賈利強(qiáng), 趙秋芳, 陳曙
(1.貴州師范學(xué)院生物科學(xué)學(xué)院,貴州 貴陽 550018; 2.中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院南亞熱帶作物研究所,廣東 湛江 524091)
DNA Binding with one finger (DOF)轉(zhuǎn)錄因子是鋅指蛋白 (zinc finger proteins)家族的一個(gè)亞家族,是植物特有的一類轉(zhuǎn)錄因子。DOF家族基因在動(dòng)物基因組中沒有同源基因,在其蛋白序列中具有一個(gè)明顯的鋅指結(jié)構(gòu),所以這類植物特有的單個(gè)鋅指結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)錄因子命名為DOF(DNA-binding with one finger)蛋白[1]。所有的DOF蛋白的N端具有一個(gè)保守的大約有52個(gè)氨基酸組成的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域C2-C2鋅指結(jié)構(gòu),這個(gè)結(jié)構(gòu)域可以結(jié)合到靶基因的啟動(dòng)子順勢(shì)元件序列AAAG上,調(diào)控靶基因的表達(dá)[2]。另外,在DOF蛋白的N端含有一個(gè)雙向的核定位信號(hào)序列(NLS,bipartite nuclear localization signal)[3]。DOF蛋白的C端序列的不保守,有報(bào)道表明,DOF蛋白的C端調(diào)控許多下游基因的表達(dá),在植物的生長發(fā)育進(jìn)程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用[4-5]。迄今為止,已報(bào)道了許多作物的DOF基因家族,大麥中有75個(gè)DOF基因[6],玉米中有46個(gè)[7],馬鈴薯中有35個(gè)[8], 大豆中有28個(gè)[9],木豆中有38個(gè)[10],水稻中有30個(gè)[11],42個(gè)候選DOF基因發(fā)現(xiàn)于苜?;蚪M中[12],25個(gè)在甘蔗中[13]。
玉米的DOF基因家族的初步研究已有報(bào)道,但是,這個(gè)家族基因在玉米生長發(fā)育中及應(yīng)答逆境脅迫的定量表達(dá)數(shù)據(jù)還很缺乏。本研究選用其中的一個(gè)亞家族共計(jì)8個(gè)基因作為研究對(duì)象,研究了這8個(gè)基因在玉米自交系鄭58不同器官中的特異表達(dá)模式及應(yīng)答NaCl,PEG6000,銨態(tài)氮和硝態(tài)氮脅迫時(shí)的響應(yīng)表達(dá)模式,為深入研究這些DOF基因的功能提供了有用的信息。
試驗(yàn)材料為玉米自交系鄭58。在鄭58授粉期及授粉15 d后采集根、莖、葉、花、穗和苞葉,液氮速凍,保存于-80 ℃冰箱備用。對(duì)于NaCl和PEG 6000脅迫試驗(yàn)。參照前人的研究結(jié)果,玉米鄭58種子用2%的次氯酸鈉表面消毒,28 ℃黑暗催芽,挑選發(fā)芽一致的種子放置于固定在泡沫漂浮板的紗網(wǎng)上,于Hoagland培養(yǎng)液中生長,為了使根系健壯生長和防止綠藻產(chǎn)生,水培容器和支持苗的平板采用不透光的塑料。在人工氣候室(28 ℃光照16 h,黑暗8 h)長至三葉一心時(shí),挑選大小一致的玉米幼苗轉(zhuǎn)到200 mmol·L-1NaCl溶液或者20%的PEG 6000溶液脅迫處理,分別于處理的0,1,6和24 h時(shí)間點(diǎn)采取葉片,液氮速凍,保存于-80 ℃冰箱備用。對(duì)于不同氮形態(tài)的脅迫試驗(yàn),將發(fā)芽整齊一致的玉米鄭58種子生長于含2 mmol·L-1的硝酸鉀或氯化銨的Hoagland培養(yǎng)液中,每周更換新的培養(yǎng)液,生長3周后,轉(zhuǎn)到含有0.02 mmol·L-1的硝酸鉀或者氯化銨的Hoagland培養(yǎng)液脅迫處理,分別在脅迫處理的0,1,6和24 h時(shí)迅速采集葉片,液氮速凍后,-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。以試?yàn)處理0 h的樣品作為空白對(duì)照,將3株幼苗混樣作為1次生物學(xué)重復(fù),共設(shè)置2次生物學(xué)重復(fù)試驗(yàn)。
本研究中,8個(gè)ZmDOF的蛋白和核苷酸序列及擬南芥的36個(gè)DOF蛋白序列。
從Phytozome中下載(https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html)。根據(jù)在染色體中的物理位置,輸入到軟件MapInspect (http://www.plantbreeding.wur.nl/uk/software-mapinspect.html),繪制這8個(gè)基因在染色體中的位置圖。這8個(gè)玉米DOF蛋白和擬南芥36個(gè)DOF蛋白生成的數(shù)據(jù)陣,利用軟件MEGA10(http://meme-suite.org/tools/meme)中的MUSLE算法進(jìn)行比對(duì),取保守序列,用NJ法進(jìn)行進(jìn)化樹計(jì)算,參數(shù)設(shè)置為P-distance,pairwise deletion,bootstrap值取1 000。利用這8個(gè)基因的CDS和基因組序列,輸入在線軟件GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn),繪制基因結(jié)構(gòu)圖。利用在線軟件MEME(http://meme-suite.org)對(duì)8個(gè)ZmDOF蛋白進(jìn)行結(jié)構(gòu)域搜索。
玉米葉片總RNA的提取利用Trizol試劑盒 (Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)提取。用DNase I(Takara, Dalian, China)去除總RNA中可能污染的基因組DNA??俁AN的質(zhì)量和純度用NanoDrop ND-1000紫外分光光度計(jì) (Thermo Scientific, USA)來測(cè)定。取3 μg總RNA用Super Script Ⅲ逆轉(zhuǎn)錄酶(TaKaRa,Dalian,Chian)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,生成cDNA稀釋5倍用于后續(xù)的定量PCR反應(yīng)(羅氏480實(shí)時(shí)定量PCR儀)。擴(kuò)增體系為1 μL cDNA、上下游引物各0.5 μL、SYBR反應(yīng)MIX(2×)為5 μL和3 μL水。設(shè)定的PCR程序?yàn)椋?個(gè)循環(huán)95 ℃ 30 s; 45個(gè)循環(huán)95 ℃ 5 s; 60 ℃ 20 s; 72℃ 10 s。利用2-△△Ct算法來計(jì)算ZmDOF基因的相對(duì)表達(dá)量。玉米actin基因用作內(nèi)參。用于定量的8個(gè)玉米DOF基因的引物見表1。所有的試驗(yàn)重復(fù)至少3次,用Excel軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
表1 8個(gè)ZmDOF基因的實(shí)時(shí)熒光定量引物Table 1 qRT-PCR primers for expression on analysis of 8 ZmDOF genes
根據(jù)玉米DOF基因家族的研究結(jié)果[35],選定位于同一亞家族的8個(gè)基因作為研究對(duì)象,這8個(gè)基因是ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF25,ZmDOF29,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45(表2),位于染色體1,2,4,5,7和10上 (圖1A)。除了ZmDOF45含有一個(gè)內(nèi)含子外,其他基因無內(nèi)含子 (圖1B)。這8個(gè)蛋白含有一個(gè)保守的C2-C2鋅指結(jié)構(gòu)域 (圖1C)。對(duì)這8個(gè)蛋白序列和36個(gè)擬南芥DOF蛋白序列構(gòu)成的數(shù)據(jù)列進(jìn)行比對(duì),利用MEGA 7軟件計(jì)算進(jìn)化樹,結(jié)果表明,這8個(gè)蛋白確實(shí)分布于一個(gè)亞家族中 (圖1D)。這個(gè)亞家族又可以進(jìn)一步細(xì)分為3個(gè)小家族,命名為Ⅰ,Ⅱ和Ⅲ,小家族Ⅰ包括4個(gè)基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF29和ZmDOF45;小家族Ⅱ包含有2個(gè)基因,ZmDOF14和ZmDOF37;小家族Ⅲ有2個(gè)基因,ZmDOF25和ZmDOF32。
表2 8個(gè)ZmDOFs的生物信息學(xué)分析
A.8個(gè)ZmDOF基因的染色體定位; B. 8個(gè)ZmDOF的基因結(jié)構(gòu)分析;
利用在線軟件MEME對(duì)這8個(gè)蛋白的保守基序進(jìn)行了分析,選取了前6個(gè)motif進(jìn)行了分析。結(jié)果表明,Motif1分布于所有的這8個(gè)蛋白序列中。表明這個(gè)保守的基因序列在這8個(gè)DOF蛋白中有重要的作用。這個(gè)基因序列的分布模式也支持進(jìn)化樹的分類結(jié)果。一個(gè)家族內(nèi)蛋白具有相似的基因序列分布模式。亞家族Ⅲ的成員ZmDOF25和ZmDOF32都只有2個(gè)核心基序的分布。亞家族Ⅱ的成員ZmDOF14和ZmDOF37都有3個(gè)基序的分布且位置類似。
A. 8個(gè)ZmDOF蛋白的基序分析;B. 8個(gè)ZmDOF蛋白的基序分布示意圖。
選取玉米抽雄期根、莖、葉、雄花、穗和苞葉組織,利用熒光定量PCR技術(shù),檢測(cè)了這8個(gè)基因的組織特異性表達(dá)模式。結(jié)果表明,這8個(gè)基因具有明顯的組織特異性表達(dá)特性 (圖3)。ZmDOF5,ZmDOF9和ZmDOF14主要在雌穗中表達(dá),分別是根部表達(dá)的71,88和81倍以上。ZmDOF25和ZmDOF32主要在雄花中表達(dá),分別是根部表達(dá)量的7 700倍和17倍。ZmDOF29主要在雄花和苞葉中表達(dá),分別是根部表達(dá)量的33和14倍。ZmDOF45主要在雄花和根部表達(dá),而ZmDOF37主要在苞葉中表達(dá)。這些表達(dá)數(shù)據(jù)表明,這些基因在玉米生長發(fā)育進(jìn)程中可能發(fā)揮著重要作用。
R,S,L,CB,T,E分別代表根、莖、葉、苞葉、雄花和幼穗。
這8個(gè)基因應(yīng)答逆境脅迫的響應(yīng)模式未知。為了探測(cè)這8個(gè)基因?qū)aCl脅迫和PEG脅迫的響應(yīng)模式,利用200 mmol·L-1的NaCl溶液和20% PEG 6000溶液處理三葉一心期的玉米幼苗,分別在處理后的0,1,6和24 h取葉片,利用熒光定量PCR技術(shù)探測(cè)了這8個(gè)基因的表達(dá)模式。所用到的引物見表1。在NaCl溶液脅迫處理1 h時(shí),6個(gè)基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45,表達(dá)量出現(xiàn)明顯上調(diào),分別比處理前上調(diào)了6.9,3.7,2.1,3.9,2.7和4.5倍,之后這些基因的表達(dá)量又出現(xiàn)部分恢復(fù),在脅迫處理24 h時(shí),其表達(dá)量恢復(fù)到處理前的水平。表明這些基因是應(yīng)答NaCl脅迫的早期響應(yīng)基因。ZmDOF25和ZmDOF29在脅迫1 h后,表達(dá)出現(xiàn)明顯上調(diào)。直到脅迫處理結(jié)束,其表達(dá)量還維持在較高的水平。表明這2個(gè)基因在整個(gè)NaCl脅迫處理期間都處于被誘導(dǎo)的狀態(tài)。在20%PEG 6000溶液脅迫處理1 h后,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14和ZmDOF25的表達(dá)量出現(xiàn)上調(diào),分別比處理前上升了6.9,19.4,2.7和13.9倍。說明這些基因是應(yīng)對(duì)脅迫處理的早期響應(yīng)基因。而ZmDOF29,ZmDOF32,ZmDOF37和ZmDOF45的表達(dá)量在脅迫處理24 h后出現(xiàn)了明顯上調(diào),分別比處理前上調(diào)了2.8,4.7,2.1和3.7倍。這表明這些基因是應(yīng)答PEG脅迫處理的晚期響應(yīng)基因。這些表達(dá)數(shù)據(jù)表明,這8個(gè)基因可能在不同時(shí)間內(nèi)不同程度地參與調(diào)控玉米應(yīng)答NaCl或PEG脅迫響應(yīng)途徑。
本研究探測(cè)了這8個(gè)基因應(yīng)答銨態(tài)氮脅迫和硝態(tài)氮脅迫的響應(yīng)模式。結(jié)果表明,在這2種脅迫條件下,這8個(gè)基因的表達(dá)模式都發(fā)生了明顯變化(圖5)。在銨態(tài)氮脅迫處理1 h后,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF29,ZmDOF32和ZmDOF45都發(fā)生了明顯的上調(diào),分別比處理前上調(diào)了3,4.5,3.5,6.6,5.1和4.9倍。銨態(tài)氮脅迫處理幾乎不影響對(duì)ZmDOF37基因的表達(dá),表明ZmDOF37基因不參與玉米應(yīng)答銨態(tài)氮脅迫途徑。ZmDOF25的表達(dá)量在銨態(tài)氮脅迫處理早期沒有變化,在脅迫處理的24 h時(shí),表達(dá)量上調(diào)了2.6倍,表明ZmDOF25是玉米應(yīng)答銨態(tài)氮脅迫的晚期響應(yīng)基因。相比于銨態(tài)氮脅迫處理,在硝態(tài)氮脅迫處理下,這8個(gè)基因的表達(dá)量變化幅度更大。其中有7個(gè)基因,ZmDOF5,ZmDOF9,ZmDOF14,ZmDOF25,ZmDOF29,ZmDOF32和ZmDOF45,在硝態(tài)氮脅迫處理1 h后,出現(xiàn)了明顯的上調(diào),之后這7個(gè)基因的表達(dá)出現(xiàn)回落。相對(duì)于處理前,這7個(gè)基因的表達(dá)量分別上調(diào)了13.3,58.2,43.4,5.2,45.7,23.7和59.8倍。表明這些基因是玉米應(yīng)答硝態(tài)氮脅迫的早期響應(yīng)基因。ZmDOF37的表達(dá)受脅迫處理的抑制,在脅迫處理的1 h,其表達(dá)量下調(diào)了58%,在脅迫處理6 h時(shí),其表達(dá)量更是出現(xiàn)了劇烈下降,表明ZmDOF37是玉米應(yīng)答硝態(tài)氮脅迫的負(fù)調(diào)控因子。這些表達(dá)數(shù)據(jù)表明,這8個(gè)基因在玉米應(yīng)答氮脅迫的響應(yīng)機(jī)制中可能發(fā)揮著生物學(xué)功能。
圖4 8個(gè)ZmDOFs對(duì)鹽脅迫和PEG脅迫的響應(yīng)模式
圖5 8個(gè)ZmDOFs應(yīng)答不同氮形態(tài)脅迫的響應(yīng)表達(dá)模式
利用熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)了一個(gè)DOF亞家族基因在玉米抽雄期不同器官中的表達(dá)模式。 結(jié)果表明,這8個(gè)基因的表達(dá)具有明顯的器官特異性。在前人的研究中,以玉米自交系B73為試驗(yàn)材料,利用RNA-Req技術(shù),得出ZmDOF25主要在玉米的雄花、葉片和雌穗中表達(dá),ZmDOF29在雌穗,ZmDOF32在幼嫩的莖、葉和雄花中表達(dá),ZmDOF37在葉和穗部中表達(dá)[36]。而在本研究中,ZmDOF25在玉米的雄花中表達(dá),ZmDOF29在苞葉和雄花中表達(dá),ZmDOF32在雄花中表達(dá),ZmDOF37主要在苞葉中表達(dá)。試驗(yàn)材料的不同可能是造成這些數(shù)據(jù)差異的原因之一。本研究結(jié)果進(jìn)一步補(bǔ)充了前人的研究,用熒光定量PCR進(jìn)一步明確了這8個(gè)基因在玉米不同組織的表達(dá)模式,為研究這些基因在調(diào)控玉米組織器官生長發(fā)育進(jìn)程提供有用的信息。
葛敏等[37]利用土培的方法,在不同氮肥處理?xiàng)l件下,通過轉(zhuǎn)錄組測(cè)序比較了玉米V3期DOF基因家族的表達(dá)水平。其中,ZmDOF5,ZmDOF29和ZmDOF45沒有檢測(cè)到表達(dá),ZmDOF9和ZmDOF25在高氮處理中表達(dá),而低氮處理不表達(dá),ZmDOF14則在高氮處理時(shí)不表達(dá),而在低氮處理時(shí)表達(dá),ZmDOF37則一直穩(wěn)定高表達(dá)。本研究利用更加靈敏的定量PCR技術(shù),更能精細(xì)控制的水培系統(tǒng),研究這8個(gè)ZmDOFs應(yīng)答不同氮形態(tài)的響應(yīng)表達(dá)模式。與前人的研究結(jié)果類似,ZmDOF5,ZmDOF29和ZmDOF45的本底表達(dá)量比較低,但是這3個(gè)基因在應(yīng)答不同氮形態(tài)脅迫時(shí),其表達(dá)模式差異明顯,這3個(gè)基因?qū)ο鯌B(tài)氮脅迫表現(xiàn)敏感,都受到硝態(tài)氮脅迫的強(qiáng)烈誘導(dǎo)。ZmDOF9和ZmDOF25也受到硝態(tài)氮脅迫的強(qiáng)烈誘導(dǎo),而不是抑制。不同品種的玉米幼苗在應(yīng)答氮脅迫時(shí)的耐受能力有明顯的差異,鄭單958耐受低氮脅迫的能力要強(qiáng)于浚單20、先玉335和登海662[38]。后續(xù)試驗(yàn)可以對(duì)這些品種的親本耐受低氮的能力進(jìn)行比較研究。