肖紅衛(wèi)，畢延震

（動(dòng)物胚胎工程與分子育種湖北重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所，武漢 430064）

能夠在DNA 鏈上制造特定位點(diǎn)雙鏈斷裂（Double-strand breaks，DSB），并利用細(xì)胞的DNA 修復(fù)功能進(jìn)行修復(fù)的技術(shù)被稱之為基因編輯技術(shù)，常見的基因編輯技術(shù)有鋅指核酸酶（Zinc-finger nucleases，ZFN）、轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)物核酸酶（TAL effector nucleases，TALEN）和CRISPR/Cas9 等，理論上基因編輯技術(shù)可以對(duì)任意細(xì)胞類型的任意基因進(jìn)行定點(diǎn)改造。前人在研究DNA 損傷修復(fù)時(shí)發(fā)現(xiàn)，真核細(xì)胞會(huì)對(duì)DNA 的DSB 進(jìn)行同源重組（Homologous directed recombination，HDR）、非同源末端連接（Nonhomologous end joining，NHEJ）的選擇性修復(fù)，在選擇HDR 修復(fù)時(shí)會(huì)依照模板進(jìn)行精確地修復(fù)，而在選擇NHEJ 修復(fù)結(jié)束后在這些DSB 位點(diǎn)造成局部的缺失、插入，甚至無關(guān)聯(lián)位置末端連接等［1］。

科學(xué)家們在研究DNA 修復(fù)過程時(shí)發(fā)現(xiàn)，NHEJ與HDR 之間相互競爭，互為替代DNA 修復(fù)途徑［2，3］。Pierce 等［4］研究發(fā)現(xiàn)，NHEJ 與HDR 2 種途徑同時(shí)起作用，NHEJ 活性降低會(huì)增加HDR 效率。小分子化合物在DNA 修復(fù)的HDR 通路與NHEJ 通路的選擇上發(fā)揮作用，并以此為指導(dǎo)產(chǎn)生了以小分子化合物來提高基因編輯效率的一系列研究。本研究通過綜述分析小分子化合物在DNA 修復(fù)中NHEJ 通路中發(fā)揮的作用機(jī)制，說明小分子化合物提高CRISPR/Cas9 基因組編輯的研究進(jìn)展，為基因的精確編輯提供理論依據(jù)。

1 DNA 修復(fù)中的HDR、NHEJ 機(jī)制

DNA 雙鏈斷裂的修復(fù)對(duì)于細(xì)胞維持其基因組完整性至關(guān)重要。修復(fù)哺乳動(dòng)物細(xì)胞中這些斷裂的2 個(gè)主要機(jī)制是非同源末端連接和同源重組。圖1為NHEJ 與HDR 之間相互競爭、互為替代DNA 的修復(fù)途徑［2，5，6］。

1.1 HDR 機(jī)制

HDR 在 細(xì) 胞 的S 期 起 作 用。 首 先，DSB 被MRN（Mre11p/Rad50p/Nbs1p）復(fù)合體識(shí)別，接著招募RecBCD 復(fù)合體進(jìn)行DSB 斷端處理，斷端從5′-3′降解核苷酸，形成3′端單鏈DNA（ssDNA）。3′端單鏈DNA（ssDNA）在RecA 的作用下調(diào)整和侵入另外一條同源鏈從而進(jìn)行后續(xù)的DNA 分子交換，形成HJ模型（Holliday Junction）。然后在RecA 和DNA 聚合酶的作用下進(jìn)行DNA 堿基互補(bǔ)配對(duì)、DNA 合成及延伸。接著發(fā)生HJ 模型交叉支點(diǎn)的遷移和切斷。最后，2 個(gè)雙鏈DNA 解離，DNA 連接酶連接DNA 斷端，得到2 個(gè)獨(dú)立完整的雙鏈DNA［5］。圖2為HDR 修復(fù)途徑的步驟以及各因子參與該過程的順序［6］。

圖2 DNA 損傷HDR 修復(fù)過程

圖1 NHEJ 與HDR 之間相互競爭、互為替代DNA 的修復(fù)途徑

1.2 NHEJ 機(jī)制

NHEJ 在整個(gè)細(xì)胞周期中都起作用，并且DSB被Ku70/Ku80 異二聚體識(shí)別，該異二聚體結(jié)合在斷裂兩側(cè)的DNA 末端。這種異二聚體的形成導(dǎo)致DNA 依賴性蛋白激酶（DNA-PK）的催化亞基的活化。DNA-PKcs 與Ku70 和Ku80 結(jié)合并穩(wěn)定DNA的末端。穩(wěn)定后，DNA 連接酶IV（DNA ligase IV，LIG IV）/XRCC4 復(fù)合物結(jié)合并將DNA 的末端連接在一起，從而修復(fù)了DSB［7，8］。由于HDR 效率很低（＜5%），大部分DSB 都由NHEJ 修復(fù)完成，從而引進(jìn)許多隨機(jī)的插入和缺失。此外，HDR 的效率還與細(xì)胞的類型與狀態(tài)等因素相關(guān)。 在S/G2 期間，NHEJ 和HDR 之間的路徑選擇受DSB 位點(diǎn)的最終處理程度影響［9］。圖3 為經(jīng)典NHEJ 途徑的步驟以及各因子參與該過程的順序［10］。

圖3 經(jīng)典NHEJ 途徑的步驟以及各因子參與該過程的順序

在脊椎動(dòng)物細(xì)胞的NHEJ 途徑中，除了MRN（Mre11p/Rad50p/Nbs1p）復(fù)合體以外，DNA 依賴性蛋 白 激 酶Ku70p、Ku80p、DNA-PKcs、Xrcc4p 和DNA ligase IV 的3 個(gè)亞基均參與非同源末端結(jié)合途徑。自從Chu 等［11］發(fā)現(xiàn)使用DNA ligase IV 的小分子化合物抑制劑SCR7 來抑制樣品的NHEJ 后可以提高HDR 的效率以來，相關(guān)研究不斷深入。

2 小分子化合物通過抑制NHEJ 通路中的DNA 連接酶IV 提高HDR 通路的效率

DNA 連接酶IV 由與C 末端串聯(lián)BRCT 結(jié)構(gòu)域連接的N 末端催化結(jié)構(gòu)域組成［12］。DNA ligase IV中的串聯(lián)BRCT 結(jié)構(gòu)域與XRCC4 的莖區(qū)域以高親和力相互作用，從而穩(wěn)定了DNA ligase IV［13，14］。所有細(xì)胞DNA ligase IV 都可能與XRCC4 復(fù)合存在［15，16］。

DNA ligase IV 在ATP 依賴性反應(yīng)中與雙鏈多脫氧核苷酸中的單鏈斷裂連接。 該蛋白質(zhì)通過NHEJ 對(duì)V（D）J 重 組和DSB 的修 復(fù)是必需的。DNA ligase IV 負(fù)責(zé)在NHEJ 期間密封DSB。已知XRCC4 和DNA-PK 都是NHEJ 所必需的，抑制DNA ligase IV 可導(dǎo)致DSB 的聚集［17，18］。

2.1 SCR7

2.1.1 SCR7 的作用機(jī)理 Srivastava 等［19］研究發(fā)現(xiàn)一種分子（SCR7）可以抑制DSB 在無細(xì)胞修復(fù)系統(tǒng)中的連接。DNA ligase IV 蛋白與X 射線修復(fù)交叉互補(bǔ)蛋白4（XRCC4）形成復(fù)合物，并進(jìn)一步與DNA依賴性蛋白激酶（DNA-PK）相互作用。 XRCC4、DNA-PK 蛋白上沒有SCR7 分子可以結(jié)合的結(jié)構(gòu)域，在DNA ligase IV 上存在DNA 以及SCR7 分子可以結(jié)合的結(jié)構(gòu)域。SCR7 通過干擾其與DNA 結(jié)合而不是T4DNA 連接酶或連接酶I 的結(jié)合來阻斷DNA ligase IV 介導(dǎo)的連接。SCR7 分子與DNA 分子競爭性地結(jié)合在DNA ligase IV 蛋白上，從而在細(xì)胞內(nèi)以DNA ligase IV 依賴性方式抑制NHEJ。采用ACD ChemSketch 軟件繪制了SCR7 的化學(xué)結(jié)構(gòu)式，并采用Accelrys Discovery Studio 2.5 軟件模擬了SCR7 與DNA ligase IV 的互作結(jié)果（圖4）。

Maruyama 等［3］研究發(fā)現(xiàn)，通過增加外源DNA片段可以提高通過同源重組摻入基因組的速率，從而將靶向DSB 引入DNA，實(shí)現(xiàn)精確的基因組編輯。為了抑制NHEJ 促進(jìn)HDR，使用了抑制劑SCR7 靶向DNA ligase IV（NHEJ 途徑中的關(guān)鍵酶）。在哺乳動(dòng)物細(xì)胞系和小鼠中使用CRISPR/Cas9 技術(shù)對(duì)Kell、Igkc、Os9、Sgms2 4 個(gè)基因進(jìn)行基因編輯，SCR7的處理提高了HDR 介導(dǎo)的基因組編輯效率，在對(duì)這4 個(gè)基因進(jìn)行檢測時(shí)，使用SCR7 處理最高可以提高基因編輯效率達(dá)19 倍。該方法應(yīng)適用于其他可定制的核酸內(nèi)切酶，例如鋅指核酸酶和轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)物核酸酶，以及具有足夠保守的NHEJ和HDR 機(jī)制的非哺乳動(dòng)物細(xì)胞。Vartak 等［20］也發(fā)現(xiàn)，SCR7 通過抑制NHEJ 顯著提高了精確基因組編輯的效率，并且在體外和體內(nèi)均有利于無錯(cuò)誤的同源重組途徑。

圖4 SCR7 的化學(xué)結(jié)構(gòu)式以及SCR7 與DNA ligase IV 互作的模擬

Chu 等［11］使用了抑制劑SCR7 將HDR 的效率提高了4～5 倍。Ma 等［21］研究發(fā)現(xiàn)，與NHEJ 途徑相比，CRISPR/Cas9 介導(dǎo)的HDR 指導(dǎo)的精確遺傳修飾效率相對(duì)較低，通過添加SCR7 來抑制DNA ligase IV 從而抑制NHEJ，可以增加HDR 介導(dǎo)的精確遺傳修飾效率。Hu 等［22］研究發(fā)現(xiàn)，在使用ssODNs 作為模板時(shí)，與沒有SCR7 處理的細(xì)胞相比，SCR7 處理使轉(zhuǎn)染細(xì)胞中的靶向插入效率提高了3 倍。而Lin等［23］研究發(fā)現(xiàn)，將抑制劑SCR7 引入CRISPR/Cas9系統(tǒng)促進(jìn)了HSV-1 基因組中HDR 介導(dǎo)的基因置換，進(jìn)一步驗(yàn)證了Maruyama 等［3］、Vartak 等［20］的發(fā)現(xiàn)。

Li 等［24］研 究 發(fā) 現(xiàn)，小 分 子 化 合 物SCR7、L755507 和白藜蘆醇可使豬胎兒成纖維細(xì)胞的HDR 效 率 提 高2～3 倍。 當(dāng) 用 同 源 模 板DNA 和CRISPR/Cas9 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染并用小分子處理時(shí)，具有大DNA 片段整合的敲入豬胎兒成纖維細(xì)胞系的比率可以達(dá)到篩選細(xì)胞集落的50% 以上，而用DMSO 處理的細(xì)胞組中敲入率為26.1%。結(jié)果提示，應(yīng)該存在一類結(jié)構(gòu)類的并且可以提高基因編輯效率的小分子化合物。而Vartak 等［25］研究發(fā)現(xiàn)，環(huán)化形式的SCR7 在體外顯示出對(duì)NHEJ 的強(qiáng)烈抑制，環(huán)化和氧化形式的SCR7 抑制DNA ligase IV 催化的DNA 末端連接，而它們對(duì)DNA ligase III、DNA ligase I 和T4DNA 連接酶介導(dǎo)的連接影響最小。環(huán)化和氧化形式的SCR7 均抑制V（D）J 重組，其中SCR7 環(huán)化的效果更明顯。SCR7-吡嗪對(duì)細(xì)胞內(nèi)的連接酶IV的特異性較低。結(jié)果提示，對(duì)小分子化合物結(jié)構(gòu)的分析很重要，并可指導(dǎo)相關(guān)化合物的合成。

2.1.2 CRISPR/Cas9 中使用的SCR7 劑量 在確認(rèn)了SCR7 對(duì)HDR 效率的提升具有確切的作用后，眾多科學(xué)家對(duì)SCR7 的使用濃度進(jìn)行了探索。Chu等［11］研究發(fā)現(xiàn)，10～60 mmol/L 的SCR7 均可有效地提高HDR 的效率。Maruyama 等［3］研究發(fā)現(xiàn)，使用1 mmol/L 的SCR7 注射胚胎可以提高HDR 介導(dǎo)的基因組編輯的效率7～19 倍。Lin 等［23］研究發(fā)現(xiàn)，SCR7 可以促進(jìn)人類細(xì)胞中HSV-1 基因組上HDR介導(dǎo)的基因置換。Li 等［24］研究發(fā)現(xiàn)，10～200 μmol/L SCR7 不會(huì)影響細(xì)胞周期分布。用小分子處理的細(xì)胞中幾乎所有的HDR 途徑關(guān)鍵因子均表達(dá)上調(diào)。一些NHEJ 關(guān)鍵因素，如LIG4 和MRE11，在用L755507 或SCR7 處理后顯示出mRNA 表達(dá)水平的顯著降低，但是XRCC5、XRCC6 和XRCC7 這3 個(gè)NHEJ 修復(fù)通路中的關(guān)鍵因子在用SCR7、L755507以及Resveratrol 這3 種化合物處理的細(xì)胞中均表達(dá)上調(diào)。Hu 等［22］研究發(fā)現(xiàn)，與未使用SCR7 處理的細(xì)胞相比，采用SCR7 處理MCF-7 細(xì)胞和HCT-116細(xì)胞時(shí)，HDR 片段明顯增加。不同的研究采用的濃度不盡相同，卻都能成功完成，進(jìn)一步證明了SCR7的作用。

2.2 NU7026

Gkotzamanidou 等［26］研究發(fā)現(xiàn)，用DSB 修復(fù)抑制劑處理細(xì)胞會(huì)顯著降低DSB 修復(fù)的比率并增加細(xì)胞對(duì)木香素的敏感性，而非同源末端連接抑制劑NU7026 和SCR7 表現(xiàn)出最強(qiáng)的作用。軟件分析后發(fā)現(xiàn)，NU7026 和SCR7 同處于DNA ligase IV 結(jié)合的結(jié)構(gòu)域，推測在DNA 修復(fù)中NU7026 可能發(fā)揮和SCR7 同樣的調(diào)控作用。結(jié)合NU7026 處理細(xì)胞后可以增加細(xì)胞對(duì)木香素的敏感性，推測在進(jìn)行多個(gè)小分子化合物聯(lián)合處理細(xì)胞時(shí)，NU7026 和SCR7 發(fā)揮了booster 的作用。采用ACD ChemSketch 軟件繪制NU7026 的化學(xué)結(jié)構(gòu)式（圖5a），并采用Accelrys Discovery Studio 2.5 軟件模擬NU7026 與DNA ligase IV 的互作結(jié)果（圖5b），以及模擬NU7026、SCR7 與DNA ligase IV 的 互 作 結(jié) 果（ 圖5c）。NU7026 與SCR7 同處于DNA ligase IV 結(jié)合的同一個(gè)結(jié)構(gòu)域。

2.3 白藜蘆醇

Li 等［24］研究發(fā)現(xiàn)，用白藜蘆醇處理細(xì)胞后，結(jié)果根據(jù)白藜蘆醇劑量的變化而變化。低濃度（小于25 μmol/L）白藜蘆醇可以抑制LIG4 和XRCC4 的表達(dá)。50 μmol/L 白藜蘆醇對(duì)LIG4 的表達(dá)沒有影響，或略微上調(diào)了XRCC4 的表達(dá)，而100 μmol/L 白藜蘆醇顯著促進(jìn)了它們的表達(dá)。軟件分析后發(fā)現(xiàn)，白藜蘆醇和SCR7 同處于DNA ligase IV 結(jié)合的結(jié)構(gòu)域，結(jié)合白藜蘆醇處理細(xì)胞后的結(jié)果，推測白藜蘆醇與SCR7 可能另外調(diào)控DNA 修復(fù)的作用機(jī)制。采用ACD ChemSketch 軟件繪制白藜蘆醇的化學(xué)結(jié)構(gòu)式（圖6a），并采用Accelrys Discovery Studio 2.5 軟件模擬白藜蘆醇與DNA ligase IV 互作結(jié)果（圖6b），并模擬白藜蘆醇、SCR7 與DNA ligase IV 互作的結(jié)果（圖6c）。白藜蘆醇與SCR7 同處于DNA ligase IV 結(jié)合的同一個(gè)結(jié)構(gòu)域。

2.4 L755507

Li 等［24］研究發(fā) 現(xiàn)，用L755507 處 理 細(xì)胞 后，LIG4 和MRE11 的mRNA 表達(dá)水平顯著降低，而XRCC5，XRCC6 和XRCC7 表達(dá)水平均上調(diào)。軟件分析后發(fā)現(xiàn)，L755507 沒有和SCR7 同處于DNA ligase IV 結(jié)合的結(jié)構(gòu)域，推測L755507 可能另外調(diào)控DNA 修復(fù)的作用機(jī)制。采用ACD ChemSketch 軟件繪制的L755507 的化學(xué)結(jié)構(gòu)式，并采用Accelrys Discovery Studio 2.5 軟 件 模 擬L755507、SCR7 與DNA ligase IV 互作結(jié)果。 L755507 遠(yuǎn)離SCRT 與DNA ligase IV 作用的結(jié)構(gòu)域（圖7）。

3 其他研究

圖5 NU7026的化學(xué)結(jié)構(gòu)式（a）、NU7026與DNA ligase IV互作結(jié)果（b）、NU7026、SCR7與DNA ligase IV互作結(jié)果（c）的模擬

圖6 白藜蘆醇的化學(xué)結(jié)構(gòu)式（a）、白藜蘆醇與DNA ligase IV 互作結(jié)果（b）以及白藜蘆醇、SCR7 與DNA ligase IV 互作結(jié)果（c）的模擬

圖7 L755507 的化學(xué)結(jié)構(gòu)式以及L755507、SCR7 與DNA ligase IV 互作結(jié)果的模擬

科學(xué)家們除了使用NHEJ 的小分子化合物抑制劑來抑制NHEJ 以提高HDR 的效率之外，還針對(duì)參與NHEJ 通路的各個(gè)蛋白開展了相關(guān)功能研究。Song 等［27］研究發(fā)現(xiàn)，HDR 增強(qiáng)子RS-1 的體外應(yīng)用在不同位點(diǎn)將敲入效率提高了2～5 倍，而NHEJ 抑制劑SCR7 卻只能提高2.3% 的基因編輯效率。提示除了SCR7 抑制劑之外，還有別的途徑可以提高HDR 的效率。Yang 等［28］研究發(fā)現(xiàn)，G2/M 中的hPSCs 與ABT 階段同步增加了目標(biāo)基因編輯效率3～6倍。靶向基因編輯的增加是基因座獨(dú)立的并且對(duì)細(xì)胞周期階段是特異性的，因?yàn)榕cG1 期細(xì)胞相比，G2/M 期富集的細(xì)胞顯示靶向效率增加6 倍。同時(shí)用SCR7 抑制NHEJ 不會(huì)增加HDR 或進(jìn)一步提高基因靶向效率，表明HDR 是G2/M 期阻滯后的主要DNA 修復(fù)機(jī)制。Shao 等［29］研究發(fā)現(xiàn)，通過表達(dá)參與同源重組過程的基因Rad52 可以增強(qiáng)HDR 效率。Rad52 共表達(dá)和 Rad52-Cas9 融合策略在人HEK293T 細(xì)胞以及基因組編輯中HDR 效率增加了約3 倍。此外，還證實(shí)了Rad52-Cas9 融合對(duì)由不同供體模板（質(zhì)粒、PCR 和ssDNA）介導(dǎo)的HDR 的增強(qiáng)作用，并發(fā)現(xiàn)通過Rad52 和SCR7 組合使用，HDR 效率可以顯著提高到約40%。

4 展望

自從基因編輯技術(shù)出現(xiàn)后，在基因功能的研究上日益深入。該技術(shù)可以很方便地在DNA 鏈上產(chǎn)生DSB，并利用細(xì)胞自身的DNA 修復(fù)中的NHEJ 機(jī)制，在靶基因座位上產(chǎn)生突變；或者利用DNA 修復(fù)中的HDR 機(jī)制，把目的基因定點(diǎn)插入靶基因座位。該技術(shù)克服了傳統(tǒng)轉(zhuǎn)基因技術(shù)的整合隨機(jī)、遺傳不穩(wěn)定等缺陷，具有很大的應(yīng)用前景。尤其是在利用DNA 修復(fù)中的HDR 機(jī)制把目的基因定點(diǎn)插入靶基因座位的研究上，人們可以采用基因編輯技術(shù)，把一些藥用蛋白基因敲入乳腺特異表達(dá)基因區(qū)或者輸卵管特異表達(dá)基因區(qū)，使牛羊乳中產(chǎn)生藥用蛋白或者雞蛋中產(chǎn)生藥用蛋白。基于CRISPR/Cas9 的基因編輯系統(tǒng)的研究最為簡單和便宜，得到廣泛的應(yīng)用和推廣，但因?yàn)榧?xì)胞內(nèi)的NHEJ 與HDR 的競爭，導(dǎo)致HDR 效率比較低。該問題的解決需要科學(xué)家們共同攻關(guān)，研究高效的編輯手段、篩選技術(shù)和轉(zhuǎn)移方法，以促進(jìn)基因編輯技術(shù)的進(jìn)一步推廣和應(yīng)用。

利用小分子化合物靶向DNA 連接酶IV 抑制NHEJ、提高HDR 效率是熱門研究的方向之一。利用篩選出的小分子化合物，不管是在DNA 修復(fù)機(jī)制研究上還是在生物工程研究上，都具有很高的價(jià)值。而該研究方向的關(guān)鍵點(diǎn)就是在參與DNA 修復(fù)NHEJ 途徑的DNA 連接酶IV 上，一旦篩選出高效的DNA 連接酶IV 抑制劑，就會(huì)促進(jìn)基因編輯技術(shù)在生產(chǎn)上的應(yīng)用。