陶佳玲,樊慧敏,2,唐濤,邵啟祥,丁慶
(1.江蘇大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013;2.江蘇大學(xué)附屬人民醫(yī)院檢驗科,江蘇 鎮(zhèn)江 212002)
T細(xì)胞免疫球蛋白及黏蛋白結(jié)構(gòu)域蛋白-4(T-cell immunoglobulin and mucin domain containing protein-4,TIM-4)表達(dá)于巨噬細(xì)胞和B細(xì)胞等細(xì)胞表面,在抗原免疫或感染過程中促進(jìn)抗原特異性T細(xì)胞擴增,但在免疫應(yīng)答后期通過清除抗原特異性T細(xì)胞調(diào)節(jié)適應(yīng)性免疫應(yīng)答[1]。此外,TIM-4在炎癥期間促進(jìn)效應(yīng)T細(xì)胞增殖分化,介導(dǎo)自身免疫應(yīng)答和移植排斥反應(yīng)[2]??筎IM-4單克隆抗體通過阻斷TIM-4分子,可誘導(dǎo)體內(nèi)初始CD4+T細(xì)胞轉(zhuǎn)化為Foxp3+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞,從而提高同種異體移植物存活時間[3]。TIM-4作為跨膜蛋白,因其胞質(zhì)內(nèi)部分缺失酪氨酸殘基,所以并不能直接傳導(dǎo)胞內(nèi)信號[4]。因此,抗TIM-4單克隆抗體與TIM-4結(jié)合后,不能直接激活或抑制其細(xì)胞內(nèi)信號傳導(dǎo),所以抗TIM-4單克隆抗體可理解為阻斷性抗體。在已有的報道中,通常利用抗TIM-4單克隆抗體治療實驗性移植物排斥和自身免疫性疾病模型[5-6]。
微小RNA(microRNA,miRNA)是一類內(nèi)源性長度約22 nt的單鏈非編碼RNA,通常與靶基因mRNA的3′UTR互補結(jié)合,抑制翻譯或降解靶mRNA[7]。研究表明,在腫瘤和自身免疫性疾病患者中miR-21表達(dá)上調(diào)[8-9]。miR-21可靶向結(jié)合p35 mRNA,抑制其表達(dá),發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)功能[7]。我們前期研究證實,敲低miR-21可誘導(dǎo)調(diào)節(jié)性B細(xì)胞產(chǎn)生IL-10,有效抑制同種異體移植排斥反應(yīng)[10]。巨噬細(xì)胞根據(jù)活化狀態(tài)可分為M1和M2型:M1是經(jīng)典活化的巨噬細(xì)胞,具有殺傷微生物和抗腫瘤的作用;M2是旁路活化的巨噬細(xì)胞,與抗炎、組織重塑和修復(fù)有關(guān)[11]。miR-21是巨噬細(xì)胞中含量最豐富的一種miRNA[12]。研究表明,通過抑制miR-21表達(dá)可抑制M1型炎性巨噬細(xì)胞,促進(jìn)向調(diào)節(jié)性M2型巨噬細(xì)胞極化,減輕同種異體移植排斥反應(yīng)[13]。但是,TIM-4是否能夠通過調(diào)控miR-21誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞極化,減輕免疫排斥反應(yīng)尚不清楚。因此,本研究通過抗TIM-4單克隆抗體阻斷TIM-4后,檢測脾臟和腹腔中M1/M2極化情況以及miR-21、炎癥性和抑制性細(xì)胞因子的表達(dá),探討TIM-4信號通路對同種異體免疫排斥的影響。
6~8周齡C57BL/6雄性小鼠12只(No.201907363);6~8周齡BALB/c雄性小鼠2只(No.201907408),購于江蘇大學(xué)實驗動物中心。
胎牛血清(美國Gibco公司);Trizol、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、SYBR Green試劑盒均為日本TaKaRa公司產(chǎn)品;異丙醇、無水乙醇和三氯甲烷購自上海國藥集團;S1000TMThermal Cycler PCR儀和CFX-96定量PCR儀均為美國Bio-Rad公司產(chǎn)品;F4/80-FITC、CD11b-APC、CD38-PE和CD206-PE均為美國eBioscience公司產(chǎn)品;同型對照免疫球蛋白(兔抗鼠Fc抗體)和抗TIM-4單克隆抗體均為美國Bioxcell公司產(chǎn)品;ND-1000紫外分光光度計(美國Nanodrop公司);Accuri C6流式細(xì)胞儀(美國BD公司)。所有引物序列均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
將BALB/c小鼠斷頸處死,分離脾臟,加入含2%胎牛血清的DMEM,用無菌眼科剪剪成1 mm3組織塊,然后過200目無菌鋼篩網(wǎng)。加入紅細(xì)胞裂解液裂解5 min;加入5 mL無菌PBS輕輕吹打混勻;4 ℃,1 000 r/min離心5 min;棄上清液,加入5 mL PBS重懸,計數(shù)備用。取3×107個脾細(xì)胞注射至C57BL/6小鼠腹腔中。
將注射脾細(xì)胞的C57BL/6小鼠分為抗TIM-4組(n=6)和同型對照組(n=6),分別腹腔注射抗TIM-4單克隆抗體和同型對照免疫球蛋白抗體,300 μg/只;第5天,重復(fù)注射1次;第10天,處死兩組小鼠進(jìn)行后續(xù)相關(guān)實驗。
將C57BL/6小鼠置于75%乙醇中浸泡1 min;將其固定于解剖板,取5 mL無菌PBS注射于腹腔,輕揉腹部5 min;打開腹腔并剪一個小口,用一次性塑料滴管吸取腹腔液于離心管中;用PBS重復(fù)灌洗腹腔5次,獲得腹腔細(xì)胞懸液,置4 ℃?zhèn)溆谩?/p>
取C57BL/6小鼠脾臟,按“1.3”制備脾細(xì)胞懸液,計數(shù)。
取“1.4”獲得的腹腔細(xì)胞和脾細(xì)胞,每管加入1×106個單細(xì)胞懸液,每種細(xì)胞分2管,分別用于M1和M2型巨噬細(xì)胞檢測。檢測M1型巨噬細(xì)胞為F4/80、CD11b和CD38組合;檢測M2型巨噬細(xì)胞為F4/80、CD11b和CD206組合。細(xì)胞于4 ℃行1 000 r/min離心5 min;用60 μL PBS重懸細(xì)胞,分別加入3種熒光抗體(F4/80、CD11b、CD38或CD206),每種抗體各0.25 μL,4 ℃避光染色30 min;加入1 mL PBS輕輕吹打混勻,1 000 r/min離心5 min;洗去未結(jié)合的游離抗體;最后再加入400 μL PBS重懸,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測并用FlowJo 10.0軟件分析。
取“1.4”腹腔和脾細(xì)胞提取總RNA,檢測純度,行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)程序:42 ℃ 2 min除去基因組DNA,然后 37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s合成cDNA。以cDNA為模板,對上述基因表達(dá)水平行PCR反應(yīng)。miR-21和U6采用專用引物行逆轉(zhuǎn)錄,以U6作為檢測miR-21內(nèi)參基因;IL-10、p35、p40和EB病毒誘導(dǎo)基因3(Epstein-Barr virus-induced gene-3,EBi-3)采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒中的Oligo dT 引物行逆轉(zhuǎn)錄,以β-肌動蛋白作為其內(nèi)參基因。qRT-PCR反應(yīng)體系為10 μL,包括2×SYBR Premix ExTaq5.0 μL,正向和反向引物各0.2 μL,cDNA 1 μL,無RNA酶雙蒸水3.6 μL。qRT-PCR主要實驗步驟:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,退火30 s;40個循環(huán)。采用2-ΔCt方法計算結(jié)果。引物序列如表1所示。
表1 引物序列
流式結(jié)果顯示,與同型對照組相比,抗TIM-4處理組小鼠脾臟中M1、M2和M1/M2百分比差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P均>0.05);腹腔M1型巨噬細(xì)胞百分比無明顯變化(t=0.667,P>0.05),但M2型巨噬細(xì)胞所占比例顯著升高(t=3.317,P<0.05),腹腔細(xì)胞中M1/M2顯著降低(t=5.331,P<0.01)。由此說明,抗TIM-4單克隆抗體阻斷TIM-4分子后,在腹腔中誘導(dǎo)產(chǎn)生有利于免疫耐受的M2型巨噬細(xì)胞。見圖1。
qRT-PCR結(jié)果表明,與同型對照組相比,抗TIM-4組小鼠脾細(xì)胞中miR-21表達(dá)呈下降趨勢,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(t=2.131,P>0.05),而腹腔細(xì)胞中miR-21表達(dá)水平顯著降低(t=3.251,P<0.05)。見圖2。
圖2 qRT-PCR檢測脾臟和腹腔細(xì)胞中miR-21表達(dá)水平
qRT-PCR結(jié)果顯示,與同型對照組相比,抗TIM-4組脾細(xì)胞促炎因子p40 mRNA表達(dá)水平無明顯變化(t=0.311,P>0.05),但抑炎因子IL-10 和p35 mRNA表達(dá)水平顯著升高(t=3.049,5.027,P<0.05或0.01),而抑炎因子EBi-3 mRNA表達(dá)水平明顯降低(t=2.507,P<0.05)。由此可見,抗TIM-4單克隆抗體促進(jìn)具有免疫抑制作用的IL-10和p35 的mRNA表達(dá)。見圖3。
如圖4結(jié)果顯示,與同型對照組相比,抗TIM-4組腹腔細(xì)胞中促炎因子p40,抑炎因子IL-10和EBi-3等mRNA表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),但抑炎因子p35 mRNA表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。由此說明,抗TIM-4促進(jìn)腹腔細(xì)胞抑炎因子IL-10,EBi-3和促炎因子p40等mRNA表達(dá)。
a:P<0.05;b:P<0.01圖3 qRT-PCR檢測脾細(xì)胞中促炎和抑炎因子mRNA表達(dá)
a:P<0.05;b:P<0.01圖4 qRT-PCR檢測腹腔細(xì)胞中促炎和抑炎因子mRNA表達(dá)
巨噬細(xì)胞是介導(dǎo)移植物排斥的主要細(xì)胞[13]。在同種異體移植物中,巨噬細(xì)胞是造成組織浸潤,急性和慢性排斥的一類主要免疫細(xì)胞,其受到不同組織微環(huán)境和炎癥因子的刺激,具有不同的功能表型[13-14]。M2型巨噬細(xì)胞在局部先天性和獲得性免疫中均發(fā)揮重要作用[15]。研究發(fā)現(xiàn),巨噬細(xì)胞通過向M2極化,誘導(dǎo)免疫耐受,提高移植物存活率[13]。已有報道,腹腔中巨噬細(xì)胞高表達(dá)TIM-4,通過阻斷TIM-4分子可促進(jìn)移植物存活[14]。本研究結(jié)果顯示,在同種異體免疫排斥模型中,通過TIM-4單克隆抗體處理,小鼠腹腔中M1型巨噬細(xì)胞百分比無明顯變化,而M2百分比顯著升高;脾臟中,M1和M2比例無顯著變化。這可能與巨噬細(xì)胞的可塑性和異質(zhì)性的特點有關(guān)。此外,可能由于免疫部位不同造成小鼠不同組織中巨噬細(xì)胞比例變化不一致。本實驗采取的是經(jīng)典腹腔注射,腹腔中存在大量的巨噬細(xì)胞,注射的供體細(xì)胞首先與腹腔中巨噬細(xì)胞等相互作用,這也可能是腹腔中M1/M2平衡變化明顯,而脾臟中變化不明顯的原因。
研究發(fā)現(xiàn),miR-21作為調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的關(guān)鍵微小RNA,可調(diào)控多個靶基因[8]。本研究結(jié)果顯示,抗TIM-4單克隆抗體降低腹腔細(xì)胞中miR-21表達(dá)。由此說明,阻斷TIM-4分子下調(diào)miR-21表達(dá)水平,可抑制炎癥反應(yīng),從而減輕免疫排斥反應(yīng)。p35和IL-10作為miR-21靶基因,負(fù)向調(diào)控炎癥反應(yīng)[16]。IL-12是由p40和p35組成的炎癥性細(xì)胞因子,在炎癥中起重要作用[17]。IL-35是由p35和EBi-3作為獨立的亞基分泌形成,炎癥條件下結(jié)合形成具有免疫抑制活性的異二聚體分子,通過誘導(dǎo)免疫耐受減輕小鼠的心臟移植排斥反應(yīng)[18]。游離p35和EBi-3均可發(fā)揮免疫抑制作用,有效抑制同種異體移植排斥反應(yīng),誘導(dǎo)同種異體移植物的免疫耐受[18-19]。本實驗結(jié)果顯示,抗TIM-4單克隆抗體可促進(jìn)脾臟中抑炎因子IL-10和p35 mRNA表達(dá),而抑制抑炎因子EBi-3 mRNA表達(dá)。由此說明,阻斷TIM-4分子造成脾臟細(xì)胞中抑炎因子表達(dá)水平升高。此外,本實驗結(jié)果顯示,抗TIM-4組腹腔細(xì)胞中抑炎因子IL-10和EBi-3 mRNA表達(dá)水平明顯升高。以上實驗結(jié)果顯示,腹腔和脾臟中抑炎因子EBi-3表達(dá)水平不一致。這可能是由于小鼠脾臟和腹腔免疫細(xì)胞組成不同,脾臟主要有T、B細(xì)胞組成,巨噬細(xì)胞約占2%,而腹腔存在大量巨噬細(xì)胞,這種不同的細(xì)胞組成可能引起不同的免疫反應(yīng)[20]。然而,腹腔細(xì)胞中促炎因子p40 mRNA表達(dá)水平升高,這與抑炎因子IL-10和EBi-3 mRNA表達(dá)水平升高相矛盾。有文獻(xiàn)報道p40通過調(diào)節(jié)T細(xì)胞的活化,可發(fā)揮免疫抑制作用,減緩炎癥反應(yīng)[21]。由此可見,在免疫排斥反應(yīng)中,促炎和抑炎因子呈動態(tài)變化。研究表明,miR-21抑制M2型巨噬細(xì)胞極化,下調(diào)miR-21表達(dá)促進(jìn)M2極化,有利于誘導(dǎo)移植物存活[13,22]。由此說明,miR-21是參與巨噬細(xì)胞極化的關(guān)鍵分子。本實驗結(jié)果顯示,腹腔細(xì)胞中miR-21表達(dá)水平降低,M2型巨噬細(xì)胞百分比升高。由此說明,抑制腹腔細(xì)胞中miR-21表達(dá),促進(jìn)巨噬細(xì)胞向M2極化,可誘導(dǎo)機體產(chǎn)生免疫耐受。
綜上所述,阻斷TIM-4分子可促進(jìn)抑炎功能的M2型巨噬細(xì)胞產(chǎn)生和IL-10、EBi-3和p35等抑炎因子分泌,并且降低miR-21表達(dá)水平,減輕同種異體免疫排斥反應(yīng)。然而促炎因子p40和抑炎因子IL-10、EBi-3和p35等變化的機制有待進(jìn)一步研究。