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蓖麻種子萌發(fā)和幼苗生長對重金屬Cu2+的脅迫響應(yīng)※

2021-04-19 07:02:02梁嘯天趙志強包春光賈崇寧霍玉淼任文靜袁樸芳黃鳳蘭
特種經(jīng)濟動植物 2021年4期
關(guān)鍵詞:蓖麻生理幼苗

●梁嘯天 羅 蕊 趙志強 包春光 賈崇寧 霍玉淼 任文靜 袁樸芳 高 昶 黃鳳蘭,4,5,6,7,8※※

(1.內(nèi)蒙古民族大學(xué)生命科學(xué)與食品學(xué)院 內(nèi)蒙古 通遼 028000;2.內(nèi)蒙古民族大學(xué)農(nóng)學(xué)院 內(nèi)蒙古 通遼028000;3.通遼市農(nóng)畜產(chǎn)品質(zhì)量安全中心 內(nèi)蒙古 通遼 028000;4.蓖麻育種國家民委重點實驗室 內(nèi)蒙古 通遼 028000;5.內(nèi)蒙古自治區(qū)高校蓖麻產(chǎn)業(yè)工程技術(shù)研究中心 內(nèi)蒙古 通遼 028000;6.內(nèi)蒙古自治區(qū)蓖麻育種重點實驗室 內(nèi)蒙古 通遼 028000;7.內(nèi)蒙古自治區(qū)蓖麻產(chǎn)業(yè)協(xié)同創(chuàng)新中心 內(nèi)蒙古 通遼 028000;8.蓖麻產(chǎn)業(yè)技術(shù)創(chuàng)新內(nèi)蒙古自治區(qū)工程研究中心 內(nèi)蒙古 通遼 028000)

蓖麻(Ricinus communisL.)是世界上重要的非食用油料植物,含油率高達(dá)60%左右,被譽為“可再生的石油資源”[1],因其具有特色經(jīng)濟價值而廣受重視[2]。據(jù)報道,土壤被重金屬污染后,蓖麻仍可正常生長,表明蓖麻是一種對重金屬抗性較強的植物,具有修復(fù)重金屬污染土地的功能。有學(xué)者對銅礦區(qū)周圍生長的野生蓖麻進行研究,發(fā)現(xiàn)蓖麻不僅能夠在銅礦區(qū)正常生長,還能夠在植株內(nèi)部富集Cu2+,表現(xiàn)出較強的重金屬抗性[3]。

近年來,土壤重金屬污染現(xiàn)象日益嚴(yán)重,主要重金屬污染物包括汞、鎘、鉛、銅、鉻、砷、鎳等[4],對土壤危害較大,其無法被土壤中的微生物分解,導(dǎo)致更多的重金屬離子在土壤中累積而轉(zhuǎn)化為危害更大的化合物。部分重金屬會通過食物鏈進入人體,嚴(yán)重危害人類身體健康。研究發(fā)現(xiàn),通過植物的吸收、根濾、穩(wěn)定可以降低土壤重金屬污染程度,具有一定的土壤修復(fù)作用[5]。銅是植物生長發(fā)育必需的微量元素,參與植物體內(nèi)多種氧化酶的組成及氧化還原反應(yīng),適量的銅能夠?qū)χ参锷L起到促進作用,過量的銅則會導(dǎo)致植物葉片枯黃進而抑制其光合作用,甚至阻礙植物對其他元素的吸收[6]。

目前,眾多學(xué)者研究了水稻和小麥對Cu2+脅迫的耐受性,也有關(guān)于蓖麻對鎘脅迫以及鉛、鋅復(fù)合脅迫的耐受性研究,但未見關(guān)于蓖麻對Cu2+脅迫的耐受性研究[7-9]。因此本實驗選擇不同濃度CuSO4溶液對蓖麻進行處理,研究蓖麻種子萌發(fā)和幼苗生長對重金屬Cu2+的脅迫響應(yīng),以期驗證蓖麻作為特色經(jīng)濟植物在應(yīng)對重金屬污染土壤修復(fù)問題的應(yīng)用可行性以及適用條件。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 植物材料本實驗所用的植物材料為2129 品系蓖麻種子,由內(nèi)蒙古民族大學(xué)內(nèi)蒙古自治區(qū)高校蓖麻產(chǎn)業(yè)工程技術(shù)研究中心提供。

1.1.2 試劑材料液氮、 愈創(chuàng)木酚、30%H2O2、五水硫酸銅(CuSO4·5H2O)、20%三氯乙酸(TCA)、0.5%硫代巴比妥酸(TBA)、磷酸鹽緩沖液(PBS,pH=7.8,50mM)、還原性輔酶II(NADPH)、谷胱甘肽(GSSG)。

1.1.3 其他材料蛭石、土。

1.2 儀器設(shè)備

萬用電爐(DL-1),電子天平(Satirius BSA224S-CW),高速大容量低溫離心機(Thermo MULTIFUGE X3R),小型高速低溫離心機(Eppendorf Centrifuge 5424 R),HVE-50 型高溫高壓滅菌鍋(日本),-80℃超低溫冷凍冰箱(Thermo Scientific Forma 702),酶標(biāo)儀(Iinfinite M200 pro),電腦(Lenovo)。

1.3 實驗設(shè)計

選用飽滿度一致的蓖麻種子1 200 粒,共設(shè)置12 組培養(yǎng)方案,對照組使用清水,另外11 組處理組分別使用Cu2+濃度為120mg/L、240mg/L、360mg/L、480mg/L、600mg/L、720mg/L、840mg/L、960mg/L、1 080mg/L、1 200mg/L、1 320mg/L的CuSO4溶液,放在25 ℃有光照的溫室中培養(yǎng)72h[10]。

當(dāng)蓖麻生長到四葉期時,選取植株高度、葉片大小一致的20 盆幼苗分別設(shè)置為10 個對照組和10 個處理組。對照組幼苗生長期間每次澆1 L 清水,處理組幼苗生長期間每次澆Cu2+濃度為840mg/L(當(dāng)Cu2+濃 度 為840mg/L 時, 蓖 麻既不受嚴(yán)重抑制也不受促進生長,視其為臨界值)的CuSO4溶液1L。分別在7d、15d、21d 拍攝植株整體、葉及根的照片,對比處理組與對照組的區(qū)別[11]。

1.4 測定指標(biāo)和方法

1.4.1 測定指標(biāo)不同處理組環(huán)境下測定蓖麻種子萌發(fā)率、根形態(tài)(根長、根粗)、種子生理指標(biāo)[MDA(丙二醛)含量、POD(過氧化物酶)活性、CAT(過氧化氫酶)活性、GR(谷胱甘肽還原酶)活性]、幼苗生理指標(biāo)(同種子生理指標(biāo))。

1.4.2 測定方法

1.4.2.1 種子萌發(fā)率統(tǒng)計不同處理組的種子萌發(fā)個數(shù)與未萌發(fā)個數(shù),計算種子萌發(fā)率,公式:

1.4.2.2 根形態(tài)使用游標(biāo)卡尺測量不同處理已萌發(fā)蓖麻種子的15 個根長數(shù)據(jù)與5 個根粗?jǐn)?shù)據(jù)并記錄[13]。

1.4.2.3 蓖麻萌發(fā)種子生理指標(biāo)通過對蓖麻種子萌發(fā)率的計算以及萌發(fā)種子根長根粗的測量,確定2129 品系蓖麻種子對重金屬Cu2+濃度的最大抗性值,按以下方法測定最大抗性濃度萌發(fā)種子的MDA 含量、POD 活性、CAT 活性、GR 活性。蓖麻萌發(fā)種子預(yù)處理。將不同處理下的萌發(fā)種子置于預(yù)冷的研缽中,倒入液氮研磨成干粉,以每份0.4g 分裝于15mL 離心管內(nèi),加入4mL 的PBS,用搖床搖10min,混成勻漿后在6℃、6 000 rpm下離心10min,留取上清液即獲得酶粗提液。將上清液每份1mL 分裝于1.5mL 離心管內(nèi),-80℃超低溫冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

MDA 的測定方法。吸取1mL 上清液置于玻璃試管中并加入2mL 0.5% TBA 沸水浴15min,然后進行冰上冷卻,冷卻后吸取1mL 置于1.5mL 離心管內(nèi),10 000rpm 下離心10min。取200μL 上清液測定OD450、OD532、OD600。對照組以PBS 代替酶液調(diào)零。

MDA 濃度和含量的計算公式:

其中,V1為提取液總體積(4mL);V2為測定用酶液體積(1mL);W 為樣品鮮重(0.4g)[15]。

POD 的測定。取50mL PBS 置于燒杯中,加入28μL 愈創(chuàng)木酚攪拌,直至愈創(chuàng)木酚溶解,再加入19μL 30%的H2O2,混勻后置于水浴鍋中34℃加熱10min。避光保存于4℃冰箱中備用。取2mL 混合液并加入20μL 酶液,測定OD470值3min 內(nèi)的變化。對照組以PBS 代替酶液調(diào)零。以每分鐘OD 值變化(升高)1 為1 個酶活性單位(U)。按下式計算活性:

其中,ΔOD470為反應(yīng)時間內(nèi)吸光度的變化;W為樣品鮮重(0.4g);t為反應(yīng)時間(3min);V1為提取酶液總體積(4mL);V2為測定時取用酶液體積(0.02mL)[16]。

CAT 的測定。4mL 離心管中各加入1.5mL 的PBS、1mL 蒸餾水,置于水浴鍋中25℃預(yù)熱5min,向每個離心管中加入0.3mL H2O2(0.1mol/L),混勻后備用。每管再加入200μL 酶液,測定OD240值3min 內(nèi)的變化。對照組以PBS 代替酶液調(diào)零。以每分鐘OD值變化(減小)0.1 為1 個酶活性單位(U)。按下式計算活性:

其中,ΔOD240為反應(yīng)時間內(nèi)吸光度的變化;W為樣品鮮重(0.4g);t為反應(yīng)時間(3min);V1為提取酶液總體積(4mL);V2為測定時取用酶液體積(0.2mL)[17]。

GR 的測定。4mL 離心管中各加入1 550μL 的PBS、140μL 的NADPH,260μL 的GSSG,混 勻后備用。每個離心管中加入300μL 酶液,測定OD340值2min 內(nèi)的變化。對照組以PBS 代替酶液調(diào)零。

在一定溫度下,每克樣本每分鐘催化1μmol NADPH 氧化為1 個酶活單位(U)。按下式計算活性:其中,ΔOD340為處理組反應(yīng)時間內(nèi)吸光度的變化;ΔOD對照為對照組反應(yīng)時間內(nèi)吸光度的變化;ε為NADPH 摩爾消光系數(shù)6.22×103L·mol/cm;d為比色皿內(nèi)徑(5.85mm);W為樣品鮮重(0.4g);t為反應(yīng)時間(2min);V1為提取酶液總體積(4mL);V3為反應(yīng)體系總體積(2.25mL);V2為測定時取用酶液體積(0.3mL)[18]。

1.4.2.4 蓖麻幼苗生長指標(biāo)測定測定處理組與對照組蓖麻幼苗的MDA 含量、POD 活性、CAT活性、GR 活性四項生理指標(biāo)。測定方法同種子生理指標(biāo)測定方法[15-18]。

2 結(jié)果與分析

2.1 蓖麻種子萌發(fā)對重金屬Cu2+的脅迫響應(yīng)

2.1.1 蓖麻種子萌發(fā)率使用濃度為0mg/L、120mg/L、240mg/L、360mg/L、480mg/L、600mg/L、720mg/L、840mg/L、960mg/L、1 080mg/L、1 200mg/L、1 320 mg/L 的CuSO4溶液分別處理蓖麻種子。蓖麻種子萌發(fā)率比較結(jié)果,見表1。

表1 種子萌發(fā)率比較結(jié)果

由表1 可知,雖然組間顯著性差異明顯,但Cu2+濃度的高低對2129 品系蓖麻種子的萌發(fā)率無明顯影響規(guī)律。

2.1.2 蓖麻萌發(fā)種子根的形態(tài)學(xué)圖1 為使用清水組與Cu2+濃度為840mg/L 的CuSO4溶液處理后的蓖麻種子萌發(fā)狀況,圖2 為萌發(fā)種子根長測量結(jié)果,圖3 為萌發(fā)種子根粗測量結(jié)果。

由圖1、圖2 可知,蓖麻種子的根長對Cu2+低濃度與高濃度存在不同的脅迫響應(yīng)。Cu2+濃度低時,可以促進蓖麻種子根的生長;Cu2+濃度高時,可以抑制蓖麻種子根的生長。由圖1、圖3可以看出,蓖麻種子根粗的生長受Cu2+的脅迫效應(yīng)不明顯。

2.1.3 蓖麻萌發(fā)種子的生理指標(biāo)使用濃度為0mg/L、840mg/L 的CuSO4溶液分別處理蓖麻種子后,處理組與對照組各項生理指標(biāo)測定結(jié)果,見圖4。

由圖4 可以看出,用Cu2+濃度為840mg/L 處理的蓖麻種子萌發(fā)后,處理組MDA 含量和CAT活性明顯高于對照組,但POD 活性和GR 活性明顯低于對照組。

2.2 蓖麻幼苗生長對重金屬Cu2+的脅迫響應(yīng)

2.2.1 蓖麻幼苗形態(tài)學(xué)統(tǒng)計清水對照組與Cu2+濃度為840mg/L 處理組各10 盆(每盆1 株),當(dāng)蓖麻幼苗長到四葉期的時候分別使用Cu2+濃度為840mg/L 的CuSO4 溶液及清水對兩組幼苗進行澆灌。圖5、圖6、圖7 分別為處理7d、15d、21d后的蓖麻幼苗生長狀況。其中,A 為植株對比照片,左為處理,右為對照(CK);B 為葉片對比照片,左為處理,右為對照(CK);C 為根部對比照片,左為處理,右為對照(CK)。

由圖5、圖6、圖7 可以看出,隨著處理時間的增加,處理組蓖麻植株高度逐漸矮于對照組,處理組根量明顯少于對照組,處理組葉脈褪綠逐漸加深。

2.2.2 蓖麻幼苗四葉期葉片生理指標(biāo)清水對照組與Cu2+濃度為840mg/L 處理組各10 盆(每盆1株),當(dāng)蓖麻幼苗長到四葉期的時候,使用濃度為840mg/L 的CuSO 溶液及清水對兩組幼苗進行澆灌。圖8 為蓖麻葉片的生理指標(biāo)測定結(jié)果。

由圖8 可知,當(dāng)使用Cu2+濃度為840mg/L的 CuSO4溶液澆灌蓖麻21d 后,隨著處理時間的增加,對照組MDA 含量同處理組相比,對照組MDA 含量在7d 至15d 升高,在15d 至21d 下降;處理組MDA 含量在7d 至15d 升高,在15d至21d 降低,但變化趨勢不如對照組明顯。對照組POD 活性同處理組相比,其變化趨勢大致相同,對照組與處理組P OD 活性在7d 至15d內(nèi)大幅度降低,在15d 至21d 略微升高,但處理組POD 活性升高趨勢較對照組明顯。對照組CAT 活性同處理組相比,對照組CAT 活性在7d 至15d 內(nèi)明顯降低,在15d 至21d 明 顯升高;處理組CAT 活性在7d 至15d 內(nèi)明顯升高,在15d 至21d 略微降低。對照組GR 活性同處理組相比,其變化趨勢有明顯不同,對照組GR 活性在7d 至15d 明顯降低,在15d 至21d 明 顯升高;處理組GR 活性在7d 至15d 內(nèi)明顯升高,在15d 至21d 明顯降低。蓖麻種子在Cu2+濃度為1 320mg/L 時仍未死亡,表明蓖麻種子對Cu2+具有很強的耐受性;蓖麻幼苗在Cu2+濃度為840mg/L 時處理至21d 仍未死亡,證明蓖麻幼苗對Cu2+也有很強的耐受性。

3 結(jié)果與分析

3.1 重金屬Cu2+對蓖麻種子萌發(fā)的影響

蓖麻種子萌發(fā)的過程需要大量的物質(zhì)與能量,儲存在種子中的有機物在種子萌發(fā)時會轉(zhuǎn)化成容易被胚吸收的形態(tài),從而為種子萌發(fā)提供能量[19],在其萌發(fā)階段,受外界因素影響較大,當(dāng)使用重金屬Cu2+對其進行脅迫時,蓖麻種子的萌發(fā)受到影響,Cu2+通過抑制蓖麻種子內(nèi)酶的活性,從而抑制蓖麻種子內(nèi)有機物的轉(zhuǎn)化,使蓖麻種子萌發(fā)受到抑制。此次種子萌發(fā)率實驗在設(shè)計時未考慮到三次重復(fù),因此在經(jīng)過Cu2+濃度為840mg/L的CuSO4溶液處理蓖麻種子后,雖然在組間表現(xiàn)出差異性顯著卻未能表現(xiàn)出重金屬Cu2+對蓖麻種子萌發(fā)率的影響規(guī)律,但在測量其根長時卻發(fā)現(xiàn)不同Cu2+濃度處理組萌發(fā)種子的根長與對照組相比有明顯不同,根據(jù)蓖麻萌發(fā)的形態(tài)學(xué)特征和生理指標(biāo)變化可以判斷重金屬Cu2+的脅迫可能有:抑制種子內(nèi)酶的合成,從而抑制種子內(nèi)有機物的轉(zhuǎn)化。POD 活性、GR 活性顯著性減少,可能是重金屬Cu2+抑制種子細(xì)胞內(nèi)的過氧化物酶和谷胱甘肽還原酶活性,進而抑制了種子萌發(fā)后根的生長。通過查閱文獻(xiàn)可知,水稻在Cu2+濃度為6.4mg/L 進行種子萌發(fā)處理時會出現(xiàn)種子死亡現(xiàn)象,小麥在Cu2+濃度為32mg/L 進行種子萌發(fā)處理時會出現(xiàn)種子死亡現(xiàn)象[20]。通過蓖麻與水稻種子、小麥種子對比,可以看出蓖麻對Cu2+脅迫具有很強的耐受性。

3.2 重金屬Cu2+對蓖麻幼苗生長的影響

蓖麻生長過程中會通過葉片進行光合作用,而根系吸收養(yǎng)分為蓖麻生長提供必需能量,因此,蓖麻產(chǎn)量會受其幼苗的生長狀態(tài)影響[21]。根據(jù)蓖麻幼苗的形態(tài)學(xué)特征和生理指標(biāo)變化可以判斷Cu2+的脅迫可能有:重金屬Cu2+污染土壤后,蓖麻根部開始吸附Cu2+并在體內(nèi)運輸,從而導(dǎo)致植株代謝過程紊亂,葉片內(nèi)葉綠素減少或失去活性,葉脈失綠,光合作用受到影響[22],其根系吸收營養(yǎng)物質(zhì)的能力也會有所下降,造成幼苗生長期營養(yǎng)不良。蓖麻幼苗期是受重金屬Cu2+脅迫的最顯著時期[23],處理組CAT 活性和GR 活性與對照組相比顯著性增加,表明蓖麻的抗逆性增強。Cu2+對蓖麻幼苗生長的脅迫原理可能與脅迫種子的原理相同,通過抑制植株過氧化物酶、過氧化氫酶及谷胱甘肽還原酶的合成,從而抑制植株有機物的轉(zhuǎn)化[24]。因本次盆栽實驗中重金屬Cu2+濃度雖達(dá)到840mg/L 卻未出現(xiàn)植株死亡現(xiàn)象,故認(rèn)為2129 品系蓖麻是有重金屬抗性并具有一定重金屬積累作用的特色經(jīng)濟作物[25]。通過查閱文獻(xiàn)可知,水稻幼苗對Cu2+耐受最大濃度為10mg/L,Cu2+濃度越高,對水稻幼苗生長的抑制作用越大[26];小麥幼苗對Cu2+耐受最大濃度為100mg/L,Cu2+濃度越高,對小麥幼苗生長的抑制作用越大[27]。通過蓖麻與水稻、小麥幼苗相比,可以看出蓖麻對Cu2+脅迫具有很強的耐受性。

4 結(jié)論

蓖麻種子和幼苗對Cu2+的脅迫響應(yīng),實驗結(jié)果如下:種子萌發(fā)階段,萌發(fā)率在組間雖表現(xiàn)出明顯差異但未表現(xiàn)出明顯脅迫規(guī)律;根長隨Cu2+濃度的增加整體呈現(xiàn)下降的趨勢;根粗隨濃度的增加無顯著變化,但使用Cu2+濃度為840mg/L 的CuSO4溶液對蓖麻種子進行萌發(fā)處理時,蓖麻種子對Cu2+表現(xiàn)出最大抗性;Cu2+濃度為840mg/L時,蓖麻萌發(fā)根長度最接近平均值,對其進行四項生理指標(biāo)測定,發(fā)現(xiàn)處理組種子MDA 含量和CAT 活性明顯高于對照組,但POD 活性和GR 活性明顯低于對照組。幼苗生長階段,用Cu2+濃度為840mg/L 的CuSO4溶液處理后,隨處理時間的增加,處理組植株高度逐漸矮于對照組;處理組葉片與對照組相比葉脈明顯褪綠;處理組根量明顯少于對照組;生理指標(biāo)方面,處理組和對照組MDA 含量、POD 活性的變化趨勢相同,CAT 活性、GR 活性變化趨勢相反,MDA 含量、CAT 活性以及GR 活性升至最大值,POD 活性降至最小值。由此可得出結(jié)論,蓖麻主要發(fā)揮其超累積優(yōu)勢,對重金屬實現(xiàn)強有效的解毒及累積,所以蓖麻完全可以為修復(fù)重金屬污染及環(huán)境治理發(fā)揮特殊優(yōu)勢。

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