弓玉祥,倪維杰,倪海鋒,張思宇,楊旻宇,陳平圣,*
1東南大學(xué)附屬中大醫(yī)院腎臟病研究所,江蘇 南京 210009;2東南大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210009
膿毒血癥是一種由病原菌、創(chuàng)傷、外科感染等因素引起的全身性炎癥反應(yīng)綜合征(systemic inflammative reaction syndrome,SIRS),其特點(diǎn)是對感染性損傷的全身炎癥反應(yīng)。這一過程往往導(dǎo)致廣泛的組織損傷和多器官功能障礙,而急性肝損傷(acute liver injury,ALI)是其最常見的并發(fā)癥[1-2]。既往研究表明,內(nèi)毒素脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)是引起急性肝損傷的主要因素[3],LPS 可以顯著上調(diào)炎性細(xì)胞因子的表達(dá),如腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)和白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β),而這些細(xì)胞因子會引起嚴(yán)重的肝組織損傷[4-5]。此外,氧化應(yīng)激也被認(rèn)為在ALI 的發(fā)生發(fā)展中起到重要作用[6]。肝臟中活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)的過量產(chǎn)生會破壞細(xì)胞的結(jié)構(gòu)和功能完整性,導(dǎo)致廣泛的肝細(xì)胞破壞[7]。到目前為止,仍舊缺乏治療ALI 的有效手段。因此,闡明ALI 的病理機(jī)制,是亟待解決的問題。
活性維生素D3(vitamin D3,Vit D3)是一種脂溶性維生素,1,25(OH)2D3是其活性形式[8-9]。研究表明,Vit D3的缺乏與膿毒癥的病死率和機(jī)械性通氣的持續(xù)時(shí)間顯著相關(guān)[10-11]。既往研究發(fā)現(xiàn)1,25(OH)2D3的生物學(xué)效應(yīng)主要是由維生素D受體(vitamin D receptor,VDR)介導(dǎo),VDR 在許多細(xì)胞中表達(dá),包括巨噬細(xì)胞、心肌細(xì)胞、血管平滑肌細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞等;而Vit D3 通過VDR 調(diào)控細(xì)胞增殖、抗炎、抗氧化等信號通路[12]。大量研究證實(shí)Vit D3對ALI具有治療作用,而其潛在機(jī)制尚不清楚[13-14]。
因此,本研究旨在闡明Vit D3 對LPS 誘導(dǎo)小鼠ALI的保護(hù)機(jī)制,為臨床治療ALI提供新思路。
Vit D3(羅蓋全J20150011,羅氏公司,美國),LPS(L2630,Sigma 公司,美國)??寡t素加氧酶-1(heme oxygenase-1,HO-1)抗體(BM4010)、核因子E2 相關(guān)因子2(nuclear factor-erythroid 2p45-related factor 2,Nrf2)抗體(PB9290)、抗VDR抗體(BA2877-2)、抗TNF-α抗體(A00002-5)(武漢博士德生物公司);抗NF-κB p65 抗體(8242)、抗IL-1β 抗體(12703)、抗Lamin A/C 抗體(4777)、抗鼠二抗(7076)、抗兔二抗(7074)(Cell Signaling Technology公司,美國);抗NF-κB p50 抗體(ab131546,Abcam公司,美國)。TNF-α ELISA 試劑盒(EK0525,武漢博士德生物),IL-1β ELISA 試劑盒(ab100705,Abcam 公司,美國)。丙二醛測定試劑盒(malondialdehyde,MDA,A003-1-2)、超氧化物歧化酶測定試劑盒(superoxide dismutase,SOD,A001-3-2)、谷胱甘肽S轉(zhuǎn)移酶試劑盒(glutathione S transferase,GST,A004-1-1)、谷胱甘肽還原酶(glutathione reductase,GR,A062-1-1)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GPX,A005-1-2)、過氧化氫酶(catalase,CAT,A007-1-1)(南京建成生物工程研究所)。光學(xué)顯微鏡(Olympus BX41)及透射電鏡(TEM,HT7700)(Olympus公司,日本)。
6~8周齡雄性C57BL/6小鼠,體重20~25 g(合格證號:201716345,常州卡文斯實(shí)驗(yàn)動物有限公司)。動物飼養(yǎng)于東南大學(xué)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物中心動物房,溫度22~24 ℃,濕度為40%~70%,光照明暗各12 h,換氣次數(shù)為10~20 次/h。飼料為鼠滅菌飼料,購自東南大學(xué)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物中心,符合GB-15921.2-2014標(biāo)準(zhǔn)。飲水為經(jīng)121 ℃、30 min滅菌自來水,由動物經(jīng)飲水瓶自由攝取。
1.2.1 模型建立及分組
預(yù)先配制LPS 濃度為1.0 mg/mL。將40 只雄性C57BL/6 小鼠按體重隨機(jī)分為對照組、Vit D3 組、模型組(LPS 組)和治療組(LPS+Vit D3 組),每組10 只。小鼠給予15 mg/kg LPS 腹腔注射建立膿毒血癥小鼠ALI模型。造模即刻、造模后8 h、16 h,Vit D3組和LPS+Vit D3組再給予2.5 μg/kg Vit D3灌胃,對照組和LPS組則給予等體積生理鹽水灌胃[15]。
1.2.2 標(biāo)本收集
造模后24 h 處死小鼠。小鼠采用4%水合氯醛腹腔注射麻醉。仰位固定,用一次性注射器(2 mL)心尖取血,室溫下3 000 r/min 離心10 min 后取上清液送醫(yī)院檢驗(yàn)科檢測肝腎功能,包括丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(alanine aminotransferase,ALT)和天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(aspartate aminotransferase,AST)、血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)、血肌酐(creatinine,Scr)水平。開腹取肝,約2/3 肝固定于4%甲醛溶液中做肝臟病理光鏡及免疫組化檢查,1/3 肝組織置于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?,另取小塊肝組織置于2.5%戊二醛溶液中固定,備電鏡檢查。
1.2.3 肝臟病理檢查
4%甲醛固定的部分肝組織,經(jīng)清洗、梯度酒精脫水、浸蠟、包埋等步驟后,制成石蠟塊;再用切片機(jī)切出厚度為4 μm切片,攤片、烤片,后按常規(guī)操作行HE染色。光鏡下觀察肝組織損傷程度和炎癥反應(yīng)。
1.2.4 肝臟電鏡檢查
小鼠肝臟分離,用生理鹽水清洗,切成小塊(1 mm3),立即固定在含2.5%戊二醛溶液中,后固定在1%鋨酸溶液中。然后,在梯度酒精中連續(xù)脫水。用丙酮代替乙醇后,將組織嵌入環(huán)氧樹脂中并切成超薄切片。切片用醋酸鈾和檸檬酸鉛雙染色,電鏡觀察。
1.2.5 MDA 水平及SOD、GST、GR、GPX、CAT 活性檢測。
將肝組織于冷生理鹽水中勻漿,按照廠家提供的實(shí)驗(yàn)步驟采用比色法測定MDA 水平和SOD、GST、GR、GPX、CAT活性。
1.2.6 ELISA法檢測小鼠血清TNF-α、IL-1β含量
按照廠家提供的步驟采用ELISA 法測定血清TNF-α、IL-1β水平。
1.2.7 免疫組化檢測相關(guān)蛋白表達(dá)
將肝組織石蠟切片經(jīng)常規(guī)脫蠟和復(fù)水處理后,用微波法進(jìn)行抗原修復(fù)。以3%過氧化氫甲醇溶液處理切片滅活內(nèi)源性過氧化物酶后,以10%胎牛血清封阻30 min;分別加入各種一抗,TNF-α抗體(1∶100)及IL-1β抗體(1∶100),孵育過夜;PBS 沖洗3 次,每次3 min,后加入二抗,孵育15 min;PBS沖洗3 次,每次3 min,加入DAB 顯色;PBS 沖洗后,以蘇木素復(fù)染,自然風(fēng)干后封片觀察。
1.2.8 Western blot檢測相關(guān)蛋白表達(dá)
取適量的肝組織,冰上勻漿,使用蛋白提取試劑盒提取蛋白,Bradford 法測定蛋白濃度。每孔上樣100 μg蛋白,12%聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳分離,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,5%脫脂奶粉封閉2 h,一抗孵育,4 ℃過夜,次日室溫孵育HRP 標(biāo)記的二抗1 h?;瘜W(xué)發(fā)光法顯示結(jié)果,壓片曝光,顯影定影,采用凝膠成像分析系統(tǒng)拍照,Bio-Rad Quantity one version 4.6.7 軟件對相應(yīng)條帶進(jìn)行灰度分析。
1.2.9 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測VDR mRNA的水平
取適量的肝組織加入TRIzol 勻漿提取總mRNA,核酸分析儀檢測樣本中mRNA 的質(zhì)量;對檢測合格的樣本進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄;按實(shí)時(shí)熒光定量試劑盒說明書依次添加試劑后進(jìn)行擴(kuò)增,條件為95 ℃30 s;95 ℃5 s,61 ℃31 s,循環(huán)40 次;95 ℃15 s,60 ℃60 s,95 ℃15 s。使用2-ΔΔCt法分析所得數(shù)據(jù)。小鼠VDR引物序列,上游5′-CACAAGACCTACGACC-CCAC-3′,下游5′-CATCATGTCCAGTGAGGGGG-3′。
采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,采用單因素方差分析,多個樣本之間的兩兩比較采用Dunnett’st檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
Vit D3 處理顯著改善小鼠的生存率(圖1A)。與對照組相比,LPS 組血清ALT 和AST 的水平顯著增加(P<0.01,圖1B、C)。而Vit D3處理后,這一改變得到逆轉(zhuǎn)。HE 染色被用來評估肝損傷程度。對照組和Vit D3 組肝組織結(jié)構(gòu)完整清晰,而LPS 組的肝組織結(jié)構(gòu)混亂,炎細(xì)胞浸潤顯著增多,而這些變化被Vit D3所抑制(圖1D)。Vit D3處理后小鼠的腎功能也得到保護(hù)(表1)。
表1 各組小鼠體重及腎功能Table 1 The body weight and kidney function in each group
圖1 Vit D3對LPS誘導(dǎo)急性肝損傷血清轉(zhuǎn)氨酶水平及組織病理學(xué)改變的影響Figure 1 The effect of Vit D3 on serum transaminase level and histopathological changes in LPS-induced acute liver injury
鏡下可以觀察到對照組、Vit D3 組肝細(xì)胞中正常的線粒體形態(tài),而LPS組線粒體腫脹明顯,甚至可以觀察到線粒體空泡變性,線粒體嵴消失,Vit D3治療顯著抑制了這些變化(圖2A)。進(jìn)一步對MDA和抗氧化酶活性的檢測發(fā)現(xiàn),與對照組和Vit D3 組相比,LPS組MDA水平顯著增加(P<0.01),SOD、GST、GR、GPX和CAT的活性顯著下降(P<0.01),而這一LPS 誘導(dǎo)的氧化損傷被Vit D3 所逆轉(zhuǎn)(P<0.01,圖2B~G)。Nrf2/HO-1 通路在氧化損傷中起到重要作用,進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),與LPS 組相比,LPS+Vit D3 組Nrf2和HO-1的表達(dá)顯著增加(P<0.01,圖2H~J)。
圖2 Vit D3對LPS誘導(dǎo)急性肝損傷線粒體損傷和氧化應(yīng)激的影響Figure 2 Effects of Vit D3 on mitochondrial injury and oxidative stress induced by LPS in acute liver injury
炎性細(xì)胞因子,如TNF-α、IL-1β在LPS 誘導(dǎo)的ALI起到關(guān)鍵作用。與LPS組相比,血清TNF-α和IL-1β的水平在Vit D3 處理后顯著下調(diào)(P<0.01,圖3A、B),而肝組織中TNF-α和IL-1β的蛋白水平與血清中一致(圖3C~F)。結(jié)果顯示,在LPS處理后,肝組織中NF-κB p65和p50顯著升高(P<0.01),而Vit D3處理逆轉(zhuǎn)了這一改變(P<0.01,圖3G~I(xiàn))。
圖3 Vit D3對LPS誘導(dǎo)急性肝損傷炎癥反應(yīng)的影響Figure 3 Effects of Vit D3 on LPS-induced acute liver injury
如前文所述,Vit D3 主要通過VDR 發(fā)揮作用,因此進(jìn)一步探究了VDR 的表達(dá)水平。與對照組相比,LPS 組VDR 表達(dá)顯著減少(P<0.01),Vit D3 處理后,VDR表達(dá)水平上調(diào)(P<0.01,圖4)。
圖4 各組小鼠肝組織中VDR表達(dá)比較Figure 4 Comparison of VDR expression in liver tissues of mice in each group
ALI是一種病死率高、危及生命的臨床綜合征[1]。Vit D3 具有多種藥理作用,例如抗氧化、抗炎等[16]。本研究揭示了Vit D3對LPS誘導(dǎo)的ALI具有保護(hù)作用,Vit D3處理可以顯著改善LPS誘導(dǎo)的肝損傷,減少氧化應(yīng)激,降低炎癥水平。這些發(fā)現(xiàn)表明Vit D3是一種有吸引力的治療ALI的藥物。
LPS 是革蘭陰性細(xì)菌所分泌內(nèi)毒素的主要成分,可通過刺激包括巨噬細(xì)胞在內(nèi)的免疫細(xì)胞釋放炎癥因子,從而使肝細(xì)胞發(fā)生凋亡與壞死,LPS誘導(dǎo)的ALI 動物模型被廣泛使用,用于探討和評價(jià)肝保護(hù)劑的療效[17-18]。本研究中LPS注射導(dǎo)致小鼠血清ALT和AST水平升高,肝臟發(fā)生病理改變,提示LPS引起了肝臟損傷。與此同時(shí),Vit D3 處理顯著降低了血清AST 和ALT 水平,緩解了系統(tǒng)炎癥水平,抑制了肝臟氧化損傷和炎癥。同時(shí)本研究發(fā)現(xiàn),Vit D3處理后,Scr和BUN水平顯著下降,這與之前的研究一致,說明了Vit D3 對LPS 誘導(dǎo)的急性腎損傷具有顯著的保護(hù)作用[15]。這些結(jié)果表明,Vit D3 的保護(hù)機(jī)制可能并非是器官特異性的,而是涉及不同器官間廣泛存在的抗損傷通路。
肝損傷的發(fā)生與炎癥細(xì)胞因子的產(chǎn)生密切相關(guān),既往研究表明,LPS誘導(dǎo)的肝損傷涉及炎癥反應(yīng)[19]。LPS 激活炎癥細(xì)胞,如Kupffer 細(xì)胞等,釋放過量的促炎細(xì)胞因子,如TNF-α 和IL-1β,而這些促炎細(xì)胞因子的釋放是觸發(fā)炎癥反應(yīng)的關(guān)鍵步驟[20-21]。因此,本研究測定了血清和肝臟組織中TNF-α 和IL-1β 的水平,結(jié)果顯示Vit D3 明顯抑制LPS 誘導(dǎo)的TNF-α 和IL-1β上調(diào)。
NF-κB廣泛參與了炎癥反應(yīng),一旦被LPS激活,IκB 磷酸化和降解,釋放NF-κB 進(jìn)入細(xì)胞核調(diào)節(jié)TNF-α等炎性細(xì)胞因子的表達(dá)。最近的一項(xiàng)研究證實(shí),NF-κB 通路在LPS 誘導(dǎo)ALI 中起到重要作用[15]。因此,我們研究了Vit D3 對NF-κB 激活的影響。結(jié)果表明,服用Vit D3顯著抑制了NF-κB p65和p50蛋白的表達(dá),從而提示Vit D3 對ALI 的炎癥抑制可能是通過抑制NF-κB通路實(shí)現(xiàn)的。
氧化應(yīng)激引起的ROS 產(chǎn)生和線粒體功能障礙是LPS 誘導(dǎo)ALI 的另一可能機(jī)制[22]。氧化應(yīng)激被認(rèn)為在ALI 的發(fā)展過程中發(fā)揮了重要的病理生理作用[23]。既往研究證實(shí),Nrf2 在誘導(dǎo)抗氧化酶如SOD、GST、GR、GPX、CAT對抗氧化應(yīng)激中發(fā)揮重要作用,同樣的,HO-1的表達(dá)受轉(zhuǎn)錄因子Nrf2控制,近期研究表明Nrf2信號通路在LPS誘導(dǎo)的ALI中發(fā)揮保護(hù)作用[24-25]。本研究結(jié)果顯示,Vit D3增加了Nrf2和HO-1 的表達(dá),降低了肝組織MDA 水平,提高了SOD、GST、GR、CAT和GPX等酶的活性,減輕了LPS誘導(dǎo)的肝臟線粒體損傷。
本研究結(jié)果揭示了,在LPS誘導(dǎo)的ALI模型中,Vit D3具有抗氧化和抗炎作用,然而其潛在機(jī)制尚不清楚。眾所周知,Vit D3的效用主要由VDR介導(dǎo)[10],而研究表明,VDR在炎癥和氧化應(yīng)激調(diào)控中發(fā)揮重要作用。據(jù)此我們推測,在LPS誘導(dǎo)的ALI中,Vit D3的保護(hù)作用主要是由VDR 介導(dǎo)的。本研究結(jié)果提示,與對照組相比,LPS 組肝組織中VDR 的蛋白表達(dá)顯著下降,Vit D3處理后,VDR表達(dá)明顯上調(diào)。因此,本研究初步證實(shí)了使用Vit D3 是治療ALI 行之有效的辦法,并且從炎癥和氧化應(yīng)激兩個方面初步解析了其作用機(jī)制。
綜上所述,Vit D3 能顯著抑制血清中ALT 和AST 的水平,并能顯著抑制組織病理學(xué)改變,此外,Vit D3 可以抑制氧化應(yīng)激和炎癥,而這一效果可能由VDR 通路介導(dǎo)。這些結(jié)果都表明,Vit D3可能成為治療急性膿毒血癥肝損傷的候選藥物。