劉文豪 田琴 余渝 王旭文 馬麒 司愛(ài)君 孔憲輝
摘要:環(huán)狀核苷酸門控通道(CNGC)基因家族是非選擇性陽(yáng)離子通道基因家族之一,在與植物發(fā)育和環(huán)境脅迫等有關(guān)的生理生化過(guò)程中起著至關(guān)重要的作用,但是目前尚無(wú)陸地棉CNGC基因家族的全基因組鑒定和分析?;谝阎臄M南芥CNGC基因家族成員序列信息,以生物信息學(xué)方法分析陸地棉基因組中CNGC家族成員的理化性質(zhì)、系統(tǒng)發(fā)育、染色體定位和差異表達(dá)情況。結(jié)果表明,共鑒定出33個(gè)GhCNGC基因,它們不均勻地分布在A、D染色體亞組上,其中15個(gè)基因分布在A染色體亞組上,18個(gè)基因分布在D染色體亞組上。系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果表明,GhCNGC基因家族被分為4個(gè)主要組,由于在進(jìn)化過(guò)程中不均等地?cái)U(kuò)增,Ⅳ組又分為Ⅳa和Ⅳb組。同組陸地棉、擬南芥的CNGC基因顯示出相似的保守基序和基因結(jié)構(gòu),尤其是同源性越近,相似度越高。GhCNGC基因的表達(dá)譜以組織特異性模式表達(dá),多數(shù)基因在根、葉中的表達(dá)量較高。研究結(jié)果使人們?cè)黾恿藢?duì)陸地棉和其他植物中CNGC基因家族的了解。
關(guān)鍵詞:CNGC;基因家族;全基因組;陸地棉;染色體定位;差異表達(dá)
中圖分類號(hào):S562.01 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2021)24-0049-07
收稿日期:2021-05-10
基金項(xiàng)目:新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)科技攻關(guān)項(xiàng)目(編號(hào):2016AC027);新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)重點(diǎn)領(lǐng)域創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)建設(shè)計(jì)劃(編號(hào):2017CB011)。
作者簡(jiǎn)介:劉文豪(1992—),男,安徽界首人,碩士,助理研究員,主要從事棉花分子育種研究。E-mail:whylwh2016@163.com。
通信作者:孔憲輝,碩士,研究員,主要從事棉花育種研究。E-mail:xjkxh920@163.com。
植物中的Ca2+通過(guò)鈣離子傳導(dǎo)通道進(jìn)行信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)是一種重要的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制。信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)有助于植物生長(zhǎng)發(fā)育、病原體防御及植物對(duì)激素、光和鹽脅迫的反應(yīng)[1]。環(huán)狀核苷酸門控通道(CNGC)是可滲透Ca2+的陽(yáng)離子轉(zhuǎn)運(yùn)通道,調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)并應(yīng)對(duì)生物和非生物脅迫。CNGC位于細(xì)胞質(zhì)膜或核膜,由Ca2+/鈣調(diào)蛋白(CaM)和環(huán)狀單磷酸核苷酸(cNMPs)等二級(jí)信使從細(xì)胞內(nèi)部控制[2]。在植物中,CNGC由6個(gè)跨膜(TM)域和介于第5、第6個(gè)TM域之間的1個(gè)孔區(qū)域組成。環(huán)狀核苷酸結(jié)合結(jié)構(gòu)域(CNBD)是一個(gè)高度保守的區(qū)域,并有1個(gè)磷酸鹽結(jié)合盒(PBC)和1個(gè)鉸鏈區(qū)。CNGC通過(guò)直接結(jié)合環(huán)狀核苷酸而被激活,當(dāng)鈣調(diào)蛋白(CaM)結(jié)合到CaM結(jié)合域時(shí)會(huì)被抑制[3]。目前,生物信息學(xué)工具已在水稻[4]、玉米[5]、擬南芥[6]、甘藍(lán)[7]、白菜[8]、番茄[9]中用于識(shí)別CNGC基因家族成員。
之前的研究發(fā)現(xiàn),CNGC是植物發(fā)育的關(guān)鍵組成部分。目前,大多數(shù)CNGC已通過(guò)遺傳學(xué)方法得到表征,并且它們已顯示出與植物生理、分子功能有關(guān)的重要作用,例如信號(hào)通路、植物發(fā)育和對(duì)環(huán)境脅迫的響應(yīng)中涉及的多個(gè)生理過(guò)程。擬南芥環(huán)核苷酸門控通道2(AtCNGC2)參與擬南芥表皮細(xì)胞中茉莉酸(JA)誘導(dǎo)的質(zhì)外體Ca2+流入[10],AtCNGC4可滲透K+、Na+,并被環(huán)磷酸鳥苷(cGMP)、環(huán)磷酸腺苷(cAMP)激活[11],AtCNGC7、AtCNGC8基因?qū)π坌陨沉Φ淖饔弥陵P(guān)重要[12],AtCNGC16、AtCNGC18基因可參與花粉發(fā)育[13],AtCNGC6、AtCNGC19、AtCNGC20基因參與了非生物脅迫反應(yīng)[14]。
近年來(lái),人們對(duì)植物中的CNGC基因家族進(jìn)行了研究,然而,關(guān)于陸地棉(Gossypium hirsutum Linn.)CNGC(GhCNGC)基因家族的系統(tǒng)鑒定、起源和功能的研究卻很少。本研究利用陸地棉全基因組序列信息、擬南芥CNGC家族的研究信息及綜合生物信息學(xué)分析技術(shù)對(duì)陸地棉中CNGC進(jìn)行全基因組鑒定來(lái)完成每個(gè)CNGC基因家族成員的深入分析,包括對(duì)編碼蛋白的生理、生化特性分析。此外,本研究還分析了CNGC家族成員的表達(dá)方式,以闡明其對(duì)生物、非生物脅迫響應(yīng)的機(jī)制,并鑒定出可能對(duì)育種有用的新基因。
1 材料與方法
1.1 陸地棉CNGC基因家族成員的篩選鑒定
陸地棉TM-1的基因組數(shù)據(jù)來(lái)自南京農(nóng)業(yè)大學(xué)Cotton Research Institute網(wǎng)站 (http://mascotton.njau.edu.cn/),試驗(yàn)時(shí)間為2020年8月,試驗(yàn)地點(diǎn)為新疆維吾爾自治區(qū)石河子市新疆農(nóng)墾科學(xué)院棉花研究所。以擬南芥CNGC基因家族成員的身份標(biāo)志(ID)為探針在陸地棉TM-1基因組注釋文件中查找陸地棉CNGC家族ID,用虛擬機(jī)Bio-Linux 80運(yùn)行HMM-Search搜索結(jié)構(gòu)域,并提取目標(biāo)基因序列。
1.2 陸地棉CNGC基因家族的理化性質(zhì)分析
通過(guò)ExPASY-ProtParam在線網(wǎng)站(https://web.expasy.org/protparam)對(duì)陸地棉CNGC蛋白家族氨基酸序列的分子式、總原子數(shù)、親水性平均值、分子質(zhì)量、蛋白不穩(wěn)定系數(shù)等進(jìn)行預(yù)測(cè)分析。通過(guò)SOPMA在線網(wǎng)站(https://npsa-prabi.ibcp.fr)分析陸地棉CNGC蛋白家族的二級(jí)結(jié)構(gòu)。
1.3 陸地棉CNGC基因家族進(jìn)化樹的構(gòu)建
將陸地棉、擬南芥的CNGC蛋白序列以fasta格式保存在1個(gè)文件中,用默認(rèn)參數(shù)運(yùn)行MEGA 7.0軟件的ClustalW命令,進(jìn)行序列對(duì)齊,采用鄰接法(neighbor-joining,NJ)進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育重建,以自舉法(bootstrap method)進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育計(jì)算,引導(dǎo)復(fù)制次數(shù)為1 000次,輸出格式為Newick,通過(guò)Evolview在線網(wǎng)站(https://www.evolgenius.info/evolview/)進(jìn)行進(jìn)化樹的編輯。
1.4 陸地棉CNGC基因家族染色體的定位及結(jié)構(gòu)分析
根據(jù)陸地棉基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中CNGC基因家族成員在染色體上的區(qū)域分布和染色體長(zhǎng)度,通過(guò)Map Gene 2 Chrom在線網(wǎng)站(http://mg2c.iask.in/mg2c_v2.1/)繪制染色體分布圖。通過(guò)MEME在線網(wǎng)站(http://meme-suite.org/)進(jìn)行motif分析,搜索得到motif的總數(shù)為10個(gè)。用本地軟件TBtools將CNGC基因家族進(jìn)化樹、MEME分析圖和基因結(jié)構(gòu)圖進(jìn)行合并分析。
1.5 陸地棉CNGC基因家族的差異表達(dá)分析
從美國(guó)國(guó)家生物信息中心(NCBI)數(shù)據(jù)庫(kù)中下載TM-1標(biāo)準(zhǔn)系陸地棉轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)包PRJNA248163,以FPKM值作為參數(shù),將FPKM值低于8的分為一組,高于8的分為另一組。用TB-tools軟件進(jìn)行基因表達(dá)圖譜的繪制。
2 結(jié)果與分析
2.1 陸地棉CNGC基因家族的鑒定分析
以已知的20個(gè)擬南芥CNGC基因家族成員的蛋白序列作為參考序列,在陸地棉標(biāo)準(zhǔn)系TM-1全基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì)篩選,最終獲得33個(gè)環(huán)狀核苷酸門控通道(CNGC)基因家族成員。由表1可以看出,陸地棉環(huán)狀核苷酸門控通道基因家族成員基因編碼區(qū)(CDS)序列全長(zhǎng)為942~3 174 bp,編碼氨基酸313~1 057個(gè),脂肪指數(shù)為77.03~102.46,平均親水性為-0.673~0.097,都屬于親水性蛋白;氨基酸殘基分子量為36.54~121.04 ku,理論等電點(diǎn)為689~9.59。
2.2 陸地棉CNGC基因家族的二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)及蛋白的穩(wěn)定性分析
由表2可以看出,陸地棉CNGC基因家族成員的二級(jí)結(jié)構(gòu)均由α-螺旋、延伸鏈、β-轉(zhuǎn)角、無(wú)規(guī)卷曲4種結(jié)構(gòu)組成,并且α-螺旋和無(wú)規(guī)卷曲是主要組成部分,所占比例最大。延伸鏈、β-轉(zhuǎn)角包含的氨基酸殘基數(shù)少,在二級(jí)結(jié)構(gòu)中所占比例較小。根據(jù)蛋白不穩(wěn)定指數(shù)統(tǒng)計(jì)結(jié)果發(fā)現(xiàn),該家族成員的蛋白不穩(wěn)定指數(shù)為39.11~57.22,僅GhCNGC29為穩(wěn)定蛋白(穩(wěn)定指數(shù)<40),其余的32個(gè)家族成員均為不穩(wěn)定蛋白。
2.3 擬南芥與陸地棉CNGC基因家族的系統(tǒng)發(fā)育分析
本研究從陸地棉標(biāo)準(zhǔn)系TM-1基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中篩選得到33個(gè)GhCNGC基因,根據(jù)這些基因在染色體上的分布情況,將這些基因命名為GhCNGC1~GhCNGC33。依據(jù)擬南芥AtCNGC基因家族的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系,將GhCNGC基因家族的33個(gè)成員與AtCNGC基因家族的20個(gè)成員的蛋白序列構(gòu)建成系統(tǒng)進(jìn)化樹。由圖1可以看出,GhCNGC基因家族成員的聚類情況與擬南芥相似,分為4個(gè)組群,分別為Group I、Group Ⅱ、Group Ⅲ、Group Ⅳ,其中Group Ⅳ又分為Group Ⅳ a和Group Ⅳ b。Group I含有13個(gè)成員,包括7個(gè)GhCNGC(GhCNGC1、GhCNGC2、GhCNGC3、GhCNGC4、GhCNGC19、GhCNGC20、GhCNGC21)和6個(gè)AtCNGC(AtCNGC1、AtCNGC3、AtCNGC10、AtCNGC11、AtCNGC12、AtCNGC13);Group Ⅱ含有6個(gè)GhCNGC(GhCNGC13、GhCNGC14、GhCNGC15、GhCNGC16、GhCNGC17、GhCNGC18)和5個(gè)AtCNGC(AtCNGC5、AtCNGC6、AtCNGC7、AtCNGC8、AtCNGC9);Group Ⅲ含有10個(gè)GhCNGC (GhCNGC22、GhCNGC23、GhCNGC24、GhCNGC25、GhCNGC26、GhCNGC27、GhCNGC28、 GhCNGC29、 GhCNGC30、GhCNGC31)和5個(gè)AtCNGC(AtCNGC14、AtCNGC15、AtCNGC16、AtCNGC17、AtCNGC18);Group Ⅳa含有2個(gè)GhCNGC(GhCNGC32、GhCNGC33)和2個(gè)AtCNGC(AtCNGC19、AtCNGC20);Group Ⅳb含有8個(gè)GhCNGC(GhCNGC5、GhCNGC6、GhCNGC7、GhCNGC8、GhCNGC9、GhCNGC10、GhCNGC11、GhCNGC12)和2個(gè)AtCNGC(AtCNGC2、AtCNGC4)。
2.4 陸地棉CNGC家族成員的染色體定位
根據(jù)陸地棉標(biāo)準(zhǔn)系TM-1的基因組數(shù)據(jù)庫(kù)資源,通過(guò)網(wǎng)站MapGene2Chrom進(jìn)行在線GhCNGC家族成員的染色體定位分析[15]。將GhCNGC家族的33個(gè)成員定位在19條染色體上,并繪制該家族的基因圖譜。結(jié)果(圖2)顯示,分布在D基因組亞組的基因最多,有18個(gè),而這18個(gè)基因主要分布在染色體的兩端,分布在上端的基因比分布在下端的基因多,分布在中間部位的基因僅有3個(gè)。分布在A基因組亞組的基因相對(duì)較少,有15個(gè),這15個(gè)基因依然主要分布在染色體的兩端。分布在D04、D05、D09和A05染色體上的基因最多,分別為3、3、3、6個(gè),而其他染色體上僅分布1~2個(gè)該家族基因成員。
2.5 陸地棉CNGC的系統(tǒng)進(jìn)化和基因結(jié)構(gòu)分析
通過(guò)MEME在線網(wǎng)站[16]及TB-tools軟件[17]分析GhCNGC家族成員的保守基序、內(nèi)含子和外顯子的數(shù)量及分布。由圖3可以看出,同一亞家族成員分布在同一進(jìn)化分支上,與圖1中的進(jìn)化分析結(jié)果相同。分析motif的數(shù)量及位置發(fā)現(xiàn),同一組成員的motif數(shù)量基本相同,且分布的位置較接近,在不同組之間存在差異。該家族33個(gè)成員中的24個(gè)成員均含有10個(gè)motif,8個(gè)成員的motif數(shù)量為9個(gè),1個(gè)成員的motif數(shù)量為5個(gè)。而motif數(shù)量為9個(gè)的成員大多分布在Ⅳ組,可能由于Ⅳ組與其他3組的親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。有趣的是,Ⅱ組中的GhCNGC16僅有5個(gè)motif基序。從在內(nèi)含子與外顯子的分布情況看出,多數(shù)同一組成員的內(nèi)含子及外顯子數(shù)量較為接近,I組7個(gè)成員外顯子數(shù)為6~8個(gè);Ⅱ組6個(gè)成員的外顯子數(shù)量為3~7個(gè),除GhCNGC之外,均為7個(gè)外顯子;Ⅲ組的外顯子數(shù)量為5~11個(gè);Ⅳ組的外顯子數(shù)量為7~13個(gè), 但是Ⅳ a的2個(gè)成員的外顯子數(shù)量分別為12、13個(gè),Ⅳ b的成員中,5個(gè)外顯子數(shù)量為7個(gè),3個(gè)外顯子數(shù)量為8個(gè)。而且同一組成員的外顯子、內(nèi)含子分布情況類似,差異顯著性小,表明了進(jìn)化的保守性。不同組之間的差異較為顯著,尤其是Ⅳ組的成員之間及其與其他組相比較差異較大。
2.6 陸地棉CNGC家族成員表達(dá)分析
從NCBI網(wǎng)站下載陸地棉TM-1的PRJNA248163數(shù)據(jù)資源,分析GhCNGC家族基因的表達(dá)模式,選取根、莖、葉、雄蕊、雌蕊、花托、花萼和花瓣等8個(gè)組織進(jìn)行預(yù)測(cè)。圖4-a中16個(gè)基因的表達(dá)量較低,圖4-b中17個(gè)基因的表達(dá)量較高。不同GhCNGC家族基因在不同組織中的表達(dá)量存在差異,GhCNGC10在莖、花托中的表達(dá)量高,GhCNGC11在根、葉、花托中的表達(dá)量高,GhCNGC17在莖中的表達(dá)量高,GhCNGC26在雄蕊中的表達(dá)量高,GhCNGC29在花萼中的表達(dá)量高,GhCNGC27在雌蕊中的表達(dá)量高。GhCNGC2、GhCNGC11、GhCNGC15、GhCNGC17、GhCNGC26和GhCNGC30在根中的表達(dá)量相對(duì)較高。由此可見,GhCNGC10、GhCNGC11、GhCNGC27、GhCNGC29可能參與陸地棉的生殖過(guò)程,GhCNGC17、GhCNGC2、GhCNGC15可能參與到陸地棉的營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)過(guò)程,而GhCNGC10、GhCNGC11、GhCNGC17、GhCNGC29等基因在多個(gè)組織中的表達(dá)量均較高,可能這些基因具有一因多效的特點(diǎn)。
3 討論
環(huán)核苷酸門控通道是配體門控、鈣離子滲透的二價(jià)陽(yáng)離子選擇性通道,在非生物脅迫信號(hào)傳導(dǎo)相關(guān)的信號(hào)傳導(dǎo)過(guò)程中具有重要的生物學(xué)功能。本研究基于電生理和異源表達(dá)分析,用正向遺傳方法明確了擬南芥中的AtCNGC2、AtCNGC4、AtCNGC11和AtCNGC12參與了植物免疫過(guò)程[18]。據(jù)報(bào)道,其生物學(xué)作用在防御反應(yīng)、發(fā)育和離子體內(nèi)平衡方面具有重要作用。目前,棗樹[19]、水稻[20]、梨[2]、煙草[21]、小麥[22]等植物的CNGC蛋白均有相應(yīng)研究。雖然CNGC在植物生存及對(duì)環(huán)境的脅迫響應(yīng)中起著關(guān)鍵作用,但人們對(duì)陸地棉中CNGC家族所扮演的角色和功能知之甚少。陸地棉是全球重要的經(jīng)濟(jì)作物,本研究在陸地棉TM-1全基因組數(shù)據(jù)庫(kù)[23]中篩選鑒定獲得33個(gè)GhCNGC蛋白。通過(guò)分析確定33個(gè)GhCNGC蛋白的生理生化特征,陸地棉環(huán)狀核苷酸門控通道基因家族成員CDS序列全長(zhǎng)為942~3 174 bp,編碼的氨基酸數(shù)量為313~1 057個(gè)。脂肪指數(shù)為77.03~102.46,平均親水性為-0.673~0.097,都屬于親水性蛋白。理論等電點(diǎn)為6.89~9.59,且等電點(diǎn)、蛋白質(zhì)電荷對(duì)于溶解度,亞細(xì)胞定位和相互作用非常重要,這取決于直系同源物之間的插入和缺失及有機(jī)體的生態(tài)[24]。根據(jù)蛋白不穩(wěn)定指數(shù)統(tǒng)計(jì)結(jié)果可知,該家族成員的蛋白不穩(wěn)定指數(shù)為39.11~57.22,僅GhCNGC29為穩(wěn)定蛋白(穩(wěn)定指數(shù)<40),其余32個(gè)家族成員均為不穩(wěn)定蛋白。陸地棉是四倍體,具有A、D 2個(gè)亞基因組,染色體定位分析發(fā)現(xiàn),這33個(gè)GhCNGC蛋白有15個(gè)存在于A亞基因組上,18個(gè)存在于D亞基因組上。由系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果可知,GhCNGC家族成員分為I、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ等4個(gè)組,第Ⅳ組又分為Ⅳ a、Ⅳ b 2個(gè)亞組,與擬南芥CNGC家族分類相似[25]。這些數(shù)據(jù)表明,基因在進(jìn)化過(guò)程中發(fā)生了分離。不同分組中包含的家族成員數(shù)量不同,可能由于在基因家族進(jìn)化過(guò)程中,基因復(fù)制、基因丟失扮演著重要角色,從而創(chuàng)造新的基因和不同的功能[26],以優(yōu)化植物的適應(yīng)性。分析基因差異表達(dá)圖譜發(fā)現(xiàn),GhCNGC10、GhCNGC11、GhCNGC27、GhCNGC29在花托、花萼、雌蕊中表現(xiàn)出差異表達(dá),表明它們可能參與到陸地棉的生殖過(guò)程中。而GhCNGC10、GhCNGC11、GhCNGC17、GhCNGC29等基因在多個(gè)組織中均有較高表達(dá)量,可能由于這些基因參與了多個(gè)代謝通路。
本研究以生物信息學(xué)和比較基因組學(xué)方法,分析了關(guān)于結(jié)構(gòu)域,外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)以及系統(tǒng)進(jìn)化樹和表達(dá)分析的全面信息。已知植物CNGC對(duì)多種非生物刺激起著關(guān)鍵作用,包括冷脅迫、鹽脅迫、激素應(yīng)答、發(fā)育和光信號(hào)傳導(dǎo)等[27],這些信息可以用于分析蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò),可為改善陸地棉的抗逆性、分子育種、纖維品質(zhì)等提供重要參考。
4 結(jié)論
綜上所述,本研究通過(guò)生物信息學(xué)手段從陸地棉基因組中全面鑒定出33個(gè)CNGC基因,分別位于A、D亞基因組中的CNGC家族中,分別有15、18個(gè)成員。本研究還分析了系統(tǒng)發(fā)育、保守基序和外顯子等,以轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)為基礎(chǔ)分析了該家族成員在不同組織中的差異性表達(dá)??傮w來(lái)看,對(duì)陸地棉基因組中GhCNGC基因家族的分析對(duì)植物CNGC功能研究提供了綜合概述,并為進(jìn)一步闡明GhCNGC基因家族基因間相互作用的機(jī)制提供了前景。
參考文獻(xiàn):
[1]DeFalco T A,Marshall C B,Munro K,et al. Multiple calmodulin-binding sites positively and negatively regulate Arabidopsis CYCLIC NUCLEOTIDE-GATED CHANNEL12[J]. Plant Cell,2016,28(7):1738-1751.
[2]Chen J Q,Yin H,Gu J P,et al. Genomic characterization,phylogenetic comparison and differential expression of the cyclic nucleotide-gated channels gene family in pear (Pyrus bretchneideri Rehd.)[J]. Genomics,2015,105(1):39-52.
[3]Zelman A K,Dawe A,Berkowitz G A. Identification of cyclic nucleotide gated channels using regular expressions[J]. Methods in Molecular Biology,2013,1016:207-224.
[4]Nawaz Z,Kakar K U,Saand M A,et al. Cyclic nucleotide-gated ion channel gene family in rice,identification,characterization and experimental analysis of expression response to plant hormones,biotic and abiotic stresses[J]. BMC Genomics,2014,15(1):853.
[5]Hao L D,Qiao X L. Genome-wide identification and analysis of the CNGC gene family in maize[J]. Peer J,2018,6:e5816.
[6]Moon J Y,Belloeil C,Ianna M L,et al. Arabidopsis CNGC family members contribute to heavy metal ion uptake in plants[J]. International Journal of Molecular Sciences,2019,20(2):413.
[7]Kakar K U,Nawaz Z,Kakar K,et al. Comprehensive genomic analysis of the CNGC gene family in Brassica oleracea:novel insights into synteny,structures,and transcript profiles[J]. BMC Genomics,2017,18(1):869.
[8]Li Q Q,Yang S Q,Ren J,et al. Genome-wide identification and functional analysis of the cyclic nucleotide-gated channel gene family in Chinese cabbage[J]. 3 Biotech,2019,9(3):114.
[9]Saand M A,Xu Y P,Munyampundu J P,et al. Phylogeny and evolution of plant cyclic nucleotide-gated ion channel (CNGC) gene family and functional analyses of tomato CNGCs[J]. DNA Research,2015,22(6):471-483.
[10]Lu M,Zhang Y Y,Tang S K,et al. AtCNGC2 is involved in jasmonic acid-induced calcium mobilization[J]. Journal of Experimental Botany,2016,67(3):809-819.
[11]Ali R,Ma W,Lemtiri-Chlieh F,et al. Death don’t have no mercy and neither does calcium:Arabidopsis CYCLIC NUCLEOTIDE GATED CHANNEL2 and innate immunity[J]. Plant Cell,2007,19(3):1081-1095.
[12]Tunc-Ozdemir M,Rato C,Brown E,et al. Cyclic nucleotide gated channels 7 and 8 are essential for male reproductive fertility[J]. PLoS One,2013,8(2):e55277.
[13]Tunc-Ozdemir M,Tang C,Ishka M R,et al. A cyclic nucleotide-gated channel (CNGC16) in pollen is critical for stress tolerance in pollen reproductive development[J]. Plant Physiology,2013,161(2):1010-1020.
[14]Gao F,Han X W,Wu J H,et al. A heat-activated calcium-permeable channel-Arabidopsis cyclic nucleotide-gated ion channel 6-is involved in heat shock responses[J]. Plant Journal,2012,70(6):1056-1069.
[15]晁江濤,孔英珍,王 倩,等. MapGene2Chrom基于Perl和SVG語(yǔ)言繪制基因物理圖譜[J]. 遺傳,2015,35(1):91-97.
[16]Bailey T L,Boden M,Buske F A,et al. MEME SUITE:tools for motif discovery and searching[J]. Nucleic Acids Research,2009,37:202-208.
[17]Chen C J,Chen H,Zhang Y,et al. TBtools:an integrative Toolkit developed for interactive analyses of big biological data[J]. Molecular Plant,2020,13(8):1194-1202.
[18]Moeder W,Urquhart W,Ung H,et al. The role of cyclic nucleotide-gated ion channels in plant immunity[J]. Molecular Plant,2011,4(3):442-452.
[19]Wang L X,Li M,Liu Z G,et al. Genome-wide identification of CNGC genes in Chinese jujube (Ziziphus jujuba Mill.) and ZjCNGC2 mediated signalling cascades in response to cold stress[J]. BMC Genomics,2020,21(1):191.
[20]Cui Y M,Lu S,Li Z,et al. CYCLIC NUCLEOTIDE-GATED ION CHANNELs 14 and 16 promote tolerance to heat and chilling in rice[J]. Plant Physiology,2020,183(4):1794-1808.
[21]Nawaz Z,Kakar K U,Ullah R,et al. Genome-wide identification,evolution and expression analysis of cyclic nucleotide-gated channels in tobacco (Nicotiana tabacum L.)[J]. Genomics,2019,111(2):142-158.
[22]Guo J,Islam M A,Lin H C,et al. Genome-wide identification of cyclic nucleotide-gated ion channel gene family in wheat and functional analyses of TaCNGC14 and TaCNGC16[J]. Front Plant Sci,2018,9:18.
[23]Zhang T Z,Hu Y,Jiang W K,et al. Sequencing of allotetraploid cotton (Gossypium hirsutum L. acc. TM-1) provides a resource for fiber improvement[J]. Nature Biotechnology,2015,33(5):531-537.
[24]Khaldi N,Shields D C. Shift in the isoelectric-point of milk proteins as a consequence of adaptive divergence between the milks of mammalian species[J]. Biol Direct,2011,6:40.
[25]Mser P,Thomine S,Schroeder J I,et al. Phylogenetic relationships within cation transporter families of Arabidopsis[J]. Plant Physiology,2001,126(4):1646-1667.
[26]Chauve C,Doyon J P,El-Mabrouk N. Gene family evolution by duplication,speciation,and loss[J]. Journal of Computational Biology,2008,15(8):1043-1062.
[27]Fu Y P,Duan X Y,Tang C L,et al. TaADF7,an actin-depolymerizing factor,contributes to wheat resistance against Puccinia striiformis f. sp. tritici[J]. Plant J,2014,78(1):16-30.