的CD34+成體造血干細胞移植到患有HIV-1感染和急性淋巴細胞白血病的患者中。在之后19個月的觀察中未發(fā)現(xiàn)基因編輯造成的脫靶及其他不良反應(yīng)。之后為了進一步探索治療的有效性,對該患者短暫停止服用抗人類免疫缺陷病毒藥物。在此期間,CCR5基因編輯的T 細胞表現(xiàn)出一定程度抵御人類免疫缺陷病毒感染的能力。目前,雖然人們已經(jīng)實現(xiàn)了CRISPR 編輯的造血干細胞的成功移植和長期植入,但淋巴細胞中CCR5破壞率僅約為5%,這表明還需要進一步進行研究。
2.4 其他疾病治療中的應(yīng)用 基因編輯技術(shù)在治療其他多種疾病上也取得了重要的研究進展。2018 年,Long等[40]利用CRISPR/Cas9技術(shù)對杜氏肌營養(yǎng)不良癥患者機體的多能干細胞進行改造,使其產(chǎn)生了健康的心肌。2017 年,Liao等[41]報道利用CRISPR/Cas9在糖尿病小鼠體內(nèi)募集轉(zhuǎn)錄激活復(fù)合物,實現(xiàn)順式表觀遺傳學(xué)修飾,介導(dǎo)基因轉(zhuǎn)錄活化的組蛋白修飾狀態(tài),從而實現(xiàn)內(nèi)源基因的激活。利用該體系可在肝臟內(nèi)成功激活內(nèi)源PDX1表達,使其分泌胰島素。Chen等[42]發(fā)現(xiàn),酸敏感離子通道1 參與了前列腺癌細胞酸介導(dǎo)的信號通路,并且在前列腺癌細胞中表達升高,通過CRISPR/Cas9系統(tǒng)敲除酸敏感離子通道1可以顯著降低前列腺癌細胞的侵襲能力和去勢抵抗性。汪超甲等[43]利用CRISPR/Cas9表達載體敲除了在神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞中高表達的Pyk2,抑制了膠質(zhì)瘤細胞的增殖、遷移及侵襲能力,揭示了其在膠質(zhì)瘤發(fā)生過程中的作用,為治療膠質(zhì)瘤提供了理論基礎(chǔ)。Rubio等[44]利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)在干細胞中針對神經(jīng)系統(tǒng)疾病相關(guān)基因TSC2 與KCNQ2進行靶向滅活。TSC2與結(jié)節(jié)性腦硬化相關(guān),KCNQ2與家族性先天性癲癇有關(guān)[45]。
CRISPR 系統(tǒng)介導(dǎo)的基因編輯技術(shù)出現(xiàn)以來,就在生物醫(yī)學(xué)等諸多領(lǐng)域產(chǎn)生了深遠的影響,但目前該技術(shù)在臨床治療應(yīng)用中仍然存在一些問題,如有效性問題。我們知道基因編輯體系依賴于外源編輯酶或效應(yīng)蛋白的表達,而蛋白分子量過大會很難通過病毒載體進行裝載以及人體內(nèi)遞送,并且蛋白過表達引起的DNA/RNA 水平的脫靶效應(yīng)、機體內(nèi)的抗體中和外源編輯酶或效應(yīng)蛋白都會導(dǎo)致基因編輯失敗。此外,還存在由外源蛋白表達引起的機體免疫反應(yīng)及排斥的安全性問題。除了這些技術(shù)問題,倫理問題也不容忽視。2018年,有研究者跨過人類胚胎基因編輯技術(shù)的體外試驗階段,對2名志愿者在胚胎上進行基因編輯并植入母體,其中1名已經(jīng)產(chǎn)下雙胞胎女嬰,由于這對雙胞胎的一個基因 (CCR5)經(jīng)過修改,她們出生后即能天然抵抗人類免疫缺陷病毒[46]。這一事件一經(jīng)宣布,立即引起了世界的關(guān)注,科學(xué)家們對此事更多的是質(zhì)疑和負面評價。
隨著科學(xué)家研究的不斷深入探索,基因編輯技術(shù)正在走向成熟。基因編輯技術(shù)已經(jīng)在基礎(chǔ)科研和臨床應(yīng)用中取得了重大突破與進展,具有極大的研究潛力和廣闊的應(yīng)用前景,將會使我們對疾病機制的理解、對生物基因網(wǎng)絡(luò)的認識更加清楚。盡管目前對于基因治療還有許多技術(shù)難題需要解決,但我們可以相信隨著人類基因表達調(diào)控機制的闡明,以及轉(zhuǎn)基因方法的完善,基因編輯技術(shù)會在臨床疾病治療中發(fā)揮其不可替代的價值。
利益沖突 所有作者均聲明不存在利益沖突