劉小辰,林海龍*
(國投生物科技投資有限公司,北京 100034)
香蕉(Musa nana)屬于芭蕉科芭蕉屬植物,廣泛種植于熱帶地區(qū)[1]。作為世界上栽培香蕉的古老國家之一,我國也有大面積栽培[2]。香蕉因其營養(yǎng)豐富、風味獨特、口感甚佳深受人們的喜愛。香蕉皮占香蕉總質(zhì)量的30%~40%[3],在加工后一般會被直接丟棄,不僅會造成資源浪費,還會對環(huán)境造成污染。國內(nèi)外有很多對香蕉的研究,但多數(shù)集中在香蕉果肉上,對香蕉皮的研究和利用較少。
多糖(polysaccharides)是近年來研究的熱點,其具有多種生理功能如抗氧化[4]、降血糖血脂[5]、降膽固醇、抗腫瘤[6]、免疫調(diào)節(jié)、調(diào)節(jié)腸道菌群[7]、保濕[8]等。香蕉皮中含有大量多糖,具有很大的應用潛力。王麗娟等[9]采用熱水提取法從香蕉皮中提取多糖,香蕉皮粗多糖(banana peel crude polysaccharide,BPCP)得率為4.25%。朱開梅等[10]則進一步在熱水浸提的基礎上加入超聲輔助,并對提取條件進行優(yōu)化,最終香蕉皮多糖得率可達13.85%,且該多糖對人乳癌細胞MCF-7具有顯著的抑制作用。趙廣河等[11]通過單因素及正交試驗優(yōu)化了酸提與酶提香蕉皮多糖的工藝,并對提取效果進行了對比,發(fā)現(xiàn)酶法提取的得率明顯高于酸法提取[12]。
為了比較不同提取方法對香蕉皮粗多糖(BPCP)結(jié)構(gòu)的影響,本實驗采用熱水浸提(hot water extraction,HWE)、酸輔助提取(acid assisted extraction,ACAE)、堿輔助提?。╝lkali assisted extraction,ALAE)、酶法浸提(enzyme extraction,EE)、高壓熱水提取(high pressure hot water extraction,HPHWE)、超聲熱水提?。╱ltrasonic hot water extraction,UHWE)等6種方法進行香蕉皮粗多糖(BPCP)的提取,比較不同提取方法下BPCP化學組成、分子質(zhì)量、單糖組成、表觀結(jié)構(gòu)、表觀黏度等性質(zhì)的差異,以期為香蕉副產(chǎn)物的綜合利用提供參考。
香蕉皮:市售香蕉的皮;果膠酶(酶活5 U/mg)、纖維素酶(酶活10 U/mg)、牛血清蛋白(純度≥98%),葡萄糖、甘露糖、鼠李糖、木糖、阿拉伯糖、半乳糖、氨基葡萄糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸(均為色譜純):美國Sigma-Aldrich公司;拜耳醫(yī)藥保健有限公司;體積分數(shù)80%乙醇、苯酚、濃硫酸、鹽酸、考馬斯亮藍(均為分析純):國藥集團化學試劑(北京)有限公司。
KQ5200DB型數(shù)控超聲波清洗器:昆山市超聲儀器有限公司;SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵:鞏義市子華儀器有限公司;1260高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)儀、Waters-2998紫外檢測器:美國Waters公司;DAWN HELEOS-II激光光散射儀:美國Wyatt公司;Bruker VERTEX 33傅里葉變換紅外光譜:德國Bruker公司;S-3400N掃描電子顯微鏡:日本Hitach公司;HAAKE MARS流變儀:美國熱電公司;Alpha 1-4 LD冷凍干燥機:德國Christ公司。
1.3.1 香蕉皮粗多糖提取方法及制備
熱水浸提法(HWE)[9]:取香蕉皮100 g加入1 L去離子水打漿,于90 ℃水浴攪拌(350 r/min)提取2 h。
酸輔助提?。ˋCAE)[13]:取香蕉皮100 g加入1 L檸檬酸(pH值為2)打漿,于90 ℃水浴攪拌(350 r/min)提取2 h。
堿輔助提?。ˋLAE)[13]:取香蕉皮100 g加入1 L NaOH(0.5 mol/L)打漿,于90 ℃水浴攪拌(350 r/min)提取2 h。
酶法浸提(EE)[14]:取香蕉皮100 g加入1 L去離子水打漿,調(diào)pH至6.0(0.1 mol/L NaOH),加入0.5%果膠酶和1.0%纖維素酶,于50 ℃水浴攪拌(350 r/min)提取2 h。
高壓熱水提取(HPHWE)[15]:取香蕉皮100 g加入1 L去離子水打漿,在115 ℃、0.2 MPa條件下提取2 h。
超聲熱水提取(UHWE)[16]:取香蕉皮100 g加入1 L去離子水打漿,在超聲功率400 W、50 ℃條件下處理30 min,于90 ℃水浴攪拌(350 r/min)提取2 h。
香蕉皮粗多糖提取結(jié)束后,冷卻至室溫,8 000 r/min離心15 min,200目紗布過濾得上清液,加入體積分數(shù)80%的乙醇,4 ℃條件下醇沉24 h,10 000 r/min離心20 min收集沉淀,超純水沉淀復溶,減壓旋蒸除去乙醇。再經(jīng)過5 kDa超濾膜進行超濾,收集大分子,減壓旋蒸(溫度60 ℃,真空度0.1 MPa),-40 ℃凍干24 h得到香蕉皮粗多糖。
1.3.2 分析與檢測
總多糖含量的測定:采用苯酚-硫酸法[17]。將粗多糖配制為0.1 mg/mL的溶液,移取1 mL樣品溶液于玻璃試管中,加入1 mL 現(xiàn)配的6%苯酚溶液與5 mL濃硫酸,充分振蕩混勻后靜置反應25 min,于波長490 nm處測定吸光度值。用蒸餾水代替樣品溶液,作為空白對照測定其吸光度值。以葡萄糖為標準品繪制標準曲線,按照標準曲線回歸方程計算樣品中總多糖的含量。
總蛋白含量的測定:采用Bradford法[18]。將粗多糖配制為0.1 mg/mL的溶液,移液槍移取50 μL樣品溶液,滴加到96孔板中,再加入200 μL的考馬斯亮藍試劑。靜置10 min后,用酶標儀在波長595 nm處測得溶液的吸光度值。用磷酸鹽緩沖液代替樣品溶液,作為空白對照測定其吸光度值。以牛血清蛋白為標準品繪制標準曲線,按照標準曲線回歸方程計算樣品中蛋白質(zhì)的含量。
分子質(zhì)量分布測定[19]:采用凝膠色譜法(gel permeation chromatography,GPC)測定多糖分子質(zhì)量。將香蕉皮粗多糖配制為質(zhì)量濃度10 mg/mL的溶液,進樣量為20 μL,Ultrahydrogel保護柱(40 mm×6 mm),Ultrahydrogel 2000 SEC色譜柱(7.8 mm×300 mm)和Ultrahydrogel 1000 SEC(7.8 mm×300 mm)串聯(lián)使用,柱溫30 ℃,以超純水為流動相,流速0.5 mL/min,采用示差檢測器(refractive index detector,RID)檢測多糖峰。用葡聚糖標品制作標準曲線,確定樣品分子質(zhì)量。
單糖組成分析:采用高效液相色譜法[20],Agilent Eclipse XDB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)柱,柱溫30 ℃,流動相為0.02 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 6.7)和乙腈的混合溶液(83∶17,V/V)??刂屏魉贋? mL/min,進樣量為20 μL,檢測波長為245 nm。
傅里葉變換紅外光譜分析[21]:1 mg樣品與100 mg KBr混合并充分研磨至均勻粉末,壓片。于波數(shù)3 750~500 cm-1范圍掃描,分辨率為4 cm-1。
掃描電子顯微鏡觀察[22]:樣品放于雙面膠帶上并噴薄金層,以15.0 kV的加速電壓于掃描電子顯微鏡觀察臺上收集圖像,放大倍數(shù)為1 000。
流變學特性測定[22]:分別配制質(zhì)量濃度為10 g/100 mL的樣品溶液,于20 ℃、剪切速率1~100 s-1條件下使用流變儀測定不同BPCP的表觀黏度。
1.3.3 數(shù)據(jù)處理
所有實驗均重復3次,結(jié)果取平均值,表示為“平均值±標準差”(n=3)。使用Origin 9.0軟件作圖。
不同提取方法得到的香蕉皮粗多糖的化學組成見表1。由表1可知,提取方式對粗多糖的總多糖、總蛋白含量有顯著影響。與其他提取方式相比,BPCP-ACAE的總多糖含量較低(7.54%),這可能是由于酸提取的樣本中含有大量酚類、色素等。通過其他方式獲得的粗多糖中總多糖含量都在30%以上,其中BPCP-UHWE總多糖最高(39.62%)。BPCP-ACAE和BPCP-HPHWE中不含蛋白質(zhì),BPCP-ALAE中總蛋白含量最高(17.77%)。因此,香蕉皮粗多糖更適合采用超聲熱水提取的方法制備。
表1 不同提取方法對香蕉皮粗多糖化學組成的影響Table 1 Effect of different extraction methods on the chemical composition of banana peel crude polysaccharides
不同提取方式得到的香蕉皮粗多糖的平均分子質(zhì)量分布情況見表2。由表2可知,不同提取方式制備的香蕉皮粗多糖分子質(zhì)量分布有顯著差異。BPCP-HPHWE多為分子質(zhì)量較小的多糖,其分子質(zhì)量為2.68 kDa的多糖占94.4%,說明BPCP-HPHWE分子質(zhì)量分布較為集中。
表2 不同提取方法對香蕉皮粗多糖分子質(zhì)量分布的影響Table 2 Effect of different extraction methods on the molecular mass distribution of banana peel crude polysaccharides
由表3可知,幾種BPCP的單糖組成差異顯著,均含有甘露糖、葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸。BPCP-ACAE中不含有鼠李糖、葡萄糖、阿拉伯糖;BPCP-ALAE不含有半乳糖;BPCP-HPHWE不含有葡萄糖、阿拉伯糖;BPCP-HWE不含有氨基葡萄糖、葡萄糖、半乳糖;BPCP-UHWE、BPCP-EE均不含有氨基葡萄糖、木糖。不同的制備手段對細胞壁的破壞程度不同,進而導致溶出物的組成和化學結(jié)構(gòu)不同,這可能是本研究獲得的六種多糖在單糖組成上明顯差異的關(guān)鍵因素[23-24]。
表3 不同提取方法對香蕉皮粗多糖的單糖組成的影響Table 3 Effect of different extraction methods on monosaccharide composition of banana peel crude polysaccharide
由圖1可知,粗多糖在3 750~500 cm-1波數(shù)范圍內(nèi)具有明顯的多糖特征吸收峰。波數(shù)3 340 cm-1處的吸收峰為O-H的伸縮振動峰,波數(shù)2 931 cm-1附近的吸收峰與糖環(huán)中C-H的伸縮振動有關(guān)[25]。波數(shù)1 750 cm-1處的吸收峰是由C=O的伸縮振動引起的[25],波數(shù)1 600 cm-1和1 410 cm-1處的吸收峰是由羧基(COO-)的非對稱和對稱伸縮振動引起的[27],波數(shù)1 200~1 000 cm-1范圍的兩個吸收峰證明了吡喃糖苷的存在[28]。不同提取方式得到的香蕉皮粗多糖有機官能團組成無明顯差異。
圖1 不同提取方法得到香蕉皮粗多糖的紅外光譜Fig.1 Infrared spectra of banana peel crude polysaccharides obtained by different extraction methods
不同提取方法得到香蕉皮粗多糖的掃描電鏡圖結(jié)果圖2。由圖2可知,BPCP-HWE與BPCP-UHWE有著相似的結(jié)構(gòu),表面光滑,分子間結(jié)合緊密;BPCP-HPHWE表面光滑,整體結(jié)構(gòu)呈乳液狀;BPCP-ALAE、BPCP-EE、BPCP-ACAE均為分散型結(jié)構(gòu),其中BPCP-ALAE、BPCP-ACAE呈顆粒狀聚集,BPCP-EE呈碎片狀、表面疏松多孔??赡苁遣煌幚矸绞将@取的多糖種類不同,以及對糖苷鍵及多糖鏈內(nèi)與鏈間的氫鍵破壞程度不同,進而造成多糖表面微觀結(jié)構(gòu)的明顯差異[29]。
圖2 不同提取方法得到香蕉皮粗多糖的掃描電鏡圖Fig.2 Scanning electron micrographs of banana peel crude polysaccharides obtained by different extraction methods
不同提取方法得到香蕉皮粗多糖流變特性見圖3。由圖3可知,在實驗涉及的剪切速率范圍內(nèi),BPCP-HWE(0.006~0.023 mPa·s)和BPCP-UHWE(0.006~0.016 mPa·s)的黏度始終高于其他幾種多糖,具有更大分子質(zhì)量的BPCP-ACAE表觀黏度則比較?。?.001~0.005 mPa·s),說明分子質(zhì)量不是影響B(tài)PCP黏度的主要因素。但是結(jié)合SEM表觀結(jié)構(gòu)觀察結(jié)果可以看出,BPCP-UHWE與BPCP-HWE有相似的結(jié)構(gòu),均為比較大的塊狀固體,說明其分子間結(jié)合比較緊密,這可能是造成其高黏度的原因。隨著剪切速率的增加,BPCP的黏度也隨之下降,呈現(xiàn)明顯的剪切稀化現(xiàn)象[30],這是因為在高剪切速率下多糖溶液中的分子交聯(lián)會因為外力的作用斷裂,造成溶液黏度的下降[19]。
圖3 不同提取方法對香蕉皮粗多糖流變特性的影響Fig.3 Effects of different extraction methods on the rheological properties of banana peel crude polysaccharides
本實驗對比了6種不同提取方法對BPCP的化學組成、分子質(zhì)量、單糖組成、表觀結(jié)構(gòu)、表觀黏度等的影響。結(jié)果表明,BPCP-UHWE總多糖含量最高(39.62%),BPCP-ALAE中總蛋白含量最高(17.77%);不同BPCP的平均分子質(zhì)量分布及單糖組成存在明顯差異;BPCP-W與BPCP-UHWE均為分子間結(jié)合比較緊密大塊狀結(jié)構(gòu),表面光滑;BPCP-HPHWE表面很光滑,呈乳液狀;BPCP-ALAE、BPCP-ACAE呈顆粒狀聚集,BPCP-EE呈碎片狀、表面疏松多孔。BPCP的表觀黏度與其平均分子質(zhì)量大小無關(guān),而與其表觀結(jié)構(gòu)明顯相關(guān)。綜上所述,不同提取方法對BPCP的化學組成、分子質(zhì)量、單糖組成、表觀結(jié)構(gòu)、表觀黏度等均有較大的影響。