黃茂發(fā)，梁晶晶，趙祥秀，唐榕澤，高躍美，張文，羅廷榮，李曉寧

摘要：【目的】明確豬源腫瘤壞死因子α（TNF-α）多克隆抗體的特異性和反應性，并探索豬瘟病毒（CSFV）感染對PK-15細胞分泌TNF-α的影響，為揭示CSFV的致病機理打下基礎(chǔ)?！痉椒ā刻崛SFV病料基因組RNA，通過RT-PCR擴增TNF-α基因，構(gòu)建原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α并轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞誘導表達融合蛋白，經(jīng)純化和濃縮后免疫SPF級昆明小鼠制備TNF-α多克隆抗體;同時構(gòu)建真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α，分別轉(zhuǎn)染HEK-293T細胞和PK-15細胞表達融合蛋白，通過Western blotting、ELISA和間接免疫熒光分析等方法檢測TNF-α多克隆抗體效價、反應性及特異性。【結(jié)果】以原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞，經(jīng)IPTG誘導后能表達出約43 kD的融合蛋白，且主要以包涵體形式進行表達。以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染HEK-293T細胞可表達出25 kD的融合蛋白，主要在細胞質(zhì)中表達，且均勻分布。制備獲得的TNF-α多克隆抗體能與轉(zhuǎn)染HEK-293T細胞表達的融合蛋白TNF-α及PK-15細胞的內(nèi)源蛋白TNF-α發(fā)生良好反應，即具有較好的反應特異性，其抗體效價高達1∶8000。CSFV能刺激PK-15細胞分泌蛋白TNF-α上調(diào)表達，且TNF-α與其下游因子（TRAF1）的表達變化趨勢基本一致，即二者間存在一定關(guān)聯(lián)性。【結(jié)論】制備獲得的TNF-α蛋白抗體具有效價高、反應性好及特異性強的特點，可用于檢測CSFV感染后真核細胞中過表達的TNF-α水平。TNF-α可刺激TRAF1產(chǎn)生，參與TRAF1相關(guān)信號通路而發(fā)揮其生物學功能，CSFV感染PK-15細胞后TNF-α和TRAF1的表達變化趨勢基本一致，說明CSFV能刺激TNF-α和TRAF1信號通路，使機體產(chǎn)生炎癥反應。

關(guān)鍵詞： 豬;腫瘤壞死因子α（TNF-α）;多克隆抗體;豬瘟病毒（CSFV）

中圖分類號： S852.651? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 文獻標志碼： A 文章編號：2095-1191（2021）09-2572-10

Porcine TNF-α high level expression and preparation

of its polyclonal antibody

HUANG Mao-fa1，2， LIANG Jing-jing1，2， ZHAO Xiang-xiu1，2， TANG Rong-ze1，2，

GAO Yue-mei1，2， ZHANG Wen1，2， LUO Ting-rong1，2*， LI Xiao-ning1，2*

（1College of Animal Science and Veterinary Medicine，Guangxi University， Nanning? 530004， China; 2State Key Laboratory for Conservation and Utilization of Subtropical Agro-bioresources， Nanning? 530004， China）

Abstract：【Objective】To determine the specificity and reactivity of porcine tumor necrosisfactor α（TNF-α） polyclonal antibody，and the effects of CSFV infection on TNF-α secretion of PK-15 cells were investigated，to lay a foundation for revealing the pathogenic mechanism of classical swine fever virus（CSFV）. 【Method】The TNF-α gene was amplified by RT-PCR using RNA template extracted from CSFV infected PK-15 cells，to construct prokaryotic expression vector pGEX-4T-1-TNF-α and transform BL21 competent cells to induce the expression of fusion protein. Purified and concentrated SPF level Kunming mice were immunized with TNF-α polyclonal antibody. At the same time，eukaryotic expression vector pcDNA3.0-TNF-α was constructed and transfected into HEK-293T cell and PK-15 cell to express TNF-α. Titer，reactivity and specificity of TNF-α polyclonal antibody was detected by Western blotting，ELISA andindirect immunofluorescence methods. 【Result】Prokaryotic expression vector pGEX-4T-1-TNF-α transformed BL21 competent cells could express about 43 kD fusion protein induced by IPTG，and it was mainly expressed in the form of inclusion body. The eukaryotic expression vector pcDNA3.0-TNF-α transfected HEK-293T cells could express 25 kD fusion protein，which was mainly expressed in cytoplasm and evenly distributed. The prepared TNF-α polyclonal antibody could react well with the fusion protein TNF-α expressed in HEK-293T cells and the endogenous protein TNF-α in PK-15 cells，and had a good reaction specificity and the antibody titer was as high as 1∶8000. CSFV could up-regulate the expression of TNF-α secreted by PK-15 cells. The expression trend of TNF-α and its downstream factor （TRAF1） was basically consistent，therewas certain correlation between them. 【Conclusion】The TNF-α protein antibody has the characteristics of high effective valence，good reactivity and strong specificity，it can be used to detect the overexpression of TNF-α level in eukaryotic cells after CSFV infection. TNF-α can stimulate TRAF1 production and participate in TRAF1-related signaling pathway to play its biological function. The expression of TNF-α and TRAF1 is similar after CSFV infected PK-15 cells. These results suggest that CSFV can stimulate TNF-α and TRAF1 signaling pathways，and leads to the inflammatory reaction.

Key words： porcine; tumor necrosis factor α（TNF-α）; polyclonal antibody; classical swine fever virus（CSFV）

Foundation item： National Key Research and Development Program of China（2018YFD0500104）; Guangxi Natural Science Foundation（2018GXNSFBA281170）

0 引言

【研究意義】腫瘤壞死因子是由活化的巨噬或單核細胞產(chǎn)生的炎癥因子，對腫瘤細胞具有很強的抑制作用，能促進中性粒細胞吞噬，抵抗細菌和病毒感染，參與自身免疫性疾病的病理損傷，從而引起發(fā)熱癥狀（呂志敢和郭政，2006;Kalliolias and Ivashkiv，2016）。腫瘤壞死因子分為TNF-α和TNF-β，二者均有致熱性，小劑量分泌呈單峰熱，大劑量則產(chǎn)生雙峰熱，不耐熱，70 ℃作用30 min即失去活性。TNF-α是由巨噬細胞產(chǎn)生的小分子蛋白，對于腫瘤細胞具有很強殺傷作用，而對正常細胞無毒性，是至今為止醫(yī)學界發(fā)現(xiàn)抗腫瘤活性最強的細胞因子（李蕊蕊等，2018;蘇韞等，2018）。TNF-α又稱惡液素，可誘發(fā)機體發(fā)生惡液質(zhì)（Amber et al.，2015），少量TNF-α具有殺滅癌細胞的作用，過量則無效或造成機體器官壞死。TNF-α還參與機體的炎癥反應，是多種信號通路的關(guān)鍵因子。因此，開展TNF-α與豬瘟病毒（Classical swine fever virus，CSFV）感染的相關(guān)性研究，對揭示CSFV的致病機理具有重要意義?！厩叭搜芯窟M展】TNF-α存在2種生物活性形式，即跨膜TNF-α（tmTNF-α）和可溶性TNF-α（sTNF-α），最初作為一種25 kD的跨膜蛋白，可被TNF-α轉(zhuǎn)換酶分裂，釋放出1個17 kD的可溶性分子（Cruceriu et al.，2020）。tmTNF-α和sTNF-α需通過對應的受體——腫瘤壞死因子受體（TNFR1和TNFR2）才能發(fā)揮生物活性作用，其中TNFR1在幾乎所有的細胞類型上均有表達，被認為是機體內(nèi)經(jīng)典TNF-α功能的主要介質(zhì)，而TNFR2的表達僅限于免疫細胞（Ba et al.，2017）。sTNF-α的傳導主要通過結(jié)合TNFR1發(fā)揮作用，而tmTNF-α主要連接TNFR2發(fā)生效應，均能誘導多種信號通路的激活，包括核因子NF-κB和MAPK及細胞凋亡相關(guān)通路（Sade-Feldman et al.，2013）。TNF-α的生物學作用在種屬間無明顯差異，已有研究證實人類TNF-α與小鼠TNF-α的氨基酸序列相似性為79%，而功能和作用暫未發(fā)現(xiàn)差異性（Caminero et al.，2011）。還有研究表明，通過基因工程技術(shù)修飾TNF-α，在N端缺失2個氨基酸殘基（1Val和2Arg）后，其生物學活性和抗腫瘤效應更佳（Solmaza et al.，2011）。此外，Solmaza等（2011）研究發(fā)現(xiàn)，將TNF-α的8Pro、9Ser、10Asp和157Leu分別替換為8Arg、? 9Lys、10Arg和157Phe，合成TNF-α較天然TNF-α在體外殺傷L929細胞的活性約增強1000倍。在炎性感染過程中，TNF-α水平的升高能促進白三烯和氧自由基的生成，進一步損傷腸黏膜，加劇黏膜充血、水腫及壞死，導致機體皮膚發(fā)紫和腸道糜爛等癥狀（楊季云等，2007）。von Rosen等（2013）研究發(fā)現(xiàn)CSFV感染豬體后，其血清TNF-α水平均有所升高，且表現(xiàn)為弱毒株較強毒株的TNF-α水平延遲2～3 d到達峰值。Li等（2016）研究表明，在豬繁殖與呼吸綜合征病毒（Porcine reproductive and respiratory syndrome virus，PRRSV）的感染過程中，整合素—金屬蛋白酶17（A disintegrin and metalloproteinase-17，ADAM-17）參與TNF-α的產(chǎn)生。Bercier和Grenier（2019）研究發(fā)現(xiàn)，一些病原微生物入侵豬體時，可誘導其氣管上皮細胞分泌TNF-α，進而破壞上皮屏障的完整性，使連接蛋白受損。【本研究切入點】TNF-α是一個關(guān)鍵的細胞調(diào)節(jié)因子，在針對細菌或病毒感染的免疫反應和炎癥反應中發(fā)揮重要作用（Ting and Bertrand，2016）。至今，有關(guān)人類及鼠等生物的TNF-α已得到深入研究（Caminero et al.，2011），但針對豬TNF-α的研究相對較少。此外，研究病毒感染過程中豬體內(nèi)TNF-α的變化規(guī)律及其作用機制需應用豬源TNF-α抗體，但目前生物制品市場尚缺乏此類抗體。【擬解決的關(guān)鍵問題】克隆豬TNF-α基因并進行原核表達及純化，免疫昆明小鼠制備TNF-α多克隆抗體，采用Western blotting、ELISA及間接免疫熒光分析等方法驗證豬源TNF-α多克隆抗體的特異性和反應性，并探索CSFV感染對PK-15細胞分泌TNF-α的影響，為揭示CSFV的致病機理打下基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

His標簽鼠單克隆抗體、Flag標簽鼠單克隆抗體、表達載體pGEX-4T-1和pcDNA3.0、PK-15細胞系、HEK-293T細胞系、脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染試劑盒及CSFV石門株均由亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源與利用國家重點實驗室保存提供;4周齡SPF級昆明小鼠（平均體重18 g/只）購自廣西醫(yī)科大學實驗動物中心;大腸桿菌TOP10和BL21（DE3）感受態(tài)細胞購自天根生化科技（北京）有限公司。

1. 2 引物設(shè)計與合成

在GenBank上搜索豬TNF-α基因序列（登錄號JF831365.1）的完整編碼區(qū)（CDS）序列，根據(jù)試驗需求設(shè)計特異性引物（表1），并委托華大基因生物科技（深圳）有限公司合成。

1. 3 豬源TNF-α多克隆抗體制備

1. 3. 1 原核表達載體構(gòu)建 提取CSFV病料基因組RNA，反轉(zhuǎn)錄合成cDNA作為PCR擴增模板，采用TNF-α-F/TNF-α-R引物對擴增TNF-α基因，并克隆至pMD18-T載體上獲得重組質(zhì)粒pMD18-T-TNF-α，然后與原核載體pGEX-4T-1分別進行雙酶切，酶切產(chǎn)物經(jīng)膠回收后以T4 DNA連接酶連接過夜，連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化TOP10感受態(tài)細胞，經(jīng)PCR鑒定陽性克隆送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序，以鑒定原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α是否構(gòu)建成功。

1. 3. 2 融合蛋白TNF-α表達及純化 以原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞，陽性菌落在37 ℃下?lián)u床（200 r/min）培養(yǎng)至OD600達0.6～0.8，加入終濃度為0.05或0.50 mmol/L的IPTG，30 ℃誘導6 h。取誘導菌液進行超聲波破碎，4 ℃下12000 r/min離心10 min，分別收集上清液、沉淀和總菌進行SDS-PAGE分析和Western blotting檢測，以確定融合蛋白誘導表達的最佳條件及其表達形式;并對IPTG誘導濃度及誘導時間等條件進一步優(yōu)化，確定大量表達融合蛋白的最佳條件。最后，對蛋白樣品進行SDS-PAGE分析，經(jīng)KCl染色后取相應位置的凝膠進行切膠，PBS反復凍融，最后稀釋出的液體即為純化融合蛋白。

1. 3. 3 免疫小鼠及收集血清 將純化融合蛋白與弗氏佐劑乳化成混合物，采用背部皮下多點注射對SPF級昆明小鼠進行免疫，免疫周期按1、7、21和35 d進行4次免疫，每只小鼠每次注射的融合蛋白免疫劑量約500 μg，4次免疫后第7 d摘除小鼠眼球采血，收集血清，-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1. 4 豬源TNF-α真核表達載體構(gòu)建及誘導表達

重組質(zhì)粒pMD18-T-TNF-α經(jīng)F-TNF1/F-TNF2引物對擴增TNF-α基因，然后克隆至真核載體pcDNA3.0上，通過PCR挑選陽性克隆送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序，以鑒定真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α是否構(gòu)建成功。HEK-293T細胞培養(yǎng)至70%～80%融合時，參考脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染試劑盒說明，按脂質(zhì)體∶質(zhì)粒為2 μL∶0.8 μg的比例，以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染HEK-293T細胞，轉(zhuǎn)染24 h后收集細胞總蛋白，采用Flag標簽鼠單克隆抗體（1∶1000）進行Western blotting檢測。

1. 5 TNF-α多克隆抗體反應性及特異性鑒定

采用12孔板培養(yǎng)PK-15細胞至70%～80%融合時，棄上清液后感染1 MOI的CSFV，于感染后0、12、24、36、48和72 h分別收集細胞總蛋白，同時收集1.4中真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染的HEK-293T細胞樣品，進行Western blotting檢測。一抗為制備的TNF-α多克隆抗體，用PBS或牛奶封閉液稀釋1000、2000、4000、8000和16000倍;二抗為HRP標記馬抗小鼠IgG。此外，將PK-15細胞培養(yǎng)至70%～80%融合時，以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α進行轉(zhuǎn)染，轉(zhuǎn)染12 h后進行間接免疫熒光分析，觀察TNF-α在PK-15細胞內(nèi)的表達情況。

1. 6 TNF-α多克隆抗體效價測定

以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染的HEK-293T細胞樣品為抗原，用抗原包被液進行稀釋并包被ELISA酶標板底，然后以制備的TNF-α多克隆抗體為一抗、HRP標記馬抗小鼠IgG為二抗，以未免疫的小鼠血清為陰性對照，利用間接ELISA測定TNF-α多克隆抗效價。

1. 7 TNF-α真核表達檢測

以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染PK-15細胞，分別在轉(zhuǎn)染0、6、9、12、24、36和48 h后收集細胞樣品，去除培養(yǎng)基，加入800 μL的RNA細胞裂解液，常溫裂解5 min，吹打若干次后收集于1.5 mL EP管中，-80 ℃保存?zhèn)溆?。用PBS洗滌細胞3次，每孔加入200 μL RIPA裂解液及2 μL蛋白酶抑制劑，冰浴10 min，轉(zhuǎn)移至EP管中，分別進行實時熒光定量PCR鑒定及Western blotting檢測。

2 結(jié)果與分析

2. 1 豬TNF-α基因片段測序分析結(jié)果

GenBank已收錄的豬TNF-α基因序列（登錄號JF831365.1）全長699 bp，共編碼232個氨基酸殘基;編碼蛋白分子量為25 kD，其親/疏水性預測結(jié)果如圖1所示，抗原表位平均峰值均大于1.55，說明具有良好的抗原表位，可對基因全長進行原核表達。

2. 2 豬源TNF-α基因擴增結(jié)果

采用特異性引物TNF-α-F/TNF-α-R進行PCR擴增，獲得699 bp的TNF-α基因目的條帶（圖2-A）。膠回收目的片段后與載體pMD18-T連接，并轉(zhuǎn)化TOP10感受態(tài)細胞，菌液PCR鑒定結(jié)果如圖2-B所示;對陽性菌進行質(zhì)粒抽提，并送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序，測序結(jié)果表明重組質(zhì)粒pMD18-T-TNF-α構(gòu)建成功。

2. 3 豬源TNF-α基因原核/真核表達載體構(gòu)建情況

對構(gòu)建獲得的原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α和真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α分別進行雙酶切鑒定，鑒定結(jié)果如圖3所示。送至生工生物工程（上海）股份有限公司的測序結(jié)果也均表明，原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α和真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α構(gòu)建成功。

2. 4 融合蛋白TNF-α誘導及其表達形式鑒定結(jié)果

以原核表達載體pGEX-4T-1-TNF-α轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞，采用終濃度為0.05或0.50 mmol/L的IPTG進行誘導表達6 h，SDS-PAGE分析（圖4-A）和Western blotting檢測（圖4-B）結(jié)果顯示，重組菌體經(jīng)IPTG誘導后能表達出約43 kD的融合蛋白，融合蛋白主要以包涵體形式進行表達，且以終濃度為0.05 mmol/L IPTG的誘導效果較優(yōu)。

2. 5 融合蛋白TNF-α的純化鑒定結(jié)果

由于融合蛋白TNF-α主要以包涵體形式進行表達，且載體設(shè)計時人工添加His標簽序列，與Ni-NTA親和層析柱結(jié)合較差，因此使用切膠純化方法進行純化。對融合蛋白TNF-α進行SDS-PAGE分析，以KCl染色后取目的蛋白條帶進行切膠純化，純化的融合蛋白TNF-α再進行SDS-PAGE分析和Western blotting檢測，結(jié)果顯示在43 kD處有1條清晰的目的條帶（圖5），說明成功獲得較高純度的融合蛋白TNF-α。

2. 6 真核表達蛋白TNF-α鑒定結(jié)果

使用12孔板培養(yǎng)HEK-293T細胞至70%～80%融合時，分別轉(zhuǎn)染表達載體pcDNA3.0及攜帶Flag標簽的真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α，轉(zhuǎn)染24 h后收集細胞總蛋白，以Western blotting檢測HEK-293T細胞中融合蛋白TNF-α的表達情況，結(jié)果（圖6）顯示，除了在25 kD處觀察到融合蛋白TNF-α外，在17 kD的位置還有少量的可溶性TNF-α。

2. 7 TNF-α多克隆抗體與真核表達蛋白的反應性

TNF-α多克隆抗體按1∶1000、1∶2000、1∶4000和1∶8000的比例進行稀釋，通過Western blotting檢測TNF-α多克隆抗體與真核表達蛋白的反應性，結(jié)果（圖7）顯示，1∶8000倍稀釋TNF-α多克隆抗體時仍可檢測到HEK-293T細胞轉(zhuǎn)染表達的融合蛋白TNF-α，表明制備獲得的TNF-α多克隆抗體具有良好的反應性。

2. 8 TNF-α多克隆抗體與CSFV感染PK-15細胞分泌蛋白TNF-α的反應性

采用12孔板培養(yǎng)PK-15細胞至70%～80%融合時，棄上清液后感染1 MOI的CSFV，于感染后0、12、24、36、48和72 h收集細胞總蛋白進行Western blotting檢測，結(jié)果（圖8）顯示，CSFV感染后24 h其病毒蛋白開始表達，且呈上調(diào)趨勢;而PK-15細胞分泌蛋白TNF-α從感染后36 h開始上調(diào)表達，于感染72 h時達峰值，其變化趨勢與病毒蛋白基本一致，即CSFV能刺激PK-15細胞分泌蛋白TNF-α上調(diào)表達。

2. 9 TNF-α多克隆抗體特異性檢測結(jié)果

以真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染PK-15細胞，真核載體pcDNA3.0轉(zhuǎn)染為陰性對照，轉(zhuǎn)染12 h后分別用Flag標簽單克隆抗體（1∶500）和制備的TNF-α多克隆抗體（1∶300）為一抗孵育轉(zhuǎn)染的PK-15細胞，以FITC熒光標記馬抗鼠IgG抗體為二抗，熒光倒置顯微鏡下觀察熒光信號并拍照分析。結(jié)果（圖9）顯示，真核載體pcDNA3.0轉(zhuǎn)染的PK-15細胞未檢測到熒光信號，而經(jīng)真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染后其細胞熒光強度增強，可清楚觀察到細胞形態(tài)，細胞核熒光較細胞質(zhì)稍暗，說明融合蛋白TNF-α主要在細胞質(zhì)中表達，且均勻分布，也表明TNF-α多克隆抗體與真核細胞表達TNF-α具有較好的反應特異性，可用于間接免疫熒光分析。

2. 10 TNF-α多克隆抗體效價測定結(jié)果

收集真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α轉(zhuǎn)染的HEK-293T細胞樣品為抗原，以制備的TNF-α多克隆抗體和未免疫小鼠血清為一抗，利用間接ELISA測定抗體效價。結(jié)果判定標準為TNF-α多克隆抗體孔的OD450 nm與未免疫小鼠陰性血清對照孔的OD450 nm比值差異顯著（P/N）>2.1，鑒定為陽性的最高稀釋度即為其抗體效價。由圖10可知，當TNF-α多克隆抗體1∶8000稀釋時，P為0.276，N為0.107，P/N=2.579>2.1;當TNF-α多克隆抗體1∶16000稀釋時，P為0.230，N為0.119，P/N=1.932<2.1，因此確定TNF-α多克隆抗體效價為1∶8000。

2. 11 真核表達TNF-α及其下游因子（TRAF1）的變化

使用12孔板培養(yǎng)PK-15細胞至70%～80%融合時，分別轉(zhuǎn)染真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α和真核載體pcDNA3.0，在轉(zhuǎn)染0、6、9、12、24、36和48 h后收集PK-15細胞總蛋白和RNA樣品，對TNF-α基因及TRAF1的表達變化進行分析。實時熒光定量PCR檢測結(jié)果顯示，PK-15細胞轉(zhuǎn)染真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α后，TNF-α基因表達變化倍數(shù)在轉(zhuǎn)染6 h時達74.8倍，轉(zhuǎn)染12 h時達峰值（354.4倍），隨后逐漸下降，至轉(zhuǎn)染48 h時降至51.9倍;而真核載體pcDNA3.0轉(zhuǎn)染組只有2.0～4.0倍的上升幅度（圖11-A）。在TNF-α存在的條件下，PK-15細胞中的TRAF1表達受到影響，TRAF1表達變化倍數(shù)在轉(zhuǎn)染12 h時可達3.4倍，變化趨勢與TNF-α基因基本一致，但變化幅度不明顯（圖11-B）。Western blotting檢測結(jié)果（圖11-C）表明，TNF-α從轉(zhuǎn)染12 h時開始表達，至轉(zhuǎn)染24 h時表達量達峰值;隨著TNF-α的表達，TRAF1的水平從轉(zhuǎn)染12 h時開始上調(diào)，于轉(zhuǎn)染24 h時達峰值后逐漸下調(diào)?？梢?，TNF-α與TRAF1的變化趨勢基本一致，即二者間存在一定關(guān)聯(lián)性。

3 討論

CSFV感染能引起宿主皮膚、脾臟、腎臟及淋巴結(jié)等器官組織廣泛性出血和淤血。CSFV進入血液循環(huán)系統(tǒng)后，最早侵害的是血管內(nèi)皮細胞并誘導細胞分泌IL-1、IL-6和IL-8等促炎因子，由于入侵的數(shù)量相對較少，引起的炎癥反應不強烈（范學政等，2013）。當CSFV在細胞內(nèi)大量復制并釋放到細胞外感染其他細胞時，則再次啟動新一輪的促炎因子分泌，隨著感染細胞數(shù)量的不斷增加，炎癥反應也愈加強烈，血管內(nèi)皮細胞出現(xiàn)腫脹、變性、壞死，甚至脫落，而導致出血（Bensaude et al.，2004）。von Rosen等（2013）研究證實，CSFV感染豬只后其體內(nèi)的TNF-α、INF-α和IL-8等促炎因子水平明顯升高。本研究的Western blotting檢測結(jié)果也表明，CSFV感染可引起PK-15細胞的TNF-α表達水平上調(diào)。此外，CSFV感染后能刺激核轉(zhuǎn)錄因子NF-κB產(chǎn)生，從而引起腸道炎癥反應，致使結(jié)腸黏膜損傷（Hiscott et al.，2001）。NF-κB是一類與某些基因啟動子區(qū)特定核苷酸序列結(jié)合的蛋白，進而調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄過程（Dong et al.，2013）。NF-κB廣泛表達于多種組織細胞中，在多條信號通路中發(fā)揮轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)作用，且激活后可與不同基因一起調(diào)控轉(zhuǎn)錄過程，尤其在腫瘤的形成和發(fā)展中扮演著重要角色（劉金輝等，2008）。TRAF1是腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子家族的重要成員之一，也是TNF-α下游的重要因子，在TNF-α誘導NF-κB的過程中發(fā)揮重要作用。TNF-α和TRAF1均屬于NF-κB通路相關(guān)蛋白，但其具體作用機制尚未明確。

由于豬TNF-α基因編碼蛋白親水性較好，抗原表位平均峰值均大于1.55，全長都具有良好的抗原表位，無信號肽，因此本研究以豬TNF-α基因全長進行原核表達。融合蛋白在大腸桿菌中的高效表達，會導致包涵體形成，但包涵體在純化時需使用變性劑將其溶解，充分暴露出His標簽，以便與Ni-NTA層析柱結(jié)合而達到純化蛋白的目的（李延生等，2014;陳東榮等，2021）。雖然Ni-NTA層析法具有操作簡單的優(yōu)點，但其電泳、透析及染色等過程耗時較長，致使蛋白純化效率降低，純化成本增高。本研究選用KCl染色切膠純化蛋白的方法，在保證不改變原有蛋白生物活性的前提下，參考NaAc染色切膠純化法，以KCl取代NaAc染色蛋白及反復凍融后，并通過快速離心等步驟取代原來的電泳后過夜透析等步驟，結(jié)果顯示，KCl染色切膠純化獲得的融合蛋白TNF-α經(jīng)SDS-PAGE分析和Western blotting檢測，證實其純度和濃度均滿足免疫要求，將融合蛋白TNF-α與弗氏佐劑乳化后對SPF級昆明小鼠進行4次免疫，制備獲得的TNF-α多克隆抗體具有良好的反應性，其效價為1∶8000。

為了驗證TNF-α多克隆抗體的反應性，本研究利用真核載體pcDNA3.0成功構(gòu)建真核表達載體pcDNA3.0-TNF-α，分別轉(zhuǎn)染HEK-293T細胞和PK-15細胞后均可表達出接近于天然結(jié)構(gòu)的融合蛋白，且具有完整的空間結(jié)構(gòu)，與真核細胞表達蛋白呈高度親和性。間接免疫熒光分析結(jié)果也證實TNF-α多克隆抗體可檢測在PK-15細胞中過表達的TNF-α，且有較強的特異性熒光;通過Western blotting還能檢測到CSFV感染PK-15細胞后產(chǎn)生的內(nèi)源性TNF-α?？梢?，本研究制備獲得的TNF-α多克隆抗體具有良好的反應性和特異性。此外，PK-15細胞感染CSFV后，TNF-α的表達呈明顯上調(diào)趨勢;在PK-15細胞中過表達TNF-α時，其下游因子TRAF1的mRNA和蛋白水平均呈上調(diào)趨勢，即TNF-α能上調(diào)TRAF1的表達。TNF-α和TRAF1均能刺激NF-κB產(chǎn)生，而NF-κB普遍存在于多種組織細胞中，具有多向轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)作用，并發(fā)揮多種生物學功能（Devergne et al.，1996）。CSFV感染PK-15細胞后，TNF-α和TRAF1的表達變化趨勢基本一致，說明CSFV入侵動物機體后同時刺激TNF-α和TRAF信號通路，使機體產(chǎn)生炎癥反應。

4 結(jié)論

制備獲得的TNF-α蛋白抗體具有效價高、反應性好及特異性強的特點，可用于檢測CSFV感染后真核細胞中過表達的TNF-α水平。TNF-α可刺激TRAF1產(chǎn)生，參與TRAF1相關(guān)信號通路而發(fā)揮其生物學功能，CSFV感染PK-15細胞后TNF-α和TRAF1的表達變化趨勢基本一致，說明CSFV能同時刺激TNF-α和TRAF1信號通路，使機體產(chǎn)生炎癥反應。

參考文獻：

陳東榮，黃星晨，張俊俊，楊維菡，張明，付強. 2021. 水牛Tle6基因表達模式分析及其多克隆抗體制備[J]. 南方農(nóng)業(yè)學報，52（6）：1692-1700. [Chen D R，Huang X C，Zhang J J，Yang W H，Zhang M，F(xiàn)u Q. 2021. Expression pattern of Tle6 gene in buffalo and preparation of polyclonal antibody[J]. Journal of Southern Agriculture，52（6）：1692-1700.] doi：10.3969/j.issn.2095-1191.2021.06.030.

范學政，陳鍇，徐璐，朱長康，張正興，趙燕，史蘭廣，鄭然，寧宜寶，王琴. 2013. 豬瘟病毒感染對豬外周血細胞因子轉(zhuǎn)錄的影響[J]. 中國獸醫(yī)雜志，49（6）：3-6. [Fan X Z，Chen K，Xu L，Zhu C K，Zhang Z X，Zhao Y，Shi L G，Zheng R，Ning Y B，Wang Q. 2013. Studies on cytokine mRNA expressions in the PBMC of CSFV-infected pigs[J]. Chinese Journal of Veterinary Medicine，49（6）：3-6.] doi：10.3969/j.issn.0529-6005.2013.06.001.

李蕊蕊，陳媛媛，董志昊，高三思，黃寶銀，劉潤琪，何平，郭寒，李銘，常仁旭，葛靖昕，楊威，徐闖. 2018. 成纖維細胞生長因子21（FGF21）對非酒精性脂肪肝小鼠血液 TNF-α及IL-1β的影響[J]. 中國獸醫(yī)學報，38（11）：2163-2167. [Li R R，Chen Y Y，Dong Z H，Gao S S，Huang B Y，Liu R Q，He P，Guo H，Li M，Chang R X，Ge J X，Yang W，Xu C. 2018. Effects of fibroblast growth factor 21（FGF21） on TNF-α and IL-1β in blood of non-alcoholic liver mice[J]. Chinese Journal of Veterinary Science，38（11）：2163-2167.] doi：10.16303/j.cnki.1005-4545.2018. 11.23.

李延生，劉誠，張珂，李曉寧，李曉泉，尹珊，謝琳娟，何曉霞，羅揚，鐘桃珍，羅廷榮. 2014. 豬STAT-1α基因的原核表達及其多克隆抗體制備[J]. 南方農(nóng)業(yè)學報，45（1）：118-122. [Li Y S，Liu C，Zhang K，Li X N，Li X Q，Yin S，Xie L J，He X X，Luo Y，Zhong T Z，Luo T R. 2014. Prokaryotic expression of porcine STAT-1α gene and preparation of polyclonal antibody against STAT-1α[J]. Journal of Southern Agriculture，45（1）：118-122.] doi：10.3969/j：issn.2095-1191.2014.1.118.

劉金輝，楊芬，羅閎丹，陳志平，謝小梅. 2008. NF-κB啟動的炎癥反應在小鼠侵襲性肺曲霉病肺損傷中的作用[J]. 微生物學通報，35（11）：1769-1773. [Liu J H，Yang F，Luo H D，Chen Z P，Xie X M. 2008. The effect of inflammation-mediated by NF-κB on lung injury of mice with invasive pulmonary aspergillosis[J]. Microbiology，35（11）：1769-1773.] doi：10.3969/j.issn.0253-2654.2008. 11.017.

呂志敢，郭政. 2006. 腫瘤壞死因子的研究進展[J]. 山西醫(yī)科大學學報，37（3）：311-314. [Lü Z G，Guo Z. 2006. Research progress of tumor necrosis factor[J]. Journal of Shanxi Medical University，37（3）：311-314.] doi：10.3969/j.issn. 1007-6611.2006.03.034.

蘇韞，劉永琦，顏春魯，龔紅霞，李春波，薛軒，張廣智. 2018. 馬鈴薯糖苷生物堿對化療性靜脈炎家兔促炎細胞因子表達的影響[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)大學學報，53（6）：19-23. [Su Y，Liu Y Q，Yan C L，Gong H X，Li C B，Xue X，Zhang G Z. 2018. Effect of potato glycosidic alkaloid on the inflammatory cytokines of chemotherapy phlebitis rabbit[J]. Journal of Gansu Agricultural University，53（6）：19-23.] doi：10.13432/j.cnki.jgsau.2018.06.003.

楊季云，張思仲，郭紅，曾祥元，馬布仁. 2007. 腫瘤壞死因子α通過激活NF-κB信號通路加快肝細胞周期進程[J]. 生物化學與生物物理進展，34（6）：604-610. [Yang J Y，Zhang S Z，Guo H，Zeng X Y，Ma B R. 2007. TNF-α promotes cell cycle progression by activating NF-κB signal pathway in hepatic cell line L-02[J]. Progress in Biochemistry and Biophysics，34（6）：604-610.] doi：10.3321/j.issn：1000-3282.2007.06.008.

Amber K T，Bloom R，Mrowietz U，Hertl M. 2015. TNF-α：A treatment target or cause of sarcoidosis？[J]. Journal of the European Academy of Dermatology & Venereology Jeadv，29（11）：2104-2111. doi：10.1111/jdv.13246.

Ba H P，Li B H，Li X Y，Li C，F(xiàn)eng A L，Zhu Y Z，Wang J，Li Z Y，Yin B J. 2017. Transmembrane tumor necrosis factor-α promotes the recruitment of MDSCs to tumor tissue by upregulating CXCR4 expression via TNFR2[J]. International Immunopharmacology，44：143-152. doi：10. 1016/j.intimp.2016.12.028.

Bensaude E，Turner J L E，Wakeley P R，Sweetman D A，Pardieu C，Drew T W，Wileman T，Powell P P. 2004. Classical swine fever virus induces proinflammatory cytokines and tissue factor expression and inhibits apoptosis and interferon synthesis during the establishment of long-term infection of porcine vascular endothelial cells[J]. Journal of General Virology，85（4）：1029-1037. doi：10. 1099/vir.0.19637-0.

Bercier P，Grenier D. 2019. TNF-α disrupts the integrity of the porcine respiratory epithelial barrier[J]. Research in Veterinary Science，124：13-17. doi：10.1016/j.rvsc.2019. 01.029.

Caminero A，Comabella M，Montalban X. 2011. Tumor necrosis factor alpha （TNF-α），anti-TNF-α and demyelination revisited：An ongoing story[J]. Journal of Neuroimmunology，234（1-2）：1-6. doi：10.1016/j.jneuroim.2011.03. 004.

Cruceriu D，Baldasici O，Balacescu O，Berindan-Neagoe I. 2020. The dual role of tumor necrosis factor-alpha（TNF-α） in breast cancer：Molecular insights and therapeutic approaches[J]. Cellular Oncology，43（1）：1-18. doi：10. 1007/s13402-019-00489-1.

Devergne O，Hatzivassiliou E，Izumi K M，Kaye K M，Kleijnen M F，Kieff E，Mosialos G. 1996. Association of TRAF1，TRAF2，and TRAF3 with an Epstein-Barr virus LMP1 domain important for B-lymphocyte transformation：Role in NF-kappa B activation[J]. Molecular and Cellular Biology，16（12）：7098-7108. doi：10.1128/MCB. 16.12.7098.

Dong X Y，Liu W J，Zhao M Q，Wang J Y，Pei J J，Luo Y W，Ju C M，Chen J D. 2013. Classical swine fever virus triggers RIG-I and MDA5-dependent signaling pathway to IRF-3 and NF-κB activation to promote secretion of interferon and inflammatory cytokines in porcine alveolar macrophages[J]. Virology Journal，10：286. doi：10.1186/1743-422X-10-286.

Hiscott J，Kwon H，Génin P. 2001. Hostile takeovers：Viral appropriation of the NF-kappaB pathway[J]. Journal of Cli-nical Investigation，107（2）：143-151. doi：10.1172/JCI11 918.

Kalliolias G D，Ivashkiv L B. 2016. TNF biology，pathogenic mechanisms and emerging therapeutic strategies[J]. Nature Reviews. Rheumatology，12（1）：49-62. doi：10.1038/nrrheum.2015.169.

Li R，Guo L J，Gu W H，Luo X L，Zhang J，Xu Y F，Tian Z J，F(xiàn)eng L，Wang Y. 2016. Production of porcine TNFα by ADAM17-mediated cleavage negatively regulates porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection[J]. Immunologic Research，64（3）：711-720. doi：10.1007/s12026-015-8772-8.

Sade-Feldman M，Kanterman J，Ish-Shalom E，Elnekave M，Horwitz E，Baniyash M. 2013. Tumor necrosis factor-α blocks differentiation and enhances suppressive activity of immature myeloid cells during chronic inflammation[J]. Immunity，38（3）：541-554. doi：10.1016/j.immuni. 2013.02.007.

Solmaza R，Altunba? E，Karda? G. 2011. Investigation of adsorption and corrosion inhibition effect of 1，1'-thiocarbonyldiimidazole on mild steel in hydrochloric acid solution[J]. Protection of Metals & Physical Chemistry of Surfaces，47：264. doi：10.1134/S2070205111020183.

Ting A T，Bertrand M J M. 2016. More to life than NF-kappa B in TNFR1 signaling[J]. Trends in Immunology，37（8）：535-545. doi：10.1016/j.it.2016.06.002.

von Rosen T，Lohse L，Nielsen J，Uttenthal ?. 2013. Classical swine fever virus infection modulates serum levels of INF-α，IL-8 and TNF-α in 6-month-old pigs[J]. Research in Veterinary Science，95（3）：1262-1267. doi：10.1016/j.rvsc.2013.09.011.

（責任編輯 蘭宗寶）